オックスフォード大学へのオープンアクセスの資金を提供するためのウェルカムトラスト。ロバートディーコンは、ウェルカムトラスト助成金WT084655MAによって資金を供給オックスフォードOXIONグループのメンバーです。

1。穴を掘る 1。装置様々な容器のデザインが試みられた（例えば、容易に洗浄することができる金属製の水差しが、マウスはそれを入力するように消極的だった）。結局、それがプラスチック縦樋の長さ（のような家に雨樋に接続されているが）食品のペレットの偶発的（非意図的）変位を防止するために一方の端でわずかに上昇することを発見し、もう一方の端で密封され、装置の効率的な部分があった。巣穴は現在、プラスチック製縦樋から作られ、68 mmの直径、20センチの長さ（ 図1）に切断されています。一端は、12ミリメートル中密度繊維板（MDF）のプラグで封止されている。 （MDFで作業するとき呼吸器の保護が推奨され）。目的と防水を洗浄するため、防水接着剤マスチック化合物は、穴掘りチューブに接着するためにそれを提供するだけでなく、MDFの内側と外側の表面に適用することができます。機械のネジ（5センチ）がもう一方の端Oを昇格するために使用されていますF床からチューブ3センチメートル。二つの穴が挿入さ90 °、ネジの角度で穴掘り管の開放端から1cmを掘削し、4を締められている。 巣穴の直径は、おそらく非常に重要です。シュミット-ホームズら19は 、野生のマウスは主に大きさで私たちの人工的なものに似て巣穴から&quot;巣穴の掃除&quot;していることが観察。。 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig1.jpg" alt="図1" /> 図1。掘り進むチューブのマウス。 2。手順<ol><li> 慣れ 掘り進むことは通常は自発的ですが、特定の学習の要素があります。学習過程は、社会的促進によって強化されています。したがって治療でテストする後であるマウスのグループホームケージに一晩フル穴を配置。それぞれの巣穴は通常、食事として提供された食品のペレット200gを充填されている。 （これは、tを参照する彼の食事の高密度圧縮タイプは、&quot;拡張&quot;ダイエットは、穴を使用されている場合）未満200グラムを開催します。掘り進む基質を選択する際、実験者は考慮などの要因を考慮する必要があります。 マウスは食べ物の配給（例えば、それらが同時迷路学習タスクを実行するためにやる気にさせる）上にある場合は非食品物質は、室内の植木鉢の土の表面を整列するために使用される、例の粘土のボールのために、使用することができます。エンドウ砂利（小石〜1cmの直径）と砂。マウスは&quot;天井効果&quot;を避けるために、非常に精力的に掘り進むことしている場合は、食品のペレット三倍重いというエンドウ豆砂利や砂は、、食品のペレットに有用な代替です。 </li><li> ベースライン 提案された治療後のテストのために行うのと同じ方法でテストを48時間を離れて穴を掘る（好ましくは二つの）ベースラインを実行します。マウスは0700から1900時間暗の光周期で飼育されている場合、テストを最適に午後4時の周りに開始されます。これは敏感な時間です​​。彼らは暗期によくあった、その結果、非常にアクティブな場合はこの時点で、通常は目を覚ましていないとして、テストしたり、穴を掘ると、よりゆっくりとより開始します。開始2時間後には、&quot;スナップショット&quot;測定は、burrowed食品の重量で計算されます。巣穴は、風袋容器に空けて秤量し、ペレットは、ケージに戻される穴を掘るに置き換えられます。マウスが穴になっている場合は、ただ静かに計量容器にそれと内容を注ぎ、ケージでマウスを交換してください。二時間でburrowed重量は、元の200 gから減算して算出され最終的な測定値は、次の朝取られます。タイミングは、マウスがスリープ状態に戻ってしまったことになります（多くの場合、巣穴で）と、もはや積極的に穴掘りしているとして重要ではありません。ベースラインパフォーマンスのバランスの取れたグループを形成するために、二審で撮影した2時間の測定を使用してください。練習17の増加を穴掘りのように、ベースラインはまた、マウスでは、より安定した漸近到達するのに役立ちますより良い治療効果を明らかにtoticパフォーマンス。 </li><li> テスト 治療が投与された後にテスト用に、マウスはベースラインの段階でまったく同じ穴掘りテストを与えられている。穴を掘るテストが慢性的に使用する場合、それは少なくとも48時間の別々のテストは、プロシージャへの過剰曝露に起因するパフォーマンスの低下を防ぐためにすることをお勧めします。 </li><li> （注） 巣穴にケージの床にburrowed食べ物を交換しないでください。マウスは何もburrowedていない場合でも、掘り進むことが起こった場合、あなたと同じように秤量手順を実行します。秤量傾向によって引き起こされる障害は、行動を刺激するために、そしてすでに基板の一部をburrowedているマウスは、しばしば後に新たな力で穴を掘る開始されますプロセスを計量。 </li></ol> 2。予想される結果 C57〜BL / 6マウスは、通常、最初の2時間で70グラム前後巣穴、そして200グラムに近い一晩。海馬病変マウスしばしば穴を掘る5未満G 11（ 図2）。リポ多糖投与20が行うようにプリオン病は、掘り進む1,2を阻害する 。臨床徴候は、わずか22週間13で現れるのに対し、穴掘りは、病気の脳のホモジネートの注射後10〜12週間でプリオン（スクレイピー）疾患を検出することができます。 （ 図3）。掘り進むことは、カリウムイオンチャネルのサブユニット10の違いは15とノックアウトをひずみに敏感であることが示されている。 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig2.jpg" alt="図2" /> 図2。制御と海馬病変マウスで2時間でburrowed食物ペレット（中央値と四分位範囲）の重量。後者は、以下のコントロール（P = 0.0001）より有意にburrowed。 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig3.jpg" alt="図3" /> 図3の重量コントロールとスクレイピー感染マウスで一晩burrowed食物ペレット（手段）。週7から10ポスト噴射するため、両群で（練習で）増加する穴掘りが、1週間から12掘り進むスクレイピーのグループで減少し、群間差は、（平均値の二つの標準誤差を超えて）統計的に有意となる。 3。ディスカッションラット、スナネズミ、ハムスターやエジプトのとげのマウス8 -我々は、げっ歯類の他の種に穴を掘るテストしている。すべてが、後者は、穴を掘るような砂利や砂のような地上波基板の実質的な量を誘発したが、食料のペレットの穴掘りすると、さらに地上の材料と豊富な経験の後、非常に少なかったことができる。マウスからこの違いの理由は知られていない。この作業が完了した後、それはエジプトのとげのあるマウスは、実際には野生の巣穴をしないように発見された、彼らはまた、スナネズミで作られた巣穴、彼らの自然なhaの表面を占めることができるbitatは、しばしばハードロックです。ナイロビでの最近の観察では、野生で穴を掘るを行う属のAcomys、ウィルソンのとげだらけのマウス（Acomys wilsoni）とパーシバルのトゲマウス（Acomys percivali）、、内にも研究室でburrowed、ことを示した。 4。ネスティング 1。装置このテストは、個々のケージで実行され、適当な穴を掘るために使用されているものと同じものを。通常のベッドには0.5cmの深さに床をカバーする必要があります。 （深さのばらつき、そして非常に深い寝具は、巣の構造に影響を及ぼす可能性のある）。各ケージは&quot;Nestlet&quot;、押された綿中綿（Ancare）の5cmの正方形が付属しています。 2。手順マウスは、暗期1時間くらい前にネストケージに個別に配置され、結果は翌朝に評価されています。穴を掘ると同様に、と同様の理由により、タイミングは重要ではありません。 3。スコアリング巣は5点尺度（ 図4-8）で評価され、引き裂かれていないNestletの量も5を秤量する。 <ol><li> Nestletは（&gt; 90％無傷の）大部分は手つかずです。 </li><li> Nestletは部分的に（そのまま、残りの50〜90パーセント）まで引き裂かれている。 </li><li> Nestletは主にシュレッダーですが、頻繁に特定できる巣のサイトがない：Nestletの&lt;50％はそのまま残りますが、&lt;90％がケージの床面積の四半期内にある、綿をケージ周りの巣が広がりに収集されていない、すなわち。注：材料は、時々広く定義されている巣のエリアにあるかもしれないが、重要な定義は50から90パーセントを細断処理されていることです。 </li><li>識別可能な、しかし平らな巣：&gt; Nestletの90％が最高引き裂かれ、材料は、ケージの床面積の四半期内に巣に収集されますが、巣は、上にカールマウス本体の高さ（より高い壁で、フラットでその円周の50％未満でその側）。 </li><li> （近くに）完全なn個のESTは：&gt; Nestletの90％が最高引き裂かれ、巣は、その円周の50％以上上でマウス本体の高さよりも高い壁で、噴火口です。 </li></ol>ここで、基準が違いを分割同意しない。例えばunshredded 0.7グラムピースと完璧な巣は4.5のスコアを獲得するだろう。 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig4.jpg" alt="図4" /> 図4。巣のスコア1 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig5.jpg" alt="図5" /> 図5。巣のスコア2 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig6.jpg" alt="図6" /> 図6。巣のスコア3 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig7.jpg" alt="図7" /> 図7。ネストスコア4 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig8.jpg" alt="図8" /> 図8。巣のSCORE 5 4。予想される結果彼らの目的は体温調節だけでなく、生殖に関連付けられているようにオスとメスの両方が、巣を作ります。我々は単一の実験の対照比較を行っていないものの、C57BL / 6マウスの場合、男性と女性のための巣のスコアは、同じ範囲内にあります。ほとんどのC57BL / 6マウスでは、巣の構築4-5得点が、海馬が損傷されたときの中央値スコアは1-2の周りのようになります、3のスコアは（ 図9）を超過することはほとんどありません。ネスティングも10〜12週1,2,16周りプリオン病に敏感であることが判明した。 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig9.jpg" alt="図9" /> 図9。対照マウスと背側、腹側と完全な海馬の病変を有するマウスの巣のスコア（中央値と四分位範囲）。唯一の完全な病変のマウスは、選択的背側とventrのネスト、その効果の抑制を示すらの地域は、サブスレッショルドが添加剤として表示されます。 5。買いだめ 1。装置 &quot;ホームベース&quot;のシリーズは、ワイヤーメッシュ製のチューブに接続して食物ペレットが配置されている遠位端と一時的に木栓による近位端で永久的に密封。されていますこれは、ホームベースへの適応がoccurred7を持つ前にチューブに入るマウスを防ぐために使用されます。 装置（ 図10）は、基本的な原則が守られる限り、様々な方法で行うことができます。私達のものは8木製の箱、各30透明なパースペックスの蓋付き× 13 × 15cmの行で構成されています。それぞれが水のボトルを提供しており、買いだめのチューブはプッシュ嵌合されるに戻すに穴を持っています。チューブは長さ10cm黒プラスチック、直径40mmで作られ、50cmの全長を形成するために、45センチのワイヤメッシュチューブ、、4cmの直径に参加しました。メッシュは13mmの正方形で構成され、とメッシュの穴を小さくするとを通して落下食物ペレットを防ぐためにミスがアラインメッシュとのダブルロールです。 6ミリメートルの正方形メッシュが使用可能な場合はこの1つのロールが十分かのように良い材料です。食物ペレットが配置されているチューブ、、の遠位端は閉じられます。近位端は、取り外し可能な木栓で密封されています。 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig10.jpg" alt="図10" /> 図10。買いだめ管のマウス 2。手順<ol><li>一般的に、買いだめは初めて非常に変数であり、いくつかのマウスは、すべてでは買いだめしないことがあります。買いだめは、穴を掘るように、練習で改善されます。治療を投与する前に、そのため、実験的な設計が可能なことを、ベースラインのセッションが最高の与えられている。独立変数は、（非条件）変異マウスや、異なるマウス系統のテストと同じように、生来のであれば明ら​​かに、これは実用的ではありません。 </li><li>マウスを入れています一日の早い段階での各ボックスには、それに慣らすために。ボックスは、それが&quot;家&quot;だと感じられるように、また、少なくとも一晩のために実際のグループホームケージにされている段ボールのトンネル、汚れた寝具の寛大な部分を備えている。退蔵管へのアクセスは、木製の栓で夕方まで阻止される。 100グラム食物ペレット（小と大の混合物）は（管垂直に保持してもう一方の端で、それらをに注ぐことにより）買いだめ管の遠位端に配置されている。マウスは、テストが始まる前に穏やかに空腹であることを確認するには、自宅のボックスは食べ物で提供されていません。 </li><li>ちょうど暗いフェーズの開始前に、買いだめのチューブへのマウスへのアクセスを許可するように木製の栓を取り除く。翌朝は（再び、タイミングが重要ではない）のホームベースのボックスにホードされているすべての食品のペレットを収集し、重量を量る。 </li></ol> 6。予想される結果雌のC57BL / 6マウスを使用して、ホード金額の中央値は、周りになる50〜70 gの前頭前野の病変だけ弱い効果12（ 図11）を持っているのに対し、海馬病変が強く、hoarding11を抑制する。 <img src="/files/ftp_upload/2607/2607fig11.jpg" alt="図11" /> 図11。対照と内側前頭前野、病変マウス（中央値と四分位範囲）でホード食物ペレットの重量。中央値は大きく異なるものの、コントロールの高い変動性は、結果が（P = 0.3）、統計的に有意から離れていることを意味します。

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利害の衝突は宣言されません。

<html>これらのテストは、実行することは非常にシンプルですが、効果の大きさは、彼らはラッセルとバーチの3ルピー&quot;18の&quot;洗練&quot;の側面に準拠している治 ​​療法、系統差、等にそれらを非常に敏感になるため、非常に大きいです。確かに、穴を掘るような試験で良好なパフォーマンスを得るには、動物に良い一般的な健康の指標のようです。したがって、これは動物福祉の評価のための良いテストになる可能性があります。 実験用げっ歯類のための環境エンリッチメントの重要性は最近認識されています。ネスティング材料の提供は、多くの動物の家で、現在標準的な手法であり、これを行うのは簡単です。熱意これでマウスの巣穴が潜在的に優れた濃縮が、これはまだ開発されていないの提供の実用的な方法だと残念ながら&quot;自己リロード&quot;穴を掘り進むことになります。マウスは、買いだめを見つけるかどうかを豊かにまだ決定されていない。 _content&quot;&gt;一つの欠点は、これらのテストによって生成されたデータは、一般的に（ディストリビューションではガウス分布ではない）ノンパラメトリックであるということですので、適切なノンパラメトリックな統計は、一対比較のための例：Mann - WhitneyのU検定、それらを分析するのに必要なクラスカルノンパラメトリックデータのための適切な分散分析のテストがないため、反復測定のデザインは、使用されている場合、マルチグループデータのウォリスANOVAは。、結果は彼らがより正規分布に準拠させるために平方根やログの手続により、例えば、形質転換することができる。 装置の測定値は、テキストで指定されている（米国の実験者のための有用な）に若干異なって見える場合がありますが大きな違いは避けるべきである。ただし、場合によっては他の実験者は、異なる構造がここに記載されているものよりも良い仕事があります。 すべての行動の測定のように、マウスが非アクティブ状態が明らかにdetrimを持っているので、彼らの活動レベルが正常であるかどうかをテストする必要があります種 - 典型的な行動でental効果。スクレイピー感染マウスは、障害者掘り進むとネスティングを示していたときに、彼らの活動レベルは、（オープンフィールド装置で試験）正常であった。確かに、多動の周期は、これらの種-典型的な行動は、最初の2を損なわれている約2〜4週間後に発生します。 種 - 典型的な動作ですすべてが穴掘り、ネスティングと買いだめに海馬病変によって生成される強力な機能障害は、これらの病変のような定評のある効果である空間学習とmemory9の障害を補完します。彼らは紀元14年のように特徴的な日常生活の活動の障害に相当すると思われる。 これらの種典型的なテストはうまくアルツハイマー病や他の神経変性疾患14の治療のための前臨床スクリーニングにも大いに役立つことが証明されるかもしれない。多くの人間の脳の障害で損失または通常の前夜を実行する能力が低下rydayタスクは、認知障害などの疾患の他の機能と同様に重要である。特に、この損失は、介護者の関与を必要とする可能性があり、大きな社会経済的な負担は、このように頻繁に課します。

assessing burrowing, nest construction, and hoarding in mice

&quot;日常生活の活動&quot;（ADL）を実行する能力の低下はアルツハイマー病（AD）の早期徴候である。 ADの可能な治療の前臨床行動のスクリーニングは、現在、大部分は頻繁に高価な機器や実験者の多くの時間を要求する認知テスト、に焦点を当てています。しかし、人間のエピソード記憶は、（ADのメモリの最も深刻な影響を受けた側面）の大半は非エピソードと思われるげっ歯類のメモリ、とは異なっています。したがって、げっ歯類におけるADの新しいAD治療のためのスクリーニングの現在の方法が成功するために本質的にはほとんどありません。前臨床スクリーニングへの新しいアプローチは、マウスのADLを特徴付けることである。偶発的に、いくつかのそのようなアッセイは、最近オックスフォードで開発されており、ここに三大小文字を区別し、十分に特徴付けが表示されます。 掘り進むことは、最初のオックスフォード13で開発されました。これは、マウスの買いだめのパラダイムを開発する必要性から進化。ほとんどの公開EDの齧歯類の買いだめのパラダイムは、遠くの食料源を接続する通路で、ホームケージにリンクする必要がありました。これは、マウスプルーフ接続通路と食料源を作るだけでなく、ホームケージを変更伴うだろう。そうそれはケージの中にある食料源を置くことは可能であるかどうかと考えられた。それは、コンテナが床に配置された場合、それが翌朝までに空にされたことがわかった。、食品のペレットが、しかし、単にコンテナの入り口のヒープでは、預金ではなく、離れてコンテナから離散的な位置に配置されたが、マウスは、買いだめして本当にであるかのように期待されることがあります。精密検査は、マウスは、彼らが同じように買いだめその場合、本当に選択した場所に彼らの口の中にペレットを持っていない、採掘（&quot;穴掘り&quot;）の動きを実行していたことが明らかになった。6 食品のペレットは、穴を掘るために不可欠な基質ではない。マウスは、自分のケージから砂利、さらに汚れた寝具を砂で満たされたチューブを空にします。より以上、彼らは空のいずれかのビット8の横に配置されている場合でも、フルチューブを空にします。 いくつかのネストプロトコルは文献で存在する。現在オックスフォード一つは手続きを簡素化し、巣の品質5のよく定義されたスコアリングシステムを持っています。 退蔵のパラダイムは、後にマウスではなく、バック実際のホームケージに買いだめが、買いだめの装置の&quot;ホームベース&quot;での生活に適応された開発されました。このホームベースは、金網製のチューブに接続されていた、の遠位端は、食料源が含まれている。この配置は、マウスが日中は&quot;ホームベース&quot;での生活に適応し、夜だけ買いだめのチューブに入ることを許可されている限り、良好な貯蔵行動を、もたらすことが判明した。

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Assessing Burrowing, Nest Construction, and Hoarding in Mice

穴を掘る、ネスティングと買いだめはマウスが容易に実験室で行うことを種に典型的な活動です。この資料では、簡単かつ安価に評価できる方法について説明します。これらのプロトコルは、マウス系統、脳の病変や病気に非常に敏感です。さらに彼らはマウスのための&quot;環境エンリッチメント&quot;を構成し、&quot;3ルピー&quot;18の&quot;洗練&quot;の側面を体現。

マウスで穴を掘る、巣の建設、および囲いの評価

Deterioration in the ability to perform "Activities of daily living" (ADL) is an early sign of Alzheimer's disease (AD). Preclinical behavioural screening ...

assessing-burrowing-nest-construction-and-hoarding-in-mice

Research

JoVE Journal

Neuroscience

31.9K ビュー.  University of Oxford. 穴を掘る、ネスティングと買いだめはマウスが容易に実験室で行うことを種に典型的な活動です。この資料では、簡単かつ安価に評価できる方法について説明します。これらのプロトコルは、マウス系統、脳の病変や病気に非常に敏感です。さらに彼らはマウスのための"環境エンリッチメント"を構成し、"3ルピー"18の"洗練"の側面?...

ビデオ: Assessing Burrowing, Nest Construction, and Hoarding in Mice

T-maze Forced Alternation and Left-right Discrimination Tasks for Assessing Working and Reference Memory in Mice

Forced alternation and left-right discrimination tasks using the T-maze have been widely used to assess working and reference memory, respectively, in rodents. In our laboratory, we evaluated the two types of memory in more than 30 strains of genetically engineered mice using the automated version of this apparatus. Here, we present the modified T-maze apparatus operated by a computer with a video-tracking system and our protocols in a movie format. The T-maze apparatus consists of runways partitioned off by sliding doors that can automatically open downward, each with a start box, a T-shaped alley, two boxes with automatic pellet dispensers at one side of the box, and two L-shaped alleys. Each L-shaped alley is connected to the start box so that mice can return to the start box, which excludes the effects of experimenter handling on mouse behavior. This apparatus also has an advantage that in vivo microdialysis, in vivo electrophysiology, and optogenetics techniques can be performed during T-maze performance because the doors are designed to go down into the floor. In this movie article, we describe T-maze tasks using the automated apparatus and the T-maze performance of &alpha;-CaMKII+/- mice, which are reported to show working memory deficits in the eight-arm radial maze task. Our data indicated that &alpha;-CaMKII+/- mice showed a working memory deficit, but no impairment of reference memory, and are consistent with previous findings using the eight-arm radial maze task, which supports the validity of our protocol. In addition, our data indicate that mutants tended to exhibit reversal learning deficits, suggesting that &alpha;-CaMKII deficiency causes reduced behavioral flexibility. Thus, the T-maze test using the modified automatic apparatus is useful for assessing working and reference memory and behavioral flexibility in mice.

This article presents the protocol of T-maze tests using a modified automated apparatus for assessing the learning and memory functions in mice.

マウスで作業していて、メモリの参照を評価するためのT-迷路強制交替と左右弁別課題

Forced alternation and left-right discrimination tasks using the T-maze have been widely used to assess working and reference memory, respectively, in ...

神経科学

Local and Global Methods of Assessing Thermal Nociception in Drosophila Larvae

In this article, we demonstrate assays to study thermal nociception in Drosophila larvae. One assay involves spatially-restricted (local) stimulation of thermal nociceptors1,2 while the second involves a wholesale (global) activation of most or all such neurons3. Together, these techniques allow visualization and quantification of the behavioral functions of Drosophila nociceptive sensory neurons.
The Drosophila larva is an established model system to study thermal nociception, a sensory response to potentially harmful temperatures that is evolutionarily conserved across species1,2. The advantages of Drosophila for such studies are the relative simplicity of its nervous system and the sophistication of the genetic techniques that can be used to dissect the molecular basis of the underlying biology4-6 In Drosophila, as in all metazoans, the response to noxious thermal stimuli generally involves a "nocifensive" aversive withdrawal to the presented stimulus7. Such stimuli are detected through free nerve endings or nociceptors and the amplitude of the organismal response depends on the number of nociceptors receiving the noxious stimulus8. In Drosophila, it is the class IV dendritic arborization sensory neurons that detect noxious thermal and mechanical stimuli9 in addition to their recently discovered role as photoreceptors10. These neurons, which have been very well studied at the developmental level, arborize over the barrier epidermal sheet and make contacts with nearly all epidermal cells11,12. The single axon of each class IV neuron projects into the ventral nerve cord of the central nervous system11 where they may connect to second-order neurons that project to the brain.
Under baseline conditions, nociceptive sensory neurons will not fire until a relatively high threshold is reached. The assays described here allow the investigator to quantify baseline behavioral responses or, presumably, the sensitization that ensues following tissue damage. Each assay provokes distinct but related locomotory behavioral responses to noxious thermal stimuli and permits the researcher to visualize and quantify various aspects of thermal nociception in Drosophila larvae. The assays can be applied to larvae of desired genotypes or to larvae raised under different environmental conditions that might impact nociception. Since thermal nociception is conserved across species, the findings gleaned from genetic dissection in Drosophila will likely inform our understanding of thermal nociception in other species, including vertebrates.

Local and Global Methods of Assessing Thermal Nociception in Drosophila Larvae

In this article, we demonstrate assays to study thermal nociception in Drosophila larvae. One assay involves spatially-restricted (local) stimulation of thermal nociceptors1,2 while the second involves a wholesale (global) activation of most or all such neurons3. Together, these techniques allow visualization and quantification of the behavioral functions of Drosophila nociceptive sensory neurons.

に温痛覚を評価するためのローカルおよびグローバルメソッド<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;幼虫

In this article, we demonstrate assays to study thermal nociception in Drosophila larvae. One assay involves spatially-restricted (local) stimulation of ...

A Simple and Inexpensive Method for Determining Cold Sensitivity and Adaptation in Mice

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life. The cold plantar assay allows the objective and inexpensive assessment of cold sensitivity in mice, and can quantify both analgesia and hypersensitivity. Mice are acclimated on a glass plate, and a compressed dry ice pellet is held against the glass surface underneath the hindpaw. The latency to withdrawal from the cooling glass is used as a measure of cold sensitivity.
Cold sensation is also important for survival in regions with seasonal temperature shifts, and in order to maintain sensitivity animals must be able to adjust their thermal response thresholds to match the ambient temperature. The Cold Plantar Assay (CPA) also allows the study of adaptation to changes in ambient temperature by testing the cold sensitivity of mice at temperatures ranging from 30 &#176;C to 5 &#176;C. Mice are acclimated as described above, but the glass plate is cooled to the desired starting temperature using aluminum boxes (or aluminum foil packets) filled with hot water, wet ice, or dry ice. The temperature of the plate is measured at the center using a filament T-type thermocouple probe. Once the plate has reached the desired starting temperature, the animals are tested as described above.
This assay allows testing of mice at temperatures ranging from innocuous to noxious. The CPA yields unambiguous and consistent behavioral responses in uninjured mice and can be used to quantify both hypersensitivity and analgesia. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

The Cold Plantar Assay (CPA) measures cold responsiveness between 30 &#176;C and 5 &#176;C, and can also measure cold adaptation. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

マウスにおける低温感受性と適応を決定するためのシンプルで安価な方法

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life.  The cold ...

Assessing Primary Neurogenesis in Xenopus Embryos Using Immunostaining

Primary neurogenesis is a dynamic and complex process during embryonic development that sets up the initial layout of the central nervous system. During this process, a portion of neural stem cells undergo differentiation and give rise to the first populations of differentiated primary neurons within the nascent central nervous system. Several vertebrate model organisms have been used to explore the mechanisms of neural cell fate specification, patterning, and differentiation. Among these is the African clawed frog, Xenopus, which provides a powerful system for investigating the molecular and cellular mechanisms responsible for primary neurogenesis due to its rapid and accessible development and ease of embryological and molecular manipulations. Here, we present a convenient and rapid method to observe the different populations of neuronal cells within Xenopus central nervous system. Using antibody staining and immunofluorescence on sections of Xenopus embryos, we are able to observe the locations of neural stem cells and differentiated primary neurons during primary neurogenesis.

Assessing Primary Neurogenesis in Xenopus Embryos Using Immunostaining

This article presents a convenient and rapid method for visualizing different neuronal cell populations in the central nervous system of Xenopus embryos using immunofluorescent staining on sections.

でプライマリ神経発生を評価します<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;胚用いた免疫染色

Primary neurogenesis is a dynamic and complex process during embryonic development that sets up the initial layout of the central nervous system. During ...

Assessing Spatial Learning and Memory in Small Squamate Reptiles

Clinical research has leveraged a variety of paradigms to assess cognitive decline, commonly targeting spatial learning and memory abilities. However, interest in the cognitive processes of nonmodel species, typically within an ecological context, has also become an emerging field of study. In particular, interest in the cognitive processes in reptiles is growing although experimental studies on reptilian cognition are sparse. The few reptilian studies that have experimentally tested for spatial learning and memory have used rodent paradigms modified for use in reptiles. However, ecologically important aspects of the physiology and behavior of this taxonomic group must be taken into account when testing for spatially based cognition. Here, we describe modifications of the dry land Barnes maze and associated testing protocol that can improve performance when probing for spatial learning and memory ability in small squamate reptiles. The described paradigm and procedures were successfully used with male side-blotched lizards (Uta stansburiana), demonstrating that spatial learning and memory can be assessed in this taxonomic group with an ecologically relevant apparatus and protocol.

This paper describes a modification of the Barnes maze, a standard rodent paradigm used to assess spatial memory and learning, for use in small squamate reptiles.

小さなうろこに覆われた爬虫類の空間学習と記憶を評価します

Clinical research has leveraged a variety of paradigms to assess cognitive decline, commonly targeting spatial learning and memory abilities. However, ...

An Objective and Reproducible Test of Olfactory Learning and Discrimination in Mice

Olfaction is the predominant sensory modality in mice and influences many important behaviors, including foraging, predator detection, mating, and parenting. Importantly, mice can be trained to associate novel odors with specific behavioral responses to provide insight into olfactory circuit function. This protocol details the procedure for training mice on a Go/No-Go operant learning task. In this approach, mice are trained on hundreds of automated trials daily for 2&#8211;4 weeks and can then be tested on novel Go/No-Go odor pairs to assess olfactory discrimination, or be used for studies on how odor learning alters the structure or function of the olfactory circuit. Additionally, the mouse olfactory bulb (OB) features ongoing integration of adult-born neurons. Interestingly, olfactory learning increases both the survival and synaptic connections of these adult-born neurons. Therefore, this protocol can be combined with other biochemical, electrophysiological, and imaging techniques to study learning and activity-dependent factors that mediate neuronal survival and plasticity.

Here, we train mice on an associative learning task to test odor discrimination. This protocol also allows for studies on learning-induced structural changes in the brain.

嗅覚学習とマウスにおける差別の客観的かつ再現性のあるテスト

Olfaction is the predominant sensory modality in mice and influences many important behaviors, including foraging, predator detection, mating, and ...

Assessing Pupil-linked Changes in Locus Coeruleus-mediated Arousal Elicited by Trigeminal Stimulation

Current scientific literature provides evidence that trigeminal sensorimotor activity associated with chewing may affect arousal, attention, and cognitive performance. These effects may be due to widespread connections of the trigeminal system to the ascending reticular activating system (ARAS), to which noradrenergic neurons of the locus coeruleus (LC) belongs. LC neurons contain projections to the whole brain, and it is known that their discharge co-varies with pupil size. LC activation is necessary for eliciting task-related mydriasis. If chewing effects on cognitive performance are mediated by the LC, it is reasonable to expect that changes in cognitive performance are correlated to changes in task-related mydriasis. Two novel protocols are presented here to verify this hypothesis and document that chewing effects are not attributable to aspecific motor activation. In both protocols, performance and pupil size changes observed during specific tasks are recorded before, soon after, and half an hour following a 2 min period of either: a) no activity, b) rhythmic, bilateral handgrip, c) bilateral chewing of soft pellet, and d) bilateral chewing of hard pellet. The first protocol measures level of performance in spotting target numbers displayed within numeric matrices. Since pupil size recordings are recorded by an appropriate pupillometer that impedes vision to ensure constant illumination levels, task-related mydriasis is evaluated during a haptic task. Results from this protocol reveal that 1) chewing-induced changes in performance and task-related mydriasis are correlated and 2) neither performance nor mydriasis are enhanced by handgrip. In the second protocol, use of a wearable pupillometer allows measurement of pupil size changes and performance during the same task, thus allowing even stronger evidence to be obtained regarding LC involvement in the trigeminal effects on cognitive activity. Both protocols have been run in the historical office of Prof. Giuseppe Moruzzi, the discoverer of ARAS, at the University of Pisa.

To verify whether trigeminal effects on cognitive performance involve locus coeruleus activity, two protocols are presented that aim to evaluate possible correlations between the performance and task-related pupil size changes induced by chewing. These protocols may be applied to conditions in which locus coeruleus contribution is suspected.

三叉刺激によって引き起こすローカス・コエルールス媒介性覚醒における瞳孔結合変化の評価

Current scientific literature provides evidence that trigeminal sensorimotor activity associated with chewing may affect arousal, attention, and cognitive ...

Quantitative Measurement of Intrathecally Synthesized Proteins in Mice

Cerebrospinal fluid (CSF), a fluid found in the brain and the spinal cord, is of great importance to both basic and clinical science. The analysis of the CSF protein composition delivers crucial information in basic neuroscience research as well as neurological diseases. One caveat is that proteins measured in CSF may derive from both intrathecal synthesis and transudation from serum, and protein analysis of CSF can only determine the sum of these two components. To discriminate between protein transudation from the blood and intrathecally produced proteins in animal models as well as in humans, CSF protein profiling measurements using conventional protein analysis tools must include the calculation of the albumin CSF/serum quotient (Qalbumin), a marker of the integrity of the blood-brain interface (BBI), and the protein index (Qprotein/Qalbumin), an estimate of intrathecal protein synthesis. This protocol illustrates the entire procedure, from CSF and blood collection to quotients and indices calculations, for the quantitative measurement of intrathecal protein synthesis and BBI impairment in mouse models of neurological disorders.

Elevated spinal fluid protein levels can either be the result of diffusion of plasma protein across an altered blood-brain barrier or intrathecal synthesis. An optimized testing protocol is presented in this article that helps to discriminate both cases and provides quantitative measurements of intrathecally synthesized proteins.

マウスにおけるインテコール内合成タンパク質の定量測定

Cerebrospinal fluid (CSF), a fluid found in the brain and the spinal cord, is of great importance to both basic and clinical science. The analysis of the ...

Construction and Implementation of Carbon Fiber Microelectrode Arrays for Chronic and Acute In Vivo Recordings

Multichannel electrode arrays offer insight into the working brain and serve to elucidate neural processes at the single-cell and circuit levels. Development of these tools is crucial for understanding complex behaviors and cognition and for advancing clinical applications. However, it remains a challenge to densely record from cell populations stably and continuously over long time periods. Many popular electrodes, such as tetrodes and silicon arrays, feature large cross-diameters that produce damage upon insertion and elicit chronic reactive tissue responses associated with neuronal death, hindering the recording of stable, continuous neural activity. In addition, most wire bundles exhibit broad spacing between channels, precluding simultaneous recording from a large number of cells clustered in a small area. The carbon fiber microelectrode arrays described in this protocol offer an accessible solution to these concerns. The study provides a detailed method for fabricating carbon fiber microelectrode arrays that can be used for both acute and chronic recordings in vivo. The physical properties of these electrodes make them ideal for stable and continuous long-term recordings at high cell densities, enabling the researcher to make robust, unambiguous recordings from single units across months.

Construction and Implementation of Carbon Fiber Microelectrode Arrays for Chronic and Acute In Vivo Recordings

This protocol describes a procedure for constructing carbon fiber microelectrode arrays for chronic and acute in vivo electrophysiological recordings in mouse (Mus musculus) and ferret (Mustela putorius furo) from multiple brain regions. Each step, following the purchase of raw carbon fibers to microelectrode array implantation, is described in detail, with emphasis on microelectrode array construction.

慢性および急性イン ビボ 記録用炭素繊維微小電極アレイの構築と実装

Multichannel electrode arrays offer insight into the working brain and serve to elucidate neural processes at the single-cell and circuit levels. ...

若年マウスの日常神経活動を記録するためのマイクロドライブインプラント

A Lightweight Drive Implant for Chronic Tetrode Recordings in Juvenile Mice

In vivo electrophysiology provides unparalleled insight into the sub-second-level circuit dynamics of the intact brain and represents a method of particular importance for studying mouse models of human neuropsychiatric disorders. However, such methods often require large cranial implants, which cannot be used in mice at early developmental time points. As such, virtually no studies of in vivo physiology have been performed in freely behaving infant or juvenile mice, despite the fact that a better understanding of neurological development in this critical window would likely provide unique insights into age-dependent developmental disorders such as autism or schizophrenia. Here, a micro-drive design, surgical implantation procedure, and post-surgery recovery strategy are described that allow for chronic field and single-unit recordings from multiple brain regions simultaneously in mice as they age from postnatal day 20 (p20) to postnatal day 60 (p60) and beyond, a time window roughly corresponding to the human ages of 2 years old through to adulthood. The number of recording electrodes and final recording sites can be easily modified and expanded, thus allowing flexible experimental control of the in vivo monitoring of behavior- or disease-relevant brain regions across development.

著者スポットライト:若年マウスの慢性四極管記録のための軽量ドライブインプラント  

Here, we describe a micro-drive design, surgical implantation procedure, and post-surgery recovery strategy that allow for chronic field and single-unit recordings from multiple brain regions simultaneously in juvenile and adolescent mice across a critical developmental window from postnatal day 20 (p20) to postnatal day 60 (p60) and beyond.