我々は、行動分析のための画像TMプログラムの開発に彼の助け和夫中西に感謝します。本研究では、革新的な領域に科学研究費補助金（総合脳科学研究ネットワーク）、科学研究費補助金（B）（21300121）、萌芽研究費補助金（19653081）でからサポートされていました教育、科学、スポーツ、日本の文化、ニューロインフォマティクス日本センター（NIJC）からの助成、日本科学技術振興機構（JST）のCREST＆BIRDからの補助金の省。

1。装置の設定<ol><li>自動変更されたT-迷路装置（オハラ·アンド·カンパニー、東京、日本）は25センチの高さの壁1と白いプラスチックの滑走路で構成されている。迷路は自動的に下向きに開くことができるドア（S1、S2、S3、A1、A2、P1、P2）（図1）をスライドさせて6分野（A1、A2、S1、S2、P1、P2）にオフに分割されています。 Tの茎は、S2領域から構成される（13×24 cm）とTの腕は、領域A1とA2を（11.5 X 20.5センチメートル）を含んでいます。領域P1とP2は、アーム（領域A1またはA2）からスタート区画（面積S1）に接続する通路を構成しています。 </li><li>各アームの先端は、自動的に報酬としてショ糖ペレット（20mgを、式5 TUT、TestDiet、リッチモンド、IN、アメリカ）を提供ペレットディスペンサーが装備されています。マウスによるペレットの摂取量は、赤外線センサーによって検出されると自動的にコンピュータで記録されています。 </li><li>電荷結合素子（CCD）カメラは、マウス＆＃を監視するための装置の上にマウントされているx2019;の動作、および装置およびマウスの画像は、コンピュータによってキャプチャされます。 </li><li>防音室（170×210×200センチ、オハラ·アンド·カンパニー、東京、日本）できるだけのT-迷路装置を配置します。装置は、我々の研究室では100ルクスの蛍光灯で照らされています。光強度は、このルクスのレベルよりも弱いかもしれませんが、すべての実験中に一定のレベルに保持する必要があります。 </li></ol> 2。動物の準備<ol><li>ハウス温度制御された部屋にケージ当たり2〜4匹のマウスについて（23±2°C）の指導と地元のアニマルケアによって確立されたプロトコルに従って、12時間明/暗サイクル（午前7時点灯）でと委員会を使用してください。 </li><li>最初の試験が始まる前に住宅の部屋から防音室に少なくとも30分間マウスを含むすべてのケージを転送します。 </li><li>すべての実験は、常に同じ時間帯（例えば、9:00〜午後6:00午前）の間に実行する必要があります。テスト中にPEタスクのパフォーマンスの日の時間の潜在的な影響があるかもしれないので、riod、それぞれの遺伝子型や実験条件の被験者は、フォークリフト、順番にテストする必要があります。 </li></ol> 3。食事制限<ol><li>実験の初めまで、マウスに標準的なペレット餌と水に自由にアクセスすることができます。 </li><li>プレトレーニングセッション1週間前から、毎日のマウスの重さと実験を通してそれらの自由摂食、体重の80％〜85％を維持するために標準のペレット餌で彼らを養う。 </li><li>事前に研修を開始するまでは、ショ糖ペレットに慣らすために彼らのホームケージで標準のペレット餌に加えてマウスごとに8つのスクロースのペレットを毎日提供しています。 </li></ol> 4。装置と事前訓練への馴化<ol><li>場所の装置の6区画の各々の中心にマウス当たりIXショ糖ペレット、預金1ペレットフードディスペンサーの各トレイに。 </li><li>装置内にケージ内のすべてのマウスを置き、それらを自由に30分間開いているすべてのドアと装置を探索することができます。 </li><li>馴化後1日から、マウスは毎日、事前研修を受けています。すべてのドアが閉じられ、ペレットは、エリアA1に食品トレー、場所をマウスで堆積しています。マウスがペレットまたは5分経過を消費する場合、領域A2にマウスを転送して、再度、事前トレーニングを開始します。そのようなトレーニングは1日5回繰り返し、マウスは、ペレットの80％以上を消費するまで継続されています。 </li><li>事前に研修が完了した後、マウスを強制的に交替タスクまたは左右弁別課題のいずれかに供される。 </li></ol> 5。強制的に交替作業<ol><li>強制的に交代タスクでは、各試験では、強制的に選択実行次式で構成されています自由選択の実行によってlowed。 </li><li>タスクの開始のためのアプリケーションプログラム（画像TM）を実行して、スタートボックス（面積S1）にマウスを置きます。 </li><li>スタートボタンをクリックして、強制選択の実行が開始されます。この実行では、スタートボックス（ドアS2）の、エリアA1（ドアA1）または領域A2（ドアA2）のいずれかの扉が開かれ、ショ糖ペレットを自動的に開いているドアと地域の食品トレイに配信されます。マウスが領域を入力すると、ペレットを消費することが許可されます。マウスがペレットを食べたとき、マウスが現在とどまるアーム（ドアP1またはP2のいずれか）の食品トレイの近くに扉が開かれます。その後、マウスは開始ボックスに隣接するドアを（S1またはS3のいずれか）に近づくとドアP1またはP2のいずれかが閉じられ、ドアS1（またはS3）マウスは開始ボックスに戻りますことができるように開かれます。マウスは30秒以内にペレットを食べて失敗した場合、応答は &quot;省略エラー&quot;として記録されます。その後、ペレットを自動的に食品トレイとtから削除されます彼マウスが滞在しているアーム（P1またはP2のいずれか）の扉が開かれ、その後、マウスは開始ボックスに戻ることができます。 </li><li>強制選択実行するには、次の、自由選択の実行が自動的に開始されます。 s2のドアとドアA1とA2の両方が開かれます。マウスは両腕の間で選択することが許可されています。マウスは、それが強制選択実行で選択を余儀なくされている反対側の腕を入力すると、その応答は &quot;正しい&quot;と見なされ、マウスはスクロースペレットを受信します。マウスは30秒以内にペレットを食べて失敗した場合、応答は &quot;省略エラー&quot;として記録され、ペレットは自動的に食品トレイから削除されます。それが強制選択タスクに訪れたように、マウスは、同じ腕に行く場合は、マウスがペナルティ（ &quot;エラー&quot;応答）として10秒間領域内に閉じ込められている。次に、P1（またはS1）とp2（またはS3）の扉が開かれ、マウスは開始ボックスに戻ることができます。 </li><li>マウスは、セッションごとに10回連続して試験に供される日（カットオフ時間、50分）。コントロールマウスは、セッションでは80％正しい応答のグループの平均値に到達するために毎日の訓練を受けています。正しい応答のグループの平均は、各グループのセッションで各マウスの％正しい応答を平均化することによって計算されます。 </li><li> 30 - 10 - 、 - 基準に訓練されている制御および/または実験用マウスした後、更に3を挿入することによって、遅延交替作業でマウスをテストすることができ、または60秒の強制選択と自由選択間の遅延実行されます。 </li><li>各セッションの後、自分のホームケージにマウスを返すと、嗅覚に基づいて、バイアスを防ぐために、スーパー次亜水（pH 6-7）で装置を清掃してください。 </li></ol> 6。左右弁別課題<ol><li>左右弁別課題では、各マウスは、10または20の試験の実行を自由に選択が与えられています。スクロースペレットは、常に、すなわち武器の一つ、目標アームの食品トレイに配信されます。マウスは、目標アームを入力することを学ぶ必要があります。目標の場所アームは試験およびセッション間で不変であり、制御、実験用マウス渡って相殺されています。 </li><li>タスクの開始のためのアプリケーションプログラム（画像TM）を実行して、スタートボックス（面積S1）にマウスを置きます。 </li><li>スタートボタンをクリックして、自由選択の実行が開始されます。この実行では、s2のドアとドアのA1とA2の両方が開かれ、ペレットディスペンサは、自動的に目標アームの食品トレイにペレットを提供しています。マウスを自由に左右の腕の間で選択を許可されています。マウスがゴールのアームに入ると、それは正しい応答と見なされます。マウスがペレットまたは30秒経過、ドアP1（またはP2）を食べる場合に開かれます。マウスが領域P1（またはP2）を通過することによって開始ボックスに近づくと、ドアのS1（またはS3）マウスは開始ボックスに戻すことができるように開かれます。 </li><li>マウスは、通常、一日あたりのセッションで10から20の連続した​​試験（カットオフ時間、50分）に供される。コントロールマウスは80％CORRのグループの平均値に到達するために毎日の訓練を受けていますセッション内のECTの応答。正しい応答のグループの平均は、各グループのセッションで各マウスの％正しい応答を平均化することによって計算されます。 </li><li>マウスが基準に達した後は、（すなわち、反転、セッションの間に数週間の遅延を挿入することにより、保持メモリと再学習を評価するために、または反対に報酬を置くことによって、行動の柔軟性を評価するために、どちらのマウスに、以前unbaitedアームを追加セッションを与えることができます必要に応じて）、学習。 </li><li>各セッションの後、自分のホームケージにマウスを返すと、嗅覚に基づいて、バイアスを防ぐために、スーパー次亜水（pH 6-7）で装置を清掃してください。 </li></ol> 7。画像解析<ol><li> T-迷路装置内の動作は、コンピュータに接続され、イメージをTIFF形式で保存されているビデオカメラによって記録されます。行動データ（画像TM）を取得し、分析するために使用されるアプリケーションは、パブリックドメインの画像Jプログラム（によって開発されたに基づいていますウェイン国立精神衛生研究所のRasbandとで利用可能な<a hef="http://rsb.info.nih.gov/ij/">http://rsb.info.nih.gov/ij/</a>剛宮川（オハラ·アンド·カンパニー、東京、日本経由で入手可能）によって変更された）。 </li><li>画像TMプログラムが自動的にセッションを完了するには、正しい応答の割合のためのテキストフ​​ァイル、待ち時間（秒）を生成し、距離がセッション中に移動し、セッションで脱落エラーの数。また、マウス、生の位置データと、各ランで生応答データ（正しい、不作為、またはエラー）のトレース画像が生成され、保存されます。 </li></ol> 8。統計分析双方向（実験条件（例えば、遺伝子型）Xセッションまたは実験条件×遅延）分散の反復測定分析により、それぞれの行動データを分析します。 9。代表的な結果 MA - α-CaMKIIの+ /によるT-迷路のパフォーマンスの例ルマウスとその野生型の対照同腹子（C57BL/6J背景）（11月18日週齢、nは強制的に交替するためのグループごとに= 10または左右弁別課題）は、図2-4に示されています。 α-CaMKIIのため、+ / -マウスはケージメイト2,3に向かって攻撃の高いレベルを示し、両方の変異株と対照マウスは、単独離乳後（22.7×32.3×12.7 cm）のプラスチックケージに収容した。実験は、藤田保健衛生大学の動物実験及び利用委員会により承認されました。 強制的に交代タスクでは、対照マウスはますます正しい選択を行う方法を学習します、通常約1〜2週間（図2A）の平均80パーセント正しい応答の基準に達することができます。と短い待ち時間（遺伝子型：F（1,18）= 8.88： - 対照マウスに比べて、α-CaMKIIの+ /マウスは有意に低い正答率（F（1,18）= 29.04、P &lt;0.0001ジェノタイプ）を示したは、p = 0.008、ジェノタイプXセッション：F（9162）= 2.24、P = 0.0218）と短いdを旅してistance（遺伝子型：F（1,18）= 8.67、P = 0.0086、ジェノタイプXセッション：F（9162）= 3.19、P = 0.0014）は、コントロールマウス（図2A、A、B、およびC）を超える。遺伝子型の有意な効果が脱落エラー（図2D）に見つかりませんでした。 、DELAY F（1,18）= 38.781、P &lt;0.0001 - また、遅延交替タスクで、α-CaMKIIの+ /の正しい選択の割合マウスは、任意の遅延時間（遺伝子型では野生型マウスより有意に低かった：F（3,54）= 8.074、P = 0.0002、ジェノタイプX DELAY：F（3,54）= 0.223、P = 0.88;図3）。これらの結果は、変異体は変異マウスではα-CaMKIIの欠乏はワーキングメモリの赤字を誘導することが示唆され、より高速なコントロールよりもタスクを実行することができるが、マウスを制御するために比較して障害のあるパフォーマンスを表示していることを示します。 左右弁別課題では、α-CaMKIIの+ /の正しい選択の割合 - 変異体は徐々に、セッションをまたいでコントロールマウス（図4A）に似て増加した。また、1ヶ月の遅延がセッションの間に挿入されたとき、変異体およびコントロールマウスとの間の正しいパーセントに有意差は認められなかった。強制的に交替作業のように、α-CaMKIIの+ / - 変異体は、セッションを完了するために大幅に短縮待ち時間を示した（遺伝子型：F（1,18）= 12.12、P = 0.0027）と距離が短い（遺伝子型セッション中に装置内に移動し：F（1,18）= 25.08、P &lt;0.0001;ジェノタイプXセッション：トレーニングセッションの向こう側にコントロールマウス（図4BとC）よりF（15270）= 2.83、P = 0.0004）。これらのデータは、このタスクによって評価されるようにα-CaMKIIの欠損量が基準メモリに影響を与えないことを示しています。 P = 0.0039 F（1,18）= 10.92;ジェノタイプXセッション： - 逆転学習セッションでは、しかし、α-CaMKIIの+ /変異体が有意に低い正答率（遺伝子型を示したF（5,90）= 5.54、P = 0.0002、図4A）、さらに脱落エラー（遺伝子型：F（1,18）であった= 17.12、P = 0.0006、コントロールマウスよりも図4Dを参照）。変異マウスの行動の柔軟性が低下している - これらの知見は、α-CaMKIIの+ /することが示唆された。 &lt;Pクラス= &quot;jove_content&quot;&gt; <img src="/files/ftp_upload/3300/3300fig1.jpg" alt="図1" /> 図1：強制的に交代し、左右弁別課題のために（A）T-迷路装置。図は、高尾ら （2008）から引用されています。 （B）画像は、装置の上に取り付けられたCCDカメラで撮影されました。 T-迷路は、スライドドアの6領域（A1、A2、S1、S2、P1、P2）（S1、S2、S3、A1、A2、P1、P2）にオフに分割されています。防音室の装置と超迷路の合図（C）の構成と方向。二つの装置が同じ防音室の壁の方向と、そのような部屋のドアなどのオブジェクト、天井の蛍光灯、部屋の壁、CCD装置のカメラ、およびラックのマウスを収容するために直面​​して配置されているケージは、設定されています。 <img src="/files/ftp_upload/3300/3300fig2.jpg" alt="図2" /> 図2：T-迷路交替作業を余儀なくされた。マウスはsessioあたり10毎日の試験を受けN。 （A）正答率、（B）レイテンシは（秒）、（C）距離（cm）を旅し、（D）省略エラーの数が2つのセッションの各ブロックの標準誤差を持つ手段として表され、だったのデー​​タ双方向の反復測定ANOVAにより分析した。 α-CaMKIIの+ / - マウスは、正しい応答の割合が低い（P &lt;0.0001）と短い待ち時間（P = 0.008）を示し、セッションをまたいでコントロールマウスよりも短い距離た（p = 0.0086）を旅した。 <img src="/files/ftp_upload/3300/3300fig3.jpg" alt="図3" /> 図3。T-迷路3の遅延、10、30、と60秒で交互に作業を余儀なくされた。約24時間の最後のトレーニングセッションの後、マウスは5つのディレイ·セッションを行った。各遅延の正答率は、標準的なエラーが発生した手段として表され、双方向の反復測定ANOVAにより分析した。 α-CaMKIIの+ / - マウスで任意の遅延では対照マウスより正確な応答の低い割合を示した時間（p &lt;0.0001）であった。 <img src="/files/ftp_upload/3300/3300fig4.jpg" alt="図4" /> 図4 T-迷路左右弁別課題。マウスは、セッションで毎日10または20の試験を受けた。のデータ（A）正答率、（B）の待ち時間（秒）、（C）距離（cm）を旅し、（D）脱落誤りの数は20試行のブロックごとに標準誤差の手段として表され、双方向の反復測定ANOVAにより分析した。変異体と制御 - マウス初期研修および再学習セッションの間に1ヶ月の最後のトレーニングセッションの後、正答率が有意にα-CaMKIIの+ /の間に差は認められなかった。変異マウスは、しかし、た（p = 0.0039）逆転学習セッションの間、対照マウスより正確な応答の有意に低い割合を示した。

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F., Takao, K., Komada, M., Tanda, K., Suzuki, A., Ishibashi, T., Baba, H., Isa, T., Shigemoto, R., Ono, K., Miyakawa, T., Ikenaka, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mice+with+altered+myelin+proteolipid+protein+gene+expression+display+cognitive+deficits+accompanied+by+abnormal+neuron-glia+interactions+and+decreased+conduction+velocities.">Mice with altered myelin proteolipid protein gene expression display cognitive deficits accompanied by abnormal neuron-glia interactions and decreased conduction velocities.</a> J. Neurosci. 29, 8363-8371 (2009).</li><li>Sagata, N., Iwaki, A., Aramaki, T., Takao, K., Kura, S., Tsuzuki, T., Kawakami, R., Ito, I., Kitamura, T., Sugiyama, H., Miyakawa, T., Fukumaki, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comprehensive+behavioural+study+of+GluR4+knockout+mice:+implication+in+cognitive+function.">Comprehensive behavioural study of GluR4 knockout mice: implication in cognitive function.</a> Genes. Brain Behav. 9, 899-909 (2010).</li></ol>

利害の衝突が宣言されません。

T-迷路を用いた強制的な交替と左右弁別課題が4,5げっ歯類では、それぞれの作業と参照記憶を評価するために広く使用されています。 T-迷路のタスクでは、げっ歯類などの余分な迷路の手がかりは、部屋の手がかりの構成では、迷路の向きなどのような空間および非空間的な手がかりに基づいて、タスクを実行するために異なる戦略を使用することが知られている6,7,8。部屋と部屋のその安定性、不在や偏光手がかりの存在下で迷路の向き、部屋の合図を確認するにはげっ歯類の能力は、戦略に影響を与える可能性があります。したがって、研究者は、実験や行動データの解釈を行う際の部屋で装置およびキューの構成と方向を考慮する必要があります。当研究室では、我々はこのような部屋のドアなど防音室とセットオブジェクト内の壁に向かって同じ方向に対向する2つの装置であって、天井の蛍光灯、部屋の壁、CCDカメラを配置（図1Cを参照）マウスの余分な迷路空間的な手がかりとして働くことができる装置、およびマウスのケージを収容するラック。 多くの場合、T-迷路試験は、手動で次のように人間の実験者によって行われている：各試験では、実験者は、食品トレイにスクロースペレットを配置し、テストを開始するための装置のギロチンドアを開きます。次に、マウスのどちらかの腕に入ったときに、実験者はドア、レコードマウスの動作を閉じて、腕から手の開始ボックスにマウスを転送します。マウスの遺伝子型または実験条件との相互作用を扱う可能性のある交絡変数は、T-迷路のパフォーマンスに影響を与える可能性があります。過去10年間の間に、スタートボックスに戻ってゴールのアームから、被験者のマニュアルでの転送を伴わない連続的な交替作業のために修飾されたT-迷路試験が使用されています。9月11日場合でも、装置、テストプロトコル、および多くの環境変数は、精力的に、STAを同一視されているndardized行動テストは常に別の研究室12,13にも同様の結果を生成しません。テストを実行する特定の実験者は各研究室に一意であることがあり、また、マウスの動作に影響を与えることができます。さらに、人間の実験は、試験番号および計時を追跡し、他のドアと同様に、ミスを開いたり閉じ、一般にスクロースペレットをなくすなどのエラーを作るためにaptがあります。交絡変数とヒューマンエラーの発生の影響を軽減するために、我々は画像TMプログラムを使ってビデオ·トラッキング·システムによって制御される自動化されたT-迷路装置を開発し、使用しています。改良されたT-迷路装置は、ドアが床に下がるように設計されているため私たちはT-迷路のパフォーマンスの間に微小透析、電気生理学、及びoptogenetics技術を使用できるようにする利点があります。したがって、自動化された装置は、作業とげっ歯類で参照記憶の神経生物学の研究を容易にする便利なツールです。 セッション内の一連の試験の自動および連続的な実行を有効にするには、我々のプロトコルはいくつかの潜在的な欠点があります。たとえば、強制的に交替タスクで、マウスは、A1またはA2からS1に戻るための時間は、潜在的に彼らのパフォーマンスに影響を与える可能性があります。滞在P1またはP2領域自体が空間的手掛かりと強制選択の実行のいずれかの領域における長期または短期滞在メモリの負荷を変更することはできませんすることができますので、それは、しかし、深刻な問題ではありません。別の潜在的な問題ではなく、空間的ワーキングメモリのうち、使用することができ、マウスによって行われたその匂い証跡です。ただし、いくつかの臨床試験などの後、臭気のトレイルは、複数回上書きされる可能性があり、手がかりとして利用することが困難になるだろう。また、左側の光弁別課題では、臭気のトレイルは、連続試験全体の報酬の場所を見つけるためにマウスの嗅覚として機能する可能性があります。手がかりは、潜在的に問題があるかもしれない、セッション内の複数の試験学習および記憶のプロセスに影響を与える可能性があります。しかし、マウスは、セッション内の最初の試験で臭気証跡戦略を使用することはできませんので、最初の試験の性能は臭気トレイル戦略の潜在的な使用の欠けているインデックスとして機能するでしょう。 として代表的な結果に示すように、制御C57BL/6Jマウスのパーセント正しい応答が徐々に両方のタスクでセッションを越えて増加した。調査結果は、C57BL/6Jマウスは、T-迷路変更された自動で正しい選択をするために学ぶことができることを確認します。本研究では、マウス（図2Aを参照）にも広範なトレーニングの後にさらに約80％が正しい選択肢に滞在していません。パフォーマンスの高いレベルに到達するように彼らは研修を通して、いくつかの省略のエラーを表示しておくことを考えると、彼らの動機は、マウスのように高くないかもしれません。強制的に交代タスクでは、α-CaMKIIの+ / - マウスはコントロールマウスより正確な応答の低い割合を示した。したがって、変異マウスは、このTAのコントロールマウスと比較して障害のあるパフォーマンスを表示SK。この結果は、α-CaMKIIの欠乏はワーキングメモリの赤字を誘導し、自動化されたT-迷路装置の強制交代タスクが正確に検出されたというさらなる証拠を提供し、8腕放射状迷路試験を2,14にして得られたこれまでの知見と一致しています変異マウスの記憶障害を働く。左右弁別課題では、結果は、α-CaMKIIの欠損量が基準メモリに影響を与えないことを示しています。逆転学習セッションの結果に示すように、しかし、α-CaMKIIの欠乏は、行動の柔軟性を減らすことができます。変異マウスはまた、逆転学習セッション中に、対照マウスよりも省略のエラーが表示されました。脱落誤りの数の増加は、報酬に関連付けられているアーム学ぶ機会を減らすことができます。したがって、遅延学習の買収は、最初のセッション中に脱落誤りの数の増加ではなく、障害反転さlが原因である可能性があり獲得した。もう一つの可能​​性は、突然変異体が漏れのエラーを誘発し、執行機能を妨害する可能性がありますルールの変更によって混乱するかもしれないということです。したがって、合理的な結論を引き出すために、省略のエラーも同様に正しい選択の割合として検討する必要があります。 画像TMプログラムでは、待ち時間や距離のための追加の結果はセッションと同様に正しい応答と脱落誤りの数の割合を完了するために旅を生成します。タスク、異なる学習戦略について等へのセッションを完了するには、旅の遅延との距離の違いは自発運動量の差として解釈される可能性があり、選択肢の腕に衝動的な傾向が、タスクを実行するための動機、馴化レベル代表的な結果、α-CaMKIIの+ / - マウスは、短い待ち時間とコントロールのものよりも走行距離が短くしていた。実際には、αCaMKIIの+ / - マウスは、Tに比べてhyperlocomotor活性を示した彼は、マウス3を制御し、この表現型は、インデックスの違いの根底にある可能性があります。 私たちの研究室では、遺伝子、脳、行動15,16の間の関係を解明するために自動化された装置を用いてT-迷路試験における遺伝子改変マウスと野生型コントロールマウス以上の36株を評価している。我々は1200以上のマウスの生データの大規模なセットを取得しており、変異マウス3,16-22、いくつかの系統のT-迷路のパフォーマンスデータを報告しています。既に研究論文で発表さ株のデータは公開データベース（：URLとして&quot;マウスの行動表現型データベース&quot;に含まれています<a href="http://www.mouse-phenotype.org/" target="_blank">http://www.mouse-phenotype.org/~~V</a> ）。研究の一部は、変異体Dtnbp1 1 Nrd1 20、またはPLP1 21遺伝子を持つマウスは記憶障害の作業を示すことを実証した。したがって、自動化されたT迷路タスクのための私たちの標準化されたプロトコル装置は、変異体と野生型コントロールマウスとの間のメモリ機能の遺伝的影響を検出するのに適しています。行動試験プロトコルは、標準化され複製され、研究室間で比較結果である必要があります。改良されたT-迷路装置は研究室全体で使用されるプロトコルの標準化に貢献することができるテスト手順の自動化につながります。 このビデオの記事で示したように、装置およびプログラムの現在のバージョンでは、私たちは、黒またはアグーチマウスをテストすることができますが、アルビノないマウスができます。今、私たちは、テストするアルビノマウスを有効にするには、システムの修正版を生産しています。システムは、ドアが床の下に下がるように設計されていますので、生体内マイクロダイアリシスでは、in vivo電気生理学では、とoptogenetics実験は、T-迷路試験中に行うことができるという利点があります。たとえば、一部の研究者は、武器の選択時に海馬の神経細胞の電気生理学的特性を調査しようとするかもしれません装置のいくつかの改善は、ドアやペレットの除去機構のアクチュエータからの電気ノイズを最小限にするために必要とされるかもしれませんが。 一緒に、変更された自動装置を用いてT-迷路強制的に交替し、左右弁別課題では、作業と参照記憶およびマウスの行動の柔軟性を評価するために有用である。

t-maze forced alternation and left-right discrimination tasks for assessing working and reference memory in mice

強制的な交替とT迷路を用いた左右弁別課題は広くげっ歯類では、それぞれの作業と参照記憶を評価するために使用されている。当研究室では、我々はこの装置の自動化されたバージョンを使用して遺伝子組み換えマウスの30以上の株で2種類のメモリを評価した。ここでは、ビデオトラッキングシステムとムービー形式で私たちのプロトコルを搭載したコンピュータによって運営変更されたT-迷路装置を提示します。 T-迷路装置が自動的に下向きに開くことができます。ドア、開始ボックスを使用し、それぞれT字路地、ボックスの1つの側で自動ペレットディスペンサーを持つ2つのボックス、および2つのL字型の路地をスライドさせてから、パーティションの滑走路で構成されています。マウスは、マウスの動作に関する実験処理の影響を除外する開始ボックスに戻すことができるように、各L字型の路地は、開始ボックスに接続されています。この装置は、その生体内マイクロダイアリシスでは、in vivo電気生理学、及びoptogenetics technの利点もありドアが床に下がるように設計されているためiquesは、T-迷路のパフォーマンス中に実行することができます。 8アーム放射状迷路タスクでの作業記憶障害を示すことが報告されているマウスでは、 - この映画の記事では、自動化された装置およびα-CaMKIIの+ /のT-迷路のパフォーマンスを使用してT-迷路のタスクについて説明します。マウスのワーキングメモリの赤字が、参照メモリーの障害を示し、我々のプロトコルの妥当性をサポートしています8アーム放射状迷路タスクを使用して、以前の知見と一致している - 我々のデータは、α-CaMKIIの+ /であることが示された。さらに、我々のデータは、変異体はα-CaMKIIの欠乏が減少し、行動の柔軟性を引き起こすことを示唆し、逆転学習障害を示す傾向にあったことを示しています。したがって、変更された自動装置を用いてT-迷路試験は、作業と参照記憶およびマウスの行動の柔軟性を評価するために有用である。

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T-maze Forced Alternation and Left-right Discrimination Tasks for Assessing Working and Reference Memory in Mice

この資料では、マウスの学習と記憶機能を評価するために変更された自動化装置を用いてT-迷路試験のプロトコルを提案する。

マウスで作業していて、メモリの参照を評価するためのT-迷路強制交替と左右弁別課題

Forced alternation and left-right discrimination tasks using the T-maze have been widely used to assess working and reference memory, respectively, in ...

t-maze-forced-alternation-left-right-discrimination-tasks-for

Research

JoVE Journal

Neuroscience

39.8K ビュー.  Fujita Health University. この資料では、マウスの学習と記憶機能を評価するために変更された自動化装置を用いてT-迷路試験のプロトコルを提案する。

ビデオ: T-maze Forced Alternation and Left-right Discrimination Tasks for Assessing Working and Reference Memory in Mice

Assessing Burrowing, Nest Construction, and Hoarding in Mice

Deterioration in the ability to perform "Activities of daily living" (ADL) is an early sign of Alzheimer's disease (AD). Preclinical behavioural screening of possible treatments for AD currently largely focuses on cognitive testing, which frequently demands expensive equipment and lots of experimenter time. However, human episodic memory (the most severely affected aspect of memory in AD) is different to rodent memory, which seems to be largely non-episodic. Therefore the present ways of screening for new AD treatments for AD in rodents are intrinsically unlikely to succeed. A new approach to preclinical screening would be to characterise the ADL of mice. Fortuitously, several such assays have recently been developed at Oxford, and here the three most sensitive and well-characterised are presented.
Burrowing was first developed in Oxford13. It evolved from a need to develop a mouse hoarding paradigm. Most published rodent hoarding paradigms required a distant food source to be linked to the home cage by a connecting passage. This would involve modifying the home cage as well as making a mouse-proof connecting passage and food source. So it was considered whether it would be possible to put the food source inside the cage. It was found that if a container was placed on the floor it was emptied by the next morning., The food pellets were, however, simply deposited in a heap at the container entrance, rather than placed in a discrete place away from the container, as might be expected if the mice were truly hoarding them. Close inspection showed that the mice were performing digging ("burrowing") movements, not carrying the pellets in their mouths to a selected place as they would if truly hoarding them.6



Food pellets are not an essential substrate for burrowing; mice will empty tubes filled with sand, gravel, even soiled bedding from their own cage. Moreover, they will empty a full tube even if an empty one is placed next to it8.



Several nesting protocols exist in the literature. The present Oxford one simplifies the procedure and has a well-defined scoring system for nest quality5. 



A hoarding paradigm was later developed in which the mice, rather than hoarding back to the real home cage, were adapted to living in the "home base" of a hoarding apparatus. This home base was connected to a tube made of wire mesh, the distal end of which contained the food source. This arrangement proved to yield good hoarding behaviour, as long as the mice were adapted to living in the "home base" during the day and only allowed to enter the hoarding tube at night.

Burrowing, nesting, and hoarding are species-typical activities that mice readily perform in the laboratory. This article describes how they can be easily and cheaply assessed. These protocols are extremely sensitive to mouse strain, brain lesions and diseases. Moreover they constitute &#x201C;environmental enrichment&#x201D; for the mice, and embody the &#x201C;Refinement&#x201D; aspect of the &#x201C;3 Rs&#x201D;18.

マウスで穴を掘る、巣の建設、および囲いの評価

Deterioration in the ability to perform "Activities of daily living" (ADL) is an early sign of Alzheimer's disease (AD). Preclinical behavioural screening ...

神経科学

Morris Water Maze Test for Learning and Memory Deficits in Alzheimer&#39;s Disease Model Mice

The Morris Water Maze (MWM) was first established by neuroscientist Richard G. Morris in 1981 in order to test hippocampal-dependent learning, including acquisition of spatial memoryand long-term spatial memory 1. The MWM is a relatively simple procedure typically consisting of six day trials, the main advantage being the differentiation between the spatial (hidden-platform) and non-spatial (visible platform) conditions 2-4. In addition, the MWM testing environment reduces odor trail interference 5. This has led the task to be used extensively in the study of the neurobiology and neuropharmacology of spatial learning and memory. The MWM plays an important role in the validation of rodent models for neurocognitive disorders such as Alzheimer&#x2019;s Disease 6, 7. In this protocol we discussed the typical procedure of MWM for testing learning and memory and data analysis commonly used in Alzheimer&#x2019;s disease transgenic model mice.

Morris Water Maze Test for Learning and Memory Deficits in Alzheimer's Disease Model Mice

The Morris Water Maze is a behavioral task to test hippocampal-dependent learning and memory. It has been widely used in the study of neurobiology, neuropharmacology and neurocognitive disorders in rodent models.

アルツハイマー病モデルマウスにおける学習記憶障害のためのモリス水迷路試験

The Morris Water Maze (MWM) was first established by neuroscientist Richard G. Morris in 1981 in order to test hippocampal-dependent learning, including ...

Using Affordable LED Arrays for Photo-Stimulation of Neurons

Standard slice electrophysiology has allowed researchers to probe individual components of neural circuitry by recording electrical responses of single cells in response to electrical or pharmacological manipulations1,2. With the invention of methods to optically control genetically targeted neurons (optogenetics), researchers now have an unprecedented level of control over specific groups of neurons in the standard slice preparation. In particular, photosensitive channelrhodopsin-2 (ChR2) allows researchers to activate neurons with light3,4. By combining careful calibration of LED-based photostimulation of ChR2 with standard slice electrophysiology, we are able to probe with greater detail the role of adult-born interneurons in the olfactory bulb, the first central relay of the olfactory system. Using viral expression of ChR2-YFP specifically in adult-born neurons, we can selectively control young adult-born neurons in a milieu of older and mature neurons. Our optical control uses a simple and inexpensive LED system, and we show how this system can be calibrated to understand how much light is needed to evoke spiking activity in single neurons. Hence, brief flashes of blue light can remotely control the firing pattern of ChR2-transduced newborn cells.

Adult-born neurons expressing ChR2 can be manipulated in slice electrophysiological preparations in order to examine their contribution towards the function of olfactory neural circuits.

ニューロンの光刺激のために手ごろな価格のLEDアレイを使用する

Standard slice electrophysiology has allowed researchers to probe individual components of neural circuitry by recording electrical responses of single ...

Selective Viral Transduction of Adult-born Olfactory Neurons for Chronic in vivo Optogenetic Stimulation

Local interneurons are continuously regenerated in the olfactory bulb of adult rodents1-3. In this process, called adult neurogenesis, neural stem cells in the walls of the lateral ventricle give rise to neuroblasts that migrate for several millimeters along the rostral migratory stream (RMS) to reach and incorporate into the olfactory bulb. To study the different steps and the impact of adult-born neuron integration into preexisting olfactory circuits, it is necessary to selectively label and manipulate the activity of this specific population of neurons. The recent development of optogenetic technologies offers the opportunity to use light to precisely activate this specific cohort of neurons without affecting surrounding neurons4,5. Here, we present a series of procedures to virally express Channelrhodopsin2(ChR2)-YFP in a temporally restricted cohort of neuroblasts in the RMS before they reach the olfactory bulb and become adult-born neurons. In addition, we show how to implant and calibrate a miniature LED for chronic in vivo stimulation of ChR2-expressing neurons.

Selective Viral Transduction of Adult-born Olfactory Neurons for Chronic in vivo Optogenetic Stimulation

Adult-born neurons of the olfactory bulb can be optogenetically controlled using Channelrhodopsin2-expressing lentiviral injection in the rostral migratory stream and chronic photostimulation with an implanted miniature LED.

慢性のためのアダルト生まれの嗅覚ニューロンの選択的なウイルス形質導入 in vivoで Optogenetic刺激

Local interneurons are continuously regenerated in the olfactory bulb of adult rodents1-3. In this process, called adult neurogenesis, neural stem cells ...

The Mouse Forced Swim Test

The forced swim test is a rodent behavioral test used for evaluation of antidepressant drugs, antidepressant efficacy of new compounds, and experimental manipulations that are aimed at rendering or preventing depressive-like states. Mice are placed in an inescapable transparent tank that is filled with water and their escape related mobility behavior is measured. The forced swim test is straightforward to conduct reliably and it requires minimal specialized equipment. Successful implementation of the forced swim test requires adherence to certain procedural details and minimization of unwarranted stress to the mice. In the protocol description and the accompanying video, we explain how to conduct the mouse version of this test with emphasis on potential pitfalls that may be detrimental to interpretation of results and how to avoid them. Additionally, we explain how the behaviors manifested in the test are assessed.

The forced swim test is validated as an experimental approach to assess potential antidepressant efficacy in rodents. Experimental animals are placed in a tank of water and escape-related mobility behavior is quantified. The common procedures for the mouse version of this test are described.

マウス強制水泳試験

The forced swim test is a rodent behavioral test used for evaluation of antidepressant drugs, antidepressant efficacy of new compounds, and experimental ...

Optical Recording of Suprathreshold Neural Activity with Single-cell and Single-spike Resolution

Signaling of information in the vertebrate central nervous system is often carried by populations of neurons rather than individual neurons. Also propagation of suprathreshold spiking activity involves populations of neurons. Empirical studies addressing cortical function directly thus require recordings from populations of neurons with high resolution. Here we describe an optical method and a deconvolution algorithm to record neural activity from up to 100 neurons with single-cell and single-spike resolution. This method relies on detection of the transient increases in intracellular somatic calcium concentration associated with suprathreshold electrical spikes (action potentials) in cortical neurons. High temporal resolution of the optical recordings is achieved by a fast random-access scanning technique using acousto-optical deflectors (AODs)1. Two-photon excitation of the calcium-sensitive dye results in high spatial resolution in opaque brain tissue2. Reconstruction of spikes from the fluorescence calcium recordings is achieved by a maximum-likelihood method. Simultaneous electrophysiological and optical recordings indicate that our method reliably detects spikes (&gt;97% spike detection efficiency), has a low rate of false positive spike detection (&lt; 0.003 spikes/sec), and a high temporal precision (about 3 msec) 3. This optical method of spike detection can be used to record neural activity in vitro and in anesthetized animals in vivo3,4.

Understanding the function of the vertebrate central nervous system requires recordings from many neurons because cortical function arises on the level of populations of neurons. Here we describe an optical method to record suprathreshold neural activity with single-cell and single-spike resolution, dithered random-access scanning. This method records somatic fluorescence calcium signals from up to 100 neurons with high temporal resolution. A maximum-likelihood algorithm deconvolves the underlying suprathreshold neural activity from the somatic fluorescence calcium signals. This method reliably detects spikes with high detection efficiency and a low rate of false positives and can be used to study neural populations in vitro and in vivo.

単一セルと単スパイク分解能で閾値上神経活動の光記録

Signaling of information in the vertebrate central nervous system is often carried by populations of neurons rather than individual neurons. Also ...

Vertical T-maze Choice Assay for Arthropod Response to Odorants

Given the economic importance of insects and arachnids as pests of agricultural crops, urban environments or as vectors of plant and human diseases, various technologies are being developed as control tools. A subset of these tools focuses on modifying the behavior of arthropods by attraction or repulsion. Therefore, arthropods are often the focus of behavioral investigations. Various tools have been developed to measure arthropod behavior, including wind tunnels, flight mills, servospheres, and various types of olfactometers. The purpose of these tools is to measure insect or arachnid response to visual or more often olfactory cues. The vertical T-maze oflactometer described here measures choices performed by insects in response to attractants or repellents. It is a high throughput assay device that takes advantage of the positive phototaxis (attraction to light) and negative geotaxis (tendency to walk or fly upward) exhibited by many arthropods. The olfactometer consists of a 30 cm glass tube that is divided in half with a Teflon strip forming a T-maze. Each half serves as an arm of the olfactometer enabling the test subjects to make a choice between two potential odor fields in assays involving attractants. In assays involving repellents, lack of normal response to known attractants can also be measured as a third variable.

A vertical, T-maze olfactometer is described for assaying the behavioral response of arthropods. The olfactometer allows the experimenter to measure choices performed by test subjects when subjected to two potential odor fields. Both attraction to and repulsion from odorants can be measured with this device.

匂い物質へ節足動物Responseの垂直T-迷路チョイスアッセイ

Given the economic importance of insects and arachnids as pests of agricultural crops, urban environments or as vectors of plant and human diseases, ...

A Simple and Inexpensive Method for Determining Cold Sensitivity and Adaptation in Mice

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life. The cold plantar assay allows the objective and inexpensive assessment of cold sensitivity in mice, and can quantify both analgesia and hypersensitivity. Mice are acclimated on a glass plate, and a compressed dry ice pellet is held against the glass surface underneath the hindpaw. The latency to withdrawal from the cooling glass is used as a measure of cold sensitivity.
Cold sensation is also important for survival in regions with seasonal temperature shifts, and in order to maintain sensitivity animals must be able to adjust their thermal response thresholds to match the ambient temperature. The Cold Plantar Assay (CPA) also allows the study of adaptation to changes in ambient temperature by testing the cold sensitivity of mice at temperatures ranging from 30 &#176;C to 5 &#176;C. Mice are acclimated as described above, but the glass plate is cooled to the desired starting temperature using aluminum boxes (or aluminum foil packets) filled with hot water, wet ice, or dry ice. The temperature of the plate is measured at the center using a filament T-type thermocouple probe. Once the plate has reached the desired starting temperature, the animals are tested as described above.
This assay allows testing of mice at temperatures ranging from innocuous to noxious. The CPA yields unambiguous and consistent behavioral responses in uninjured mice and can be used to quantify both hypersensitivity and analgesia. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

The Cold Plantar Assay (CPA) measures cold responsiveness between 30 &#176;C and 5 &#176;C, and can also measure cold adaptation. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

マウスにおける低温感受性と適応を決定するためのシンプルで安価な方法

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life.  The cold ...

Assessing Spatial Learning and Memory in Small Squamate Reptiles

Clinical research has leveraged a variety of paradigms to assess cognitive decline, commonly targeting spatial learning and memory abilities. However, interest in the cognitive processes of nonmodel species, typically within an ecological context, has also become an emerging field of study. In particular, interest in the cognitive processes in reptiles is growing although experimental studies on reptilian cognition are sparse. The few reptilian studies that have experimentally tested for spatial learning and memory have used rodent paradigms modified for use in reptiles. However, ecologically important aspects of the physiology and behavior of this taxonomic group must be taken into account when testing for spatially based cognition. Here, we describe modifications of the dry land Barnes maze and associated testing protocol that can improve performance when probing for spatial learning and memory ability in small squamate reptiles. The described paradigm and procedures were successfully used with male side-blotched lizards (Uta stansburiana), demonstrating that spatial learning and memory can be assessed in this taxonomic group with an ecologically relevant apparatus and protocol.

This paper describes a modification of the Barnes maze, a standard rodent paradigm used to assess spatial memory and learning, for use in small squamate reptiles.

小さなうろこに覆われた爬虫類の空間学習と記憶を評価します

Clinical research has leveraged a variety of paradigms to assess cognitive decline, commonly targeting spatial learning and memory abilities. However, ...

An Objective and Reproducible Test of Olfactory Learning and Discrimination in Mice

Olfaction is the predominant sensory modality in mice and influences many important behaviors, including foraging, predator detection, mating, and parenting. Importantly, mice can be trained to associate novel odors with specific behavioral responses to provide insight into olfactory circuit function. This protocol details the procedure for training mice on a Go/No-Go operant learning task. In this approach, mice are trained on hundreds of automated trials daily for 2&#8211;4 weeks and can then be tested on novel Go/No-Go odor pairs to assess olfactory discrimination, or be used for studies on how odor learning alters the structure or function of the olfactory circuit. Additionally, the mouse olfactory bulb (OB) features ongoing integration of adult-born neurons. Interestingly, olfactory learning increases both the survival and synaptic connections of these adult-born neurons. Therefore, this protocol can be combined with other biochemical, electrophysiological, and imaging techniques to study learning and activity-dependent factors that mediate neuronal survival and plasticity.

Here, we train mice on an associative learning task to test odor discrimination. This protocol also allows for studies on learning-induced structural changes in the brain.