眼窩後注射は、静脈循環に化合物を投与するために使用される特殊な注入方法です。動物実験は、臨床研究への重要なステップです。動物実験の一環として、異なる経路で異なる種類の化合物を投与する必要があります。
これらの経路には、皮下、腹腔内、および静脈内が含まれます。静脈内注射は、新生児集中治療室にいる新生児で最も一般的に使用されるルートです。しかし、げっ歯類の研究、特に成体げっ歯類では、尾静脈にIV注射が日常的に行われています。
新生児では、尾静脈注射を成功裏に、そして再現性を持って行うことは非常に困難です。したがって、後軌道ルートはより簡単な代替手段として使用できます。まず、染料であるトリパンブルーを使用して、染料が静脈循環に入るのを視聴者がはっきりと確認できるようにする方法を実演します。
新生仔ラットは完全な麻酔下に置かれ、頭を横向きにして光源の上に置いて、目と外側血管系が露出して見えるようにします。針は、内側カンサスに相当する眼窩の前面に挿入されます。穏やかで滑らかで流動的な動きで溶液を注入します。
この手順をよりよく再現するには、眼窩静脈の解剖学的構造を理解することが重要です。ラットでは、眼のすぐ下にいくつかの静脈のネットワークがあり、静脈神経叢に簡単かつ直接アクセスできます。新生仔アルビノラットでは、表在性側頭静脈と顔面静脈の両方にも見えます。
この手順は、まったく同じ方法で実行できます。新生仔マウス。針は29〜31ゲージ、約0.30ミリメートルを使用してください。
正確な容量を得るには、ピペットで留めた容量から注入する溶液を採取します。動物を横臥で平らな面に置きます。全身イソフルラン麻酔を誘発します。
5%誘導、3%メンテナンス。引き抜き反射法で麻酔の深さを確認します。頭を右に向けて、右眼窩後洞に注射します。
針の斜角を眼窩の前面(中央の眼窩に相当)に約40度の角度で挿入します。この角度により、針を眼窩の後ろに向けることができます。穏やかで滑らかで滑らかな動きで注入します。
逆流を避けるために、針をゆっくりと引き抜く前に、少し待ってください。汚染を避けるために、動物ごとに新しい滅菌シリンジを使用してください。子犬を回復ボックスに置き、摂氏35〜37度前後の保護された加温装置の上に置きます。
回復を待ち、苦痛の兆候がないか確認してから、子犬をダムに戻します。この技術は、胚基質出血を起こした動物の脳の血管系にトレーサービオチン-デキストランを投与するために使用されました。対照として生理食塩水注射を受けた動物は、脳内の血管系の目に見える染色を示さなかった。
ビオチン-デキストラントレーサーの眼窩後注射に成功し、眼窩後投与後10分以内に脳血管系におけるその存在を評価することができました。次に、この技術を使用して、GMHで損傷した動物の個々の血管レベルでトレーサーの血管漏出を検出しました。この結果により、例えば、GMH脳損傷後に漏れている血管の量を定量化することにより、損傷の定量化が可能になります。
さらに、この手順は光源なしでも実行できるため、新生仔ラットおよびマウスの静脈循環に直接化合物を投与できる、シンプルで簡単で再現性の高い技術です。正しく実行すれば、この手順は悪影響を及ぼさないはずです。この投与経路により、抗体、細胞、およびその他の化合物を新生児動物の静脈循環に直接注射することができます。
この経路は、腹腔内注射や皮下注射などの他の経路と比較して、臨床的関連性が高くなります。.
