熱ショック応答は細胞質プロテオスタシスを維持する必須の細胞ストレス応答経路であり、シーエレガンスの分子、細胞、および生物レベルで特徴づけることができます。ヒートショック応答分野での再現性を高めるために、シーエレガンスにおける熱ショック応答の堅牢な誘導を生成する一連の標準化されたプロトコルとベストプラクティスを提示します。我々は、熱耐性、一般的に使用される生物アッセイは、熱衝撃応答に依存しないことを示す。
その代わりに、熱衝撃応答依存性の有機体アッセイである熱回収を使用することをお勧めします。熱ショック応答は、産卵の発症によって減衰する。そのため、発生タイミングは、熱衝撃応答実験で考慮しなければならない重要な変数です。
まず、同期されたワームの集団を作成します。プラチナワイヤーピックを使用して、約10個のグラビッド成虫を新鮮なプレートに移します。大人と一緒に移された可能性のある卵や幼虫を取り除くようにしてください。
ワームが1時間卵を産むことを許可し、その後、プレートから大人を取り除きます。発生タイミングは各菌株とワームが発生する温度によって変化することを考慮して、目的の発達段階まで20°Cで同期ワームを維持します。ワームが熱ショックの準備ができたら、パラフィンフィルムでプレートを包み、リードウェイトの試験管ラックを使用して摂氏33度の循環水浴に1時間浸水します。
水浴からプレートを回収し、ペーパータオルで乾かします。パラフィンフィルムを取り除き、ワームが6〜24時間摂氏20度で回復することを可能にし、これはGFP合成に十分な時間となる。イメージング用のスライドを準備するには、ラボ用テープのストリップを持つ他の2つのスライドの間に顕微鏡スライドを置きます。
3%のアガロース溶液を水中に作り、アガロースが溶解するまで電子レンジで加熱します。その後、1ミリリットルのピペットを使用して、約150マイクロリットルのアガロースをスライドの中央に配置します。すぐにスライドを空白のスライドで覆い、実験室のテープの上に置くよう垂直に置き、慎重に取り外します。
ワームを固定するには、アガロースパッドの中央にM9バッファである1ミリモルレバミソールの小さな滴を加え、プラチナワイヤーピックを使用して10ワームをドロップに移します。必要に応じて、アガロースパッドの外側にレバミソールを広げ、麻痺したときにワームをピックに合わせます。カバースリップでワームを覆い、蛍光顕微鏡を使用してできるだけ早くそれらを画像化します。
熱回収アッセイを実行するには、ワームを同期し、目的の発生段階まで摂氏20度に維持します。その後、6時間熱ショックを与えます。水浴からプレートを取り出し、48時間摂氏20度で回復させます。
回復後、ぎくしゃくした動きや麻痺なしに機械的刺激の後すぐに離れてクローフできるワームの数を数えます。熱衝撃応答誘導を細胞レベルで可視化するために、2つの蛍光レポーターシーエレガンス株を分析した。熱ショックのない陰性対照試料では、hsp-16.2レポーターは正常な自己蛍光を示したが、hsp-70レポーターは肛門圧筋に恒常蛍光を有していた。
1時間の熱ショックの後、RNAiを使用してレポーター誘導を測定する前にhsf-1をノックダウンした場合、両方のレポーターで堅牢な蛍光が観察されました。両株の蛍光は、著しく低下し、これらのレポーターがhsf-1依存していることを示す。分子レベルでの熱ショック応答の誘導を定量化するために、2つの固有のヒートショックタンパク質をrtキーPCRで測定した。
1時間33度の熱ショックは、2つのヒートショック遺伝子の相対発現の2,000倍以上の増加をもたらすことがわかった。熱回収アッセイは、6時間の熱ショックへの暴露が48時間の回復後に正常な動きを伴うワームの20%の減少につながったことを実証した。hsf-1のノックダウンは正常な動きの劇的な減少を引き起こし、ワームの95%以上が突き出された後にぎくしゃくした動きや麻痺を示した。
対照的に、hsf-1のノックダウンは、ワームが連続的な摂氏35度の温度にさらされ、生きているワームの割合が様々な時点で測定される熱耐性アッセイの結果に有意な影響を及ぼさなかった。この技術を初めて行う場合は、水がプレートに入って実験を台無しにしないように、パラフィンフィルムでプレートを2回包ましてください。RNA-seqを用いたゲノム解析に分子アッセイを拡張することができます。
ヒートショック応答の影響を受ける他の生物的アッセイは、寿命などのものを含むことができる。シーエレガンスにおける分子、細胞、および組織性熱ショック応答アッセイを相関させるユニークな能力は、この経路が発達および疾患において果たす役割を理解するために非常に貴重であることが証明されています。
