著者は、原稿を校正するためのデータと博士B.Grötschを製造するための博士J・ルターとK. Ubietaを親切に感謝したいと思います。この作品は、ドイツ学術協会（BO3811 / 1-1-エミー・ネーター）によってサポートされていました。

<ol>
	<li>Gong, Z., Muzumdar, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pancreatic+function,+type+2+diabetes,+and+metabolism+in+aging.">Pancreatic function, type 2 diabetes, and metabolism in aging.</a> Int J Endocrinol. , 320482 (2012).</li><li>Deng, Y., Scherer, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipokines+as+novel+biomarkers+and+regulators+of+the+metabolic+syndrome.">Adipokines as novel biomarkers and regulators of the metabolic syndrome.</a> Ann N Y Acad Sci. 1212, 1-19 (2010).</li><li>Rezaee, F., Dashty, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+Adipose+Tissue+in+Metabolic+System+Disorders+Adipose+Tissue+is+the+Initiator+of+Metabolic+Diseases.">Role of Adipose Tissue in Metabolic System Disorders Adipose Tissue is the Initiator of Metabolic Diseases.</a> J Diabetes Metab. , 008 (2013).</li><li>Rutkowski, J. M., Stern, J. H., Scherer, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cell+biology+of+fat+expansion.">The cell biology of fat expansion.</a> J Cell Biol. 208, 501-512 (2015).</li><li>Ma, X., Lee, P., Chisholm, D. J., James, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Control+of+adipocyte+differentiation+in+different+fat+depots;+implications+for+pathophysiology+or+therapy.">Control of adipocyte differentiation in different fat depots; implications for pathophysiology or therapy.</a> Front Endocrinol (Lausanne). 6, 1 (2015).</li><li>Farmer, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcriptional+control+of+adipocyte+formation.">Transcriptional control of adipocyte formation.</a> Cell Metab. 4, 263-273 (2006).</li><li>Luther, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Elevated+Fra-1+expression+causes+severe+lipodystrophy.">Elevated Fra-1 expression causes severe lipodystrophy.</a> J Cell Sci. 124, 1465-1476 (2011).</li><li>Luther, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fra-2/AP-1+controls+adipocyte+differentiation+and+survival+by+regulating+PPARgamma+and+hypoxia.">Fra-2/AP-1 controls adipocyte differentiation and survival by regulating PPARgamma and hypoxia.</a> Cell Death Differ. , (2014).</li><li>Semenza, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+mammalian+O2+homeostasis+by+hypoxia-inducible+factor+1.">Regulation of mammalian O2 homeostasis by hypoxia-inducible factor 1.</a> Annu Rev Cell Dev Biol. 15, 551-578 (1999).</li><li>Kim, W., Kaelin, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+von+Hippel-Lindau+tumor+suppressor+protein:+new+insights+into+oxygen+sensing+and+cancer.">The von Hippel-Lindau tumor suppressor protein: new insights into oxygen sensing and cancer.</a> Curr Opin Genet Dev. 13, 55-60 (2003).</li><li>Aragones, J., Fraisl, P., Baes, M., Carmeliet, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oxygen+sensors+at+the+crossroad+of+metabolism.">Oxygen sensors at the crossroad of metabolism.</a> Cell Metab. 9, 11-22 (2009).</li><li>Sun, K., Halberg, N., Khan, M., Magalang, U. J., Scherer, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+inhibition+of+hypoxia-inducible+factor+1alpha+ameliorates+adipose+tissue+dysfunction.">Selective inhibition of hypoxia-inducible factor 1alpha ameliorates adipose tissue dysfunction.</a> Mol Cell Biol. 33, 904-917 (2013).</li><li>Imai, T., Jiang, M., Chambon, P., Metzger, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impaired+adipogenesis+and+lipolysis+in+the+mouse+upon+selective+ablation+of+the+retinoid+X+receptor+alpha+mediated+by+a+tamoxifen-inducible+chimeric+Cre+recombinase+(Cre-ERT2)+in+adipocytes.">Impaired adipogenesis and lipolysis in the mouse upon selective ablation of the retinoid X receptor alpha mediated by a tamoxifen-inducible chimeric Cre recombinase (Cre-ERT2) in adipocytes.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 224-228 (2001).</li><li>Clegg, D. J., Brown, L. M., Woods, S. C., Benoit, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gonadal+hormones+determine+sensitivity+to+central+leptin+and+insulin.">Gonadal hormones determine sensitivity to central leptin and insulin.</a> Diabetes. 55, 978-987 (2006).</li><li>Haluzik, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+background+(C57BL/6J+versus+FVB/N)+strongly+influences+the+severity+of+diabetes+and+insulin+resistance+in+ob/ob+mice.">Genetic background (C57BL/6J versus FVB/N) strongly influences the severity of diabetes and insulin resistance in ob/ob mice.</a> Endocrinology. 145, 3258-3264 (2004).</li><li>Chomczynski, P., Sacchi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-step+method+of+RNA+isolation+by+acid+guanidinium+thiocyanate-phenol-chloroform+extraction.">Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction.</a> Analytical biochemistry. 162, 156-159 (1987).</li><li>Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NIH+Image+to+ImageJ:+25+years+of+image+analysis.">NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis.</a> Nat Methods. 9, 671-675 (2012).</li><li>Planat-Benard, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasticity+of+human+adipose+lineage+cells+toward+endothelial+cells:+physiological+and+therapeutic+perspectives.">Plasticity of human adipose lineage cells toward endothelial cells: physiological and therapeutic perspectives.</a> Circulation. 109, 656-663 (2004).</li><li>Kusminski, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MitoNEET-driven+alterations+in+adipocyte+mitochondrial+activity+reveal+a+crucial+adaptive+process+that+preserves+insulin+sensitivity+in+obesity.">MitoNEET-driven alterations in adipocyte mitochondrial activity reveal a crucial adaptive process that preserves insulin sensitivity in obesity.</a> Nat Med. 18, 1539-1549 (2012).</li><li>Trajcevski, K. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhanced+lipid+oxidation+and+maintenance+of+muscle+insulin+sensitivity+despite+glucose+intolerance+in+a+diet-induced+obesity+mouse+model.">Enhanced lipid oxidation and maintenance of muscle insulin sensitivity despite glucose intolerance in a diet-induced obesity mouse model.</a> PLoS One. 8, 71747 (2013).</li><li>Montgomery, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+strain-dependent+variation+in+obesity+and+glucose+homeostasis+in+response+to+high-fat+feeding.">Mouse strain-dependent variation in obesity and glucose homeostasis in response to high-fat feeding.</a> Diabetologia. 56, 1129-1139 (2013).</li><li>de Queiroz, K. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+mechanism+driving+retroperitoneal+adipocyte+hypertrophy+and+hyperplasia+in+response+to+a+high-sugar+diet.">Molecular mechanism driving retroperitoneal adipocyte hypertrophy and hyperplasia in response to a high-sugar diet.</a> Mol Nutr Food Res. 58, 2331-2341 (2014).</li><li>Ye, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Emerging+role+of+adipose+tissue+hypoxia+in+obesity+and+insulin+resistance.">Emerging role of adipose tissue hypoxia in obesity and insulin resistance.</a> Int J Obes (Lond). 33, 54-66 (2009).</li><li>Xiong, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+local+corticotropin-releasing+hormone+receptor+2+signalling+pathway+partly+mediates+hypoxia-induced+increases+in+lipolysis+via+the+cAMP-protein+kinase+A+signalling+pathway+in+white+adipose+tissue.">The local corticotropin-releasing hormone receptor 2 signalling pathway partly mediates hypoxia-induced increases in lipolysis via the cAMP-protein kinase A signalling pathway in white adipose tissue.</a> Mol Cell Endocrinol. 392, 106-114 (2014).</li><li>Bozec, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Osteoclast+size+is+controlled+by+Fra-2+through+LIF/LIF-receptor+signalling+and+hypoxia.">Osteoclast size is controlled by Fra-2 through LIF/LIF-receptor signalling and hypoxia.</a> Nature. 454, 221-225 (2008).</li><li>Varia, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pimonidazole:+a+novel+hypoxia+marker+for+complementary+study+of+tumor+hypoxia+and+cell+proliferation+in+cervical+carcinoma.">Pimonidazole: a novel hypoxia marker for complementary study of tumor hypoxia and cell proliferation in cervical carcinoma.</a> Gynecol Oncol. 71, 270-277 (1998).</li><li>Park, M. H., Choi, K. Y., Jung, Y., Min do, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phospholipase+D1+protein+coordinates+dynamic+assembly+of+HIF-1alpha-PHD-VHL+to+regulate+HIF-1alpha+stability.">Phospholipase D1 protein coordinates dynamic assembly of HIF-1alpha-PHD-VHL to regulate HIF-1alpha stability.</a> Oncotarget. 5, 11857-11872 (2014).</li><li>Tennant, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reactivating+HIF+prolyl+hydroxylases+under+hypoxia+results+in+metabolic+catastrophe+and+cell+death.">Reactivating HIF prolyl hydroxylases under hypoxia results in metabolic catastrophe and cell death.</a> Oncogene. 28, 4009-4021 (2009).</li><li>Kim, J., So, D., Shin, H. W., Chun, Y. S., Park, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HIF-1alpha+Upregulation+due+to+Depletion+of+the+Free+Ubiquitin+Pool.">HIF-1alpha Upregulation due to Depletion of the Free Ubiquitin Pool.</a> Journal of Korean medical science. 30, 1388-1395 (2015).</li><li>Amelio, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TAp73+opposes+tumor+angiogenesis+by+promoting+hypoxia-inducible+factor+1alpha+degradation.">TAp73 opposes tumor angiogenesis by promoting hypoxia-inducible factor 1alpha degradation.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112, 226-231 (2015).</li><li>Suga, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipose+tissue+remodeling+under+ischemia:+death+of+adipocytes+and+activation+of+stem/progenitor+cells.">Adipose tissue remodeling under ischemia: death of adipocytes and activation of stem/progenitor cells.</a> Plast Reconstr Surg. 126, 1911-1923 (2010).</li><li>Moreno-Indias, I., Tinahones, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impaired+adipose+tissue+expandability+and+lipogenic+capacities+as+ones+of+the+main+causes+of+metabolic+disorders.">Impaired adipose tissue expandability and lipogenic capacities as ones of the main causes of metabolic disorders.</a> J Diabetes Res. 2015, 970375 (2015).</li><li>Keuper, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+inflammatory+micro-environment+promotes+human+adipocyte+apoptosis.">An inflammatory micro-environment promotes human adipocyte apoptosis.</a> Mol Cell Endocrinol. 339, 105-113 (2011).</li><li>Sera, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hematopoietic+stem+cell+origin+of+adipocytes.">Hematopoietic stem cell origin of adipocytes.</a> Experimental hematology. 37, 1108-1120 (2009).</li><li>Zuk, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multilineage+cells+from+human+adipose+tissue:+implications+for+cell-based+therapies.">Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies.</a> Tissue engineering. 7, 211-228 (2001).</li><li>Zuk, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+adipose+tissue+is+a+source+of+multipotent+stem+cells.">Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells.</a> Molecular biology of the cell. 13, 4279-4295 (2002).</li><li>Scherer, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipose+tissue:+from+lipid+storage+compartment+to+endocrine+organ.">Adipose tissue: from lipid storage compartment to endocrine organ.</a> Diabetes. 55, 1537-1545 (2006).</li></ol>

著者らは、開示することは何もありません。

脂肪細胞は、過栄養5に起因する過剰なエネルギー貯蔵により誘導される脂肪細胞の過形成および肥大を、明らかにし、その大きさ、数および面積によって表現型を特徴とします。脂肪酸の調節不全とその後のメタボリック症候群につながるこれらのイベントはまた、「健康な」脂肪拡張と呼ばれる保存代謝と増加脂肪塊の状態です。例えば、Kusminski ら 21は、大量の脂肪の膨張を有するマウスが脂肪拡大は必ずしもメタボリックシンドロームにリンクされ、脂肪細胞の特性を評価するために慎重に決定する必要がないことを示唆する、代謝的に健康なままであることを示しました。脂肪組織（AT）は、身体の代謝の調節において重要な役割を果たしています。 ATは、脂質異常症、アテローム性動脈硬化症、高インスリン血症および高血糖症3に影響を与える可能性が最大の内分泌器官です。恒常性と分子メートルATの評価それを規制echanismsは、代謝系疾患のより良い理解を可能性があります。したがって、脂肪細胞分化を調節するメカニズムを解明、脂肪細胞のサイズおよび脂肪パッド質量は、肥満障害のための新たな治療的処置を開発するために役立つだろう。 インビボおよびインビトロ方法で使用することにより、脂肪細胞分化および活性の食品および遺伝子発現への影響の役割を決定することが可能です。 ATの恒常性を決定するために、我々のプロトコルによって示唆されているように、脂肪細胞の分化、増殖およびアポトーシスの間のバランスを決定することは、グルコースおよびインスリンの代謝反応22-24の分析と同様に重要です。 発現プロファイリングは、一次脂肪細胞における脂肪生成、脂質生成、脂肪分解、脂肪酸の取り込み、低酸素症、アポトーシスおよび増殖に関与する遺伝子の解析と内臓ATは、脂肪細胞の恒常性とその可能性機能障害の概要を取得するためのハイスループット法です。興味深い候補は、さらにウエスタンブロットまたは免疫組織染色によりタンパク質レベルで分析する必要があります。非対称シアニン色素を用いてリアルタイムPCRシステムを介して最適な結果を得るために、1から10 ngの範囲のcDNAの濃度は、50から900nmの範囲の最適なプライマー濃度は、非特異的増幅を最小限にするために試験されるべきです。重要なコンポーネントは、プライマーです。各実験のために、融解曲線は、厳密な特異性を確保し、プライマーダイマーの形成を排除するように制御される必要があります。そのため、代わりにcDNAのH 2 Oでネガティブコントロールを使用することをお勧めします。また、市販の非対称シアニン色素は、内部基準信号を提供するために（例えば、ROXなど）、パッシブリファレンス色素を含有するマスターミックスとして提供されます。 cDNAの信号は、ウェル間の信号の変動を補正するROX信号にデータ分析中に正規化されます。もう一つのポイントは、グーを確立するために考慮されますD定量PCRシステムは、ハウスキーピング遺伝子の選択です。各条件について、いくつかのハウスキーピング遺伝子が使用されている、 例えば、HPRT、β アクチン 、GAPDH、β-2-MGまたはHSP90。 低酸素条件によって安定化されたHIFタンパク質は、マスターだけでなく、脂肪細胞生存率を決定する制御因子でなく、例えばグルコース、インスリン耐性及び脂質代謝11,25,26などの代謝の変化です。脂肪パッドに低酸素領域を確認するには、HIF-1αは、免疫組織化学によるセクションATで決定されます。 HIFタンパク質は急速に正常酸素条件下で5〜10分以内に分解されるので、手順及び組織学的分析のために脂肪パッドの固定を強固に待ち時間を回避するように制御されるべきです。したがって、だけでなくHIF染色を介して低酸素症を確実にするために、ピモニダゾールは、ATにおける低酸素領域を決定するために使用されます。それはすでに骨27に示されたようにピモニダゾールは、組織内に配布することができ、、かつ効果的にさらに28を特異的抗体結合によって、組織切片中に検出された特異的低酸素細胞中のチオール含有タンパク質に結合することによって、低酸素領域をマーク。しかしながら、他のマーカーおよび方法は、低酸素経路を分析するために使用することができます。例えば、ヒドロキシル化プロリンを認識し、プロテアソームHIFを媒介するポリユビキチン化を誘導正常酸素下でのプロリン残基のヒドロキシル化を誘導するプロリルヒドロキシラーゼ（PHD）酵素、ならびにフォン・ヒッペル - リンダウ（VHL）タンパク質の関与劣化は、経路29,30の完全な概要について分析する必要があります。また、HIFSのユビキタス検出はまた、31,32を変更することができ、タンパク質の安定性および分解を決定するであろう。 また、TUNEL染色によるのKi67による増殖とアポトーシスは、AT組織切片の染色を介して生体内で決定されます。 Ki67のとAによる増殖の定量化フローサイトメトリー分析を通じTUNELまたはアネキシンV染色によるpoptosisも33で実施されます。増殖はもちろんのKi67陽性細胞の測定によって対処されていないような脂肪細胞周期の分析のような他の技術によって測定することができます。 FACSは、アポトーシス細胞死のプロセス対壊死のレベルを決定するアネキシンVとTOP-PR-3の分析によってまた、TUNELによるアポトーシスの研究を完成させることができます。アポトーシスは、ATの恒常性に重要である、細胞死のプログラムの基本的な過程です。確かに、脂肪細胞のアポトーシスの調節不全は、肥満や脂肪異栄養症34に貢献する過程で以前に関与しています。また、2011年には、Keuper ら脂肪細胞のアポトーシスに脂肪組織の炎症をリンクされています。それらは順番にマクロファージを誘引する、マクロファージが前脂肪細胞および脂肪細胞においてアポトーシスを誘導することが示されました。マクロファージの動員は、炎症、CONTRを加速しますこのようなグルコースおよびインスリン寛容35としてメタボリックシンドロームにibutes。しかし、脂肪細胞のアポトーシスが誘導された脂肪細胞のアポトーシスが減少した体重につながる可能性の仮説にもかかわらず、まだよく研究された現象です。 現在のプロトコルは、in vivoでの増殖、アポトーシスおよび低酸素症などのさまざまな現象を研究するために免疫組織化学的手法を使用しています。したがって、組織は重要なステップである4％ホルムアルデヒドで固定しました。拡張された組織固定時間は、抗体のための非アクセス可能となるエピトープの変化をもたらします。対照的に、短い固定時間は、試薬のエピトープの感受性を増加させます。固定の推奨最適な時間は24時間です。また、切片の厚さは、それらのエピトープに結合する抗体に影響を及ぼす。最適な厚さは2から5μmの間です。 5ミクロンより厚い部分は、増加した結合部位に偽陽性の結果が得られます。対照的に、よections薄い2μmよりは少ない結合部位を含有し、正の領域が十分に定義されていません。さらに重要な要素は、エピトープへの特異的結合の品質に影響を与える抗体自体、インキュベーション時間、濃度、さらに温度があります。したがって、抗体濃度およびインキュベーション時間を検証すると、各条件のために必要です。 調査を完了するために、我々は、異なる処理、刺激または共培養することによって拡張することができ、インビトロ脂肪細胞分化プロトコルを提供します。 インビトロで脂肪細胞の培養に用いることにより、脂肪細胞分化及び機能における欠陥を決定することが可能です。信頼性の高い結果を得るためには、すべての主要な細胞用として、ADSCをおよび脂肪細胞の健全な動作と外観は非常に重要です。粒度、細胞質vacuolationsおよび/または剥離は、一次の不十分な媒体であって、微生物汚染や老化を示す劣化の兆候であり、細胞。他のプロトコル36で説明したように、骨髄から単離された間葉系幹細胞を使用することも可能であるのに対し、このプロトコルは、脂肪体組織から単離された脂肪細胞を使用しています。最新の脂肪細胞分化の非常に早い段階で発生する追加の分化の問題を反映しているのかもしれない間質前駆細胞を、含まれ、これは、当社の現在のプロトコルでは見逃される可能性があります。また、ADSCをは急速に（1週間以内に10回以上）に拡張することができ、いくつかの継代後の長期培養したADSCはまだ彼らの間葉系多能性37,38を保持しています。 ADSCをを使用して、もう一つの利点は、ADSCを簡単かつ低侵襲性の方法である脂肪吸引により患者から採取することができるので、一つは簡単に、人間に切り替えることができるということです。 ATは内分泌方法でいくつかの他の臓器に影響を与えるように、プロトコルは、アディポカインに延長すべきです。このようなレプチン、アディポネクチン、腫瘍壊死因子α（TNF）Aとアディポカイン、ND脂肪細胞によって分泌されるレジスチンは、脂肪代謝、エネルギー恒常性およびインスリン感受性39を制御することにより、代謝性疾患に影響を与えることが知られています。したがって、血清および脂肪細胞secretome分析が行われるべきです。 AT機能不全、アディポカインならびにIL-6などの炎症性サイトカインの場合において、例えば肝臓や膵臓などの器官の調節不全につながる、および筋肉機能の4ことができます。全身の臓器不全を排除するために、動物モデルまたは細胞培養物はグルコース刺激および取り込みに対するそれらの応答について試験することができます。 ここでは、ATおよびインビボにおける脂肪細胞の基本的な状態を分析するためのプロトコルを提供し、 インビトロで脂肪細胞の恒常性と機能性の分子機構を明らかにします。

世界保健機関（WHO）から2014年の報告によると、世界の成人人口の39％が太りすぎであり、13％は1肥満です。近い将来、太りすぎの人々は、高齢者人口のかなりの割合を含むことになります。肥満および老化の重要な特徴は、罹患率および死亡率2に関連して脂肪の調節不全です。アディポカイン、脂肪組織（AT）によって分泌されるタンパク質は、肥満などの代謝症候群を誘発し、2型糖尿病3を入力することができます 。代謝性疾患は、主に拡張4 ATで、その結果、脂肪細胞の脂肪滴の過剰なエネルギー貯蔵、によって引き起こされます。それを制御するための機会を見つけるために原因と拡張ATの分子機構を決定することは興味深いことです。 脂肪細胞の脂肪滴に過剰なエネルギー貯蔵プロセス：過栄養二つの事象により調節されるATの拡大につながり肥大（脂肪細胞のサイズの増大）につながる、とも脂肪細胞の肥大5として知られ、脂肪生成を増加させました。脂肪生成は、脂肪細胞への多分化間葉系幹細胞（MSC）の分化の過程です。まず、MSCはコミットメントフェーズ中に前駆脂肪細胞へと発展します。第二に、前脂肪細胞は、さらに成熟した機能的な脂肪細胞6の特徴を獲得するために分化します。いくつかの転写因子は、亜鉛フィンガータンパク質423（Zfp423）および早期B細胞因子1（EBF1）として、前脂肪細胞の決意のマスター調節因子として同定されています。 Zfp423は早期のコミットメントを誘導するのに対し、EBF1は、脂肪細胞の前駆細胞6の生成に必要とされます。分化はしっかりペルオキシソーム増殖因子活性化受容体γ（PPARγ）は、必須の転写因子7となる転写カスケードによって制御されます。さらに重要な転写因子はCCAAT /エンハンサー結合タンパク質（Cです/ EBP）ファミリーのメンバー（ すなわち 、C /EBPα、C /EBPβ、およびC /EBPδ）、クルッペル様因子（KLFs）、cAMP応答エレメント結合タンパク質（CREB）および早期成長応答20（Krox20）6。 最近では、アクチベータータンパク質-1（AP-1）ファミリーは、脂肪細胞の分化プロセス8,9に関与することが示されています。 AP-1ファミリーはフォス、Junおよび/または活性化転写因子（ATF）のメンバーからなる二量体タンパク質複合体により形成されます。 FOS関連抗原1および2（FRA-1とフラ-2）脂肪細胞の分化を調節することができます。フラ-1はFRA - 2コントロール脂肪細胞のターンオーバー9のに対し、C /EBPα8を阻害することにより、脂肪細胞分化を阻害します。フラ-2は、それによってだけでなく、脂肪細胞分化の間にPPARγ2の発現を抑制することにより、脂肪細胞の数が減少するだけでなく、低酸素誘導因子（HIFS）式の直接の抑制を介して脂肪細胞のアポトーシスを減少させます。 HIFファミリーはHETEですHIF-1α、HIF-2αとHIF-1βから成るrodimeric転写因子複合体、。ヘテロは、酸素感受性HIF-αタンパク質（HIF-1αまたはHIF-2α）と酸素と小文字を区別しないHIF-1βサブユニット10から構成されています。酸素正常状態の間に、HIF-αタンパク質は、ポリユビキチン化され、最終的にプロテアソーム11によって分解されます。低酸素条件下では、拡張時にATで発生する、HIF-αタンパク質は、もはや、ヒドロキシル化されません。したがって、これらは、恒常的に発現するHIF-1βで安定化し、フォームダイマーになります。 HIF応答要素によって制御される遺伝子の転写活性化は、血管形成、代謝、炎症12の調節に関与しています。確かに、HIF-1αは、エネルギー消費や脂質の末梢利用を阻害し、グルコース耐性を誘導することにより、同様にレプチンレベルとHFD誘発性脂肪肝13を増加させることにより機能不全AT推進しています。また、HIF-1αはadipocyを調節しますテアポトーシスのin vivoおよびin vitro 9インチ 現在のプロトコルは、成体マウスに脂肪細胞の恒常性の分子的特徴を解明する状態で勉強するための方法を説明します。これは、 インビボおよびインビトロで脂肪細胞のアポトーシス、増殖および分化は、低酸素によって調節することができる方法を示しています。そうするために、我々は、FABP4-CreERTマウス9とフラ-2フロックス対立遺伝子を持つマウスを交配させることによって生成されたフラ-2の脂肪細胞特異的欠失を有するマウスを使用します。 FABP4-CreをERTマウスを使用することにより、削除は、脂肪細胞タモキシフェン注射14による特定および誘導性です。大人のモデルでは、タモキシフェンの腹腔内注射は6週齢で始まる連続5日間にわたって行われています。分析が行われる前に、このように、マウスを6週間、通常食または高脂肪食に供します。本研究で用いたマウスは、雄のようなエストロゲンなどの女性ホルモンを避けるためにのC57BL6背景に基づいていました、体脂肪分布15を調節することが示さ。別の遺伝的背景を使用すると、脂質管理16の歪み関連の違いに起因する代謝表現型を、変更される場合があります。 このプロトコルは、組織学を用いて、低酸素下でATを分析する方法および免疫組織化学とプロファイリング分析遺伝子を用いたin vivoでの脂肪細胞のアポトーシス、増殖および分化を定量化する方法を示しています。研究は、低酸素に暴露することによって変更された一次脂肪細胞分化及びアポトーシスを分析する方法を示す、 インビトロ実験によって完成されます。

<table><tbody><tr><td>RNAlater solution</td><td>Ambion</td><td>AM7021</td><td>RNA stabilization solution</td></tr><tr><td>High-Capacity cDNA Reverse Transcription Kit</td><td>Applied Biosystems</td><td>4368813</td><td></td></tr><tr><td>SYBR Select Master Mix</td><td>4472908</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Purified Mouse Anti-Human Ki-67</td><td>BD Biosciences</td><td>550609</td><td>Clone B56 (RUO)</td></tr><tr><td>Purified Mouse Anti-Human Ki-67 Clone B56 (RUO)</td><td>550609</td><td>Proliferation marker</td><td></td></tr><tr><td>FITC Annexin V</td><td>BioLegend</td><td>640906</td><td></td></tr><tr><td>Cleaved Caspase-3 Rabbit mAb</td><td>Cell signalling</td><td>9664S</td><td>Clone 5A1E</td></tr><tr><td>Cleaved Caspase-3 (Asp175) (5A1E) Rabbit mAb</td><td>9664</td><td>Apoptosis marker</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine2000 Reagent&amp;nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>11668-027</td><td></td></tr><tr><td>TO-PRO-3 Iodide</td><td>T3605</td><td>Nuclear counterstain, Monomeric cyanine nucleic acid stain, Excitation&amp;frasl;Emission: 642&amp;frasl;661 nm</td><td></td></tr><tr><td>Mayer&amp;rsquo;s hemalum</td><td>Merck</td><td>109249</td><td>hematoxylin</td></tr><tr><td>pegGOLD TriFast</td><td>Peqlab</td><td>30-2030</td><td>TRIzol, single-phase solution of guanidine isothiocyanate and phenol</td></tr><tr><td>Percellys Ceramic Kit 1.4&amp;nbsp;mm</td><td>91-PCS-CK14</td><td>tubes containing ceramic beads (1.4 mm)</td><td></td></tr><tr><td>Precellys 24</td><td>91-PCS24</td><td>homogenizer</td><td></td></tr><tr><td>HIF-1 alpha Antibody</td><td>Pierce</td><td>PA1-16601</td><td></td></tr><tr><td>HIF-1 alpha Antibody, 16H4L13</td><td>700505</td><td>Hypoxia marker</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;In Situ&lt;/em&gt; Cell Death Detection Kit, Fluorescein</td><td>Roche</td><td>11 684 795 001</td><td>TdT-mediated dUTP-biotin nick end labeling (TUNEL)&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Eosin</td><td>Sigma</td><td>318906</td><td></td></tr><tr><td>DNase I Solution (1&amp;nbsp;unit/&amp;micro;l)</td><td>Thermo Scientific</td><td>EN0525</td><td></td></tr><tr><td>biotinylated anti mouse IgG (H+L)</td><td>Vector Laboratories</td><td>BA-9200</td><td></td></tr><tr><td>biotinylated anti mouse IgG (H+L)</td><td>BA-1000</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vectastain ABC Kit</td><td>PK-4000</td><td></td><td></td></tr><tr><td>VECTASHIELD Mounting Medium with DAPI</td><td>H-1200</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

mechanism of regulation of adipocyte numbers in adult organisms through differentiation and apoptosis homeostasis

Considering that adipose tissue (AT) is an endocrine organ, it can influence whole body metabolism. Excessive energy storage leads to the dysregulation of adipocytes, which in turn induces abnormal secretion of adipokines, triggering metabolic syndromes such as obesity, dyslipidemia, hyperglycemia, hyperinsulinemia, insulin resistance and type 2 diabetes. Therefore, investigating the molecular mechanisms behind adipocyte dysregulation could help to develop novel therapeutic strategies. Our protocol describes methods for evaluating the molecular mechanism affected by hypoxic conditions of the AT, which correlates with adipocyte apoptosis in adult mice. This protocol describes how to analyze AT in vivo through gene expression profiling as well as histological analysis of adipocyte differentiation, proliferation and apoptosis during hypoxia exposure, ascertained through staining of hypoxic cells or HIF-1&#945; protein. Furthermore, in vitro analysis of adipocyte differentiation and its responses to various stimuli completes the characterization of the molecular pathways behind possible adipocyte dysfunction leading to metabolic syndromes.

我々は、野生型同腹子と比較して、フラ-2 FL / FL FABP4-CreERTマウスの例を用いて、 インビボおよびインビトロで脂肪細胞の恒常性を決定する方法を示しています。私たちのプロトコルが増加し、脂肪細胞のアポトーシスによって示されるように、低酸素状態によって増加したHIFの発現が脂肪細胞の機能不全と相関する方法を定義します。 高脂肪食で増加した脂肪細胞の大きさや面積（HFD）で処置したマウス過栄養、他の要因の中で、脂肪滴に過度のエネルギー蓄積によって引き起こされる、脂肪細胞の肥大をもたらします。脂肪細胞の大きさおよび面積は、肥大の指標です。正常からの脂肪パッドのセクション（ND; 図6a）と高脂肪食（HFD; 図6b）が 6週間後に、脂肪細胞の大きさや面積のマウスと同様に定量化が明確に示す脂肪細胞の肥大HFD処置したマウス（ 図6cおよびd）に増加した脂肪細胞のサイズによって示されHFDの秒。 増加し、成人の脂肪組織（AT）における低酸素フラ-2 FL / FL FABP4-CreERTマウスが増加し、HIF-1αレベルと脂肪細胞のアポトーシスに導きます ATで低酸素症のin vivoでの状態を決定するために、フラ-2 FL / FL FABP4-CreERTマウス6週、12週齢でフラ-2削除後に分析し、野生型同腹子と比較しています。ピモニダゾールは、効果的な低酸素症マーカーとしてマウスの腹腔内に投与されます。それは無毒でATに配布することが可能です。 in vivoでの ATで低酸素脂肪細胞を免疫組織化学的抗体染色（ 図7a）によって定義されています。また、マウスでのATの増加、低酸素状態が増加したHIF-1αの正ADIPを伴っていますHIF-1αの発現レベルとその標的遺伝子9の定量化によって確認された免疫組織染色図7B）によって示されるようにocytes。さらに、脂肪細胞のアポトーシスは、低酸素およびHIF-1α発現の存在と相関しているの増加フラ-2 FL / FL FABP4-CreERTマウスおよび対照同腹子からAT切片のTUNEL染色（ 図7c）を示しています。 低酸素誘導性の脂肪細胞のアポトーシスを介して一次脂肪細胞におけるHIF-1αの発現を増加させました他の場所で20説明したように、in vitroで脂肪細胞のアポトーシスを分析するために、我々は、皮下脂肪パッドから生成された脂肪細胞を使用しています。予想されたように、脂肪細胞におけるHIF-1αの発現は、低酸素（ 図8a）の24時間後に増加されます。さらに、HIF-1α活動、HIF標的のRNAレベルを分析するために、このようなイノス（誘導型一酸化窒素合成酵素）などの遺伝子を定量PCRによって定量化されている。 図8bは、低酸素条件下でHIF-1αの発現増加がアイノスmRNAレベルの増加につながることを示しています。我々はすでに、in vivoで示されているので、脂肪細胞におけるHIF-1αの発現を増加させた（ 図8）が増加した脂肪細胞のアポトーシスと相関し、アポトーシスはまた、低酸素条件下でアネキシンV染色によりin vitroでの培養において定量化されます。 in vivoデータ（ 図7）と一致して、増加したHIF-1αレベルは、低酸素状態（ 図8b）によって誘発される増加した脂肪細胞のアポトーシスを伴っています。また、その低酸素誘導性アポトーシスを証明するためには、HIF-依存します。 HIF-1αまたはHIF-2αは、野生型またはフラ-2欠損マウス由来の脂肪細胞におけるRNA干渉によってサイレンシングされます。アネキシンによって示されるように増加した脂肪細胞のアポトーシスは、HIF-1αまたはHIF-2αをサイレンシングすることによって復元されます<html>低酸素センサHIF-αは、脂肪細胞のアポトーシスを調節することを証明する図8bにおけるV染色、。 <img alt="図6" src="/files/ftp_upload/53822/53822fig6.jpg" /> 図6：高脂肪食（HFD）マウスにおける脂肪細胞の大きさや面積の増加普通食（ND）を与えた雄の野生型マウスのperigonadal脂肪パッドからのセクションの（a、b）は、H＆E染色（a）または高いです。 6週間-fat食（HFD）（B）。バーは500μmで表します。 （C、D）、（b）は、6週間のND（a）またはHFDを与えた野生型マウスのperigonadal脂肪パッドから脂肪細胞の大きさ（C）と領域（D）の定量。 n = 10のデータは、平均値±SEMとして示されています。統計分析は、スチューデントさt検定を用いて行きました。 ***はp &lt;0.0001。：//www.jove.com/files/ftp_upload/53822/53822fig6large.jpg &quot;ターゲット=&quot; _空白 &quot;&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 <img alt="図7" src="/files/ftp_upload/53822/53822fig7.jpg" /> 図7：大人フラ-2の脂肪細胞においてHIF-1αレベルおよびアポトーシスの増加 FL / FL FABP4-CreERTマウス 。低酸素（a）とHIF-1α男性フラ-2 FL / FL FABP4-creERTマウスと男性の対照同腹子タモキシフェン注射後6週間のATにおける（b）の染色。倍率20Xは、40Xを挿入します。黒矢印は、低酸素領域とHIF-1α陽性細胞を示しています。 （c）のタモキシフェン注射後6週間ATフラ-2 FL / FL FABP4-CreERTマウスおよび対照同腹子におけるTUNEL染色。倍率20Xは、40Xを挿入します。黒矢印はTUNEL陽性細胞を示しています。この図は、ルターらから変更されていますアル。9。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53822/53822fig7large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図8" src="/files/ftp_upload/53822/53822fig8.jpg" /> 図8： 低酸素によって誘導される一次脂肪細胞における増加したHIF-1αの発現と脂肪細胞のアポトーシス低酸素室に配置された一次脂肪細胞におけるHIF-1αとHIFSターゲットアイノスmRNAレベルの（a）のリアルタイムPCR分析は、指示された時点で分析しました。単離された初代脂肪細胞におけるアネキシンV FACS染色によるアポトーシスの（b）の定量フラ-2 FL / FL shの制御またはHIF-1αまたはHIF-2αに対するshのプラスミドでトランスフェクトし、低酸素下に置かFABP4-CreERTマウスまたは野生型対照24時間（1％O 2）。この図は、ルターらから変更されています。 <sup&gt; 9。データはSD統計分析±値はスチューデントのt検定を用いて行った、平均示されています。 * P &lt;0.05、**はP &lt;0.01を有意であると受け入れられた。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53822/53822fig8large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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Mechanism of Regulation of Adipocyte Numbers in Adult Organisms Through Differentiation and Apoptosis Homeostasis

Adipose tissue (AT) can influence whole body homeostasis, therefore understanding the molecular mechanisms of adipocyte differentiation and function is of importance. We provide a protocol for gaining new insights into these processes by analyzing adipocyte homeostasis, differentiation and hypoxia exposure as a model for induced adipocyte apoptosis.

分化およびアポトーシス恒常性を通じアダルト生物における脂肪細胞の数の調節のメカニズム

Considering that adipose tissue (AT) is an endocrine organ, it can influence whole body metabolism. Excessive energy storage leads to the dysregulation of ...

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

14.9K ビュー.  Universitätsklinikum Erlangen. Adipose tissue (AT) can influence whole body homeostasis, therefore understanding the molecular mechanisms of adipocyte differentiation and function is of importance. We provide a protocol for gaining new insights into these processes by analyzing adipocyte homeostasis, differentiation and hypoxia exposure as a model for induced adipocyte apoptosis.

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Generation of Human Adipose Stem Cells through Dedifferentiation of Mature Adipocytes in Ceiling Cultures

Mature adipocytes have been shown to reverse their phenotype into fibroblast-like cells in vitro through a technique called ceiling culture. Mature adipocytes can also be isolated from fresh adipose tissue for depot-specific characterization of their function and metabolic properties. Here, we describe a well-established protocol to isolate mature adipocytes from adipose tissues using collagenase digestion, and subsequent steps to perform ceiling cultures. Briefly, adipose tissues are incubated in a Krebs-Ringer-Henseleit buffer containing collagenase to disrupt tissue matrix. Floating mature adipocytes are collected on the top surface of the buffer. Mature cells are plated in a T25-flask completely filled with media and incubated upside down for a week. An alternative 6-well plate culture approach allows the characterization of adipocytes undergoing dedifferentiation. Adipocyte morphology drastically changes over time of culture. Immunofluorescence can be easily performed on slides cultivated in 6-well plates as demonstrated by FABP4 immunofluorescence staining. FABP4 protein is present in mature adipocytes but down-regulated through dedifferentiation of fat cells. Mature adipocyte dedifferentiation may represent a new avenue for cell therapy and tissue engineering.

Mature adipocytes may represent an abundant source of stem cells through dedifferentiation, which leads to a homogenous population of fibroblast-like cells. Collagenase digestion is used to isolate mature adipocytes from human fat. The goal of our protocol is to obtain multipotent, dedifferentiated fat cells from human mature adipocytes.

天井の培養における成熟脂肪細胞の脱分化を経てヒト脂肪幹細胞の生成

Mature adipocytes have been shown to reverse their phenotype into fibroblast-like cells in vitro through a technique called ceiling culture. Mature ...

発生生物学

Expansion and Adipogenesis Induction of Adipocyte Progenitors from Perivascular Adipose Tissue Isolated by Magnetic Activated Cell Sorting

Expansion of Perivascular Adipose Tissue (PVAT), a major regulator of vascular function through paracrine signaling, is directly related to the development of hypertension during obesity. The extent of hypertrophy and hyperplasia depends on depot location, sex, and the type of Adipocyte Progenitor Cell (APC) phenotypes present. Techniques used for APC and preadipocytes isolation in the last 10 years have drastically improved the accuracy at which individual cells can be identified based on specific cell surface markers. However, isolation of APC and adipocytes can be a challenge due to the fragility of the cell, especially if the intact cell must be retained for cell culture applications.
Magnetic-activated Cell Sorting (MCS) provides a method of isolating greater number of viable APC per weight unit of adipose tissue. APC harvested by MCS can be used for in vitro protocols to expand preadipocytes and differentiate them into adipocytes through use of growth factor cocktails allowing for analysis of the prolific and adipogenic potential retained by the cells. This experiment focused on the aortic and mesenteric PVAT depots, which play key roles in the development of cardiovascular disease during expansion. These protocols describe methods to isolate, expand, and differentiate a defined population of APC. This MCS protocol allows isolation to be used in any experiment where cell sorting is needed with minimal equipment or training. These techniques can aid further experiments to determine the functionality of specific cell populations based on the presence of cell surface markers.

Here we report a method for isolation of Adipocyte Progenitor Cell (APC) populations from Perivascular Adipose Tissue (PVAT) using Magnetic-activated Cell Sorting (MCS). This method allows for an increased isolation of APC per gram of adipose tissue when compared to Fluorescence-Activated Cell Sorting (FACS).

磁気活性化細胞選別法により単離された血管周囲脂肪組織からの脂肪細胞前駆体の拡大および脂肪生成誘導

Expansion of Perivascular Adipose Tissue (PVAT), a major regulator of vascular function through paracrine signaling, is directly related to the ...

Robust Differentiation of Human iPSCs into a Pure Population of Adipocytes to Study Adipocyte-Associated Disorders

Recent advances in induced pluripotent stem cell (iPSC) technology have allowed the generation of different cell types, including adipocytes. However, the current differentiation methods have low efficiency and do not produce a homogenous population of adipocytes. Here, we circumvent this problem by using an all-trans retinoic-based method to produce mesenchymal stem cells (MSCs) in high yield. By regulating pathways governing cell proliferation, survival, and adhesion, our differentiation strategy allows the efficient generation of embryonic bodies (EBs) that differentiate into a pure population of multipotent MSCs. The high number of MSCs generated by this method provides an ideal source for generating adipocytes. However, sample heterogeneity resulting from adipocyte differentiation remains a challenge. Therefore, we used a Nile red-based method for purifying lipid-bearing mature adipocytes using FACS. This sorting strategy allowed us to establish a reliable way to model adipocyte-associated metabolic disorders using a pool of adipocytes with reduced sample heterogeneity and enhanced cell functionality.

The protocol allows the generation of a pure adipocyte population from induced pluripotent stem cells (iPSCs). Retinoic acid is used to differentiate iPSCs into mesenchymal stem cells (MSCs) which are used for producing adipocytes. Then, a sorting approach based on Nile red staining is used to obtain pure adipocytes.

脂肪細胞関連疾患を研究するためのヒトiPS細胞を純粋な脂肪細胞集団に確実に分化させる(英語)

Recent advances in induced pluripotent stem cell (iPSC) technology have allowed the generation of different cell types, including adipocytes. However, the ...

Isolation and Differentiation of Stromal Vascular Cells to Beige/Brite Cells

Brown adipocytes have the ability to uncouple the respiratory chain in mitochondria and dissipate chemical energy as heat. Development of UCP1-positive brown adipocytes in white adipose tissues (so called beige or brite cells) is highly induced by a variety of environmental cues such as chronic cold exposure or by PPAR&gamma; agonists, therefore, this cell type has potential as a therapeutic target for obesity treatment. Although most immortalized adipocyte lines cannot recapitulate the process of "browning" of white fat in culture, primary adipocytes isolated from stromal vascular fraction in subcutaneous white adipose tissue (WAT) provide a reliable cellular system to study the molecular control of beige/brite cell development. Here we describe a protocol for effective isolation of primary preadipocytes and for inducing differentiation to beige/brite cells in culture. The browning effect can be assessed by the expression of brown fat-selective markers such as UCP1.

Primary white preadipocytes isolated from white adipose tissues in mice can be differentiated into beige/brite cells. Presented here is a reliable cellular model system to study the molecular regulation of "browning" of white fat.

ベージュ/ブライト細胞間質血管細胞の単離と分化

Brown adipocytes have the ability to uncouple the  respiratory chain in mitochondria and dissipate chemical energy as heat.  Development of UCP1-positive ...

生物学

Isolation of Adipogenic and Fibro-Inflammatory Stromal Cell Subpopulations from Murine Intra-Abdominal Adipose Depots

The stromal-vascular fraction (SVF) of white adipose tissue (WAT) is remarkably heterogeneous and consists of numerous cell types that contribute functionally to the expansion and remodeling of WAT in adulthood. A tremendous barrier to studying the implications of this cellular heterogeneity is the inability to readily isolate functionally distinct cell subpopulations from WAT SVF for in vitro and in vivo analyses. Single-cell sequencing technology has recently identified functionally distinct fibro-inflammatory and adipogenic PDGFR&#946;+ perivascular cell subpopulations in intra-abdominal WAT depots of adult mice. Fibro-inflammatory progenitors (termed, &#8220;FIPs&#8221;) are non-adipogenic collagen producing cells that can exert a pro-inflammatory phenotype. PDGFR&#946;+ adipocyte precursor cells (APCs) are highly adipogenic both in vitro and in vivo upon cell transplantation. Here, we describe multiple methods for the isolation of these stromal cell subpopulations from murine intra-abdominal WAT depots. FIPs and APCs can be isolated by fluorescence-activated cell sorting (FACS) or by taking advantage of biotinylated antibody-based immunomagnetic bead technology. Isolated cells can be used for molecular and functional analysis. Studying the functional properties of stromal cell subpopulation in isolation will expand our current knowledge of adipose tissue remodeling under physiological or pathological conditions on the cellular level.

This protocol describes the technical approach to isolate adipogenic and fibro-inflammatory stromal cell subpopulations from murine intra-abdominal white adipose tissue (WAT) depots by fluorescence-activated cell sorting or immunomagnetic bead separation.

マウス腹腔内脂肪貯蔵所からの脂肪形成性および線維炎症性間質細胞亜集団の単離

The stromal-vascular fraction (SVF) of white adipose tissue (WAT) is remarkably heterogeneous and consists of numerous cell types that contribute ...

免疫・感染学

Isolation and Culture of Human Mature Adipocytes Using Membrane Mature Adipocyte Aggregate Cultures (MAAC)

White adipose tissue (WAT) dysregulation plays a central role in development of insulin resistance and type 2 diabetes (T2D). To develop new treatments for T2D, more physiologically relevant in vitro adipocyte models are required. This study describes a new technique to isolate and culture mature human adipocytes. This method is entitled MAAC (membrane mature adipocyte aggregate culture), and compared to other adipocyte in vitro models, MAAC possesses an adipogenic gene signature that is the closest to freshly isolated mature adipocytes. Using MAAC, adipocytes can be cultured from lean and obese patients, different adipose depots, co-cultured with different cell types, and importantly, can be kept in culture for 2 weeks. Functional experiments can also be performed on MAAC including glucose uptake, lipogenesis, and lipolysis. Moreover, MAAC responds robustly to diverse pharmacological agonism and can be used to study adipocyte phenotypic changes, including the transdifferentiation of white adipocytes into brown-like fat cells.

Isolation and Culture of Human Mature Adipocytes Using Membrane Mature Adipocyte Aggregate Cultures MAAC

Membrane mature adipocyte aggregate culture (MAAC) is a new method to culture mature human adipocytes. Here we detail how to isolate adipocytes from human adipose and how to set up MAAC.

膜成熟性アディポサイト凝集培養(MAAC)を用いたヒト成熟性の単離と培養

White adipose tissue (WAT) dysregulation plays a central role in development of insulin resistance and type 2 diabetes (T2D). To develop new treatments ...

Isolation and Differentiation of Primary White and Brown Preadipocytes from Newborn Mice

The understanding of the mechanisms underlying adipocyte differentiation and function has greatly benefited from the use of immortalized white preadipocyte cell lines. These cultured cell lines, however, have limitations. They do not fully capture the diverse functional spectrum of the heterogenous adipocyte populations that are now known to exist within white adipose depots. To provide a more physiologically relevant model to study the complexity of white adipose tissue, a protocol has been developed and optimized to enable simultaneous isolation of primary white and brown adipocyte progenitors from newborn mice, their rapid expansion in culture, and their differentiation in vitro into mature, fully functional adipocytes. The primary advantage of isolating primary cells from newborn, rather than adult mice, is that the adipose depots are actively developing and are, therefore, a rich source of proliferating preadipocytes. Primary preadipocytes isolated using this protocol differentiate rapidly upon reaching confluence and become fully mature in 4-5 days, a temporal window that accurately reflects the appearance of developed fat pads in newborn mice. Primary cultures prepared using this strategy can be expanded and studied with high reproducibility, making them suitable for genetic and phenotypic screens and enabling the study of the cell-autonomous adipocyte phenotypes of genetic mouse models. This protocol offers a simple, rapid, and inexpensive approach to study the complexity of adipose tissue in vitro.

This report describes a protocol for the simultaneous isolation of primary brown and white preadipocytes from newborn mice. Isolated cells can be grown in culture and induced to differentiate into fully mature white and brown adipocytes. The method enables genetic, molecular, and functional characterization of primary fat cells in culture.

新生児マウスからの白色および褐色の前読細胞の分離と分化

The understanding of the mechanisms underlying adipocyte differentiation and function has greatly benefited from the use of immortalized white ...

Differentiation and Imaging of Brown Adipocytes from the Stromal Vascular Fraction of Interscapular Adipose Tissue from Newborn Mice

Brown adipose tissue (BAT) is only present in mammals and has a thermogenic function. Brown adipocytes are characterized by a multilocular cytoplasm with multiple lipid droplets, a central nucleus, a high mitochondrial content, and the expression of uncoupling protein 1 (UCP1). BAT has been proposed as a potential therapeutic target for obesity and its associated metabolic disorders due to its ability to dissipate metabolic energy as heat. To investigate BAT function and regulation, brown adipocyte culturing is indispensable. The present protocol optimizes tissue processing and cell differentiation for culturing brown adipocytes from newborn mice. Additionally, procedures for the imaging of differentiated adipocytes with both confocal immunofluorescence and transmission electron microscopy are shown. In the brown adipocytes differentiated with the techniques described herein, the major defining features of classical BAT are preserved, including high UCP1 levels, increased mitochondrial mass, and very close physical contact between the lipid droplets and mitochondria, making this method a valuable tool for BAT studies.

Preadipocytes are isolated from the stromal vascular fraction of interscapular brown adipose tissue from newborn mice and differentiated into cells that accumulate lipid droplets, express molecular markers, and show the mitochondrial morphology of mature brown adipocytes. These cells are further analyzed by immunofluorescence and transmission electron microscopy.

新生仔マウスの肩甲間脂肪組織の間質血管画分からの褐色脂肪細胞の分化とイメージング

Brown adipose tissue (BAT) is only present in mammals and has a thermogenic function. Brown adipocytes are characterized by a multilocular cytoplasm with ...

Differentiated Mouse Adipocytes in Primary Culture: A Model of Insulin Resistance

Insulin resistance is a reduced effect of insulin on its target cells, usually derived from decreased insulin receptor signaling. Insulin resistance contributes to the development of type 2 diabetes (T2D) and other obesity-derived diseases of high prevalence worldwide. Therefore, understanding the mechanisms underlying insulin resistance is of great relevance. Several models have been used to study insulin resistance both in vivo and in vitro; primary adipocytes represent an attractive option to study the mechanisms of insulin resistance and identify molecules that counteract this condition and the molecular targets of insulin-sensitizing drugs. Here, we have established an insulin resistance model using primary adipocytes in culture treated with tumor necrosis factor-&#945; (TNF-&#945;).
Adipocyte precursor cells (APCs), isolated from collagenase-digested mouse subcutaneous adipose tissue by magnetic cell separation technology, are differentiated into primary adipocytes. Insulin resistance is then induced by treatment with TNF-&#945;, a proinflammatory cytokine that reduces the tyrosine phosphorylation/activation of members of the insulin signaling cascade. Decreased phosphorylation of insulin receptor (IR), insulin receptor substrate (IRS-1), and protein kinase B (AKT) are quantified by western blot. This method provides an excellent tool to study the mechanisms mediating insulin resistance in adipose tissue.

This protocol describes the isolation of mouse preadipocytes from subcutaneous fat, their differentiation into mature adipocytes, and the induction of insulin resistance. Insulin action is evaluated by the phosphorylation/activation of members of the insulin signaling pathway through western blot. This method allows direct determination of insulin resistance/sensitivity in primary adipocytes.

初代培養における分化マウス脂肪細胞:インスリン抵抗性のモデル

Insulin resistance is a reduced effect of insulin on its target cells, usually derived from decreased insulin receptor signaling. Insulin resistance ...

マウス白脂肪組織の半自動単離

Semi-Automated Isolation of the Stromal Vascular Fraction from Murine White Adipose Tissue Using a Tissue Dissociator

The in vitro study of white, brown, and beige adipocyte differentiation enables the investigation of cell-autonomous functions of adipocytes and their mechanisms. Immortalized white preadipocyte cell lines are publicly available and widely used. However, the emergence of beige adipocytes in white adipose tissue in response to external cues is difficult to recapitulate to the full extent using publicly available white adipocyte cell lines. Isolation of the stromal vascular fraction (SVF) from murine adipose tissue is commonly executed to obtain primary preadipocytes and perform adipocyte differentiation. However, mincing and collagenase digestion of adipose tissue by hand can result in experimental variation and is prone to contamination. Here, we present a modified semi-automated protocol that utilizes a tissue dissociator for collagenase digestion to achieve easier isolation of the SVF, with the aim of reducing experimental variation, reducing contamination, and increasing reproducibility. The obtained preadipocytes and differentiated adipocytes can be used for functional and mechanistic analyses.

著者スポットライト:組織解離器を使用したマウス白脂肪組織からの間質血管画分の半自動分離  

This protocol describes the semi-automated isolation of the stromal vascular fraction (SVF) from murine adipose tissue to obtain preadipocytes and achieve adipocyte differentiation in vitro. Using a tissue dissociator for collagenase digestion reduces experimental variation and increases reproducibility.

組織解離剤を用いたマウス白色脂肪組織からの間質血管画分の半自動単離(英語)

The in vitro study of white, brown, and beige adipocyte differentiation enables the investigation of cell-autonomous functions of adipocytes and their ...