この作品は、医学研究評議会助成G1000299によって賄われていた。 対応する著者は、手術中に支援するためのゲイリー·ボースウィック、エジンバラ大学に感謝したいと思います。 著者は、ヘレン·ダグラスとイアン·マッケイからアドバイスを認識し、私たちは彼らのディープ下腹（ディエップ）フラップ手順（Canniesburn整形外科ユニット、グラスゴー王立診療所、84キャッスルストリート、グラスゴーG4 0SF、英国）を観察することができるようにしたいと思います。 著者はまた、この記事のためのビデオを製造する彼の助けのためにエディンバラ大学のゲイリーブラッキーに感謝したいと思います。

すべての手術は、英国のホームオフィスやエジンバラの獣医サービス部の大学が定めるガイドラインに従って行われる。 1。外科手術のセットアップメモ<ol><li>クリーン手術スクラブ、ガウン、スクラブキャップとマスクに変更します。 70％イソプロピルアルコール2％クロルヘキシジンを備えた機器を含む手術室の全表面を清掃してください。 </li><li>手術に先立ち、すべての外科的供給と手順で使用される楽器をオートクレーブ。操作ごとに滅菌パックが含まれている必要があります3ドレープ、ガーゼ、綿先端のアプリケーター、シリコーンシーツ、手術器具を、具体的な手術材料や道具、 図1の表を参照してください。ラットを秤量し、手続きを完了する前に、1時間の皮下に投与されるブプレノルフィンの適切な量（0.04 mg / kg体重）を外に測定します。レイアウト;外科の間に皮下流体管理のため3×1ミリリットルの注射器ERY、2×6-0 VICRYL縫合糸、1×5-0 Ethilon縫合糸、定規、10枚刃使い捨てメス、4と滅菌マーカー - 滅菌手袋とハンドヘルド焼灼ユニットの5組。 </li><li>場所は4×10 mlの滅菌、水浴中で0.9％の生理食塩水バイアルを37℃に温めこれは、皮下流体の交換のために使用される（1ミリリットル/キロ/時間）および手術部位を洗浄する。恒温毛布、直腸プローブ、熱ランプ、営業顕微鏡と麻酔リグを設定します。レーザーとそのソフトウェアをオンにし、別の麻酔リグセットアップと動物がスキャン中に横たわっていた先となる黒マットの下に熱パッドを配置。 </li><li> 250〜300グラムの重さの雄、ルイスラットを使用します。 12時間の明暗サイクルの食料と水を自由に摂取して7日間ハウスラットどんな手術が実行される前に。 </li></ol> 2。麻酔と皮膚の準備<ol><li>麻酔リグの誘導室にネズミを置き、ため1L/minですO 2と4％イソフルラン管理麻酔を誘発するために2〜3分。室から麻酔ラットを取り外し、きれい、温水マットの上に仰向けに置きます。ノーズコーンを使用して1.5％でイソフルラン維持。手順中に角膜の摩耗を防ぐためにlacrilubeまたは類似の薬剤を適用します。動物が進む前に、十分に麻酔であることを確認するために足パッドのピンチテストを実行します。プロシージャ内の各主要ステップの前に、この最後のテストを繰り返し、それに応じて吸入麻酔薬濃度を調整します。 </li><li>全体腹部表面が露出されるように密接に電気シェーバーを使用して前方の腹部を剃る。サプライヤーが推奨する期間クリームを脱毛適用します。クリームを取り外し、徹底的にク​​リームのすべてのトレースを削除するには、温めた滅菌生理食塩水で皮膚を洗い流す。皮膚に70％イソプロピルアルコール2％クロルヘキシジンを適用し、先に進む前に乾燥させます。これは、手術部位感染のための現在の証拠に基づいて私たちのユニットの標準皮製剤である図34を dしてくださいあなたの獣医部門とiscuss皮膚調製プロトコルを選出する前にあなたのユニットに標準的な手順は何です。 </li><li> 2カーテンのラットのいずれかの側に置き、それらを無菌に保つように注意してください。滅菌手袋を着用し、アシスタントの助けを借りて滅菌パックを開く。オールインワンドレープで楽器や縫合糸、ガーゼ、綿のアプリケーター、シリコーンシートや他の上の定規で無菌のマーカーペンを置きます。 </li><li>基準点として、剣状突起と尻尾を使って正中線を識別します。正中線をマーク。剣状突起下0.8センチメートルを測定し、この点をマークします。この点から正中線に垂直な線を描画します。 1センチメートルと2左にCMと正中線の右側の外フラップマークの中心として、正中線を取る。点からの正中線と平行に垂直線を描画します。オリジナルの水平線の下4センチメートルを測定し、そこに別のパラレルを描きます。これらの指示に従って4等しい片に分かれ4×横4cmフラップが線引きされる（ 図2参照）。 </li></ol> 3。レーザードップラーイメージング<ol><li>注意深くLDIスキャナの第二麻酔リグのノーズコーンにラットを移動します。 1L/minですO 2、イソフルラン1.5％で麻酔を続行します。レーザーをオンにして、スキャンを開始するために、メーカーの指示に従ってください。スキャンしたファイルを保存した後最初のリグに戻しラットを返し、潤滑剤として柔らかな白いパラフィンを使用して恒温ブランケットの直腸プローブを再挿入。 </li></ol> 4 現場 TRAMフラップで - 。IRIの筋皮モデル<ol><li>再スクラブ手と新鮮な滅菌手袋を置く。残りの滅菌ドレープの中央に直径5cmの円を切り取るとドレープ滅菌フィールドを作成するさらさ腹部の上にこれを置く。 </li><li>左側臥著しいエッジ（ 図3AおよびB）ダウンの切開を行います。止血を達成。水平線下に同じような切開を作る正中線の左側にある。止血を達成。 </li><li>左の劣った腹直筋鞘を覆う脂肪が見えるはずです。慎重に鉗子と細かい虹彩はさみを使用すると、この脂肪の下に取得します。左、前方の腹直筋鞘通り抜ける穿通損傷を与えないように注意してください。このような解剖によって開か飛行機はすぐに前腹壁の筋膜を超えています。画定余白周りこの平面に解剖を続行します。左腸骨窩で大型、表面的な曲折腸骨血管が、これらは縛らまたは焼灼することができる位置しています。その後、慎重に内側切開を延長し、唯一の限り左直筋の横方向のマージンとして。ピンクから近い白（ 図3C）には、この時点では明らかな色の変化があります。慎重に滅菌生理食塩水で領域を灌漑し、止血が領域の上に湿ったガーゼを置く前に達成されたことを確認してください。 </li><li>反対側の手順を繰り返しますが、今回は、Tを延長O 白線 （ミッドライン）。右腹直筋（ 図3D）の中心部に起因するすべての筋皮穿通を識別し、焼灼するように注意してください。これが適切に行われていない場合、それは術後の血腫とスプリアス結果になることができます。同様に、止血を達成灌漑育っフラップ上の湿ったガーゼを置きます。 </li><li>左前直筋の下縁（ 図3EおよびF）に戻ります。見て最も劣って穴あけを焼灼。 microscissorsを使用して前方の腹直筋鞘に小さな（約0.6センチメートルx 0.6 cmカタログ）ウィンドウを切断するために進み、曲がったGraeffe鉗子を指摘した。筋肉が後部シース破られる前に間引くなくなるまで筋肉の左右マージンダウンゆっくり解剖鈍い。その後、鉗子を回転させ、筋肉の腹が鉗子の湾曲した縁の上で、先端が内側余白に自由になるまで内側に解剖鈍らせる。近似​​フィードLY 6鉗子の顎に5-0 EthilonのCMと劣って腹直筋鞘をオフに結ぶ。このステップが完了すると筋皮フラップは1つの支配血管深い優れた腹部血管に孤立しています。湿ったガーゼでカバーしています。 </li><li>スムーズなコーナー、（ 図3G）と楕円にシリコーンシートをカットします。これらは、フラップのfasciocutaneous部で露光領域の大部分をカバーするのに十分大きくなければならない。しかし、注意が皮膚のエッジに張力なしで閉じることができ、楕円の内側曲線はそれを残りの穿通を通じて損なう流れを防止するために戻ってペアにしなければならないかもしれないように注意する必要があります。これらは、その後6-0 VICRYL（ 図3H）のある場所に縫合されています。湿ったガーゼでカバーしています。 </li><li>熱と水の損失（ 図3I）を低減するフラップ&#39;うちペッグ&#39;シンプル中断5-0 Ethilon縫合糸を使用した。湿ったガーゼでカバーしています。 </li><li>の左側に上方に傷を拡張剣状突起（ 図3I）。視野を改善するために、左上象限にこれを縫合する。 </li><li>優れた、左、前腹直筋鞘を明らかにするために、任意の上を覆う脂肪を切り取る。この鞘に小さな（0.6センチメートルx 0.6 cmカタログ）ウィンドウ（ 図3J）をカットします。垂直からしっかり緩い線維に詰めから斜めと一貫性が見られるに筋線維軌道の変化まで、内側に傷を拡張します。 </li><li>これら二つの筋肉の間で慎重に湾曲した鉗子を挿入し、鈍的切開によって平面を開く。慎重に基礎深い、優れた心窩部動脈と静脈（ 図3K）明らかにするために左腹直筋の腹を切ってこれらの湾曲した鉗子の優れた面としてのみ限り削減。 </li><li>手術用顕微鏡にマイクロ楽器とハイパワーを使用して、慎重に動脈と静脈を分離し、周囲の脂肪を取り除く。 </li><li>に非外傷性アクランドクランプを適用rteryと静脈（B-1、 &quot;V&quot;型）、30分虚血時間をカウントダウンするタイマーを開始します。クランプ茎を灌漑し、ガーゼでカバーしています。我々は、ベラパミルまたはpabavarineなどの血管拡張器を採用しませんでしたが、血管攣縮が問題でなければならず、これらの薬を考慮すべきである。 </li><li>ブプレノルフィン（0.04 mg / kg体重）と温め、滅菌生理食塩水（1ミリリットル/キロ/時間）を管理。 </li><li>左上隅から開始し、6-0 VICRYL表皮下縫合が停止と剣状突起で下車同点で固定フラップを縫合。 </li><li> 30分虚血時間が終了すると、慎重にクランプを取り外し、温めた生理食塩水で茎を灌漑。そのフローが再確立されている確認してください。この虚血時間は、英国内務省機関によって規定されたことに注意してください。他の当局で働く研究者は、この時間を延長することができるかもしれません。虚血時間を拡張する可能性がより悪い臨床転帰につながる。 </li><li> 6-0 VICRYLのある場所に戻って直筋のカットエッジを縫合。これは血管のよじれにつながることができますようにあまりにも多くの緊張を適用しないように注意してください。 </li><li>皮膚の下にあるすべてのノット（ 図3K）埋めるために世話をして皮下縫合を完了します。 </li><li>創傷領域をきれいにし、それが乾燥することができます。フラップ上にゾーンを再描画します。 </li><li>術後の画像を得るために動物を再スキャン。 </li><li>畜産ユニットに戻る前に回復する1時間温めインキュベーター（37℃）で、動物の目や場所に再適用lacrilube。 </li></ol>プロトコル内の重要なステップ手続きの核心は、深い、優れた腹部血管を識別している。これは添付の映画の中ではっきりと示されています。要するに、ウィンドウは長手方向に実行され、基礎となる筋肉繊維を露出させる前腹直筋鞘内に切断される。内側筋線維軌道の変更前腹直筋鞘の表層切開を拡張することにより、fは観察され斜めに縦ROM。筋線維これらの2つの束の交点に平滑末端、湾曲した、Graeffe鉗子（または類似の）挿入する。横方向に解剖鈍ら。筋線維束間のこの平面で開催された湾曲した鉗子の上面に、マイクロはさみを使用して、ダウンしてカットします。 Graeffeの除去に深く、優れた腹部動脈と静脈が腹直筋ボディの中点で観察される鉗子。脂肪上層のマイクロ楽器を使用して血管をはぎ取りとクランプを適用します。 ラットTRAMフラップのfasciocutaneous部分はフラップが全層皮膚移植として取ることを許可するのに十分薄い。これを防ぐために、これはIRI薄く、柔軟性のあるシリコンシートはフラップのfasciocutaneous部分の下に配置されています。35この手順は、採用されているラットTRAMモデルを引き受ける他の研究者によって。17,21,25の真のモデルであることを確認するラットかむthrouをGHノットはとてもすべての縫合糸が表皮下であり、すべてのノットが埋葬されていることを確認してください。他の研究者によって報告されたフラップの細心の縫合autocannabilismを行うことで回避することができる。24 ブプレノルフィンの投与後には、イソフルラン1％（1L/minですO 2）にメンテナンス麻酔を減らす。

我々は全く開示していません。

修正やトラブルシューティングここで紹介するプロトコルは、そのプロセスの更なる理解を可能にする実験系においてフリー組織転送に見られるIRIを再生し、IRIを改善し、結果を改善する手段を調査する手段を提供する。それは、非支配に基づいてされた場合、これは簡単に、より深刻な傷害を生成するように変更することができ、深い、下腹茎または虚血時間場合が増加...

このプロトコルの目的は、インターベンショナル戦略を調査することを可能にするフリー組織転送で観察された虚血再灌流障害の信頼性と再現性のあるモデルを実証することである。 無料組織転送は、受信者のサイトでネイティブ血管にフラップの切開血管の吻合でその組織の自家移植に続いて組織の孤立したブロックの血管の剥離として定義されています。手順は、FTT、自由フラップと呼ばれる転送される組織として知られています。 無料組織転送はローカルオプションが不適切、または使用できない複雑な、複合欠陥の補正のための金の標準的なアプローチではありません。1-4虚血再灌流障害（IRI）は、自由に組織の転送では避けられない失敗5,6フラップに貢献していない効果的な治療。無料のフラップ手術の選択科目性質はpharmacologiの管理を可能にIRIに対する前提条件にCALエージェント。 内皮活性化と代謝機能不全により微小循環を通じ障害フローにおけるIRIの結果は、7は毛細血管の透過性とその後の間質浮腫7、炎症細胞の流入、炎症性メディエーターの8リリース、活性酸素種9および補沈着を増加させた。10低酸素症のこの複雑なプロセスおよびその後の再潅流傷害、最終的に細胞死につながる。筋皮IRIのモデルが評価される臨床転帰に戦略を前処理の効果を可能にします。最近の研究は、ヒト対象と既存の動物データで観察された分子の変化を比較することにより、ヒトIRIの代理としてIRI研究の動物モデルの使用を検証した。10,11 ラット横腹直筋皮（TRAM）フラップはドイツ語12で、1993年に1987年に記載された英語で13。このモデルでは、無料のティッシュ転送に関連付けられたIRIを減らすために異なる戦略を調査するために安価な、堅牢なモデルとして幅広い人気を獲得した13-25。14,17-22これらの研究の大半は深い基づいunipedicled TRAMフラップとして設計され、劣った、 。とフォローアップ術後の異なる長さ（2から10日間） -これらの研究からのデータの腹部血管茎15-18,20-22比較は、異なる大きさの皮膚の島（31 cm 2と 10.5）を使用することによって複雑になる。これらの研究の対照群の平均総パーセンテージ面積フラップ壊死は69±6.2％（平均±SEM）である。それは、これらの6つの論文がすべての血管茎のキャリアとして腹直筋を採用しますが、分割して血管をmicroanastomoseまたはクランプ、公開しないことに注意すべきである。 Zhang ら 23女に優れ腹部血管に基づいて真の自由ラットTRAMフラップを記載している周は、隆起した血管が分割され、筋皮フラップが転送され、脚の付け根の血管にmicroanastomosedた。の0.5mm口径船 - この難しいテクニックは0.45のmicroanastomosisを必要とした。唯一の15が実行され、これらの67％生存した。23 Zhang らによって記述されたモデル。それは本当にFTT中に発生した怪我をミラーとして23は 、人間の自由TRAMフラップのための優れたモデルです。たラットTRAMフラップの他の発行されたモデルは、より正確に人間の有茎TRAM中に発生した傷害を反映するが、血管茎として再灌流に続いて虚血期間を経ていない、これらのフラップがクランプしないまたは分割んとして正確にIRIを反映していないとmicroanastomosis、実行。このプロトコルとビデオ​​はIRIがmicroclampsを使用して複製されているラットTRAMを使用して自由に組織移転の新モデルを記述する。これは、より忠実に茎TRAMの前任者よりIRI複製しかしperformiよりも技術的には簡単ですNG microanastomosis。 Microclamps広く固形臓器移植に関連付けられたIRIを再作成するために移植の研究で採用されてきた26-33しかし、これは、それがラットTRAMフラップに記載されているのは初めてです。

<table border="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td>Name of Reagent/Material</td>
 <td>Company</td>
 <td>Catalog Number</td>
 <td>Comments</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Moor LD12 laser doppler imaging scanner</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8" target="_blank">http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Complete homeothermic blanket system with flexible probe. Small. 230 VAC, 50 Hz</td>
 <td></td>
 <td>507221F</td>
 <td><a href="http://www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Graeffe forceps 0.8 mm tips curved</td>
 <td></td>
 <td>11052-10</td>
 <td>2, <a href="http://www.finescience.de" target="_blank">http://www.finescience.de</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Acland clamps</td>
 <td></td>
 <td>00398 V</td>
 <td>B-1 'V' pattern clamps used on both artery and vein. <a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Clamp applicator</td>
 <td></td>
 <td>CAF-4</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Gemini cautery unit</td>
 <td></td>
 <td>726067</td>
 <td><a href="www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro-vessel dilators 11 cm 0.3 mm tips 00124</td>
 <td></td>
 <td>D-5a.2</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Jewellers Forceps 11cm angulated 00109</td>
 <td></td>
 <td>JFA-5b</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Jewellers Forceps 11 cm straight 00108</td>
 <td></td>
 <td>JF-5</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Acland Single Clamps B-1V (Pair)</td>
 <td></td>
 <td>396</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Scissors Round Handles 15 cm Straight</td>
 <td></td>
 <td>67</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Iris Scissors 11.5 cm Curves EASY-CUT</td>
 <td></td>
 <td>EA7613-11</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Mayo Scissors 14 cm Straight Chamfered Blades EASY-CUT</td>
 <td></td>
 <td>EA7652-14</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Derf Needle Holders 12 cm TC</td>
 <td></td>
 <td>703DE12</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Ethilon 5-0</td>
 <td></td>
 <td>W1618</td>
 <td><a href="http://www.farlamedical.co.uk/" target="_blank">http://www.farlamedical.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vicryl rapide 6-0</td>
 <td></td>
 <td>W9913</td>
 <td><a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Instrapac - Adson Toothed Forceps (Extra Fine)</td>
 <td></td>
 <td>7973</td>
 <td><a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Castroviejo needle holders</td>
 <td></td>
 <td>12565-14</td>
 <td><a href="http://s-and-t.ne" target="_blank">http://s-and-t.ne</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Heat Lamp</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.chicken-house.co.uk" target="_blank">http://www.chicken-house.co.uk</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Silicone sheeting 0.3 mm translucent</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.silex.co.uk/" target="_blank">http://www.silex.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Image J software</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Zeiss OPMI pico</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.zeiss.co.uk/" target="_blank">http://www.zeiss.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Operating microscope</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vet tech solution isofluorane rig</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vet tech solution isofluorane rig</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td>
 </tr>
 </tbody>
</table>

in situ transverse rectus abdominis myocutaneous flap: a rat model of myocutaneous ischemia reperfusion injury

無料組織転送はローカルオプションまたはそれらを必要と複合組織に従順ではない複雑な欠陥を修復する再建手術のゴールドスタンダードです。虚血再灌流障害（IRI）が部分的自由フラップ故障の既知の原因であり、有効な治療法がありません。この傷害の実験モデルを確立することは、コストのかかる証明両方の大型哺乳類は、従来使用され、専門知識でこれらの手順の技術的な難しさで必要とされる財政的に一般的に経験豊かなマイクロ手術の専門医を採用する必要がありますすることができます。この出版物とビデオ顕微専門知識を必要としないラットのIRIのモデルの効果的な使用方法を示しています。この手順は、非外傷性クランプは、この手術に伴う虚血再灌流障害を再現するために利用される横方向の腹筋皮（TRAM）フラップの in situモデルである。レーザードップラーイメージング（LDI）スキャナはフラップ灌流と画像処理ソフト制を評価するために採用されている再、傷害の主要評価項目としてパーセンテージエリア皮膚の生存を評価するための画像J。

ラットモデルは、大型動物モデルよりも経済的であり、36は、本質的に病害抵抗性であり、遺伝的に操作することができる。げっ歯類として緩い肌の動物は、例えば、ヒトおよびブタのような固定された肌の動物と比較して皮膚の血液供給の異なる配置を有すると考えられていた。緩い皮動物では、皮膚は主にこれとは対照的に覆っている皮膚（ 図4）に脂肪皮下を通過?...

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In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

全組織転送が広く腫瘍切除および外傷後の形態および機能を回復させる再建手術で使用される。手術前に、この組織を前処理すると、結果を改善することがあります。この記事では説明し<em&gt;その場で</emコンディショニング戦略をテストするための手段として、ラットの&gt;横腹直筋皮弁（TRAM）。

筋皮虚血再灌流傷害のラットモデル： 現場横腹直筋皮フラップで

Free tissue transfer is the gold standard of reconstructive surgery to repair complex defects not amenable to local options or those requiring composite ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

13.6K ビュー.  Royal Infirmary of Edinburgh. 全組織転送が広く腫瘍切除および外傷後の形態および機能を回復させる再建手術で使用される。手術前に、この組織を前処理すると、結果を改善することがあります。この記事では説明しその場で横腹直筋皮弁（TRAM）。

ビデオ: In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

Normothermic Cardiac Arrest and Cardiopulmonary Resuscitation: A Mouse Model of Ischemia-Reperfusion Injury

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused by whole-body hypoperfusion.5,6 Successful reproduction of whole-body hypoperfusion in rodent models has been fraught with 
difficulty.7-9,9,10 Models which employ focal ischemia have repeatedly demonstrated results which do not translate to the clinical setting, and larger 
animal models which allow for whole body hypoperfusion lack access to the full toolset of genetic manipulation possible in the mouse.11,12 However, in recent 
years a mouse model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation has emerged which can be adapted to model AKI.13 This model reliably reproduces 
physiologic, functional, anatomic, and histologic outcomes seen in clinical AKI, is rapidly repeatable, and offers all of the significant advantages of a murine surgical 
model, including access to genetic manipulative techniques, low cost relative to large animals, and ease of use. Our group has developed extensive experience 
with use of this model to assess a number of organ-specific outcomes in AKI.14,15

A powerful model for perioperative and critical care related acute kidney injury is presented. Using whole body hypoperfusion induced by cardiac arrest it is possible to nearly replicate the histologic and functional changes of clinical AKI.

正常体温心停止と心肺蘇生法：虚血再灌流障害のマウスモデル

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

医学

Ischemia-reperfusion Model of Acute Kidney Injury and Post Injury Fibrosis in Mice

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often unreported mortality rates that may confound analyses. Bilateral renal pedicle clamping is commonly used to induce IR-AKI, but differences between effective clamp pressures and/or renal responses to ischemia between kidneys often lead to more variable results. In addition, shorter clamp times are known to induce more variable tubular injury, and while mice undergoing bilateral injury with longer clamp times develop more consistent tubular injury, they often die within the first 3 days after injury due to severe renal insufficiency. To improve post-injury survival and obtain more consistent and predictable results, we have developed two models of unilateral ischemia-reperfusion injury followed by contralateral nephrectomy. Both surgeries are performed using a dorsal approach, reducing surgical stress resulting from ventral laparotomy, commonly used for mouse IR-AKI surgeries. For induction of moderate injury BALB/c mice undergo unilateral clamping of the renal pedicle for 26 min and also undergo simultaneous contralateral nephrectomy. Using this approach, 50-60% of mice develop moderate AKI 24 hr after injury but 90-100% of mice survive. To induce more severe AKI, BALB/c mice undergo renal pedicle clamping for 30 min followed by contralateral nephrectomy 8 days after injury. This allows functional assessment of renal recovery after injury with 90-100% survival. Early post-injury tubular damage as well as post injury fibrosis are highly consistent using this model.

We describe models of moderate and severe ischemia-reperfusion-induced kidney injury in which the mice undergo unilateral renal pedicle clamping followed by simultaneous or delayed contralateral nephrectomy, respectively. These models consistently give rise to renal dysfunction and post-injury fibrosis, but injury severity and survival are dependent on mouse background, age and surgical equipment.

マウスにおける急性腎障害とポスト傷害線維の虚血再灌流モデル

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often ...

Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for myocardial infarction and cardiac complications of thoracic surgery. The ability of certain drugs to precondition the myocardium against ischemia reperfusion injury has led to multiple clinical trials, with little success. The isolated heart model allows acute observation of the functional effects of ischemia reperfusion injury in real time, including the effects of various pharmacological interventions administered at any time-point before or within the ischemia-reperfusion injury window. Since brief periods of ischemia can precondition the heart against ischemic injury, in situ aortic cannulation is performed to allow for functional assessment of non-preconditioned myocardium. A saline filled balloon is placed into the left ventricle to allow for real-time measurement of pressure generation. Ischemic injury is simulated by the cessation of perfusion buffer flow, followed by reperfusion. The duration of both ischemia and reperfusion can be modulated to examine biochemical events at any given time-point. Although the Langendorff isolated heart model does not allow for the consideration of systemic events affecting ischemia and reperfusion, it is an excellent model for the examination of acute functional and biochemical events within the window of ischemia reperfusion injury as well as the effect of pharmacological intervention on cardiac pre- and postconditioning. The goal of this protocol is to demonstrate how to perform in situ aortic cannulation and heart excision followed by ischemia/reperfusion injury in the Langendorff model.

The isolated rat heart is an enduring model for ischemia reperfusion injury. Here, we describe the process of harvesting the beating heart from a rat via in situ aortic cannulation, Langendorff perfusion of the heart, simulated ischemia-reperfusion injury, and infarct staining to confirm the extent of ischemic insult.

ランゲンドルフ灌流ラット心臓における虚血再灌流傷害の誘導と評価

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for ...

Murine Model of Intestinal Ischemia-reperfusion Injury

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, hypotension, necrotizing enterocolitis, bowel transplantation, trauma and chronic inflammation. Intestinal ischemia-reperfusion (IR) injury is a consequence of acute mesenteric ischemia, caused by inadequate blood flow through the mesenteric vessels, resulting in intestinal damage. Reperfusion following ischemia can further exacerbate damage of the intestine. The mechanisms of IR injury are complex and poorly understood. Therefore, experimental small animal models are critical for understanding the pathophysiology of IR injury and the development of novel therapies.
Here we describe a mouse model of acute intestinal IR injury that provides reproducible injury of the small intestine without mortality. This is achieved by inducing ischemia in the region of the distal ileum by temporally occluding the peripheral and terminal collateral branches of the superior mesenteric artery for 60 min using microvascular clips. Reperfusion for 1 hr, or 2 hr after injury results in reproducible injury of the intestine examined by histological analysis. Proper position of the microvascular clips is critical for the procedure. Therefore the video clip provides a detailed visual step-by-step description of this technique. This model of intestinal IR injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Here we describe the detailed procedure of intestinal ischemia-reperfusion in mice which results in reproducible injury without mortality to encourage the standardization of this technique across the field. This model of intestinal ischemia-reperfusion injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

腸管虚血 - 再灌流傷害のマウスモデル

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, ...

A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, diabetic retinopathy, and retinal vascular occlusions. Rodent models of I/R injury are providing significant insights into mechanisms and treatment strategies for human I/R injury, especially with regard to neurodegenerative damage in the retinal neurovascular unit. Presented here is a protocol for inducing retinal I/R injury in mice through elevation of intraocular pressure (IOP). In this protocol, the ocular anterior chamber is cannulated with a needle, through which flows the drip of an elevated saline reservoir. Using this drip to raise IOP above systolic arterial blood pressure, a practitioner temporarily halts inner retinal blood flow (ischemia). When circulation is reinstated (reperfusion) by removal of the cannula, severe cellular damage ensues, resulting ultimately in retinal neurodegeneration. Recent studies demonstrate inflammation, vascular permeability, and capillary degeneration as additional elements of this model. Compared to alternative retinal I/R methodologies, such as retinal arterial ligation, retinal I/R injury by elevated IOP offers advantages in its&#160;anatomical specificity, experimental tractability, and technical accessibility, presenting itself as a valuable tool for examining neuronal pathogenesis and therapy in the retinal neurovascular unit.

This article describes a procedure for inducing retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure in mice. Retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure serves to model human pathologies characterized by compromised oxygen and nutrient delivery in the retina, enabling researchers to examine potential cellular mechanisms and treatments for human diseases of the retinal neurovascular unit.

眼圧の上昇を通じて、網膜虚血再灌流障害のマウスモデル

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, ...

Evaluation of Coronary Flow Reserve After Myocardial Ischemia Reperfusion in Rats

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via recanalization of the coronary artery is the most effective strategy for reducing the size of ischemic myocardium. The coronary microvasculature cannot be visualized and imaged&#160;in vivo, but there are several invasive and noninvasive techniques that can be used to assess parameters which depend directly on coronary microvascular function. The endothelial function after ischemia reperfusion can be assessed also at the level of the coronary circulation via the coronary flow reserve (CFR).&#160;In this study, peak velocity of left anterior descending (LAD) coronary arteries was measured in rats in vivo via Transthoracic Doppler Echocardiography during resting and stress challenge (induced by Dobutamine). A normal heart can increase its coronary blood flow up to four times above the resting values during stress induction. Following ischemia reperfusion, we found a significantly diminished CFR, which can be used as a marker of coronary microvascular dysfunction. CFR has opened a window on the importance of microvascular dysfunction and has been shown to predict cardiovascular risk independent of whether the severe obstructive disease is present.

Coronary flow reserve (CFR), is defined as the ratio of maximal coronary blood flow to the resting coronary blood flow. We present a protocol for evaluating CFR in rats via ultrasound, which offers the opportunity to predict cardiovascular risk factors in the absence of obstructive coronary disease.

ラットにおける心筋虚血再灌流後の冠動脈流量の評価

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via ...

Modified Heterotopic Hindlimb Osteomyocutaneous Flap Model in the Rat for Translational Vascularized Composite Allotransplantation Research

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand and face transplants and, more recently, abdominal wall, uterus, and urogenital transplants. Functional outcomes have exceeded initial expectations, and most recipients enjoy an improved quality of life. However, as clinical experience accumulates, chronic rejection and complications from the immunosuppression must be addressed. In many cases where grafts have failed, the causative pathology has been ischemic vasculopathy. <span style="font-size: 11pt; line-height: 115%; font-family: Arial, sans-serif; color: rgb(41, 43, 49); background-image: initial; background-position: initial; background-size: initial; background-repeat: initial; background-attachment: initial; background-origin: initial; background-clip: initial;">The biological mechanisms of the acute and chronic rejection associated with VCA, especially ischemic vasculopathy, are important areas of research. However, due to the very small number of VCA patients, the evaluation of proposed mechanisms is better addressed in an experimental model. Multiple groups have used animal models to address some of the relevant unsolved questions in VCA rejection and vasculopathy. Several model designs involving a variety of species are described in the literature. Here we present a reproducible model of VCA heterotopic hindlimb osteomyocutaneous flap in the rat that can be utilized for translational VCA research. This model allows for the serial evaluation of the graft, including biopsies and different imaging modalities, while maintaining a low level of morbidity.

Vascularized composite allograft offers life-altering benefits to transplant recipients, but the biological causes of graft rejection and vasculopathy remain poorly understood. The rodent surgical model presented here offers a reproducible, clinically relevant model of transplantation, allowing researchers to evaluate rejection events and potential therapeutic strategies to prevent their occurrence.

トランスレーショナル血管化複合体他家移植研究のためのラットにおける修正 Heterotopic 後肢 Osteomyocutaneous フラップモデル

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand ...

A Pre-clinical Rat Model for the Study of Ischemia-reperfusion Injury in Reconstructive Microsurgery

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many areas of biomedical research due to its cost-effectiveness and its translation to humans. This protocol describes a method to create a preclinical free skin flap model in rats with ischemia-reperfusion injury. The described 3 cm x 6 cm rat free skin flap model is easily obtained after the placement of several vascular ligatures and the section of the vascular pedicle. Then, 8 h after the ischemic insult and completion of the microsurgical anastomosis, the free skin flap develops the tissue damage. These ischemia-reperfusion injury-related damages can be studied in this model, making it a suitable model for evaluating therapeutic agents to address this pathophysiological process. Furthermore, two main monitoring techniques are described in the protocol for the assessment of this animal model: transit-time ultrasound technology and laser speckle contrast analysis.

Here, we describe a pre-clinical animal model for studying the pathophysiology of ischemia-reperfusion injury in reconstructive microsurgery. This free skin flap model based on the superficial caudal epigastric vessels in the rat may also allow for the evaluation of different therapies and compounds to counteract ischemia-reperfusion injury-related damage.

再建微小外科における虚血再灌流損傷の研究のための前臨床ラットモデル

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many ...

Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, cardiac stem cell therapy is studied by delivering SCs concurrently with the induction of myocardial injury. However, this approach presents two significant limitations: the early hostile pro-inflammatory ischemic environment may affect the survival of transplanted SCs, and it does not represent the subacute infarction scenario where SCs will likely be used. Here we describe a two-part series of surgical procedures for the induction of ischemia-reperfusion injury and delivery of mesenchymal stem cells (MSCs). This method of stem cell administration may allow for the longer viability and retention around damaged tissue by circumventing the initial immune response. A model of ischemia reperfusion injury was induced in mice accompanied by the delivery of mesenchymal stem cells (3.0 x 105), stably expressing the reporter gene firefly luciferase under the constitutively expressed CMV promoter, intramyocardially 7 days later. The animals were imaged via ultrasound and bioluminescent imaging for confirmation of injury and injection of cells, respectively. Importantly, there was no added complication rate when performing this two-procedure approach for SC delivery. This method of stem cell administration, collectively with the utilization of state-of-the-art reporter genes, may allow for the in vivo study of viability and retention of transplanted SCs in a situation of chronic ischemia commonly seen clinically, while also circumventing the initial pro-inflammatory response. In summary, we established a protocol for the delayed delivery of stem cells into the myocardium, which can be used as a potential new approach in promoting regeneration of the damaged tissue.

Stems cells are continuously investigated as potential treatments for individuals with myocardial damage, however, their decreased viability and retention within injured tissue can impact their long-term efficacy. In this manuscript we describe an alternative method for stem cell delivery in a murine model of ischemia reperfusion injury.

マウスモデルにおける虚血再灌流損傷後の幹細胞の筋内内出産の遅延

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, ...

Organ Ischemia-Reperfusion Injury by Simulating Hemodynamic Changes in Rat Liver Transplant Model

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, including ischemia-reperfusion injury (IRI) of extrahepatic organs. This model requires numerous experiments and devices. The duration of anhepatic phase is closely related to the time to develop IRI after transplantation. In this experiment, we used hemodynamic changes to induce extrahepatic organ damage in rats and determined the maximum tolerance time. The time until the most severe organ injury varied for different organs. This method can easily be replicated and can also be used to study IRI of the extrahepatic organs after liver transplantation.

This paper provides a detailed description of how to build an animal model of the anhepatic phase (liver ischemia) in rats to facilitate basic research into ischemia-reperfusion injury after liver transplantation.

ラット肝移植モデルにおける血球力学的変化をシミュレートすることによる臓器虚血再灌流損傷

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, ...

筋皮虚血再灌流傷害のラットモデル： 現場横腹直筋皮フラップで

筋皮虚血再灌流傷害のラットモデル：現場横腹直筋皮フラップで