본 연구는 의학 연구위원회 교부금 G1000299에 의해 투자되었다. 해당 저자는 수술하는 동안 지원을 위해 게리 Borthwick는 에든버러 대학교, 감사드립니다. 저자는 헬렌 더글러스와 이안 맥케이의 조언을 인정 좋아하고 저희가 깊은 열등한 상복부 (디엡) 플랩 절차 (Canniesburn 성형 수술 장치, 글래스고 로열 병원, 84 성 거리, 글래스고 G4 0SF, UK) 관찰 할 수있다. 저자는 또한이 기사의 동영상을 제작 자신의 도움 에든버러 대학에서 게리 흑인에게 감사의 말씀을 전합니다.

모든 수술은 영국의 홈 오피스 에딘버러의 수의학 대학 의학과에 의해 설정된 지침에 따라 수행됩니다. 1. 수술 셋업 노트 <ol><li> 깨끗한 외과 수술, 가운, 스크럽 모자와 마스크로 변경합니다. 70 % 이소 프로필 알코올의 2 % 클로르헥시딘과 장비를 포함한 수술실의 모든 표면을 청소합니다. </li><li> 수술에 앞서, 모든 수술 소모품 및 절차에 사용되는 악기를 압력솥. 작업 당 무균 팩은 다음을 포함한다 : 3 커튼, 거즈,면 끝 도포, 실리콘 시트 및 수술 악기, 특정 수술 재료 및 도구 및 그림 1의 표를 참조하십시오. 쥐 무게와 절차를 완료하기 전에 피하 주사 1 시간을 관리 할 부 프레 노르 핀의 적절한 볼륨 (0.04 ㎎ / ㎏) 밖으로 측정. 레이아웃, 외과 동안 피하 유동성 관리를위한 3 x 1 ML의 주사기ERY 2 개, 6-0 Vicryl 봉합사 1 개, 5-0 Ethilon 봉합, 눈금자 및 10 블레이드 일회용 메스, 4 멸균 마커 - 5 멸균 장갑의 쌍 휴대용 소작 단위입니다. </li><li> 장소 4는 개의 x 10 ㎖ 멸균, 물을 욕조에있는 0.1 Mpix, JPG 0.9 % 생리 식염수 작은 유리 병는 37 ° C.에 따뜻하게 이 피하 유체 교체를 위해 사용됩니다 (1 ML / ㎏ / HR) 및 수술 부위를 세척 할 것. homeothermic 담요, 직장 프로브, 열 램프, 운영 현미경 및 마취 장비를 설정합니다. 레이저와 자사의 소프트웨어를 켜고, 다른 마취 장비 설치 및 동물 스캔하는 동안 누워 것입니다하는 블랙 매트 아래에 열 패드를 놓습니다. </li><li> 250-300그램 무게 남성, 루이스 쥐를 사용합니다. 어떤 수술 전 12 시간 빛 어두운주기 음식과 물을 광고 무제한으로 7 일 동안 집에 쥐가 수행됩니다. </li></ol> 2. 마취 및 피부 준비 <ol><li> 마취 장비의 유도 챔버에 쥐를 배치하고에 대한 1L/min O 2와 함께 4 % isoflurane을 관리합니다마취 유도 2 ~ 3 분. 챔버에서 마취 쥐를 제거하고 깨끗한 온수 매트에 누운 놓습니다. 코 콘을 사용하여 1.5 %의 isoflurane을 유지합니다. 절차를 수행하는 동안 각막 마모를 방지하기 위해 lacrilube 또는 유사한 에이전트를 적용합니다. 동물이 진행하기 전에 적절하게 마취인지 확인하는 발 패드 핀치 테스트를 수행합니다. 절차의 각 중요한 단계 전에 마지막 테스트를 반복하고 그에 따라 흡입 마취제의 농도를 조정합니다. </li><li> 전체 복부 표면이 노출되도록 가깝게 전기 면도기를 사용하여 전방 복부를 면도. 공급 업체에서 권장하는 기간 동안 크림을 depilating 적용됩니다. 크림을 제거하고 철저 크림의 모든 흔적을 제거하기 위해 예열 멸균 식염수로 피부를 씻어. 피부에 70 % 이소 프로필 알코올의 2 % 클로르헥시딘을 적용하고 계속 진행하기 전에 건조 할 수 있습니다. 이는 외과 사이트 감염에에 대한 현재의 증거를에 근거를 둔 우리의 단위에있는 표준 피부 준비이다. 34하시기 바랍니다 D귀하의 수의학 부서와 함께 iscuss 피부 준비 프로토콜을 선출하기 전에 당신의 유닛에 표준 절차 것입니다. </li><li> 장소 2 드레이프는 중 하나를 쥐의 측면과 그 (것)들을가 멸균 유지하기 위해주의를 기울입니다. 멸균 장갑을 착용하고 조수의 도움으로 멸균 팩을 엽니 다. 모두 한 드레이프의 악기와 봉합, 거즈,면 도포 구, 실리콘 시트 및 기타 눈금자와 멸균 마커 펜을 놓습니다. </li><li> 참조 점으로 흉부의 검상 부부와 꼬리를 사용하여 정중선을 식별합니다. 중간 선을 표시합니다. 조류 늑골의 검상 돌기 아래에 0.8 cm를 측정하고이 점을 표시합니다. 이 시점에서 중간 선에 수직 인 선을 그립니다. 1cm와 2cm 왼쪽과 정중선의 오른쪽 밖으로 플랩 마크의 중심으로 정중선을 가지고. 지점에서 정중선에 평행 한 수직선을 그립니다. 원래 수평선 아래 4cm를 측정하고 또 다른 평행을 그립니다. 이러한 지시 사항에 따라 4 동일한 스트립으로 나누어 4 x 4 개의 센티미터 플랩은 묘사되어 있습니다(그림 2을 참조). </li></ol> 3. 레이저 도플러 영상 <ol><li> 조심스럽게 LDI 스캐너에서 두 번째 마취 장비의 코 콘에 쥐를 이동합니다. isoflurane을 1.5 %, 1L/min O 2시에 마취를 계속합니다. 레이저의 전원을 켜고 스캔을 시작하기 위해 제조 업체의 지침을 따르십시오. 스캔 한 파일을 저장 한 후 첫 번째 장비로 쥐를 반환하고 윤활유 부드러운 흰색 파라핀을 사용하여 homeothermic 담요 직장 프로브를 다시 삽입합니다. </li></ol> 4.에서 현장 전차 플랩 - IRI의 Myocutaneous 모델 <ol><li> 다시 스크럽 손과 신선한 멸균 장갑을 넣어. 나머지 무균 드레이프의 중심에서 5 cm 직경의 원을 잘라 주름 잡아 드리 워진 멸균 필드를 만들 노출 복부를 통해이 문제를 배치합니다. </li><li> 왼쪽 측면 표시된 가장자리에 (그림 3A 및 B) 아래로 절개를 확인합니다. 지혈을 얻을 수 있습니다. 가로 선 아래로 유사한 절개를 만들기정중선의 왼쪽에. 지혈을 얻을 수 있습니다. </li><li> 지방 덮고은 왼쪽 직근 칼집 볼 수 있어야합니다. 주의 집게 및 미세 홍채 가위를 사용하면이 지방 아래 얻을. 왼쪽 전방 직근 칼집 통해 오는 천공이 손상되지 않도록주의하십시오. 같은 해부에 의해 연 비행기는 바로 앞쪽에 복벽 근막 이상입니다. 경계가 여백의 주위에이 비행기에서 해부 계속합니다. 왼쪽의 장골 포사에있는 큰, 피상적 인 곡절 악센트의 장골의 혈관가-이러한가 묶여 또는 불로 지 졌죠 할 수 있습니다는 자리 잡고 있습니다. 다음주의 내측 절개를 확장하고 만 멀리 왼쪽 직근의 외측 한계로. 핑크에서 가까운 흰색 (그림 3C)이 시점에서 분명한 색깔 변화가있다. 조심스럽게 멸균 식염수 지역을 관개하고 지혈이 지역에 촉촉한 거즈를하기 전에 달성되었는지 확인합니다. </li><li> 반대측 측면에의 절차를 반복하되,이 시간은 t를을 확장리네아 알바 (중간 선) ㅇ. 오른쪽 직근 abdominis의 근육 (그림 3D)의 중심부에 발생하는 모든 musculocutaneous 천공을 확인하고 부식주의하십시오. 이가 제대로 완료되지 않은 경우에는 수술 후 혈종 및 스퓨리어스 결과를 초래할 수 있습니다. 마찬가지로, 지혈을 달성 관개와 제기 플랩에 촉촉한 거즈를 놓습니다. </li><li> 왼쪽 전방 직근의 하연 (그림 3E 및 F)로 돌아갑니다. 본 가장 열등한 구멍을 부식. microscissors를 사용하여 전방 직근 칼집에있는 작은 (약 0.6 cm X 0.6 cm) 창을 삭감하고 그래 페 집게를 곡선 뾰족한 진행합니다. 후방 칼집을 위반하기 전에 근육이 밖으로 얇게 만까지 근육의 옆 가장자리 아래로 천천히 해부 무딘. 그런 다음 집게를 회전 근육의 배는 포셉의 곡선 가장자리 꼭대기과 팁을 중간 마진에서 무료로 될 때까지 내측 해부 무딘. 대략 피드LY 6 포셉의 문턱에 5-0 Ethilon의 CM과 하 직근 칼집을 묶어. 이 단계가 완료되면 myocutaneous 플랩은 하나의 지배적 인 혈관 깊은 우수한 상복부의 혈관에 격리됩니다. 촉촉한 거즈로 커버. </li><li> 부드러운 모서리, (그림 3G)를 가진 타원형으로 실리콘 시트를 잘라. 이러한은 플랩의 fasciocutaneous 부분 아래에 노출 된 영역의 대부분의을 커버하기에 충분히 큰해야한다. 그러나주의는 피부 가장자리 타원형의 긴장과 내측 곡선없이 폐쇄 할 수 있도록주의해야한다는 남아 천공을 통해 방해하는 흐름을 방지하기 위해 다시 페어링해야 ​​할 수도 있습니다. 이것들은 6-0 Vicryl (그림 3H)의 장소에서 봉합된다. 촉촉한 거즈로 커버. </li><li> 간단한 사용하는 것은 열 및 물 손실 (그림 3I을) 줄이기 위해 플랩 &#39;아웃 면목이&#39;5-0 Ethilon의 봉합을 중단. 촉촉한 거즈로 커버. </li><li> 의 왼쪽에있는 우량하게 상처을 확장조류 늑골의 검상 돌기 (그림 3I). 시야를 개선하기 위해 사분면이를 봉합. </li><li> 우수, 왼쪽 전방 직근 칼집을 공개하는 피개 지방을 잘라. 이 칼집에있는 작은 (0.6 cm X 0.6 CM) 창을 (그림 3J) 잘라. 수직으로 단단히 느슨한 섬유로 포장의 경사와 일관성 볼에 근육 섬유 궤도의 변화까지 내측 상처를 확장합니다. </li><li> 이 두 근육 사이에 조심스럽게 곡선 집게를 삽입하고 무딘 절개로 비행기를 엽니 다. 만까지 기본 깊은, 우수한 상복부 동맥 및 정맥 (그림 3K) 표시하려면 왼쪽 직근 abdominis의 근육의 뱃속을 통해 절단이 곡선 포셉의 우수한 표면과 같은주의를 잘라. </li><li> , 운영 현미경 미세 장비 및 높은 전력을 사용하여 조심스럽게 동맥과 정맥을 분리하고 주변의 지방을 제거. </li><li> 에 atraumatic 아클 랜드 클램프를 Apply (적용)rtery 및 정맥 (B-1, &quot;V&quot;유형) 및 30 분 허혈성 기간을 카운트 다운을 타이머를 시작합니다. 고정 경을 관개하고 거즈로 커버. 우리는 이러한 베라파밀이나 pabavarine 같은 혈관 확장기를 사용하지 않았지만, 혈관 경련 문제가 될 것, 이러한 약물이 고려되어야한다. </li><li> 부 프레 노르 핀 (0.04 ㎎ / ㎏) 및 예열, 멸균 생리 식염수를 (1 ML / kg / hr)까지 관리 할 수​​ 있습니다. </li><li> 왼쪽 상단에서 시작, 6-0 Vicryl subcuticular 봉합이 중지 조류 늑골의 검상 돌기에서 하차 매기와 장소에 플랩을 봉합. </li><li> 30 분 허혈 시간이 지나면 조심스럽게 클램프를 제거하고 예열 식염수 경 관개. 그 흐름이 다시 설정되었습니다 확인합니다. 이 허혈성 시간이 UK 홈 오피스 당국에 의해 규정 된되었다 것을주의하시기 바랍니다. 다른 기관에서 근무하는 연구자들은이 시간을 연장 할 수 있습니다. 허혈 시간을 확장하는 것은 가능성이 더 임상 결과로 이어질 것입니다. </li><li> 6-0 Vicryl로 다시 제자리에 직근의 절단 가장자리를 봉합.이가 혈관의 꼬임로 이어질 수 있습니다로 너무 많은 장력을 적용 할하지 않도록주의을 가져 가라. </li><li> (그림 3K) 피부에 아래의 모든 매듭를 묻어에주의을 복용 피하 봉합를 완료합니다. </li><li> 상처 영역을 청소하고 건조 할 수 있습니다. 플랩 영역을 다시 그립니다. </li><li> 수술 후 이미지를 얻기 위해 동물을 다시 스캔합니다. </li><li> 축산 단위로 반환하기 전에 복구 1 시간 동안 예열 인큐베이터 (37 ° C)에서 동물의 눈과 장소에 lacrilube을 다시 적용합니다. </li></ol> 프로토콜에서 중요한 단계 절차의 핵심은 깊고 우수한 상복부의 혈관을 식별합니다. 이 첨부 영화에서 분명하게 표시됩니다. 간단히, 창은 길이 방향으로 실행되는 기본 근육 섬유를 노출 전방 직근 칼집으로 잘라입니다. 내측 근육 섬유 궤도의 변화 전방 직근 칼집의 표면 박리를 확장하여 f를 관찰경사에 평행 ROM. 근육 섬유의 두 묶음의 교차점에 종료, 곡선, 그래 페 집게 (또는 유사) 무딘 삽입합니다. 옆 해부 무딘. 근육 섬유 다발 사이 비행기에서 개최 된 곡선 포셉의 상부 표면에, 마이크로 가위를 사용하여 잘라. 그래 페의 제거에 깊은, 우수한 상복부 동맥 포셉과 정맥 직근 abdominis의 근육 몸의 중간에서 관찰됩니다. 지방 덮고에게 마이크로 악기를 사용하여 혈관을 제거하고 클램프를 적용합니다. 쥐 전차 플랩 fasciocutaneous 부분은 플랩 전체 두께 피부 이식으로 수행 할 수 있도록 허용 할 정도로 얇은입니다. 이 문제를 방지하려면이가 IRI 얇고 유연한 실리콘 시트가 플랩의 fasciocutaneous 부분 아래에 배치됩니다. 35이 단계는 채택 된 쥐 전차 모델을 착수 다른 연구자에 의해. 17,21,25의 진정한 모델인지 확인 쥐 throu의 씹GH 노트, 그래서 모든 봉합이 subcuticular 있는지 확인하고 모든 매듭이 묻혀있다. 다른 연구자에 의해보고 된 피판의 세심한 봉합 autocannabilism을 수행에 방지 할 수 있습니다. 24 부 프레 놀핀의 다음과 같은 관리는 isoflurane을 1 % (1L/min O 2) 유지 보수 마취를 줄일 수 있습니다.

우리는 어떤 공시가 없습니다.

수정 및 문제 해결 여기에 제시 프로토콜은 해당 프로세스의 추가 이해를 가능하게 실험 시스템 무료 조직 전송에서 볼 IRI를 재현 IRI를 개량하고 결과를 개선 수단을 조사 할 수있는 방법을 제공합니다. 그것은 비 지배적 깊은 열등 경 상복부 또는 것은 허혈 시간이 증가 된 경우에 기초한다면 이것은 쉽게 더 심각한 부상을 생산하기 위해 수정할 수 있습니다. <p class="jove_ste...

이 프로토콜의 목적은 중재 전략을 조사 할 수 있도록 할 수있는 방법을 무료 조직 전송에서 관찰 된 허혈 - 재관류 손상의 신뢰성과 재현성 모델을 보여주는 것입니다. 무료 조직 전송받는 사이트에서 네이티브 혈관 절편의 절단하고 혈관의 문합과 그 조직의자가 이식 다음 조직의 고립 된 블록의 혈관 박리로 정의됩니다. 절차는 FTT로 알려져 있고, 조직은 피판이라고 전송되는. 무료 조직 전송은 로컬 옵션 부적합하거나 사용할 수없는 복잡한, 복합 결함의 교정을위한 황금 표준 방법입니다. 1-4 국소 빈혈 reperfusion 상해 (IRI)는, 무료 조직 전송에 피할 수없는 실패 5,6 플랩에 기여하고 더이 효과적인 치료. 피판 수술의 선택 과목 성격은 pharmacologi의 관리를 허용IRI에 대한 전제 조건에 칼 에이전트. 내피 세포 활성화 및 신진 대사 장애에 의한 미세 혈관을 통해 손상된 흐름 IRI 결과, 7 모세 혈관 투과성 및 후속 간질 부종 7, 염증 세포의 유입, 염증 중재자의 8 릴리스, 반응성 산소 종 9 보수 증착 증가했다. 10 저산소증이 복잡한 과정 후속 재관류 손상은 궁극적으로 세포 죽음에 이르게한다. myocutaneous IRI의 모델을 평가하는 임상 결과에 대한 전략을 컨디셔닝의 효과를 가능하게합니다. 최근의 연구는 사람을 대상으로 기존의 동물 실험에서 관찰 된 분자 변화를 비교하여 인간의 IRI에 대한 대리로 IRI 연구의 동물 모델의 사용을 확인했다. 10,11 쥐 가로 rectus의 abdominis의 myocutaneous (TRAM) 플랩은 우선 독일어 12 1993 1987에 설명 된영어 13. 이 모델은 IRI 무료 조직 전송과 관련된 줄이기 위해 다양한 전략을 조사하는 저렴한, 강력한 모델로 폭 넓은 인기를 13-25되었습니다. 이러한 연구 14,17-22 대부분은, 깊은, 열등에 따라 unipedicled 전차 플랩으로 설계되었습니다 . 수술 후 후속의 다른 길이 (2~10일) -이 연구에서 데이터의 상복부의 혈관 경 15-18,20-22 비교는 서로 다른 크기의 피부 섬 (30cm 2 10.5)의 사용에 의해 복잡합니다. 이러한 연구의 제어 팔 평균 총 비율 지역 플랩 괴사는 69 ± 6.2 % (± SEM을 의미)입니다. 그것은이 여섯 신문의 모든 혈관 경을위한 캐리어로 직근 abdominis의 근육을 고용하지만, 분할하고 혈관을 microanastomose 또는 클램프, 노출되지 않도록주의해야한다. 장 등은. 23 우수 상복부의 혈관에 따라 실제, 무료 쥐 전차 플랩을 설명 보유하고있는 F바퀴가 제기 혈관 나누어 myocutaneous 플랩 전송 및 사타구니 혈관 microanastomosed 하였다. 0.5 mm 구경 혈관 -이 어려운 기술은 0.45 microanastomosis을 요구했다. 만 다섯을 수행하고이 67 % 살아 남았다. 23 장 등으로 설명 모델. 그것이 정말 FTT 동안 발생한 부상을 거울로 23 인간의 자유 TRAM 피판을위한 훌륭한 모델입니다.했다 쥐 전차 플랩의 다른 출판 모델은 더 정확하게 인간 pedicled TRAM 동안 발생한 상해를 반영하지만, 정확하게 혈관 고정하거나 분할 절대로 경하고 재관류 다음 허혈성 기간을 거치지 않고 이러한 플랩으로 IRI를 반영하지 않습니다 microanastomosis을 수행했습니다. 이 프로토콜 및 비디오 IRI가 microclamps를 사용하여 복제 된 쥐의 전차를 사용하여 무료 조직 전송의 새로운 모델을 설명합니다. 이보다 충실 경 전차 전임자보다 IRI 복제하지만 performi보다 기술적으로 쉽다NG microanastomosis. Microclamps 널리 IRI 고체 장기 이식과 관련된 다시 이식 연구자들에 의해 사용되어왔다; 26-33 그러나, 이것은이 쥐 전차 플랩에 설명 된 것은 이번이 처음이다.

<table border="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td>Name of Reagent/Material</td>
 <td>Company</td>
 <td>Catalog Number</td>
 <td>Comments</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Moor LD12 laser doppler imaging scanner</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8" target="_blank">http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Complete homeothermic blanket system with flexible probe. Small. 230 VAC, 50 Hz</td>
 <td></td>
 <td>507221F</td>
 <td><a href="http://www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Graeffe forceps 0.8 mm tips curved</td>
 <td></td>
 <td>11052-10</td>
 <td>2, <a href="http://www.finescience.de" target="_blank">http://www.finescience.de</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Acland clamps</td>
 <td></td>
 <td>00398 V</td>
 <td>B-1 'V' pattern clamps used on both artery and vein. <a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Clamp applicator</td>
 <td></td>
 <td>CAF-4</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Gemini cautery unit</td>
 <td></td>
 <td>726067</td>
 <td><a href="www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro-vessel dilators 11 cm 0.3 mm tips 00124</td>
 <td></td>
 <td>D-5a.2</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Jewellers Forceps 11cm angulated 00109</td>
 <td></td>
 <td>JFA-5b</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Jewellers Forceps 11 cm straight 00108</td>
 <td></td>
 <td>JF-5</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Acland Single Clamps B-1V (Pair)</td>
 <td></td>
 <td>396</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro Scissors Round Handles 15 cm Straight</td>
 <td></td>
 <td>67</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Iris Scissors 11.5 cm Curves EASY-CUT</td>
 <td></td>
 <td>EA7613-11</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Mayo Scissors 14 cm Straight Chamfered Blades EASY-CUT</td>
 <td></td>
 <td>EA7652-14</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Derf Needle Holders 12 cm TC</td>
 <td></td>
 <td>703DE12</td>
 <td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Ethilon 5-0</td>
 <td></td>
 <td>W1618</td>
 <td><a href="http://www.farlamedical.co.uk/" target="_blank">http://www.farlamedical.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vicryl rapide 6-0</td>
 <td></td>
 <td>W9913</td>
 <td><a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Instrapac - Adson Toothed Forceps (Extra Fine)</td>
 <td></td>
 <td>7973</td>
 <td><a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Castroviejo needle holders</td>
 <td></td>
 <td>12565-14</td>
 <td><a href="http://s-and-t.ne" target="_blank">http://s-and-t.ne</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Heat Lamp</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.chicken-house.co.uk" target="_blank">http://www.chicken-house.co.uk</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Silicone sheeting 0.3 mm translucent</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.silex.co.uk/" target="_blank">http://www.silex.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Image J software</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Zeiss OPMI pico</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.zeiss.co.uk/" target="_blank">http://www.zeiss.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Operating microscope</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vet tech solution isofluorane rig</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vet tech solution isofluorane rig</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td>
 </tr>
 </tbody>
</table>

in situ transverse rectus abdominis myocutaneous flap: a rat model of myocutaneous ischemia reperfusion injury

무료 조직 전송은 로컬 옵션이나 그 필요한 복합 조직에 순종하지 복잡한 결함을 복구하는 재건 수술의 황금 표준입니다. 허혈 재관류 손상 (IRI)의 부분 피판 실패의 알려진 원인과 효과적인 치료가 없습니다. 이 부상의 실험 모델을 구축하는 것은 비용이 많이 드는 증명할 수있는 재정적으로 큰 포유 동물은 종래 이러한 절차의 기술적 어려움이 일반적으로 경험 microsurgeon을 고용 필요에 의해 사용되는 전문 지식 필요하므로. 이 출판물 및 비디오 미세 전문 지식을 필요로하지 않는 쥐의​​ IRI의 모델을 효율적으로 사용하는 방법을 보여줍니다. 이 절차는 atraumatic 클램프는이 수술과 관련된 허혈 - 재관류 손상을 재현하기 위해 이용되는 가로 abdominis의의 myocutaneous (TRAM) 플랩 현장 모델입니다. 레이저 도플러 영상 (LDI) 스캐너 플랩 관류 및 이미지 프로세싱 softwa를을 평가하기 위해 사용된다다시 부상의 주요 결과 측정 등의 비율 지역 피부 생존을 평가하는 이미지 J.

쥐 모델은 큰 동물 모델보다 더 경제적이며, 36 자연 질병 저항과 유전자 조작 할 수 있습니다. 같은 설치류와 같은 느슨한 피부의 동물, 등 인간과 돼지 같은 고정 피부 동물에 비해 피부의 혈액 공급의 다른 배열을 가지고 생각했다. 느슨한 피부 동물의 피부는 대조적으로 덮고있는 피부 (그림 4)에 피하 지방을 통과하는 직접 피부 혈관이 주로 공급되고, 고정 된 피부 동물 근...

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In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

무료 조직 전송이 널리 종양학 절제술 및 외상 후 형태와 기능을 복원하는 재건 수술에 사용됩니다. 수술하기 전에이 조직을 전처리하는 것은 결과를 향상시킬 수 있습니다. 이 문서에 설명<em&gt; 현장에서</em컨디셔닝 전략을 테스트하기위한 수단으로 쥐&gt; 가로 직근 abdominis의 myocutaneous 플랩 (TRAM).

Myocutaneous 국소 빈혈 reperfusion 상해의 쥐 모델 : 현장 가로 직근 abdominis의 Myocutaneous 플랩의

Free tissue transfer is the gold standard of reconstructive surgery to repair complex defects not amenable to local options or those requiring composite ...

in-situ-transverse-rectus-abdominis-myocutaneous-flap-rat-model

Research

JoVE Journal

Medicine

In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

13.6K 조회수.  Royal Infirmary of Edinburgh. 무료 조직 전송이 널리 종양학 절제술 및 외상 후 형태와 기능을 복원하는 재건 수술에 사용됩니다. 수술하기 전에이 조직을 전처리하는 것은 결과를 향상시킬 수 있습니다. 이 문서에 설명 현장에서 가로 직근 abdominis의 myocutaneous 플랩 (TRAM).

비디오: In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

Normothermic Cardiac Arrest and Cardiopulmonary Resuscitation: A Mouse Model of Ischemia-Reperfusion Injury

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused by whole-body hypoperfusion.5,6 Successful reproduction of whole-body hypoperfusion in rodent models has been fraught with 
difficulty.7-9,9,10 Models which employ focal ischemia have repeatedly demonstrated results which do not translate to the clinical setting, and larger 
animal models which allow for whole body hypoperfusion lack access to the full toolset of genetic manipulation possible in the mouse.11,12 However, in recent 
years a mouse model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation has emerged which can be adapted to model AKI.13 This model reliably reproduces 
physiologic, functional, anatomic, and histologic outcomes seen in clinical AKI, is rapidly repeatable, and offers all of the significant advantages of a murine surgical 
model, including access to genetic manipulative techniques, low cost relative to large animals, and ease of use. Our group has developed extensive experience 
with use of this model to assess a number of organ-specific outcomes in AKI.14,15

A powerful model for perioperative and critical care related acute kidney injury is presented. Using whole body hypoperfusion induced by cardiac arrest it is possible to nearly replicate the histologic and functional changes of clinical AKI.

Normothermic 심장 마비와 심폐 소생술의 : 국소 빈혈 - Reperfusion 상해의 마우스 모델

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

연구

의학

Ischemia-reperfusion Model of Acute Kidney Injury and Post Injury Fibrosis in Mice

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often unreported mortality rates that may confound analyses. Bilateral renal pedicle clamping is commonly used to induce IR-AKI, but differences between effective clamp pressures and/or renal responses to ischemia between kidneys often lead to more variable results. In addition, shorter clamp times are known to induce more variable tubular injury, and while mice undergoing bilateral injury with longer clamp times develop more consistent tubular injury, they often die within the first 3 days after injury due to severe renal insufficiency. To improve post-injury survival and obtain more consistent and predictable results, we have developed two models of unilateral ischemia-reperfusion injury followed by contralateral nephrectomy. Both surgeries are performed using a dorsal approach, reducing surgical stress resulting from ventral laparotomy, commonly used for mouse IR-AKI surgeries. For induction of moderate injury BALB/c mice undergo unilateral clamping of the renal pedicle for 26 min and also undergo simultaneous contralateral nephrectomy. Using this approach, 50-60% of mice develop moderate AKI 24 hr after injury but 90-100% of mice survive. To induce more severe AKI, BALB/c mice undergo renal pedicle clamping for 30 min followed by contralateral nephrectomy 8 days after injury. This allows functional assessment of renal recovery after injury with 90-100% survival. Early post-injury tubular damage as well as post injury fibrosis are highly consistent using this model.

We describe models of moderate and severe ischemia-reperfusion-induced kidney injury in which the mice undergo unilateral renal pedicle clamping followed by simultaneous or delayed contralateral nephrectomy, respectively. These models consistently give rise to renal dysfunction and post-injury fibrosis, but injury severity and survival are dependent on mouse background, age and surgical equipment.

마우스의 급성 신장 손상 및 사후 상해 섬유증의 허혈 - 재관류 모델

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often ...

Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for myocardial infarction and cardiac complications of thoracic surgery. The ability of certain drugs to precondition the myocardium against ischemia reperfusion injury has led to multiple clinical trials, with little success. The isolated heart model allows acute observation of the functional effects of ischemia reperfusion injury in real time, including the effects of various pharmacological interventions administered at any time-point before or within the ischemia-reperfusion injury window. Since brief periods of ischemia can precondition the heart against ischemic injury, in situ aortic cannulation is performed to allow for functional assessment of non-preconditioned myocardium. A saline filled balloon is placed into the left ventricle to allow for real-time measurement of pressure generation. Ischemic injury is simulated by the cessation of perfusion buffer flow, followed by reperfusion. The duration of both ischemia and reperfusion can be modulated to examine biochemical events at any given time-point. Although the Langendorff isolated heart model does not allow for the consideration of systemic events affecting ischemia and reperfusion, it is an excellent model for the examination of acute functional and biochemical events within the window of ischemia reperfusion injury as well as the effect of pharmacological intervention on cardiac pre- and postconditioning. The goal of this protocol is to demonstrate how to perform in situ aortic cannulation and heart excision followed by ischemia/reperfusion injury in the Langendorff model.

The isolated rat heart is an enduring model for ischemia reperfusion injury. Here, we describe the process of harvesting the beating heart from a rat via in situ aortic cannulation, Langendorff perfusion of the heart, simulated ischemia-reperfusion injury, and infarct staining to confirm the extent of ischemic insult.

랑겐 돌프 - 관류 쥐 마음에 유도 및 허혈 - 재관류 손상의 평가

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for ...

Murine Model of Intestinal Ischemia-reperfusion Injury

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, hypotension, necrotizing enterocolitis, bowel transplantation, trauma and chronic inflammation. Intestinal ischemia-reperfusion (IR) injury is a consequence of acute mesenteric ischemia, caused by inadequate blood flow through the mesenteric vessels, resulting in intestinal damage. Reperfusion following ischemia can further exacerbate damage of the intestine. The mechanisms of IR injury are complex and poorly understood. Therefore, experimental small animal models are critical for understanding the pathophysiology of IR injury and the development of novel therapies.
Here we describe a mouse model of acute intestinal IR injury that provides reproducible injury of the small intestine without mortality. This is achieved by inducing ischemia in the region of the distal ileum by temporally occluding the peripheral and terminal collateral branches of the superior mesenteric artery for 60 min using microvascular clips. Reperfusion for 1 hr, or 2 hr after injury results in reproducible injury of the intestine examined by histological analysis. Proper position of the microvascular clips is critical for the procedure. Therefore the video clip provides a detailed visual step-by-step description of this technique. This model of intestinal IR injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Here we describe the detailed procedure of intestinal ischemia-reperfusion in mice which results in reproducible injury without mortality to encourage the standardization of this technique across the field. This model of intestinal ischemia-reperfusion injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

창자 허혈 - 재관류 손상의 쥐 모델

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, ...

A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, diabetic retinopathy, and retinal vascular occlusions. Rodent models of I/R injury are providing significant insights into mechanisms and treatment strategies for human I/R injury, especially with regard to neurodegenerative damage in the retinal neurovascular unit. Presented here is a protocol for inducing retinal I/R injury in mice through elevation of intraocular pressure (IOP). In this protocol, the ocular anterior chamber is cannulated with a needle, through which flows the drip of an elevated saline reservoir. Using this drip to raise IOP above systolic arterial blood pressure, a practitioner temporarily halts inner retinal blood flow (ischemia). When circulation is reinstated (reperfusion) by removal of the cannula, severe cellular damage ensues, resulting ultimately in retinal neurodegeneration. Recent studies demonstrate inflammation, vascular permeability, and capillary degeneration as additional elements of this model. Compared to alternative retinal I/R methodologies, such as retinal arterial ligation, retinal I/R injury by elevated IOP offers advantages in its&#160;anatomical specificity, experimental tractability, and technical accessibility, presenting itself as a valuable tool for examining neuronal pathogenesis and therapy in the retinal neurovascular unit.

This article describes a procedure for inducing retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure in mice. Retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure serves to model human pathologies characterized by compromised oxygen and nutrient delivery in the retina, enabling researchers to examine potential cellular mechanisms and treatments for human diseases of the retinal neurovascular unit.

안압 상승을 통해 망막 허혈 - 재관류 손상의 마우스 모델

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, ...

Evaluation of Coronary Flow Reserve After Myocardial Ischemia Reperfusion in Rats

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via recanalization of the coronary artery is the most effective strategy for reducing the size of ischemic myocardium. The coronary microvasculature cannot be visualized and imaged&#160;in vivo, but there are several invasive and noninvasive techniques that can be used to assess parameters which depend directly on coronary microvascular function. The endothelial function after ischemia reperfusion can be assessed also at the level of the coronary circulation via the coronary flow reserve (CFR).&#160;In this study, peak velocity of left anterior descending (LAD) coronary arteries was measured in rats in vivo via Transthoracic Doppler Echocardiography during resting and stress challenge (induced by Dobutamine). A normal heart can increase its coronary blood flow up to four times above the resting values during stress induction. Following ischemia reperfusion, we found a significantly diminished CFR, which can be used as a marker of coronary microvascular dysfunction. CFR has opened a window on the importance of microvascular dysfunction and has been shown to predict cardiovascular risk independent of whether the severe obstructive disease is present.

Coronary flow reserve (CFR), is defined as the ratio of maximal coronary blood flow to the resting coronary blood flow. We present a protocol for evaluating CFR in rats via ultrasound, which offers the opportunity to predict cardiovascular risk factors in the absence of obstructive coronary disease.

쥐의 심근 허혈 재관류 후 관상 동맥 흐름 예비의 평가

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via ...

Modified Heterotopic Hindlimb Osteomyocutaneous Flap Model in the Rat for Translational Vascularized Composite Allotransplantation Research

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand and face transplants and, more recently, abdominal wall, uterus, and urogenital transplants. Functional outcomes have exceeded initial expectations, and most recipients enjoy an improved quality of life. However, as clinical experience accumulates, chronic rejection and complications from the immunosuppression must be addressed. In many cases where grafts have failed, the causative pathology has been ischemic vasculopathy. <span style="font-size: 11pt; line-height: 115%; font-family: Arial, sans-serif; color: rgb(41, 43, 49); background-image: initial; background-position: initial; background-size: initial; background-repeat: initial; background-attachment: initial; background-origin: initial; background-clip: initial;">The biological mechanisms of the acute and chronic rejection associated with VCA, especially ischemic vasculopathy, are important areas of research. However, due to the very small number of VCA patients, the evaluation of proposed mechanisms is better addressed in an experimental model. Multiple groups have used animal models to address some of the relevant unsolved questions in VCA rejection and vasculopathy. Several model designs involving a variety of species are described in the literature. Here we present a reproducible model of VCA heterotopic hindlimb osteomyocutaneous flap in the rat that can be utilized for translational VCA research. This model allows for the serial evaluation of the graft, including biopsies and different imaging modalities, while maintaining a low level of morbidity.

Vascularized composite allograft offers life-altering benefits to transplant recipients, but the biological causes of graft rejection and vasculopathy remain poorly understood. The rodent surgical model presented here offers a reproducible, clinically relevant model of transplantation, allowing researchers to evaluate rejection events and potential therapeutic strategies to prevent their occurrence.

변형 된 이종 성 복합체 동종 요법 연구에 대 한 쥐에서 변성 이성애 자 골 진 피부 플랩 모델

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand ...

A Pre-clinical Rat Model for the Study of Ischemia-reperfusion Injury in Reconstructive Microsurgery

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many areas of biomedical research due to its cost-effectiveness and its translation to humans. This protocol describes a method to create a preclinical free skin flap model in rats with ischemia-reperfusion injury. The described 3 cm x 6 cm rat free skin flap model is easily obtained after the placement of several vascular ligatures and the section of the vascular pedicle. Then, 8 h after the ischemic insult and completion of the microsurgical anastomosis, the free skin flap develops the tissue damage. These ischemia-reperfusion injury-related damages can be studied in this model, making it a suitable model for evaluating therapeutic agents to address this pathophysiological process. Furthermore, two main monitoring techniques are described in the protocol for the assessment of this animal model: transit-time ultrasound technology and laser speckle contrast analysis.

Here, we describe a pre-clinical animal model for studying the pathophysiology of ischemia-reperfusion injury in reconstructive microsurgery. This free skin flap model based on the superficial caudal epigastric vessels in the rat may also allow for the evaluation of different therapies and compounds to counteract ischemia-reperfusion injury-related damage.

재건 미세 수술에서 허혈 재관류 손상의 연구를위한 전 임상 쥐 모델

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many ...

Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, cardiac stem cell therapy is studied by delivering SCs concurrently with the induction of myocardial injury. However, this approach presents two significant limitations: the early hostile pro-inflammatory ischemic environment may affect the survival of transplanted SCs, and it does not represent the subacute infarction scenario where SCs will likely be used. Here we describe a two-part series of surgical procedures for the induction of ischemia-reperfusion injury and delivery of mesenchymal stem cells (MSCs). This method of stem cell administration may allow for the longer viability and retention around damaged tissue by circumventing the initial immune response. A model of ischemia reperfusion injury was induced in mice accompanied by the delivery of mesenchymal stem cells (3.0 x 105), stably expressing the reporter gene firefly luciferase under the constitutively expressed CMV promoter, intramyocardially 7 days later. The animals were imaged via ultrasound and bioluminescent imaging for confirmation of injury and injection of cells, respectively. Importantly, there was no added complication rate when performing this two-procedure approach for SC delivery. This method of stem cell administration, collectively with the utilization of state-of-the-art reporter genes, may allow for the in vivo study of viability and retention of transplanted SCs in a situation of chronic ischemia commonly seen clinically, while also circumventing the initial pro-inflammatory response. In summary, we established a protocol for the delayed delivery of stem cells into the myocardium, which can be used as a potential new approach in promoting regeneration of the damaged tissue.

Stems cells are continuously investigated as potential treatments for individuals with myocardial damage, however, their decreased viability and retention within injured tissue can impact their long-term efficacy. In this manuscript we describe an alternative method for stem cell delivery in a murine model of ischemia reperfusion injury.

뮤린 모델에서 허혈혈 재관류 부상 후 줄기 세포의 지연 된 자궁 내 납품

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, ...

Organ Ischemia-Reperfusion Injury by Simulating Hemodynamic Changes in Rat Liver Transplant Model

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, including ischemia-reperfusion injury (IRI) of extrahepatic organs. This model requires numerous experiments and devices. The duration of anhepatic phase is closely related to the time to develop IRI after transplantation. In this experiment, we used hemodynamic changes to induce extrahepatic organ damage in rats and determined the maximum tolerance time. The time until the most severe organ injury varied for different organs. This method can easily be replicated and can also be used to study IRI of the extrahepatic organs after liver transplantation.

This paper provides a detailed description of how to build an animal model of the anhepatic phase (liver ischemia) in rats to facilitate basic research into ischemia-reperfusion injury after liver transplantation.

쥐 간 이식 모형에 있는 혈역학적인 변경을 시뮬레이션하여 기관 허혈-재관류 상해

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, ...