알코올 남용에있는 국립 연구소에서 PA에 미리 박사 NIH NRSA 교제 (F31AA017042), 우리의 작품은 신경 과학 (PAS), 약물 남용에있는 국립 연구소 (PAS R01 DA019022)에 대한 맥나이트 엔다우먼트 기금의 재정 지원으로 가능하게되었다 그리고 알콜 중독. GIRK2 - L257W 돌연변이 박사 Prafulla Aryal에 의해 제공되었다. 형광 현미경과 후원은 친절 Leica 악기에 의해 제공됩니다.

1. 사이트 돌연변이 유발을 감독 우리는 GIRK2에 대한 포유 동물 표현 플라스미드 pcDNA3.1 인코딩에게 cDNA를 사용하여 제조 업체의 지시에 따라, Stratagene (애질런트 테크놀) Quikchange XL II 사이트 - 감독 돌연변이 유발 키트를 사용하여 점 돌연변를 소개합니다. Primers 순서 쉽게보실 수 온라인 프라이머 디자인 프로그램을 사용하여 생성할 수 있습니다 : <a href="https://www.genomics.agilent.com/CollectionSubpage.aspx?PageType=Tool&amp;SubPageType=ToolQCPD&amp;PageID=15">https://www.genomics.agilent.com/CollectionSubpage.aspx?PageType=Tool&amp;SubPageType=ToolQCPD&amp;PageID=15</a> 참고 : 우리는 프로토콜에 설명된 BD 14 ML 튜브 대신에 표준 Eppendorf 1.5 ML 튜브를 사용합니다. 하지만, XL10 - 골드 ultracompetent E.의 사용 β - 메르 캅 토 에탄올과 pretreated 대장균, 30 열 충격 시간 및 NZY + (또는 NZYM +) 미디어 성공적인 돌연변이 유발을 위해 중요하다. 가능하면, 새로운 제한 사이트를 만들고 추가 자동 변이를 엔지니어링하는 것은 아래의 돌연변이 식민지를 심사 편리하실 수 있습니다. 2. Miniprep, DNA 시퀀싱 및 Maxiprep 2.1 Qiagen miniprep 및 시퀀싱. 개인 세균성 식민지가 들어서 암피실린 (AMP)와 LB의 수프에서 재배하고 있습니다. 우리는 cDNA를 정화에 대한 제조 업체의 지침을 따릅니다. 제한 사이트가 위의 1 단계에서 통합하는 경우에는 간단한 제한 소화는, 돌연변이의 성공적인 도입 확인할 수 있습니다. 자동 DNA 시퀀싱이 꺼져 사이트 완료 및 cDNA의 변이의 존재를 확인하기 위해 필수적이다뿐만 아니라, 원치 않는 돌연변이가 있는지 여부를 평가합니다. 이 단계는 매우 중요합니다. 우리는 순서 앞으로 T7 프로 모터 및 BGH 시퀀싱 primers 리버스를 사용하여 전체 GIRK 코딩 순서를 그 pcDNA3.1 플라스미드의 측면 여러 복제 사이트. 참고 : 조심스럽게 시퀀싱 데이터의 충분한 품질을 보장​​하기 위해 시퀀싱 electropherogram를 검사하는 것이 중요합니다. 고품질 electropherogram는 작은 잡음과 날카로운 아닌 중복 봉우리가 있습니다. 2.2 Qiagen maxiprep. 우리는 제조 업체의 지침을 따릅니다. 참고 :이 단계는 우리가 효율적인 transfection을 위해 중요하다 발견 cDNA의 순도를 개선하기위한 실험에 포함되어 있습니다. 3. HEK293T 셀의 문화와 Transfection 이러한 모든 방법은 무균 조직 문화 후드에서 수행되어야합니다. 3.1 세포 배양 HEK293T 세포들은 (37 ° C. 5 % CO 2 humidified 인큐베이터) 문화에 쉽게되기 때문에 사용이 편리합니다 빠른 복제 시간, 높은 transfection 효율을 가지고 있으며 전체 세포 패치 - 클램프 전기 생리학 의무가 있습니다. HEK293T 전지는 플라스미드 pcDNA3.1의 episomal 복제를 보장 SV40 큰 T 항원을 표현. HEK293T 세포는 L - 글루타민과 함께 보충 낮은 포도당 DMEM 미디어와 10 % 태아 소 혈청 (FBS)의 양식입니다. passaging 세포, 세포가 / FBS를 포함하는 새로운 미디어를 추가하여 효소 활동을 중지 후, 조직 접시에서 분리 때까지 기다려, 트립신 / EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 합류 (90-95%) HEK293T 세포에 0.25 %를 추가합니다. 플레이트 ~ 1 X 10 5 셀 / 물론 함께 잘 당 항생제없는 문화 미디어 1 ML과 12 잘 세포 배양 접시에. (1 X 10 5 세포 10 ML 미디어 resuspended 합류 T25 플라스크에서 얻은 세포 현탁액의 ~ 350 μL입니다.) 3.2 Transfection 8-24 시간 후, HEK 세포가 플라스틱을 준수하고 transfection 준비합니다. cDNA 0.2 μg 채널, Invitrogen Lipofectamine 2000을 사용하는 cDNA 0.4 μg의 M2R 수용체 cDNA와 0.04 μg의 YFP와 Transfect 세포. 참고 :이 성공적으로 (녹색 세포가 가능성이 GIRK 채널과 M2 수용체 모두를 포함) transfected있는 세포를 확인하기 위해 cDNA YFP의 소량을 사용합니다. 사용하는 cDNA의 농도는 각 클론에 따라 조정해야합니다. transfected 세포의 형광 시각화 3.3. 장소는 12 - 잘 바뀌 형광 현미경의 무대에 접시와 YFP 표현 세포를 검사합니다. DIC 이미지를 비교하고 녹색 세포의 대략적인 개수를 적어 둡니다. 이것은 transfection 효율을 예측할 수 있습니다. 24 잘 요리와 폴리 - D - 라이신 코팅 커버 풀렸는데 3.4 준비 탈이온수로 세탁과 야간 95 % 에탄올에 흔들어 다음, Radiacwash과 함께 하루를 흔들어하여 12mm 유리 커버 풀렸는데 (워너, CS - 12R)를 청소합니다. 사용까지 70 % 에탄올에 깨끗한 커버 전표를 저장합니다. 에탄올과 페트리 접시, 포셉 및 버너를 사용하여 에탄올에서 불꽃,에 넣어 커버 풀렸는데멸균 24 잘 판 잘 하나에서 D 플레이스. 폴리 - D - 라이신 250 μL (PDL) 솔루션 각각 잘 커버 [0.2 MG / ML]와 커버 전표가 하룻밤 사이에 불임 후드 아래에 PDL 솔루션에 열중 앉아 보자. 증발을 피하기 위해 Parafilm에 24 접시를 잘 싸서. 다음 날 아침, PDL을 기음과 멸균 물로 2 배 씻는다. 플레이트 커버 후, 후드 아래에 건조 열어두고. 코팅 커버 전표로 24 잘 요리는 무균 알루미늄 호일로 싸서 주 동안 실온에서 저장할 수 있습니다. 커버에 3.5 도금 transfected HEK293T 전지는 풀렸는데 24 유리 커버를 포함 24 자 요리 (~ 4 X 10 3 셀 / 음)에 transfection, 세포 분할 후 폴리 - D - 라이신과 코팅 전표. 참고 : transfected 세포는 24-72 시간 게시물 transfection까지 사용할 수 있습니다. 세포 패치 클램프 전기 생리학 실험 개별 표지 전표를 제공하기 위해 분할됩니다. 4. 전기 생리학 4.1 준비 솔루션 세포외 (목욕) 솔루션 : 20 MM KCl, 140 MM NaCl, 0.5 MM CaCl 2, 2 MM MgCl 2, 10 MM HEPES (NaOH로 pH를 7.4로 설정). 나누어지는 20K 목욕 솔루션과 적절한 모듈 레이터를 추가 <ul><li> 20K + 바 2 + : 1 MM BaCl 2가 포함된 솔루션 : 내향 정류 전류 특정 억제제 </li><li> 20K + Carbachol : 5 μm의 Carbachol와 솔루션 : 특정 M2R의 작용제, G - 단백질 M2R 커플 오픈 GIRK 채널 </li><li> 20K + 에탄올 직접 GIRK 채널을 활성화 100 MM의 EtOH를 포함하는 욕실 솔루션 </li></ul> 플레이스 목욕 솔루션의 신속한 교환 재관류 시스템의 주사기 (솔루션 용기)에. 참고 : 우리는 목욕 솔루션을 제어하는​​ 워너 핀치 밸브 시스템을 사용합니다. PE 관을 권장합니다. 내부 / 전극 솔루션 : 140 MM KCl, 20 MM NaCl, 5 MM EGTA, 5.4 MM MgCl 2, 2.5 MM K 2 ATP 및 0.3 μm의 리튬이 GTP 10 MM HEPES (pH는 7.4). 우리는 ATP와 GTP없이 전극 솔루션을합니다. 우리는 개별적으로 -80 ° C에 저장되어있는 ATP와 GTP의 aliquots, 준비 및 실험 당일에 전극 솔루션에 추가할 수 있습니다. 우리는 ATP / GTP을 유지하기 위해 얼음 최종 전극 솔루션 주사기를 유지. 우리는 살균 필터 (0.2 μm의) 내부 / 외부 솔루션은 미생물 성장을 억제하고 튜브를 경화를 일으키는 가능성과 전극을 줄일 수 있습니다. 4.2 풀링 전극 우리는 세포 솔루션으로 가득 저항 MΩ 3-7로 전극을 얻기 위해 Narishige 두 단계 수직 풀러와 워너 악기 (1.5 mm 외경, 0.86 mm 내경과 7.5 cm의 길이)에서 borosilicate 유리 전극을 사용합니다. 참고 :이 실험적으로 귀하의 연구실에있는 전극 풀러와 전극 유리의 종류에 대한 매개 변수를 결정하기 위해 필요합니다. 우리 수직 풀러 위해, 우리는 두 번째 당기의 첫 번째 뽑아 ~ 43에 대해 60.2의 열 설정을 사용합니다. 클램핑 4.3 전체 세포 패치 <ol><li> 거꾸로 형광 현미경의 무대에서 외부 솔루션과 장소 요리와 커버, 바셀린의 소량을 사용하여 35mm 접시에 용지를 커버 마운트합니다. 세포를 집중하고 찾을 수 DIC 사용 YFP 긍정적인 세포를 찾을 수 형광 YFP로 전환합니다. </li><li> 녹색 셀 (간격 관심 = 2-3 셀 길이의 셀 20-30 μm의) 근처 재관류 매니폴드의 위치 팁. </li><li> 게인 1, 구성 : 전체 세포 β = 1, 모드 V - 클램프 솔루션 전극을 채우기 다음과 같은 초기 설정으로 Axopatch 200B 앰프의 headstage (액슨 악기)에 첨부합니다. </li><li> 피펫의 막히는 것을 방지하고, 그냥 셀 위에 전극 팁 곳으로 조작하는 사람을 사용하여 전극에 대한 긍정적인 압력을 적용합니다. </li><li> 피펫의 가능성을 제로, 테스트 전압 단계를 제공하기 위해 인감 테스트 버튼을 선택합니다. 5 MV 직사각형 전압 단계 Clampex의 인감 테스트 창에 나타납니다. 0 NA 현재의 기본 라인을 가지고 앰프에 피펫 오프셋 전위차를 조정합니다. 또는, V 트랙 모드와 &quot;0.00&quot;로 앰프 미터 디스플레이에 전압을 제공할 수 앰프에 피펫 오프셋 전위차를 Vtrack 사용하는 미터 노브로 선택기 앰프 모드를 전환하여 피펫의 가능성을 제로. </li><li> Clampex 8.2 소프트웨어 (MΩ 3-7한다)의 인감 테스트 명령을 사용하여 전극의 저항을 확인하십시오. </li><li> 저장된 프로토콜 파일을 열거나 새로운 프로토콜을 만들 수 있습니다. 프로토콜 파일을 열려면 주 메뉴에서 선택한 다음 열기 프로토콜을 습득하고 저장된 전압 프로토콜 파일을 선택합니다. 본 실험의 경우, 프로토콜 2 이상 40 뮤직 비디오로 -100 뮤직 비디오와 진입로로 한 50 MS 전압 단계를 제공합니다, - 40mV에서 막 잠재력을 보유하기 위해 만들어졌습니다00 MS. 이 프로토콜은 매 2 초 실행됩니다. 램프 프로토콜 GIRK 채널의 반전 잠재력과 내향 정류 관찰을 허용합니다. 전압 - 게이 티드 이온 채널에 대한, 직사각형 전압 단계는 더 적절할 수 있습니다. </li><li> 조작하는 사람의 미세한 조절을 사용하여 접근 세포는 긍정적인 압력을 풀어 세포 표면을 만져 후 부정적인 압력을 적용하고, 인감 테스트 오실로 스코프 윈도우에서 저항의 증가를 모니터링합니다. 일단 저항이 GΩ 범위에, 전극은 멤브레인 (Gigaseal가 형성 하였다)에 봉인했습니다. </li><li> 세포막을 아프게하고 셀에 대한 액세스를 얻을 부정적인 압력의 펄스를 적용합니다. 일단 전체 셀 구성에서, 당신은 등록 용량성 전류를 증가합니다. </li><li> Clampex에서 막 테스트로 전환하여 접근 저항 라, 멤브레인 저항 RM, 막 커패시턴스 CM을 작성하고 눈 실제 capacitative 현재에 대한 이론 곡선의 기하 급수적인 맞지로 확인합니다. 멤브레인 커패시턴스는 셀 크기에 비례하고 전류 밀도를 계산하기 위해 나중에 사용됩니다. </li><li> 10 kHz에서시 -40 뮤직 비디오와 필터 V - 아웃 (막 잠재력)을 설정 테스트를 봉쇄로 다시 전환 </li><li> 다음 단계로 앰프에 막 커패시턴스와 직렬 저항 보상 : <ol class="lalpha"><li> 에 전체가 CELL 캡 스위치를 전환합니다. 당신은 평면 테스트 펄스를 얻을 때까지 앞뒤로 완전 세포 CAP와 직렬 저항의 다이얼을 조정하십시오. 당신은 또한 피펫의 용량 FAST CAP 손잡이를 조정해야 할 수도 있습니다. </li><li> 60-80 % 정도로 %의 예측 손잡이를 켜고, 다시 재 조정 완전 세포 CAP 및 직렬 저항 다이얼을 (당신이 피펫 커패시턴스 보상 FAST 뚜껑 손잡이로 잘 조정해야 할 수도 있습니다.) </li><li> 다시 조정 완전 세포 CAP 및 직렬 저항 (이 피펫 커패시턴스 보상 FAST CAP 손잡이로 잘 조정해야 할 수도 있습니다)에 의해 펄스가 평평하게 유지하는 동안, 세포를 진동하지 않고 % 광고 - 100 %를 켭니다. 시간이 지속 감소하여 지연을 조정합니다. </li><li> CM (멤브레인 용량), RS (직렬 저항), %의 광고에 대한 값을 적어 %는 PRED 및 지연 시간은 노트북의 앰프에 설정합니다. CM 및 RS 위의 멤브레인 테스트에서 측정 CM과 RM과 같은 거의 동일해야합니다. </li></ol></li><li> 목욕 솔루션을 제어하는​​ 외부 솔루션 밸브를 켭니다. 2kHz로 앰프 8 폴 베셀 필터를 설정 전압 클램프 프로토콜을 열고 녹음 전류를 시작합니다. </li><li> 우리는 100 MV 200 MS 이상 40 MV 50 MS 다음 경사로를위한 -100 MV 단계와 매 2 초 전달 램프 프로토콜을 사용 GIRK 전류를 기록합니다. 램프 프로토콜은 반전 가능성의 관찰과 GIRK 채널의 안쪽 정류 속성에 대한 수 있습니다. 상온에서 (22-25 ° C), 현재 GIRK 근처 K (E K = -50 MV)에 대한 계산 평형 잠재력 가까이 -50 MV을 (목욕탕에서 20 밀리미터의 KCl과), 반대한다, 그때 남아 E K 긍정적인 잠재력에 상당히 평면. </li><li> 실험 프로토콜 : 안정 기준을 녹화 후, + Carbachol 솔루션 20K로 전환하고 20K 목욕 솔루션으로 전환, 응답의 최대 기다리는 다음, 20K 이상의 에탄올을 적용하고 최대 응답을 기다 후 20K 목욕 솔루션으로 전환하고, 마지막으로 20K + 바 2 + 솔루션입니다. 이러한 약물의 응용 프로그램을하는 동안 당신은 GIRK 조류 (대부분 -100 뮤직 비디오에서 발음)의 진폭의 변화를 볼 수 있습니다. 노트북 다른 세포 솔루션의 응용 프로그램에 해당하는 추적 번호를 적어 둡니다. 단일 Clampfit 파일은 전체 실험에​​ 대한 감시 장치를 모두 포함됩니다. </li></ol> 5. 데이터 분석 우리는 -100 뮤직 비디오에서 데이터를 GIRK 전류를 분석 Clampfit 9.2 소프트웨어를 사용합니다. <ol><li> , 녹음과 파일을 열고 -100 MV에서 커서를 설정합니다. 기본적으로 당신은 화면에 중첩의 모든 흔적을 볼 수 있습니다. &quot;커서 쓰기&quot;아이콘을 누르면 당신은 수치 데이터를 엑셀과 같은 스프레드 시트를 생성합니다. </li><li> 할당 X으로 추적 번호 열 및 커서 컬럼에 Y로하고 빠르게 실험 시간 코스 계획을 그릴 수있는 &quot;그래프 만들기&quot;아이콘을 누르면. </li><li> + 혼자 외부 재관류 솔루션 ( &quot;20K 현재&quot;마이너스 &quot;20K + 바 2 + 전류&quot;)에 기록된 현재의 바 2 면전에서 현재 빼서의 기저 전류를 계산합니다. 활성 전류에서 20K의 기저 전류를 빼서하여 유도 전류를 계산 ( &quot;20K + Carbachol 현재&quot;마이너스 &quot;20K 현재&quot;; &quot;20K + 에탄올 현재&quot;마이너스 &quot;20K 현재&quot;). 멤브레인 커패시턴스 (앰프에서 직접 읽어)에 의해 전류를 나누어 전류 밀도 (PA / PF)을 계산합니다. 기초 전류에 의해 유도 전류를 나누어 100으로 곱하여 %의 정품 인증을 계산합니다. </li></ol> 6. 대표 결과 당신은 야생 타입 채널 transfected 세포에서 현재 레코드 수 있어야합니다. GIRK 채널 측정을위한20 MM을 포함하는 세포외 용액에 D K + (K + 세포와 145 ㎜)들은 강한 내면 정류 및 칼륨 채널의 필수 속성입니다 ~ -50 뮤직 비디오의 반전 가능성을 전시한다. 야생 형 전류 carbachol 응용 프로그램 (기초 전류 이상 3-5 배 증가)에 따라 강력하게 증가하고 100 MM 에탄올에 유사하게 반응합니다. 참고 : 전기 생리학을위한 서명 대회 그 안으로 현재는 부정되고 외부 전류가 긍정적입니다. GIRK2의 알코올 바인딩 주머니에 L257W 돌연변이 들어, carbachol과 에탄올 모두 감쇠 응답을 볼 수 있습니다. 이것은 L257이 알콜과 GIRK2 채널의 G 단백질 활성화에 관여 제안합니다. GIRK2 돌연변이 유발의 결과에 대한 예제를 보려면 Aryal 외에 의해 최근에 게시를 참조하십시오. 1. <img src="/files/ftp_upload/2189/2189fig1.jpg" alt="그림 1" /> 그림 1. 야생 형 GIRK2 기록에 대한 Clampfit 8.0 보여주는 데이터 파일의 창. 왼쪽 상단에 패널이 겹쳐 다른 바하 외부 솔루션의 존재에 램프 전압 프로토콜에 대한 응답으로 기록 지나간다 보여줍니다. 커서 1 -100 뮤직 비디오에 배치됩니다. 커서 값은 스프레드 시트 (오른쪽 패널)에 기록됩니다. 왼쪽 하단 패널은 스위프 수와, 현재의 줄거리를 보여줍니다. 에탄올 (EtOH)와 carbachol (수화물)과 바 2 +와 현재의 억제와 전류의 증가 (아래 편향)을합니다. <img src="/files/ftp_upload/2189/2189fig2.jpg" alt="그림 2" /> 그림 2. 돌연변 GIRK2 - L257W 녹음 Clampfit 8.0 보여주는 데이터 파일의 창. 설명은 그림 1에서와 같이 동일합니다. carbachol (수화물) 활성화 및 돌연변이 채널에 EtOH - 유도 전류의 감소의 손실을합니다.

<ol>
	<li>Aryal, P., Dvir, H., Choe, S., Slesinger, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+discrete+alcohol+pocket+involved+in+GIRK+channel+activation.">A discrete alcohol pocket involved in GIRK channel activation.</a> Nature Neurosci. 12, 988-995 (2009).</li><li>Panchenko, V. A., Glasser, C. R., Mayer, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural+similarities+between+glutamate+receptor+channels+and+K++channels+examined+by+scanning+mutagenesis.">Structural similarities between glutamate receptor channels and K+ channels examined by scanning mutagenesis.</a> J Gen Phys. 117, 345-360 (2001).</li><li>Doyle, D. A., Cabral, M. o. r. a. i. s., Pfuetzner, J., Kuo, R. A., Gulbis, A., Cohen, J. M., Chait, S. L., &amp;amp, B. T., MacKinnon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+structure+of+the+potassium+channel:+molecular+basis+of+K++conduction+and+selectivity.">The structure of the potassium channel: molecular basis of K+ conduction and selectivity.</a> Science. 280, 69-77 (1998).</li><li>Nishida, M., Cadene, M., Chait, B. T., MacKinnon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Crystal+structure+of+a+Kir3.1-prokaryotic+Kir+channel+chimera.">Crystal structure of a Kir3.1-prokaryotic Kir channel chimera.</a> EMBO J. 26, 4005-4015 (2007).</li><li>Tao, X., Avalos, J. L., Chen, J., MacKinnon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Crystal+structure+of+the+eukaryotic+strong+inward-rectifier+K++channel+Kir2.2+at+3.1+&amp;Aring;+resolution.">Crystal structure of the eukaryotic strong inward-rectifier K+ channel Kir2.2 at 3.1 &amp;Aring; resolution.</a> Science. 326, 1668-1674 (2009).</li></ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

사이트 이동 돌연변이 유발이 이온 채널의 구조 - 기능 관계를 연구하는 고전적인 접근이다. 이것은 이온 채널의 중요한 성분을 변경하여 하나는 채널 기능의 발음 변화를 관찰할 수 있어야 전제에 기초하고있다. 반면, 중요하지 않은 위치에 많은 변이는 채널 기능 주요 perturbations하지 않고 도입하실 수 있습니다. 일반적으로, 문제의 찌꺼기 먼저 알라닌, 트립토판, 2 아미노산의 가장 큰에 돌연변이 다음 작은 비 극성 아미노산에 변이이다. 잔여물은 채널 기능에 중요하다면, 모두 돌연변이 채널의 활동을 변경합니다. 덜 필수 물질 변이된 경우, 돌연변이, 특히 알라닌에의 영향은 종종 unremarkable 있습니다. 트립토판의 돌연변이 트립토판의 크기와 관련된 steric hindrances에 의한 변화를 일으킬 가능성이 더 높습니다. 종종 채널 (알라닌이나 트립토판 스캔라고도 함)의 조각 내에서 알라닌이나 트립토판에 대한 구조적 정보가 부족이며, 체계적인 돌연변이가 중요한 잔류물을 찾습니다하는 데 사용할 수 있습니다. 다른 지점의 돌연변이와 함께 여러 클론을 병렬 비교적 짧은 시간 내에 여러 잔류물을 테스트하기 위해 허용으로 준비할 수 있습니다하는 것이 중요합니다. 최근 채널의 여러 크리스탈 구조는 3,4,5 사용할 수 있습니다. 그들은이 프로토콜에서 설명한 방법을 사용하여 테스트하는 잠재적인 주요 잔류물을 제안하는 데 사용할 수 있습니다. 야생 형 채널에 측정은 항상 transfection 및 electrophysiological 실험이 제대로 것을 보증하기위한 긍정적인 제어 역할을하는 돌연변이 채널의 측정을 동반해야합니다. 포인트 돌연변 기능 현재의 부족, 채널 활동의 야생 입력하거나 변경 규정에 현재와 유사한 발생할 수 있습니다. 측정 전류의 부족은 부적 절한 접는 또는 변경 인신 매매로 인해 수 있습니다. 이러한 경우에는 그것은 채널 biotinylation 분석이나 플라즈마 막과 세포 내부의 보관 채널에서 동작하지 않음 채널 구분하는 세포 태그에 대한 immunofluorescence 얼룩을 (세포 permeabilization 제외)를 사용하여 표면에 정확하게 traffics 여부를 확인하는 것이 유용할 수 있습니다 . 마지막으로, 그것은 채널뿐만 아니라 채널 규정에 돌연변이의 결과의 기초 활동뿐 아니라 조사하는 것이 좋습니다. 채널 기능의 변조의 서로 다른 메커니즘은 G 단백질, PIP2, 이온, ATP 농도, 인산화 (티로신, 세린이나 트레오닌 돌연변를 사용하여), ubiquitination 또는 sumoylation (라이신 돌연변를 사용)에 의해 규제를 포함하여 관심의 이온 채널에 따라 연구 수 직접 채널 openers 또는 차단기.

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 <div>
 <table border="1">
 <thead>
 <tr>
 <td>Material Name</td>
 <td>Type</td>
 <td>Company</td>
 <td>Catalogue Number</td>
 <td>Comment</td>
 </tr>
 </thead>
 <tbody>
 
<tr>
<td>Chemicals</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma</td>
<td>Varies</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Mini Prep Kit</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Qiagen</td>
<td>27104</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Radiacwash</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Biodex</td>
<td>005-100</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Poly-D-lysine hydrobromide</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD Biosciences</td>
<td>CB40210</td>
<td>Poly-L-lysine can also be used</td>
</tr>
<tr>
<td>Maxi Prep Kit</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Qiagen</td>
<td>12263</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>QuickChange XL II Site Directed Mutagenesis Kit</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Stratagene</td>
<td>200512-5</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Lipofectamine 2000</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>11668-027</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Cover slips &#x02C6;&#x2026; 12 mm</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Warner Instruments</td>
<td>CS-12R</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Capillary Glass Tubing Borosilicate-standard wall</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Warner Instruments</td>
<td>G150-3</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td><a href="http://www.leica-microsystems.com/products/light-microscopes/clinical/inverted-microscopes/details/product/leica-dmi3000-b/" target="_blank">Inverted fluorescence microscope</a></td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Leica</td>
<td>DMI3000 B</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Electrophysiology</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Nikon/ Leica/ Zeiss</td>
<td>Any inverted DIC (Hoffmann) microscope with fluorescence</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Amplifier</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Molecular Devices</td>
<td>Axon Axopatch 200B amplifier</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Perfusion system</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Warner Instruments</td>
<td>VC-6 Perfusion MM-6</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Digitizer</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Molecular Devices</td>
<td>Digidata 1320 digitizer</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Manipulators</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sutter Instruments</td>
<td>Manipulator: MP-85</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Electrode Puller</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Narishige</td>
<td>PC10 vertical electrode puller</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Isolation Table</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Technical Manufacturing Corporation</td>
<td>Air table</td>
<td>&nbsp;</td> </tbody>
 </table>
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mutagenesis and functional analysis of ion channels heterologously expressed in mammalian cells

우리는 이온 채널의 포인트 변이를 도입의 기능 효과를 연구하는 방법을 보여줍니다 것입니다. 우리는 뉴런의 흥분을 규제에 대한 중요한 G 단백질 문이 안쪽으로 정류 칼륨 (GIRK라고도 함) 채널을 공부합니다. 네 가지 포유 동물 GIRK 채널 subunits은 (GIRK1 - GIRK4)이 있습니다 - 그것은 homotetramer을 형성하기 때문에 우리는 GIRK2에 중점을두고 있습니다. 같은 muscarinic 수용체 (M2R)로 G 단백질 결합 수용체 (GPCRs), 다양한 종류의 자극은 GIRK 채널의 활성화로 연결됩니다. 알코올은 또한 직접 GIRK 채널을 활성화한다. 우리는 특별히 GIRK 채널에 대한 cDNA에서 하나 이상의 세포핵을 변경하여 한 아미노산을 공격하는 방법을 보여줍니다. 이 변이된 cDNA 시퀀스는 정화, 박테리아 증폭되며, 포인트 변이의 존재는 DNA 시퀀싱에 의해 확인됩니다. 변이 및 야생 형 GIRK 채널 cDNAs은 체외에서 배양해 인간 배아 신장 세포에 HEK293T transfected 것입니다. 마지막으로, 전체 세포 패치 - 클램프 전기 생리학은 ectopically 표현 야생 형 또는 변이 GIRK 채널을 통해 매크로 칼륨 전류를 연구하는 데 사용됩니다. 본 실험에서는, 우리는 M2R - 의존과 알코올 의존 활성화에 GIRK2 채널 L257W 돌연변이의 효과를 검사합니다.

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Mutagenesis and Functional Analysis of Ion Channels Heterologously Expressed in Mammalian Cells

우리는 이온 채널의 기능에 대한 단일 지점에서 돌연변이의 효과를 연구하는 방법을 보여줍니다 것입니다.

이온 채널의 돌연변이 유발과 기능 분석 Heterologously 포유 동물 세포에 표현

We will demonstrate how to study the functional effects of introducing a point mutation in an ion channel. We study G protein-gated inwardly rectifying ...

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Research

JoVE Journal

Biology

17.3K 조회수.  Salk Institute for Biological Studies. 우리는 이온 채널의 기능에 대한 단일 지점에서 돌연변이의 효과를 연구하는 방법을 보여줍니다 것입니다.

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Patch Clamp Recording of Ion Channels Expressed in  Xenopus Oocytes

Since its development by Sakmann and Neher 1, 2, the patch clamp has become established as an extremely useful technique for electrophysiological measurement of single or multiple ion channels in cells. This technique can be applied to ion channels in both their native environment and expressed in heterologous cells, such as oocytes harvested from the African clawed frog, Xenopus laevis. Here, we describe the well-established technique of patch clamp recording from Xenopus oocytes. This technique is used to measure the properties of expressed ion channels either in populations (macropatch) or individually (single-channel recording). We focus on techniques to maximize the quality of oocyte preparation and seal generation. With all factors optimized, this technique gives a probability of successful seal generation over 90 percent. The process may be optimized differently by every researcher based on the factors he or she finds most important, and we present the approach that have lead to the greatest success in our hands.

This is intended as an introduction to patch clamp recording from Xenopus laevis oocytes. It covers vitelline membrane removal, formation of a gigaohm seal (gigaseal), and the optional conversion of the patch to the outside-out topology.

Xenopus Oocytes의 표현 이온 채널 패치 클램프 녹음

Since its development by Sakmann and Neher 1, 2, the patch clamp has become established as an extremely useful technique for electrophysiological ...

연구

생물학

Pulse-chase Analysis of N-linked Sugar Chains from Glycoproteins in Mammalian Cells

Attachment of the Glc3Man9GlcNAc2 precursor oligosaccharide to nascent polypeptides in the ER is a common modification for secretory proteins. Although this modification was implicated in several biological processes, additional aspects of its function are emerging, with recent evidence of its role in the production of signals for glycoprotein quality control and trafficking. Thus, phenomena related to N-linked glycans and their processing are being intensively investigated. Methods that have been recently developed for proteomic analysis have greatly improved the characterization of glycoprotein N-linked glycans. Nevertheless, they do not provide insight into the dynamics of the sugar chain processing involved. For this, labeling and pulse-chase analysis protocols are used that are usually complex and give very low yields. We describe here a simple method for the isolation and analysis of metabolically labeled N-linked oligosaccharides. The protocol is based on labeling of cells with [2-3H] mannose, denaturing lysis and enzymatic release of the oligosaccharides from either a specifically immunoprecipitated protein of interest or from the general glycoprotein pool by sequential treatments with endo H and N-glycosidase F, followed by molecular filtration (Amicon). In this method the isolated oligosaccharides serve as an input for HPLC analysis, which allows discrimination between various glycan structures according to the number of monosaccharide units comprising them, with a resolution of a single monosaccharide. Using this method we were able to study high mannose N-linked oligosaccharide profiles of total cell glycoproteins after pulse-chase in normal conditions and under proteasome inhibition. These profiles were compared to those obtained from an immunoprecipitated ER-associated degradation (ERAD) substrate. Our results suggest that most NIH 3T3 cellular glycoproteins are relatively stable and that most of their oligosaccharides are trimmed to Man9-8GlcNAc2. In contrast, unstable ERAD substrates are trimmed to Man6-5GlcNAc2 and glycoproteins bearing these species accumulate upon inhibition of proteasomal degradation.

We describe a method for analysis of the alteration of N-linked glycans through the early life of glycoproteins after their biosynthesis in mammalian cells. This is achieved by pulse-chase analysis of metabolically labeled glycans, enzymatic release from glycoproteins and examination by HPLC.

포유 동물 세포에 Glycoproteins의 N - 연결 설탕 체인 펄스 체이스 분석

Attachment of the Glc3Man9GlcNAc2 precursor oligosaccharide to nascent polypeptides in the ER is a common modification for secretory proteins. Although ...

Analysis of DNA Double-strand Break (DSB) Repair in Mammalian Cells

DNA double-strand breaks are the most dangerous DNA lesions that may lead to massive loss of genetic information and cell death. Cells repair DSBs using two major pathways: nonhomologous end joining (NHEJ) and homologous recombination (HR). Perturbations of NHEJ and HR are often associated with premature aging and tumorigenesis, hence it is important to have a quantitative way of measuring each DSB repair pathway. Our laboratory has developed fluorescent reporter constructs that allow sensitive and quantitative measurement of NHEJ and HR. The constructs are based on an engineered GFP gene containing recognition sites for a rare-cutting I-SceI endonuclease for induction of DSBs. The starting constructs are GFP negative as the GFP gene is inactivated by an additional exon, or by mutations. Successful repair of the I-SceI-induced breaks by NHEJ or HR restores the functional GFP gene. The number of GFP positive cells counted by flow cytometry provides quantitative measure of NHEJ or HR efficiency.

Analysis of DNA Double-strand Break DSB Repair in Mammalian Cells

This article describes GFP-based fluorescence in vivo assays that separately quantify homologous recombination and nonhomologous end joining in mammalian cells.

포유 동물 세포의 DNA 이중 가닥 브레이크 (DSB) 수리 분석

DNA double-strand breaks are the most dangerous DNA lesions that may lead to massive loss of genetic information and cell death.  Cells repair DSBs using ...

Patch Clamp and Perfusion Techniques for Studying Ion Channels Expressed in Xenopus oocytes

The protocol presented here is designed to study the activation of the large conductance, voltage- and Ca2+-activated K+ (BK) channels. The protocol may also be used to study the structure-function relationship for other ion channels and neurotransmitter receptors1. BK channels are widely expressed in different tissues and have been implicated in many physiological functions, including regulation of smooth muscle contraction, frequency tuning of inner hair cells and regulation of neurotransmitter release2-6. BK channels are activated by membrane depolarization and by intracellular Ca2+ and Mg2+ 6-9. Therefore, the protocol is designed to control both the membrane voltage and the intracellular solution. In this protocol, messenger RNA of BK channels is injected into Xenopus laevis oocytes (stage V-VI) followed by 2-5 days of incubation at 18&deg;C10-13. Membrane patches that contain single or multiple BK channels are excised with the inside-out configuration using patch clamp techniques10-13. The intracellular side of the patch is perfused with desired solutions during recording so that the channel activation under different conditions can be examined. To summarize, the mRNA of BK channels is injected into Xenopus laevis oocytes to express channel proteins on the oocyte membrane; patch clamp techniques are used to record currents flowing through the channels under controlled voltage and intracellular solutions.

Patch Clamp and Perfusion Techniques for Studying Ion Channels Expressed in Xenopus oocytes

Ionic current of BK channels is recorded using patch clamp techniques. BK channels are expressed in Xenopus oocytes by injecting messenger RNA. The intracellular solution during patch clamp recordings is controlled by a perfusion system.

이온 채널 유학을위한 패치 클램프 및 재관류 기법으로 표현 Xenopus oocytes

The protocol presented here is designed to study the activation of the large conductance, voltage- and Ca2+-activated K+ (BK) channels. The protocol may ...

Optimized Transfection Strategy for Expression and Electrophysiological Recording of Recombinant Voltage-Gated Ion Channels in HEK-293T Cells

The in vitro expression and electrophysiological recording of recombinant voltage-gated ion channels in cultured human embryonic kidney cells (HEK-293T) is a ubiquitous research strategy. HEK-293T cells must be plated onto glass coverslips at low enough density so that they are not in contact with each other in order to allow for electrophysiological recording without confounding effects due to contact with adjacent cells. Transfected channels must also express with high efficiency at the plasma membrane for whole-cell patch clamp recording of detectable currents above noise levels. Heterologous ion channels often require long incubation periods at 28&deg;C after transfection in order to achieve adequate membrane expression, but there are increasing losses of cell-coverslip adhesion and membrane stability at this temperature. To circumvent this problem, we developed an optimized strategy to transfect and plate HEK-293T cells. This method requires that cells be transfected at a relatively high confluency, and incubated at 28&deg;C for varying incubation periods post-transfection to allow for adequate ion channel protein expression. Transfected cells are then plated onto glass coverslips and incubated at 37&deg;C for several hours, which allows for rigid cell attachment to the coverslips and membrane restabilization. Cells can be recorded shortly after plating, or can be transferred to 28&deg;C for further incubation. We find that the initial incubation at 28&deg;C, after transfection but before plating, is key for the efficient expression of heterologous ion channels that normally do not express well at the plasma membrane. Positively transfected, cultured cells are identified by co-expressed eGFP or eGFP expressed from a bicistronic vector (e.g. pIRES2-EGFP) containing the recombinant ion channel cDNA just upstream of an internal ribosome entry site and an eGFP coding sequence. Whole-cell patch clamp recording requires specialized equipment, plus the crafting of polished recording electrodes and L-shaped ground electrodes from borosilicate glass. Drug delivery to study the pharmacology of ion channels can be achieved by directly micropipetting drugs into the recording dish, or by using microperfusion or gravity flow systems that produce uninterrupted streams of drug solution over recorded cells.

Reliable method for highly efficient in vitro expression and subsequent electrophysiological recording of recombinant voltage-gated ion channels in cultured human embryonic kidney cells (HEK-293T).

표현과 HEK - 293T 세포의 재조합 전압 - 게이 티드 이온 채널 Electrophysiological 녹음에 최적화된 Transfection 전략

The in vitro expression and electrophysiological recording of recombinant voltage-gated ion channels in cultured human embryonic kidney cells (HEK-293T) ...

Analysis of mRNA Nuclear Export Kinetics in Mammalian Cells by Microinjection

In eukaryotes, messenger RNA (mRNA) is transcribed in the nucleus and must be exported into the cytoplasm to access the translation machinery. Although the nuclear export of mRNA has been studied extensively in Xenopus oocytes1 and genetically tractable organisms such as yeast2 and the Drosophila derived S2 cell line3, few studies had been conducted in mammalian cells. Furthermore the kinetics of mRNA export in mammalian somatic cells could only be inferred indirectly4,5. In order to measure the nuclear export kinetics of mRNA in mammalian tissue culture cells, we have developed an assay that employs the power of microinjection coupled with fluorescent in situ hybridization (FISH). These assays have been used to demonstrate that in mammalian cells, the majority of mRNAs are exported in a splicing dependent manner6,7, or in manner that requires specific RNA sequences such as the signal sequence coding region (SSCR) 6. In this assay, cells are microinjected with either in vitro synthesized mRNA or plasmid DNA containing the gene of interest. The microinjected cells are incubated for various time points then fixed and the sub-cellular localization of RNA is assessed using FISH. In contrast to transfection, where transcription occurs several hours after the addition of nucleic acids, microinjection of DNA or mRNA allows for rapid expression and allows for the generation of precise kinetic data.

Here we describe an assay that employs the power of microinjection coupled with fluorescent in situ hybridization in order to accurately measure the nuclear export kinetics of mRNA in mammalian somatic cells.

Microinjection하여 포유 동물 세포에서 mRNA 원자력 수출 속도론 분석

In eukaryotes, messenger RNA (mRNA) is transcribed in the nucleus and must be exported into the cytoplasm to access the translation machinery. Although ...

Mutagenesis and Functional Selection Protocols for Directed Evolution of Proteins in E. coli

The efficient generation of genetic diversity represents an invaluable molecular tool that can be used to label DNA synthesis, to create unique molecular signatures, or to evolve proteins in the laboratory. Here, we present a protocol that allows the generation of large (>1011) mutant libraries for a given target sequence. This method is based on replication of a ColE1 plasmid encoding the desired sequence by a low-fidelity variant of DNA polymerase I (LF-Pol I). The target plasmid is transformed into a mutator strain of E. coli and plated on solid media, yielding between 0.2 and 1 mutations/kb, depending on the location of the target gene. Higher mutation frequencies are achieved by iterating this process of mutagenesis. Compared to alternative methods of mutagenesis, our protocol stands out for its simplicity, as no cloning or PCR are involved. Thus, our method is ideal for mutational labeling of plasmids or other Pol I templates or to explore large sections of sequence space for the evolution of activities not present in the original target. The tight spatial control that PCR or randomized oligonucleotide-based methods offer can also be achieved through subsequent cloning of specific sections of the library. Here we provide protocols showing how to create a random mutant library and how to establish drug-based selections in E. coli to identify mutants exhibiting new biochemical activities.

Mutagenesis and Functional Selection Protocols for Directed Evolution of Proteins in E. coli

Here we demonstrate a simple protocol to create a random mutant library for a given target sequence. We show how this method, which is performed in vivo in Escherichia coli, can be coupled with functional selections to evolve new enzymatic activities.

에서 단백질의 감독 진화에 대한 돌연변이 유발 및 기능 선택 프로토콜 E. 대장균</em

The efficient generation of genetic diversity represents an invaluable molecular tool that can be used to label DNA synthesis, to create unique molecular ...

Analysis of Cell Cycle Position in Mammalian Cells

The regulation of cell proliferation is central to tissue morphogenesis during the development of multicellular organisms. Furthermore, loss of control of cell proliferation underlies the pathology of diseases like cancer. As such there is great need to be able to investigate cell proliferation and quantitate the proportion of cells in each phase of the cell cycle. It is also of vital importance to indistinguishably identify cells that are replicating their DNA within a larger population. Since a cell&prime;s decision to proliferate is made in the G1 phase immediately before initiating DNA synthesis and progressing through the rest of the cell cycle, detection of DNA synthesis at this stage allows for an unambiguous determination of the status of growth regulation in cell culture experiments.
DNA content in cells can be readily quantitated by flow cytometry of cells stained with propidium iodide, a fluorescent DNA intercalating dye. Similarly, active DNA synthesis can be quantitated by culturing cells in the presence of radioactive thymidine, harvesting the cells, and measuring the incorporation of radioactivity into an acid insoluble fraction. We have considerable expertise with cell cycle analysis and recommend a different approach. We Investigate cell proliferation using bromodeoxyuridine/fluorodeoxyuridine (abbreviated simply as BrdU) staining that detects the incorporation of these thymine analogs into recently synthesized DNA. Labeling and staining cells with BrdU, combined with total DNA staining by propidium iodide and analysis by flow cytometry1 offers the most accurate measure of cells in the various stages of the cell cycle. It is our preferred method because it combines the detection of active DNA synthesis, through antibody based staining of BrdU, with total DNA content from propidium iodide. This allows for the clear separation of cells in G1 from early S phase, or late S phase from G2/M. Furthermore, this approach can be utilized to investigate the effects of many different cell stimuli and pharmacologic agents on the regulation of progression through these different cell cycle phases.
In this report we describe methods for labeling and staining cultured cells, as well as their analysis by flow cytometry. We also include experimental examples of how this method can be used to measure the effects of growth inhibiting signals from cytokines such as TGF-&beta;1, and proliferative inhibitors such as the cyclin dependent kinase inhibitor, p27KIP1. We also include an alternate protocol that allows for the analysis of cell cycle position in a sub-population of cells within a larger culture5. In this case, we demonstrate how to detect a cell cycle arrest in cells transfected with the retinoblastoma gene even when greatly outnumbered by untransfected cells in the same culture. These examples illustrate the many ways that DNA staining and flow cytometry can be utilized and adapted to investigate fundamental questions of mammalian cell cycle control.

Determining the cell cycle position of a population of cells, or understanding how signals affect proliferation, can be readily measured by flow cytometry using this protocol. We report a simple experimental approach to staining cells and quantifying their position in the cell cycle.

포유 동물 세포의 세포주기의 위치 분석

The regulation of cell proliferation is central to tissue morphogenesis during the development of multicellular organisms. Furthermore, loss of control of ...

Induction and Analysis of Epithelial to Mesenchymal Transition

Epithelial to mesenchymal transition (EMT) is essential for proper morphogenesis during development. Misregulation of this process has been implicated as a key event in fibrosis and the progression of carcinomas to a metastatic state. Understanding the processes that underlie EMT is imperative for the early diagnosis and clinical control of these disease states. Reliable induction of EMT in vitro is a useful tool for drug discovery as well as to identify common gene expression signatures for diagnostic purposes. Here we demonstrate a straightforward method for the induction of EMT in a variety of cell types. Methods for the analysis of cells pre- and post-EMT induction by immunocytochemistry are also included. Additionally, we demonstrate the effectiveness of this method through antibody-based array analysis and migration/invasion assays.

A straightforward method is described for the induction of epithelial to mesenchymal transition (EMT) in a variety of cell types. Methods for the analysis of cells in EMT states by immunocytochemistry are included.

간엽 전환을 유도하고 상피의 분석

Epithelial  to mesenchymal transition (EMT) is essential for proper morphogenesis during  development. Misregulation of this  process has been implicated ...

Isolation and Functional Analysis of Mitochondria from Cultured Cells and Mouse Tissue

Comparison between two or more distinct groups, such as healthy vs. disease, is necessary to determine cellular status. Mitochondria are at the nexus of cell heath due to their role in both cell metabolism and energy production as well as control of apoptosis. Therefore, direct evaluation of isolated mitochondria and mitochondrial perturbation offers the ability to determine if organelle-specific (dys)function is occurring. The methods described in this protocol include isolation of intact, functional mitochondria from HEK cultured cells and mouse liver and spinal cord, but can be easily adapted for use with other cultured cells or animal tissues. Mitochondrial function assessed by TMRE and the use of common mitochondrial uncouplers and inhibitors in conjunction with a fluorescent plate reader allow this protocol not only to be versatile and accessible to most research laboratories, but also offers high throughput.

Comparison of mitochondrial membrane potential between samples yields valuable information about cellular status. Detailed steps for isolating mitochondria and assessing response to inhibitors and uncouplers using fluorescence are described. The method and utility of this protocol are illustrated by use of a cell culture and animal model of cellular stress.

분리 및 배양 세포 및 마우스 조직에서 미토콘드리아의 기능적 분석

Comparison between two or more distinct groups, such as healthy vs. disease, is necessary to determine cellular status. Mitochondria are at the nexus of ...