وقد تم تمويل هذا العمل من قبل مجلس البحوث الطبية المنحة G1000299. فإن مؤلف كتاب المقابلة أود أن أشكر غاري BORTHWICK، جامعة أدنبرة، عن مساعدة أثناء الجراحة. فإن الكتاب أود أن أنوه المشورة من هيلين دوغلاس وإيان ماكاي والسماح لنا أن نلاحظ شرسوفي الوضيعين العميق (ديب) إجراء رفرف (Canniesburn وحدة جراحة التجميل، غلاسكو مستشفى رويال، 84 شارع القلعة، غلاسكو G4 0SF، المملكة المتحدة). فإن الكتاب أود أيضا أن أشكر غاري بلاكي في جامعة ادنبره لمساعدته في انتاج الفيديو على هذا المقال.

يتم تنفيذ كل عملية جراحية وفقا للمبادئ التوجيهية التي وضعتها وزارة الداخلية في المملكة المتحدة وجامعة قسم الخدمات البيطرية في أدنبرة. 1. مجموعة المتابعة العملية الجراحية ملاحظات <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تغيير في الدعك نظيفة الجراحية، ثوب، وكأب وفرك القناع. تنظيف جميع الأسطح من غرفة العمليات بما في ذلك المعدات بالكلورهيكسيدين 2٪ في ايزوبروبيل 70٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قبل الجراحة، الأوتوكلاف جميع المستلزمات والأدوات التي سيتم استخدامها في العملية الجراحية. ينبغي حزم معقمة لكل عملية تشمل ما يلي: 3 الستائر والشاش وتطبيقها طرف القطن، والأغطية سيليكون والأدوات الجراحية، راجع الجدول من مواد جراحية محددة وأدوات والشكل 1. وزن الفئران وقياس من حجم مناسب من البوبرينورفين (0.04 ملجم / كجم) على أن تدار تحت الجلد 1 ساعة قبل إتمام الإجراء. وضع؛ 3 × 1 مل المحاقن لإدارة السوائل تحت الجلد خلال سورغريها، 2 × 6-0 ​​الغرز VICRYL، 1 × 5-0 الغرز Ethilon، علامة العقيمة مع الحاكم ومشرط المتاح 10 شفرة، 4-5 أزواج من القفازات المعقمة وحدة الكي باليد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المكان 4 × 10 مل العقيمة، 0.9٪ قارورة المياه المالحة في حمام مائي تحسنت إلى 37 درجة مئوية. سيتم استخدام هذا لاستبدال السوائل تحت الجلد (1 مل / كجم / ساعة)، وشطف موقع الجراحية. إعداد بطانية homeothermic، المستقيم التحقيق، مصباح الحرارة، مجهر جراحي ومخدر تلاعب. بدوره على الليزر وبرمجياتها، مجموعة المتابعة تلاعب مخدر آخر، ووضع وسادة الحرارة تحت حصيرة سوداء على الحيوان الذي سيضع أثناء الفحص. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام الذكور والفئران وزنها 250-300 ز لويس. يتم تنفيذ الفئران منزل لمدة 7 أيام مع الغذاء والماء بالمال وبالشهرة أيضا الإعلانية مع 12 ساعة الدوائر السوداء الخفيفة قبل أي عملية جراحية. </li></ol> 2. التخدير وتحضير الجلد <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع فأر في غرفة تحريض تلاعب مخدر وتدير 4٪ isoflurane ومع 1L/min O 2 لل2-3 دقيقة للحث على التخدير. إزالة الفئران تخدير من الغرفة ووضعه مستلق على حصيرة نظيفة، ساخنة. الحفاظ على isoflurane وبنسبة 1.5٪ باستخدام مخروط الأنف. تطبيق عامل lacrilube أو ما شابه ذلك لمنع تآكل القرنية أثناء العملية. إجراء اختبار قرصة القدم وسادة لضمان الحيوان هو تخدير كاف قبل المتابعة. كرر هذه التجربة الاخيرة قبل كل خطوة رئيسية في إجراء وضبط تركيز مخدر الاستنشاق وفقا لذلك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حلاقة عن كثب الأمامي البطن باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية بحيث يتعرض سطح البطن بأكمله. تطبيق السماط الكريم لمدة موصى بها من قبل المورد. إزالة كريم وشطف جيدا الجلد مع ملحي معقم تحسنت إلى إزالة كل آثار من القشدة. تطبيق الكلورهكسيدين 2٪ في ايزوبروبيل 70٪ على الجلد والسماح ليجف قبل المتابعة. هذا هو إعداد الجلد القياسية في وحدتنا على أساس الأدلة الحالية للعدوى موضع الجراحة. فضلك د 34iscuss مع قسم الطب البيطري الخاص ما هو الإجراء القياسي في وحدتك قبل انتخاب بروتوكول إعداد الجلد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مكان 2 ستائر جانبي الفئران والحرص على الاحتفاظ بها العقيمة. وضعت على قفازات معقمة وبمساعدة مساعد فتح علب معقمة. وضع جميع الصكوك على الستارة واحد وخياطة الجروح، والشاش، القطن تطبيقها، والأغطية سيليكون وعلامة من ركلة جزاء العقيمة مع حاكم من ناحية أخرى. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحديد خط الوسط باستخدام xiphisternum والذيل كنقاط مرجعية. جعل خط الوسط. قياس 0.8 سم تحت xiphisternum وبمناسبة هذه النقطة. رسم خط عمودي على خط الوسط من هذه النقطة. اتخاذ خط الوسط كمركز للعلامة رفرف من 1 سم و 2 سم إلى اليسار واليمين من خط الوسط. رسم خطوط عمودية متوازية على خط الوسط من النقاط. قياس 4 سم تحت الخط الأفقي الأصلي ورسم آخر مواز له. باتباع هذه التعليمات ويرسم على 4 × 4 سم رفرف ينقسم إلى 4 شرائح متساوية(انظر الشكل 2). </li></ol> 3. دوبلر الليزر التصوير <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحرك بحذر الفئران على مخروط الأنف من الثانية تلاعب مخدر في الماسح الضوئي LDI. يستمر التخدير عند 1.5٪ isoflurane و، 1L/min O 2. بدوره على الليزر واتبع إرشادات الشركة المصنعة لبدء المسح الضوئي. بعد حفظ الملف الممسوح ضوئيا عودة الفئران عودة إلى تلاعب الأولى وإعادة إدراج التحقيق المستقيم من بطانية homeothermic باستخدام البارافين الأبيض الطري ومواد التشحيم. </li></ol> 4 في الموقع رفرف الترام - نموذج عضلي جلدي من IRI <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الأيدي إعادة فرك وضعت على قفازات معقمة جديدة. قطع على دائرة قطرها 5 سم في وسط وثنى العقيمة المتبقية ووضع هذا على البطن يتعرض لإنشاء رايات العقيمة الميدان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء شق على الناحية اليسرى الجانبية حافة ملحوظ (الشكل 3A وباء). تحقيق الارقاء. جعل شقوق مماثلة أسفل خطوط أفقيةإلى اليسار من خط الوسط. تحقيق الارقاء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المغطي الدهون يجب أن يكون اليسار السفلي غمد المستقيمة مرئية. باستخدام ملقط ومقص القزحية غرامة بعناية تحصل تحت هذه الدهون. والحرص على عدم تلف الثاقبة القادمة من خلال الجهة اليسرى الأمامية غمد المستقيمة. الطائرة التي تتيحها مثل تشريح هو أن مباشرة فوق البطن الأمامي اللفافة الجدار. يواصل تشريح في هذه الطائرة حول الهوامش المرسومة. في الحفرة الحرقفية اليسرى تكمن الكبيرة، وسطحية المنعطف الحرقفي السفن هذه يمكن أن تكون مرتبطة أو أكتوي. ثم توسيع تشريح إعلامي بحذر وفقط بقدر الهامش الجانبي للعضلة المستقيمة اليسرى. هناك تغير لونها واضح في هذه النقطة من الوردي إلى الأبيض بالقرب من (الشكل 3C). ري بعناية المنطقة مع ملحي معقم وتحقق من أن الارقاء قد تحقق قبل وضع الشاش الرطب على المنطقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كرر الإجراء على الجانب المقابل ولكن هذه المرة تمديد ريا لينيا ألبا (منتصف خط). الحرص على تحديد ويكوي كل الثاقبة العضلي الجلدي الناشئة في وسط الحق المستقيمة البطنية العضلات (الشكل 3D). إذا لم يتم ذلك بشكل صحيح فإنه يمكن أن يؤدي إلى ورم دموي بعد العملية الجراحية والنتائج زائفة. وبالمثل تحقيق الإرقاء، لري ووضع الشاش الرطب على رفرف المثارة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> العودة إلى الهامش السفلي للالمستقيمة الأمامية اليسرى (الشكل 3E و F). يكوي ثقب معظم أدنى ينظر إليها. انتقل إلى خفض نافذة صغيرة (حوالي 0.6 سم × 0.6 سم) في غمد المستقيمة الأمامية باستخدام microscissors وأشار منحني ملقط Graeffe. بلانت تشريح ببطء إلى أسفل الهامش الجانبي للعضلة حتى يخفف العضلات خارج ولكن قبل أن يتم اختراق غمد الخلفي. ثم تناوب على ملقط وتخفف من حدة تشريح إعلامي حتى البطن من العضلات هو فوق الحافة المنحنية من ملقط ونصائح أحرار في الهامش وسطي. إطعام تقريبيLY 6 سم من 5-0 Ethilon في فكي ملقط وربط قبالة غمد المستقيمة السفلية. عند الانتهاء من هذه الخطوة هو عزل رفرف عضلي جلدي على واحد مهيمن سفينة الأوعية شرسوفي متفوقة عميق. تغطية مع الشاش رطبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع الأغطية سيليكون في الأشكال البيضاوية مع زوايا على نحو سلس، (الشكل 3G). وينبغي لهذه أن تكون كبيرة بما يكفي لتغطية معظم المنطقة المعرضة تحت الأجزاء fasciocutaneous من رفرف. ومع ذلك، يجب اتخاذ الحذر لضمان أن حافة الجلد يمكن أن تكون مغلقة دون أي توتر ومنحنى الإنسي للبيضاوي قد تضطر إلى أن تقرن مرة أخرى لمنعها تدفق إضعاف من خلال الثاقبة المتبقية. ثم تتم خياطة هذه في مكان مع 6-0 VICRYL (الشكل 3H). تغطي بشاش رطبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام بسيطة المقاطعة &#39;ربط خارج&#39; 5-0 الغرز Ethilon رفرف لتخفيض درجة الحرارة وفقدان الماء (الشكل 3I). تغطية مع الشاش رطبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تمديد الجرح متفوق على يسارxiphisternum (الشكل 3I). خياطة هذا إلى الربع العلوي الأيسر لتحسين من رأي الميدان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع بعيدا أي الدهون المغطي للكشف عن متفوقة، اليسار، الأمامي غمد المستقيمة. قطع (0.6 سم × 0.6 سم) نافذة صغيرة في هذا غمد (الشكل 3J). تمديد الجرح بشكل إعلامي حتى تغيير في مسار الألياف العضلية من العمودي إلى وينظر منحرف والاتساق من معبأة بإحكام لييفات فضفاضة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدراج ملقط المنحني بعناية بين هذه العضلات واثنين من فتح الطائرة من قبل تشريح حادة. قطع بعناية أسفل فقط بقدر السطح العلوي من هذه ملقط المنحني قطع طريق البطن من العضلات المستقيمة البطنية اليسرى لكشف الكامنة العميقة، متفوقة الشريان والوريد الشرسوفي (الشكل 3K). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام الأدوات الدقيقة وعالية الطاقة على المجهر التشغيل، فصل بعناية الشريان والوريد وتجريدها من أي الدهون المحيطة بها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق المشابك أكلاند ارضحي إلى أحدrtery والوريد (B-1، &quot;V&quot; نوع) وبدء موقت العد التنازلي لفترة 30 دقيقة الدماغية. ري فرضت عنيق، وتغطي بشاش. ونحن لم تستخدم الموسعات السفينة مثل فيراباميل أو pabavarine لكن ينبغي أن يكون تشنج الأوعية مشكلة، وينبغي النظر في هذه الأدوية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدارة البوبرينورفين (0.04 ملغ / كلغ) وتحسنت، ملحي معقم (1 مل / كغ / ساعة). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدءا من الزاوية اليسرى العليا، خياطة رفرف في مكان مع الغرز 6-0 تحت البشرة VICRYL وقف وربط قبالة في xiphisternum. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> عندما يوجد وقت الدماغية 30 قد انتهت، وإزالة بعناية والمشابك، ولري عنيق مع المياه المالحة حرارة. تأكد من أن تم إعادة تأسيس تدفق. يرجى ملاحظة أن هذه المرة الدماغية نص عليه المملكة المتحدة الرئيسية هيئة مكتب. الباحثين العاملين في السلطات الأخرى قد تكون قادرة على توسيع نطاق هذا الوقت. سوف تمديد الوقت الدماغية قد يؤدي إلى نتائج سريرية أسوأ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خياطة حواف قطع من المستقيمة إلى مكانه مرة أخرى مع 6-0 VICRYL.والحرص على عدم تطبيق الكثير من التوتر لأن ذلك يمكن أن يؤدي إلى مجعد من السفن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إكمال خياطة تحت الجلد مع الحرص على دفن كل عقدة تحت الجلد (الشكل 3K). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنظيف منطقة الجرح واتركه حتى يجف. إعادة رسم المناطق على رفرف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعادة فحص الحيوان للحصول على صورة ما بعد الجراحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعادة تطبيق lacrilube لعيون الحيوان ومكان في حاضنة حرارة (37 درجة مئوية) لمدة 1 ساعة لاستعادة قبل أن يعود إلى وحدة تربية. </li></ol> الخطوات الحاسمة في إطار بروتوكول جوهر هذا الإجراء هو في تحديد العميق، سفن شرسوفي متفوقة. ويظهر هذا بوضوح في الفيلم المرافق له. وباختصار، هو قطع نافذة في غمد المستقيمة الأمامية لفضح الألياف العضلية الأساسية التي سيقوم بتشغيل طوليا. من خلال توسيع تشريح سطحي من غمد المستقيمة الأمامية بشكل إعلامي تغييرا في مسار الألياف العضلية لوحظ جمعةROM طولية لمنحرف. إدراج فظة انتهت، المنحنية، ملقط Graeffe (أو ما شابه) عند تقاطع هذه حزم من الألياف العضلية اثنين. بلانت تشريح أفقيا. خفض، وذلك باستخدام المقص الصغير، على السطح العلوي للملقط المنحني الذي عقد في هذه الطائرة بين حزم الألياف العضلية. على إزالة Graeffe ملقط الشريان الشرسوفي عميق، متفوقة وسيراعى الوريد في منتصف من الجسم البطنية العضلات المستقيمة. تجريدها من المغطي الدهون في الأوعية باستخدام الأدوات الدقيقة وتطبيق المشابك. الأجزاء fasciocutaneous من رفرف الترام الفئران هي رقيقة بما فيه الكفاية للسماح للرفرف لاتخاذ كعضو كامل سماكة الجلد الكسب غير المشروع. لمنع هذا، وضمان أن هذا هو نموذج صحيح من IRI رقيقة، يتم وضع ورقة السيليكون مرنة تحت الأجزاء fasciocutaneous من رفرف. اعتمد 35 هذه الخطوة من قبل الباحثين الآخرين بإجراء نماذج الترام الفئران. 17،21،25 الفئران مضغه throuعقدة GH لذلك تأكد من جميع الغرز هي تحت البشرة ويتم دفن كل عقدة. في الاضطلاع الدقيق autocannabilism خياطة من اللوحات كما ذكرت من قبل الباحثين الآخرين يمكن تجنبها. 24 بعد إدارة البوبرينورفين لحد التخدير الصيانة إلى 1٪ isoflurane و(1L/min O 2).

ليس لدينا الإفصاحات.

التعديلات ومعرفة الخلل بروتوكول المعروضة هنا يستنسخ IRI ينظر في نقل الأنسجة الحرة في نظام تجريبي تمكين مزيد من الفهم لتلك العملية ويوفر وسيلة لتحقيق وسائل تخفيف IRI وتحسين النتيجة. يمكن بسهولة أن يتم تعديل هذا لإنتاج إصابة أكثر شدة إ...

والهدف من هذا البروتوكول هو ليبرهن على وجود نموذج موثوق بها وقابلة للتكرار وقوع الضرر نقص تروية-ضخه لوحظ في نقل الأنسجة حرة لتمكين الاستراتيجيات التدخلية للتحقيق معهم. يتم تعريف نقل الأنسجة مجانا كما مفرزة الأوعية الدموية من كتلة من الأنسجة المعزولة تليها زرع ذاتي من أن الأنسجة مع مفاغرة السفن رفرف في مقطوع على السفن الأم في موقع المتلقي. ومن المعروف أن الإجراء وFTT والأنسجة نقله ويشار إلى أن رفرف مجانا. نقل الأنسجة الحرة هي نهج معيار الذهب لتصحيح، وعيوب المركبة المعقدة حيث الخيارات المحلية غير مناسبة أو غير متوفر. 1-4 الإسكيمية الاصابة ضخه (IRI) أمر لا مفر منه في نقل الأنسجة الحرة، ويسهم في فشل رفرف 5،6 وليس لديها العلاج الفعال. طبيعة العمليات الجراحية الاختيارية رفرف مجانية تسمح إدارة pharmacologiوكلاء كال إلى شرط مسبق ضد IRI. النتائج IRI في تدفق من خلال ضعف دوران الأوعية الدقيقة من قبل التنشيط البطانية وضعف التمثيل الغذائي، 7 زيادة نفاذية الشعيرات الدموية وذمة لاحقة الخلالي 7، تدفق الخلايا الالتهابية، 8 الافراج عن وسطاء التهابات، وأنواع الاكسجين التفاعلية (9) وترسب مكملا 10 هذه العملية المعقدة من نقص الأكسجة والاصابة ضخه اللاحقة يؤدي في النهاية إلى موت الخلية. نموذج للعضلي جلدي IRI تمكن فعالية استراتيجيات شروط مسبقة على النتائج السريرية ليتم تقييمها. العمل الأخيرة قد صادق على استخدام نماذج حيوانية من دراسات المعهد الجمهوري الدولي كبديل للIRI الإنسان من خلال مقارنة التغيرات الجزيئية التي لوحظت في البشر والحيوان البيانات الموجودة. 10،11 الفئران عرضية المستقيمة البطنية عضلي جلدي (الترام) رفرف وقد وصفت لأول مرة في عام 1987 في 12 و الألمانية في عام 199313 في اللغة الإنجليزية. هذا النموذج اكتسب شعبية واسعة 13-25 كنموذج رخيصة وقوية للتحقيق استراتيجيات مختلفة للحد من IRI المرتبطة نقل الأنسجة الحرة. وقد صممت 14،17-22 غالبية هذه الدراسات واللوحات الترام unipedicled على أساس عميق، أقل شأنا، معقد شرسوفي الأوعية الدموية عنيق 15-18،20-22 مقارنة البيانات من هذه الدراسات من خلال استخدام الجزر الجلدي مختلفة الحجم (10،5 حتي 30 سم 2). وأطوال مختلفة من المتابعة بعد العملية الجراحية (2-10 يوما). ويبلغ متوسط ​​مساحة بلغت نسبة نخر رفرف في ذراع التحكم من هذه الدراسات هو 69 ± 6.2٪ (يعني ± SEM). وتجدر الإشارة إلى أن هذه الأوراق ستة توظيف جميع العضلات المستقيمة البطنية باعتبارها الناقل للعنيق الأوعية الدموية ولكن لا تعرض، وتقسيم microanastomose أو تضييق الأوعية. تشانغ وآخرون وقد وصفت 23 صحيح، مجانا الفئران رفرف الترام على أساس سفن شرسوفي متفوقة فيها ووأثيرت فات، سفن مقسمة ورفرف عضلي جلدي نقل وmicroanastomosed في الأوعية الفخذ. هذه التقنية الصعبة المطلوبة للمفاغرة مكروية من ،45-،5 مم السفن العيار. أجريت فقط خمسة عشر وهذه 67٪ نجا 23 نموذج صفها تشانغ وآخرون. 23 هو نموذج ممتاز للإنسان رفرف الترام مجانا كما أنه يعكس حقا الإصابة المتكبدة خلال FTT. نماذج أخرى نشرت من رفرف الترام الفئران تعكس بدقة أكبر الإصابات المتكبدة خلال ترام pedicled الإنسان، ولكن لا تعكس بدقة IRI لأن هذه رفرف في لا الخضوع لفترة الدماغية تليها ضخه كما عنيق الأوعية الدموية لا يتم فرضت أو تقسيم و إجراء مفاغرة مكروية. هذا البروتوكول والفيديو وصف نموذج جديد للنقل الأنسجة مجانا باستخدام الترام في الفئران التي يتم نسخ IRI باستخدام microclamps. هذا يعيد أكثر بأمانة IRI من سبقوه الترام عنيق لكن هو أسهل من الناحية التقنية من performiنانوغرام مفاغرة مكروية. وقد استخدمت على نطاق واسع Microclamps من قبل الباحثين لإعادة زرع IRI المرتبطة زرع الأعضاء الصلبة؛ 26-33 ومع ذلك، هذه هي المرة الأولى التي وصفت ذلك في رفرف الترام الفئران.

<table border="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td>Name of Reagent/Material</td>
 <td>Company</td>
 <td>Catalog Number</td>
 <td>Comments</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Moor LD12 laser doppler imaging scanner</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8" target="_blank">http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Complete homeothermic blanket system with flexible probe. Small. 230 VAC, 50 Hz</td>
 <td></td>
 <td>507221F</td>
 <td><a href="http://www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Graeffe forceps 0.8 mm tips curved</td>
 <td></td>
 <td>11052-10</td>
 <td>2, <a href="http://www.finescience.de" target="_blank">http://www.finescience.de</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Acland clamps</td>
 <td></td>
 <td>00398 V</td>
 <td>B-1 'V' pattern clamps used on both artery and vein. <a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Clamp applicator</td>
 <td></td>
 <td>CAF-4</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Gemini cautery unit</td>
 <td></td>
 <td>726067</td>
 <td><a href="www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro-vessel dilators 11 cm 0.3 mm tips 00124</td>
 <td></td>
 <td>D-5a.2</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Jewellers Forceps 11cm angulated 00109</td>
 <td></td>
 <td>JFA-5b</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Jewellers Forceps 11 cm straight 00108</td>
 <td></td>
 <td>JF-5</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Acland Single Clamps B-1V (Pair)</td>
 <td></td>
 <td>396</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Scissors Round Handles 15 cm Straight</td>
 <td></td>
 <td>67</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Iris Scissors 11.5 cm Curves EASY-CUT</td>
 <td></td>
 <td>EA7613-11</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Mayo Scissors 14 cm Straight Chamfered Blades EASY-CUT</td>
 <td></td>
 <td>EA7652-14</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Derf Needle Holders 12 cm TC</td>
 <td></td>
 <td>703DE12</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Ethilon 5-0</td>
 <td></td>
 <td>W1618</td>
 <td><a href="http://www.farlamedical.co.uk/" target="_blank">http://www.farlamedical.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vicryl rapide 6-0</td>
 <td></td>
 <td>W9913</td>
 <td><a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Instrapac - Adson Toothed Forceps (Extra Fine)</td>
 <td></td>
 <td>7973</td>
 <td><a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Castroviejo needle holders</td>
 <td></td>
 <td>12565-14</td>
 <td><a href="http://s-and-t.ne" target="_blank">http://s-and-t.ne</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Heat Lamp</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.chicken-house.co.uk" target="_blank">http://www.chicken-house.co.uk</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Silicone sheeting 0.3 mm translucent</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.silex.co.uk/" target="_blank">http://www.silex.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Image J software</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Zeiss OPMI pico</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.zeiss.co.uk/" target="_blank">http://www.zeiss.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Operating microscope</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vet tech solution isofluorane rig</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vet tech solution isofluorane rig</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td>
 </tr>
 </tbody>
</table>

in situ transverse rectus abdominis myocutaneous flap: a rat model of myocutaneous ischemia reperfusion injury

نقل الأنسجة الحرة هي معيار الذهب من الجراحة الترميمية لإصلاح العيوب المعقدة غير قابلة للخيارات المحلية أو تلك التي تتطلب الأنسجة المركبة. نقص التروية الاصابة ضخه (IRI) هو سبب معروف من فشل جزئي رفرف مجانا وليس له علاج فعال. يمكن إنشاء نموذج مختبر من هذا الضرر يكون مكلفا ماليا كما تستخدم تقليديا أكبر الثدييات والخبرة المطلوبة من صعوبة التقنية لهذه الإجراءات عادة ما يتطلب استخدام وmicrosurgeon ذوي الخبرة. هذا المنشور والفيديو شرح استخدام الفعال لنموذج IRI في الفئران التي لا تتطلب خبرة المجهرية. هذا الإجراء هو نموذج الموقع من عضلي جلدي البطنية المستعرضة (الترام) رفرف حيث تستخدم المشابك ارضحي إعادة إنشاء إصابة نقص التروية-ضخه المرتبطة بهذه الجراحة في. يتم توظيف دوبلر التصوير (LDI) الماسح الضوئي ليزر لتقييم نضح رفرف ومعالجة الصور softwaإعادة، J صورة لتقييم نسبة بقاء منطقة الجلد كإجراء النتيجة الأولية من الإصابة.

نماذج الفئران هي أكثر اقتصادا من الحيوانات أكبر النماذج، 36 هي مقاومة للمرض في الطبيعة، ويمكن التلاعب بها وراثيا. ويعتقد أن الحيوانات البشرة فضفاضة، مثل القوارض، أن يكون لها ترتيب مختلف من إمدادات الدم الجلدي بالمقارنة مع الحيوانات البشرة الثابتة مثل البشر وا?...

Watch this Scientific Journal Video about In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury at JoVE.com

In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

يعمل نقل الأنسجة الحرة على نطاق واسع في الجراحة الترميمية لاستعادة الشكل والوظيفة بعد استئصال الأورام والصدمات النفسية. شروط مسبقة هذا النسيج قبل الجراحة قد يحسن النتيجة. توضح هذه المقالة<em&gt; في الموقع</em&gt; المستقيمة البطنية عرضية عضلي جلدي رفرف (الترام) في الفئران كوسيلة لاختبار استراتيجيات شروط مسبقة.

في الموقع المستقيمة البطنية عرضية عضلي جلدي رفرف: نموذج الفئران من الاصابة ضخه الإسكيمية عضلي جلدي

Free tissue transfer is the gold standard of reconstructive surgery to repair complex defects not amenable to local options or those requiring composite ...

in-situ-transverse-rectus-abdominis-myocutaneous-flap-rat-model

Research

JoVE Journal

Medicine

In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

13.7K Views.  Royal Infirmary of Edinburgh. يعمل نقل الأنسجة الحرة على نطاق واسع في الجراحة الترميمية لاستعادة الشكل والوظيفة بعد استئصال الأورام والصدمات النفسية. شروط مسبقة هذا النسيج قبل الجراحة قد يحسن النتيجة. توضح هذه المقالة في الموقع المستقيمة البطنية عرضية عضلي جلدي رفرف (الترام) في الف?...

Video: In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

Normothermic Cardiac Arrest and Cardiopulmonary Resuscitation: A Mouse Model of Ischemia-Reperfusion Injury

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused by whole-body hypoperfusion.5,6 Successful reproduction of whole-body hypoperfusion in rodent models has been fraught with 
difficulty.7-9,9,10 Models which employ focal ischemia have repeatedly demonstrated results which do not translate to the clinical setting, and larger 
animal models which allow for whole body hypoperfusion lack access to the full toolset of genetic manipulation possible in the mouse.11,12 However, in recent 
years a mouse model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation has emerged which can be adapted to model AKI.13 This model reliably reproduces 
physiologic, functional, anatomic, and histologic outcomes seen in clinical AKI, is rapidly repeatable, and offers all of the significant advantages of a murine surgical 
model, including access to genetic manipulative techniques, low cost relative to large animals, and ease of use. Our group has developed extensive experience 
with use of this model to assess a number of organ-specific outcomes in AKI.14,15

A powerful model for perioperative and critical care related acute kidney injury is presented. Using whole body hypoperfusion induced by cardiac arrest it is possible to nearly replicate the histologic and functional changes of clinical AKI.

توقف القلب والإنعاش القلبي Normothermic : نموذج الفأر من نقص التروية ، إعادة إشباع الخلايا الإصابات

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

Ischemia-reperfusion Model of Acute Kidney Injury and Post Injury Fibrosis in Mice

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often unreported mortality rates that may confound analyses. Bilateral renal pedicle clamping is commonly used to induce IR-AKI, but differences between effective clamp pressures and/or renal responses to ischemia between kidneys often lead to more variable results. In addition, shorter clamp times are known to induce more variable tubular injury, and while mice undergoing bilateral injury with longer clamp times develop more consistent tubular injury, they often die within the first 3 days after injury due to severe renal insufficiency. To improve post-injury survival and obtain more consistent and predictable results, we have developed two models of unilateral ischemia-reperfusion injury followed by contralateral nephrectomy. Both surgeries are performed using a dorsal approach, reducing surgical stress resulting from ventral laparotomy, commonly used for mouse IR-AKI surgeries. For induction of moderate injury BALB/c mice undergo unilateral clamping of the renal pedicle for 26 min and also undergo simultaneous contralateral nephrectomy. Using this approach, 50-60% of mice develop moderate AKI 24 hr after injury but 90-100% of mice survive. To induce more severe AKI, BALB/c mice undergo renal pedicle clamping for 30 min followed by contralateral nephrectomy 8 days after injury. This allows functional assessment of renal recovery after injury with 90-100% survival. Early post-injury tubular damage as well as post injury fibrosis are highly consistent using this model.

We describe models of moderate and severe ischemia-reperfusion-induced kidney injury in which the mice undergo unilateral renal pedicle clamping followed by simultaneous or delayed contralateral nephrectomy, respectively. These models consistently give rise to renal dysfunction and post-injury fibrosis, but injury severity and survival are dependent on mouse background, age and surgical equipment.

نقص التروية-ضخه نموذج من إصابة الكلى الحاد والتليف آخر الاصابات في الفئران

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often ...

Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for myocardial infarction and cardiac complications of thoracic surgery. The ability of certain drugs to precondition the myocardium against ischemia reperfusion injury has led to multiple clinical trials, with little success. The isolated heart model allows acute observation of the functional effects of ischemia reperfusion injury in real time, including the effects of various pharmacological interventions administered at any time-point before or within the ischemia-reperfusion injury window. Since brief periods of ischemia can precondition the heart against ischemic injury, in situ aortic cannulation is performed to allow for functional assessment of non-preconditioned myocardium. A saline filled balloon is placed into the left ventricle to allow for real-time measurement of pressure generation. Ischemic injury is simulated by the cessation of perfusion buffer flow, followed by reperfusion. The duration of both ischemia and reperfusion can be modulated to examine biochemical events at any given time-point. Although the Langendorff isolated heart model does not allow for the consideration of systemic events affecting ischemia and reperfusion, it is an excellent model for the examination of acute functional and biochemical events within the window of ischemia reperfusion injury as well as the effect of pharmacological intervention on cardiac pre- and postconditioning. The goal of this protocol is to demonstrate how to perform in situ aortic cannulation and heart excision followed by ischemia/reperfusion injury in the Langendorff model.

The isolated rat heart is an enduring model for ischemia reperfusion injury. Here, we describe the process of harvesting the beating heart from a rat via in situ aortic cannulation, Langendorff perfusion of the heart, simulated ischemia-reperfusion injury, and infarct staining to confirm the extent of ischemic insult.

الاستقراء وتقييم الإصابة الإسكيمية-ضخه في Langendorff perfused لالجرذ القلوب

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for ...

Murine Model of Intestinal Ischemia-reperfusion Injury

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, hypotension, necrotizing enterocolitis, bowel transplantation, trauma and chronic inflammation. Intestinal ischemia-reperfusion (IR) injury is a consequence of acute mesenteric ischemia, caused by inadequate blood flow through the mesenteric vessels, resulting in intestinal damage. Reperfusion following ischemia can further exacerbate damage of the intestine. The mechanisms of IR injury are complex and poorly understood. Therefore, experimental small animal models are critical for understanding the pathophysiology of IR injury and the development of novel therapies.
Here we describe a mouse model of acute intestinal IR injury that provides reproducible injury of the small intestine without mortality. This is achieved by inducing ischemia in the region of the distal ileum by temporally occluding the peripheral and terminal collateral branches of the superior mesenteric artery for 60 min using microvascular clips. Reperfusion for 1 hr, or 2 hr after injury results in reproducible injury of the intestine examined by histological analysis. Proper position of the microvascular clips is critical for the procedure. Therefore the video clip provides a detailed visual step-by-step description of this technique. This model of intestinal IR injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Here we describe the detailed procedure of intestinal ischemia-reperfusion in mice which results in reproducible injury without mortality to encourage the standardization of this technique across the field. This model of intestinal ischemia-reperfusion injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

نموذج الفئران من المعوية الإسكيمية-ضخه إصابة

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, ...

A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, diabetic retinopathy, and retinal vascular occlusions. Rodent models of I/R injury are providing significant insights into mechanisms and treatment strategies for human I/R injury, especially with regard to neurodegenerative damage in the retinal neurovascular unit. Presented here is a protocol for inducing retinal I/R injury in mice through elevation of intraocular pressure (IOP). In this protocol, the ocular anterior chamber is cannulated with a needle, through which flows the drip of an elevated saline reservoir. Using this drip to raise IOP above systolic arterial blood pressure, a practitioner temporarily halts inner retinal blood flow (ischemia). When circulation is reinstated (reperfusion) by removal of the cannula, severe cellular damage ensues, resulting ultimately in retinal neurodegeneration. Recent studies demonstrate inflammation, vascular permeability, and capillary degeneration as additional elements of this model. Compared to alternative retinal I/R methodologies, such as retinal arterial ligation, retinal I/R injury by elevated IOP offers advantages in its&#160;anatomical specificity, experimental tractability, and technical accessibility, presenting itself as a valuable tool for examining neuronal pathogenesis and therapy in the retinal neurovascular unit.

This article describes a procedure for inducing retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure in mice. Retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure serves to model human pathologies characterized by compromised oxygen and nutrient delivery in the retina, enabling researchers to examine potential cellular mechanisms and treatments for human diseases of the retinal neurovascular unit.

نموذج الفأر من الشبكية الإسكيمية-ضخه إصابة خلال ارتفاع ضغط العين

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, ...

Evaluation of Coronary Flow Reserve After Myocardial Ischemia Reperfusion in Rats

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via recanalization of the coronary artery is the most effective strategy for reducing the size of ischemic myocardium. The coronary microvasculature cannot be visualized and imaged&#160;in vivo, but there are several invasive and noninvasive techniques that can be used to assess parameters which depend directly on coronary microvascular function. The endothelial function after ischemia reperfusion can be assessed also at the level of the coronary circulation via the coronary flow reserve (CFR).&#160;In this study, peak velocity of left anterior descending (LAD) coronary arteries was measured in rats in vivo via Transthoracic Doppler Echocardiography during resting and stress challenge (induced by Dobutamine). A normal heart can increase its coronary blood flow up to four times above the resting values during stress induction. Following ischemia reperfusion, we found a significantly diminished CFR, which can be used as a marker of coronary microvascular dysfunction. CFR has opened a window on the importance of microvascular dysfunction and has been shown to predict cardiovascular risk independent of whether the severe obstructive disease is present.

Coronary flow reserve (CFR), is defined as the ratio of maximal coronary blood flow to the resting coronary blood flow. We present a protocol for evaluating CFR in rats via ultrasound, which offers the opportunity to predict cardiovascular risk factors in the absence of obstructive coronary disease.

تقييم احتياطي التدفق التاجي بعد إعادة ضخ الإقفارية عضلة القلب في الفئران

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via ...

Modified Heterotopic Hindlimb Osteomyocutaneous Flap Model in the Rat for Translational Vascularized Composite Allotransplantation Research

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand and face transplants and, more recently, abdominal wall, uterus, and urogenital transplants. Functional outcomes have exceeded initial expectations, and most recipients enjoy an improved quality of life. However, as clinical experience accumulates, chronic rejection and complications from the immunosuppression must be addressed. In many cases where grafts have failed, the causative pathology has been ischemic vasculopathy. <span style="font-size: 11pt; line-height: 115%; font-family: Arial, sans-serif; color: rgb(41, 43, 49); background-image: initial; background-position: initial; background-size: initial; background-repeat: initial; background-attachment: initial; background-origin: initial; background-clip: initial;">The biological mechanisms of the acute and chronic rejection associated with VCA, especially ischemic vasculopathy, are important areas of research. However, due to the very small number of VCA patients, the evaluation of proposed mechanisms is better addressed in an experimental model. Multiple groups have used animal models to address some of the relevant unsolved questions in VCA rejection and vasculopathy. Several model designs involving a variety of species are described in the literature. Here we present a reproducible model of VCA heterotopic hindlimb osteomyocutaneous flap in the rat that can be utilized for translational VCA research. This model allows for the serial evaluation of the graft, including biopsies and different imaging modalities, while maintaining a low level of morbidity.

Vascularized composite allograft offers life-altering benefits to transplant recipients, but the biological causes of graft rejection and vasculopathy remain poorly understood. The rodent surgical model presented here offers a reproducible, clinically relevant model of transplantation, allowing researchers to evaluate rejection events and potential therapeutic strategies to prevent their occurrence.

المعدلة المغايرة الأوستيوميوكوتانيوس رفرف النموذج في الفئران لنقل الاوعيه الدموية المركبة المركب البحوث

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand ...

A Pre-clinical Rat Model for the Study of Ischemia-reperfusion Injury in Reconstructive Microsurgery

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many areas of biomedical research due to its cost-effectiveness and its translation to humans. This protocol describes a method to create a preclinical free skin flap model in rats with ischemia-reperfusion injury. The described 3 cm x 6 cm rat free skin flap model is easily obtained after the placement of several vascular ligatures and the section of the vascular pedicle. Then, 8 h after the ischemic insult and completion of the microsurgical anastomosis, the free skin flap develops the tissue damage. These ischemia-reperfusion injury-related damages can be studied in this model, making it a suitable model for evaluating therapeutic agents to address this pathophysiological process. Furthermore, two main monitoring techniques are described in the protocol for the assessment of this animal model: transit-time ultrasound technology and laser speckle contrast analysis.

Here, we describe a pre-clinical animal model for studying the pathophysiology of ischemia-reperfusion injury in reconstructive microsurgery. This free skin flap model based on the superficial caudal epigastric vessels in the rat may also allow for the evaluation of different therapies and compounds to counteract ischemia-reperfusion injury-related damage.

نموذج الفئران قبل السريرية لدراسة نقص التروية-ضخ الاصابه في جراحه المجهرية الترميمية

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many ...

Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, cardiac stem cell therapy is studied by delivering SCs concurrently with the induction of myocardial injury. However, this approach presents two significant limitations: the early hostile pro-inflammatory ischemic environment may affect the survival of transplanted SCs, and it does not represent the subacute infarction scenario where SCs will likely be used. Here we describe a two-part series of surgical procedures for the induction of ischemia-reperfusion injury and delivery of mesenchymal stem cells (MSCs). This method of stem cell administration may allow for the longer viability and retention around damaged tissue by circumventing the initial immune response. A model of ischemia reperfusion injury was induced in mice accompanied by the delivery of mesenchymal stem cells (3.0 x 105), stably expressing the reporter gene firefly luciferase under the constitutively expressed CMV promoter, intramyocardially 7 days later. The animals were imaged via ultrasound and bioluminescent imaging for confirmation of injury and injection of cells, respectively. Importantly, there was no added complication rate when performing this two-procedure approach for SC delivery. This method of stem cell administration, collectively with the utilization of state-of-the-art reporter genes, may allow for the in vivo study of viability and retention of transplanted SCs in a situation of chronic ischemia commonly seen clinically, while also circumventing the initial pro-inflammatory response. In summary, we established a protocol for the delayed delivery of stem cells into the myocardium, which can be used as a potential new approach in promoting regeneration of the damaged tissue.

Stems cells are continuously investigated as potential treatments for individuals with myocardial damage, however, their decreased viability and retention within injured tissue can impact their long-term efficacy. In this manuscript we describe an alternative method for stem cell delivery in a murine model of ischemia reperfusion injury.

تأخر التسليم داخل القلب للخلايا الجذعية بعد إصابة إعادة ضخ الإقفاري في نموذج مورين

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, ...

Organ Ischemia-Reperfusion Injury by Simulating Hemodynamic Changes in Rat Liver Transplant Model

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, including ischemia-reperfusion injury (IRI) of extrahepatic organs. This model requires numerous experiments and devices. The duration of anhepatic phase is closely related to the time to develop IRI after transplantation. In this experiment, we used hemodynamic changes to induce extrahepatic organ damage in rats and determined the maximum tolerance time. The time until the most severe organ injury varied for different organs. This method can easily be replicated and can also be used to study IRI of the extrahepatic organs after liver transplantation.

This paper provides a detailed description of how to build an animal model of the anhepatic phase (liver ischemia) in rats to facilitate basic research into ischemia-reperfusion injury after liver transplantation.

إصابة الجهاز الإقصاب الإقفاري-Reperfusion عن طريق محاكاة التغيرات الديناميكية الدموية في نموذج زراعة كبد الفئران

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, ...