이 작품은 뷔르츠부르크 대학에서 감염증 연구 센터 (ZINF)에서 젊은 탐정 연구 프로그램으로 후원됩니다. 후안 C 가르시아-Betancur은 뷔르츠부르크 대학의 생명 과학 대학원 (GSLS)에서 박사 동료입니다.

1. 레이블 B. subtilis 및 Biofilm 형성 분석 <ol><li> PCR에 의해 관심 유전자의 프로 모터 영역을 확대. 우리는 예로 P tapA, TasA 매트릭스 단백질 26 생산을 담당하는 유전자의 프로 모터의 복제를 보여줍니다. pkm008 벡터 (Rudner 연구소, 하버드 의과 대학. 보스톤, 미국에서 만든)로 클론 P tapA (그림 2). </li><li> 효소 소화 (효소 권장, XhoI)에 의해 plasmids을 Linearize. </li><li> B.의 자연 능력을 유도 subtilis 이전에 하워드에 기술된 한 단계 절차를 따르는 27을 절단하여 168을 변형. </li><li> 유능한 세포 문화에 선형 plasmids을 추가하고 인큐베이션의 두 시간 후에 spectinomycin의 저항에 따라 선택합니다. </li><li> 취득 변종은 B.의 중립 amyE의 현장에 구조를 넣었습니다 이중 재조합에 의한 subtilis (그림 4). 만들려면이중 라벨 변형은 우리가 그림 3에 제시 플라스미드 pDR183를 사용하여 중립 현장의 lacA로 두 번째 기자를 통합합니다. 우리가 pKM008에서 복제된 기자의 삽입을 위해 위에서 설명한 동일한 기법을 사용하여이 기자를 삽입합니다. </li><li> biofilms을 형성 수 NCIB3610로 변형 168에서 기자를 전송합니다. SPP1 파지의 도입에게 프로토콜 28,29을 사용합니다. 타이 중간의 기증자 스트레인 (LB 10 MM MgSO 4 10 μm의 MnSO 4) 성장. 파지 주식 희석을 100 μl와 문화 200 μl를 섞는다. 부화 후 30 분 후에 부드러운 한천의 3 ML을 추가하고 파지의 halos는 37 발생할 수 ° C. </li><li> 부드러운 한천를 수집합니다. 그것을 원심 분리기와 뜨는 합격은 주사기 0.22 μm의 필터 알았는데. 타이 매체 재배받는 변형의 문화를 감염이 뜨는을 사용하십시오. 30 μl ~ 10 문화 희석 1시 10분의 ML을 추가합니다. 30 분 동안 부화하며 부화 후 24 H 후 항생제 내성에 대한 선택합니다. </li><li> SE37 식민지를 lect 및 LB에서 하룻밤을 성장 ° C. </li><li> 1.5 % 한천 30 MSgg 고체 biofilm - 유도 매체에서 하룻밤 문화의 3 μL를 정확 해요. 세포가 30 ° C (그림 3)에서 72시간 동안 성장하도록 허용합니다. 성장 3 일 후, MSgg 한천의 표면에 형성 biofilms는 한천의 표면에 복잡한 형태학의 아키텍처를 개발했습니다. </li></ol> 2. Biofilm 분산 및 셀 고정 <ol><li> biofilm 양식에게 이쑤시개 또는 핀셋을 사용하여 MSgg 한천의 표면을 제거합니다. biofilm의 일관성은 한 조각의 한천의 표면의 껍질을 해제해서는 안된다. </li><li> PBS 버퍼 3 ML에 biofilm을 넣고 피펫이나 주사 바늘을 통해 반복적인 구절에 의한 biofilm을 분산. 또는 biofilm 분산은 가벼운 sonication을 사용하여 수행할 수 있습니다. 가벼운 sonication은 3의 출력과 0.7 초 진폭 12 펄스를 필요로합니다. </li><li> 샘플에게 사전 셀 - 하나의 분석을 수정합니다. Resuspen정확히 7 분을위한 상온에서 4 % paraformaldehyde 솔루션과 부화 1 ML의 세포 현탁액의 D 300 μL. 4 % paraformaldehyde 솔루션의 구성 : paraformaldehyde의 2g PBS 버퍼의 50 ML 4 μl 10 N NaOH 0.22, 음 필터 나누어지는를 통해 솔루션을 필터링 </li><li> PBS 버퍼에 고정 세 번 이후에 세포를 씻어하고 PBS 완충액 300 μL에 그들을 resuspend. </li></ol> 3. 형광 현미경 <ol><li> 현미경 슬라이드여 0.8 % 아가로 오스 200 μL를 붓고 신중하게 다른 슬라이드로 다룹니다. 하단의 슬라이드에 부착된 아가로 오스의 레이어를 얻기 위해 2 분 후에 부드럽게 상단 슬라이드를 제거합니다. </li><li> 스팟이 아가로 오스 층의 표면에 고정된 세포 μL와 현미경 덮개 유리로 덮어. </li><li> 형광 현미경으로 시료를 놓습니다. 우리는 Leica CRT6000 iIluminat 장착된 형광 현미경 Leica DMI6000B를 사용하여시스템이 이온. BP500/20, 엠 : YFP위한 필터는 예입니다 BP535/30 및 CFP에 대한 예입니다 BP426/20, 엠 : 40분의 480 </li><li> 샘플을 폭로 50-200 MS 사이에 여기 형광합니다. 실험을 위해 선택한 조건에는 형광을 보여줍없는 부정적인 통제에 따라 여기 기간을 설정합니다. </li><li> 명시야로 얻은 같은 이미지로 형광 이미지를 참조하시기 바랍니다. 한 장의 사진에서 두 이미지를 병합합니다. 결과 P tapA-YFP는 그림 6에 나타나있는 기자를 숨겨주는 단일 레이블 변형을 사용하여 유동 형광 현미경에서 얻은. </li></ol> 4. 유동세포계측법를 사용하여 단일 세포의 부량 <ol><li> 가벼운 sonication을 사용하여 고정 세포의 샘플을 분산. 세포 용해를 일으키는 않고 단일 세포에 대단히 짧은 시간을 분산하기 위해 5의 출력과 0.7 초 진폭 12 펄스 2 시리즈를 수행하는 샘플을 Sonicate. 가벼운 현미경으로 세포 분산의 효율성을 확인합니다. </리&gt; <li> 유동세포계측법 분석하기 전에 PBS 버퍼에 샘플 1:100을 희석. 우리는 흐름 cytometer BD FACS 캔토 II를 사용합니다. YFP 형광 들어, 30분의 530 필터와 결합 488 nm의에서 레이저 여기를 사용합니다. CFP 형광 들어, 40분의 408 필터와 결합 405 nm의에서 레이저 여기를 사용합니다. </li><li> 이 부정적인 컨트롤 흐름 cytometer 기계 보정. 서스펜션의없이 세포와 PBS 버퍼의 예제는 흐름 cytometer에 의해 감지 입자의 크기에 대한 부정적인 제어 역할을한다. 노 형광 기자와 라벨이 예제는 흐름 cytometer의 형광 감도에 대한 부정적인 제어 역할을해야합니다. </li><li> 흐름 cytometer에 형광 기자와 레이블 샘플을 놓습니다. 각 샘플의 경우 초당 300 3000 이벤트 사이의 유량과 최소 50,000 이벤트를 분석합니다. </li><li> FACS 디바 소프트웨어 (BD Biosciences)를 사용하여 데이터를 캡처하고 FlowJo 8.5.2 소프트웨어를 사용하여 그것을 분석합니다. 표시되는 컨트롤에 형광 신호를 참조의 더 형광 없습니다. </li><li> 두 축의 그래픽에서 단일 레이블 변형의 형광 신호를 모니터링 데이터를 제시한다. X 축 및 Y 축의 형광의 다른 수준을 표현하는 세포의 수가 검출 형광 신호를 잡아. 결과 P tapA-YFP은 그림 8에 나타나있는 기자를 숨겨주는 단일 레이블 변형을 사용하여 유동세포계측법 분석에서 얻은. </li><li> 세 축의 그래픽의 이중 라벨 변형의 형광 신호를 모니터링 데이터를 제시한다. X와 Y 축 (예를 들어, GFP는 Y 축에있는 X 축 및 CFP로 측정됩니다)에 모니터 채널 각각의 형광 신호를 잡아. Z 축의 플롯 각각 기자와 종이 비행기 (그림 9 및 10)에 수직 될 윤곽 isolines로 제시을 표현 세포의 수. </li></ol> 4. 대표 결과 언제 B. subtilis는 B의 접시에 성장iofilm - 유도 매체 MSgg, biofilm 형성은 30 ° C에서 30에서 배양 3 일 후에 관찰한다. biofilm은 강하고 일관성을 보여줍니다 그리고 그것은 한 조각의 한천의 표면에서 떨어져 벗겨 수 있습니다. 또한, biofilm은 별개의 참여 세포 subpopulations (그림 5)는 지표입니다 복잡한 형태학의 아키텍처를 보여줍니다. 예를 들어, 식민지의 표면에 주름 형성의 biofilms 결과 세포외 기질 생산. 이 기능은 매트릭스 생산자 19 subpopulation의 분화와 상호하실 수 있습니다. 포자가 이러한 구조 30 혀끝의 영역에 지역화된 이후 마찬가지로, biofilm의 표면에 공중 구조의 마련이 sporulating 세포의 subpopulation의 존재는 지표입니다. 단일 레이블과 형광 현미경을 사용하여 이중 라벨 변형이 연구에서 세포 분화의 시각화의 예각각 그림 6과 7에 epresented. 단일 레이블 변형은 형광 기자를 비호하는 행렬 생산 세포의 subpopulation로 표현되는 P tapA-CFP. 이 subpopulation는 biofilm (그림 6) 구성 세포외 기질을 생산하고 분비하는 책임이있다. 이중 레이블 발표했던 기자를 비호하는 P tapA-CFP 26 추가 기자 P srfAA-YFP 31. 이 두 번째 기자 매트릭스 제작자의 분화 (그림 7)에 신호 폭포를 트리거 신호 전달 분자 surfactin을 분비 책임 세포의 subpopulation를 모니터할 수 있습니다. surfactin 제작자의 subpopulation 노란색의 유색 인종 허위 반면 매트릭스 생산 Subpopulation는 파란 색 허위입니다. 기자가 P tapA-YFP은 그림 8에 표시됩니다 은닉 단일 레이블 변형을 사용하여 유동세포계측법 분석. 치료 제어 변형은 은닉하지모든 형광 단백질 유전자는 단일 인구 낮은 상대의 형광을 보여주었다. 비 biofilm - 유도 조건에서 P tapA-YFP을 품고 세포는 매트릭스 생산 subpopulation을 차별하지 않았고 전체 인구는 낮은 상대 형광을 보여주었다. biofilm - 유도 조건에서 높은 상대 형광있는 세포의 subpopulation이 낮은 상대 형광 피크 23 오른쪽 어깨로 관찰, 발생했습니다. 이중 라벨 변형을 사용하여 유동세포계측법 분석에서 얻은 결과는 그림 9와 10으로 표시됩니다. 그림 9는 이중 라벨 스트레인 P tapA-CFP, P srfAA-YFP을 사용하여 매트릭스 생산자와 surfactin 생산자의 subpopulations을 감시. 배경 형광 제어로서 우리는 어떠한 형광 단백질 유전자를 숨겨주는되지 변종를 사용했습니다. 다음, 우리는 단일 레이블 변형을 사용하여 각각의 형광 채널에 매트릭스 생산자와 surfactin 생산의 각 subpopulation를 감지<html> 컨트롤로의. 이중 레이블 스트레인 P tapA-CFP, P srfAA-YFP은 형광 기자의 높은 수준을 표현 세포의 두 subpopulations을 보여주었다. 각각의 인구는 특정한 세포 15 두 subpopulations 사이 기자의 표현에는 중복이 없다는 것을 보여주는 함정에 있습니다. 이중 레이블을 사용하여 마찬가지로, 유동세포계측법 분석은 스트레인 P skf-YFP, P tapA-YFP는 그림 10에 표시됩니다. 유전자 skf에 대한 기자는 매트릭스 생산 24 subpopulation와 coordinately 차별 설명되어 식인종 32 subpopulation의 차별을 모니터링합니다. 이 경우 이중 라벨 변형은 YFP와 CFP를 모두 표현하는 형광 세포의 단일 subpopulation을 보여주었다. 이것은 두 세포 분화 경로가 coordinately 같은 subpopulation에서 활성화되는 지적했다. &quot;1.jpg /&gt; 1 그림. 실험의 전체 구조는. 프로토콜은 세 가지 주요 단계로 나뉘어져 있습니다. 첫 번째 단계는 B.의 긴장을 레이블링 필요 관심 subpopulation을 모니터링 기자 융합과 subtilis. 둘째, biofilm - 유도 조건에서 분류된 변종을 재배. 셋째, biofilm을 분산하고 형광 현미경과 유동세포계측법를 사용하는 인구의 단일 세포 분석을 수행. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/3796/3796fig2.jpg" /> 그림 2. 통합 벡터 pKM008의 도식 표현.이 벡터는 두 재조합에 의해 중립 현장의 amyE에 관심있는 기자 융합을 통합합니다. 관심 (P tapA)의 발기인은 제한 사이트 EcoRI과 HindIII를 사용하여 벡터로 복제됩니다. 그런 다음, CFP 유전자의 표현은 발기인 P tapA의 통제하에있다. orientat플라스미드의 유전자 이온은 화살표로 표시됩니다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/3796/3796fig3.jpg" /> 그림 3. 통합 벡터 pDR183의 도식 표현.이 벡터는 두 재조합에 의해 중립 현장 lacA에 관심있는 기자 융합을 통합합니다. 관심 (P tapA - CFP)의 융합이 제한 사이트 EcoRI과 BamHI를 사용하여 벡터로 복제됩니다. 플라스미드의 유전자의 방향이 화살표로 표시됩니다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/3796/3796fig4.jpg" /> 4 그림. B.의 염색체에 기자의 통합 계획 이중 재조합에 의한 subtilis. () B. subtilis의 염색체는 biofilm의 발전에 영향을주지 않고 기자 fusions을 통합하는 방법은 두 중립 loci, amyE 및 lacA을 가지고 있습니다. (B) </spKM008의 이중 재조합의&gt; Process를 tron​​g. 선형 플라스미드는 B.의 게놈에 통합 이중 재조합에 의한 subtilis. 기자 융합은 안정적으로 중립 현장에 통합합니다. <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/3796/3796fig5.jpg" /> 그림 5. B.의 Biofilm 형성 변형 B.의 bioflm 형성 subtilis NCIB3610 있습니다. 프로세스 subtilis NCIB 3610 일 세명 일간 biofilm-유도 매체 MSgg에서 재배 ° C. biofilm의 발전의 연속 사진은 모든 12h를 촬영했다. <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/3796/3796fig6.jpg" /> 6 그림. 형광 현미경 매트릭스 생산 subpopulation의 시각화. B.의 biofilm의 샘플 subtilis P tapA - CFP는 형광 현미경으로 고정하고 조사되었다. 형광 200 MS여기는 세포의 나머지 부분보다 높은 형광을 방출하고 세포의 subpopulation을 입증. 우리는 매트릭스 생산 세포의 subpopulation로 subpopulation로 간주. 스케일 바는 3 μm의입니다. <img alt="그림 7" src="/files/ftp_upload/3796/3796fig7.jpg" /> 그림 7. 형광 현미경 매트릭스 생산자와 surfactin 생산자의 subpopulation의 시각화. B.의 biofilm의 샘플 subtilis P tapA-CFP, P srfAA-yfp 이중 라벨 변형은 고정하고 형광 현미경으로 조사되었다. 세포의 나머지 부분보다 높은 형광을 방출 셀 250 MS 입증이 subpopulations의 노출 시간. 한 subpopulation는 YFP을 표명하고 그것은 독점적 YFP 채널 (노란색의 유색 인종 거짓)를 사용하여 감지되었습니다. 이것은 surfactin 생산자의 subpopulation입니다. 또 다른 subpopulation는 CFP를 표현하고 그것은 독점적으로 CFP chann를 사용하여 감지되었습니다<html> 엘. 이것은 매트릭스 생산 subpopulation입니다. 스케일 바는 3 μm의입니다. <img alt="그림 8" src="/files/ftp_upload/3796/3796fig8.jpg" /> 그림 8. 2-D의 유동세포계측법 있습니다. 사용하는 매트릭스 생산 subpopulation의 부량는 B.의 biofilm의 세포 분산 subtilis P tapA-yfp은 유동세포계측법을 사용하여 모니터링할되었다. 유동 cytometer은 50.000 이벤트를 계산하고 각 이벤트에 대해 형광 신호가 모니터링되었습니다. YFP 신호의 강도는 X 축에 꾸몄다하는 동안 계산 세포의 개수는 Y 축에 꾸몄다있다. 전지는 비 biofilm 유도 조건을 얻기 위해 LB 배지에서 성장했다. 세포는 biofilm-유도 조건을 얻기 위해 매체를 MSgg 재배되었다. 매트릭스 생산 subpopulation는 biofilm - 유도 조건에서 차별화합니다. 이 수치는 로페즈 외에서 적응되었다., PNAS (2009) 106 :280-285가. s/ftp_upload/3796/3796fig9.jpg &quot;/&gt; 9 그림. 3 차원 유동세포계측법을 사용하여 매트릭스 생산자와 surfactin 생산자의 subpopulation의 부량. 모니터 채널의 형광 신호는 X 축 (YFP 용)과 Y 축 (CFP의 경우)로 표시됩니다. Z 축 각각의 기자를 표현하는 세포의 수를 측정 및 윤곽 isolines는 종이 비행기에 수직으로 그것을 계량합니다. 본 실험에서는 모니터 이벤트의 숫자는 50.000 행사했습니다. 왼쪽 상단 패널은 형광 단백질 유전자를 숨겨주는되지 배경 형광 반응의 제어를 제공합니다. 오른쪽 상단 패널에는 단일 레이블 스트레인 P srfAA-YFP를 사용 YFP 형광 채널 (노란색으로 누명을)에서 surfactin 생산자의 subpopulation를 감지합니다. 왼쪽 하단 패널은 단일 레이블 스트레인 P tapA-CFP를 사용하여 CFP 형광 채널 (파란색으로 누명을)에서 매트릭스 생산 subpopulation를 감지합니다. 이중 라벨 변형 P tapA &lt;/ em&gt;는 - CFP, P srfAA-YFP가 오른쪽 하단 패널에 모니터하고 있습니다. 그것은 노란색과 파란색으로 누명되는 두 subpopulations을 보여주었다. 이 수치는 로페즈 외에서 적응되었다., 유전자 개발 (2009) 23 :1631-1638은. <img alt="그림 10" src="/files/ftp_upload/3796/3796fig10.jpg" /> 10 그림. 매트릭스 생산자와 3 차원 유동세포계측법을 사용 식인종의 subpopulation의 부량. 모니터 채널의 형광 신호는 X 축 (YFP 용)과 Y 축 (CFP의 경우)로 표시됩니다. 본 실험에서는 모니터 이벤트의 숫자는 50.000했습니다. 오른쪽 상단 패널에는 단일 레이블 스트레인 P skf-YFP의 YFP 형광 채널 (노란색으로 누명을)에서 식인종의 subpopulation를 감지합니다. 왼쪽 하단 패널은 단일 레이블 스트레인 P tapA-CFP의 CFP 형광 채널 (파란색으로 누명을)에서 매트릭스 생산 subpopulation를 감지합니다. Double-라벨 스트레인 P tapA-CFP, P skf-YFP는 X 및 Y 축 (녹색 액자)에 대각선으로 세포의 한 subpopulation을 보여주었다. 그것이 동시에 두 기자를 표현하기 때문에 subpopulation는 YFP와 CFP 채널에 감지됩니다. 로페즈 외., 유전자 개발 (2009) 23 :1631-1638.

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Bacteriol. 188, 3099-3109 (2006).</li><li>Vlamakis, H., Aguilar, C., Losick, R., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Control+of+cell+fate+by+the+formation+of+an+architecturally+complex+bacterial+community.">Control of cell fate by the formation of an architecturally complex bacterial community.</a> Genes Dev. 22, 945-953 (2008).</li><li>Stewart, P. S., Franklin, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiological+heterogeneity+in+biofilms.">Physiological heterogeneity in biofilms.</a> Nat. Rev. Microbiol. 6, 199-210 (2008).</li><li>Veening, J. W., Smits, W. K., Kuipers, O. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bistability,+epigenetics,+and+bet-hedging+in+bacteria.">Bistability, epigenetics, and bet-hedging in bacteria.</a> Annu. Rev. Microbiol. 62, 193-210 (2008).</li><li>Aguilar, C., Vlamakis, H., Guzman, A., Losick, R., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=KinD+is+a+checkpoint+protein+linking+spore+formation+to+extracellular-matrix+production+in+Bacillus+subtilis+biofilms.">KinD is a checkpoint protein linking spore formation to extracellular-matrix production in Bacillus subtilis biofilms.</a> MBio. 1, (2010).</li><li>Lopez, D., Fischbach, M. A., Chu, F., Losick, R., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structurally+diverse+natural+products+that+cause+potassium+leakage+trigger+multicellularity+in+Bacillus+subtilis.">Structurally diverse natural products that cause potassium leakage trigger multicellularity in Bacillus subtilis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 280-285 (2009).</li><li>Lopez, D., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cannibalism+enhances+biofilm+development+in+Bacillus+subtilis.">Cannibalism enhances biofilm development in Bacillus subtilis.</a> Mol. Microbiol. 74, 609-618 (2009).</li><li>Arima, K., Kakinuma, A., Tamura, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surfactin,+a+crystalline+peptidelipid+surfactant+produced+by+Bacillus+subtilis:+isolation,+characterization+and+its+inhibition+of+fibrin+clot+formation.">Surfactin, a crystalline peptidelipid surfactant produced by Bacillus subtilis: isolation, characterization and its inhibition of fibrin clot formation.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 31, 488-494 (1968).</li><li>Romero, D., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+accessory+protein+required+for+anchoring+and+assembly+of+amyloid+fibres+in+B.+subtilis+biofilms.">An accessory protein required for anchoring and assembly of amyloid fibres in B. subtilis biofilms.</a> Mol. Microbiol. 80, 1155-1168 (2011).</li><li>Hardwood, C. R., Cutting, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Molecular Biological Methods for Bacillus. , (1990).</li><li>Novick, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+systems+in+staphylococci.">Genetic systems in staphylococci.</a> Methods Enzymol. 204, 587-636 (1991).</li><li>Yasbin, R. E., Young, F. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transduction+in+Bacillus+subtilis+by+bacteriophage+SPP1.">Transduction in Bacillus subtilis by bacteriophage SPP1.</a> J. Virol. 14, 1343-1348 (1974).</li><li>Branda, S. S., Gonzalez-Pastor, J. E., Ben-Yehuda, S., Losick, R., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fruiting+body+formation+by+Bacillus+subtilis.">Fruiting body formation by Bacillus subtilis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 11621-11626 (2001).</li><li>Nakano, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=srfA+is+an+operon+required+for+surfactin+production,+competence+development,+and+efficient+sporulation+in+Bacillus+subtilis.">srfA is an operon required for surfactin production, competence development, and efficient sporulation in Bacillus subtilis.</a> J. Bacteriol. 173, 1770-1778 (1991).</li><li>Gonzalez-Pastor, J. E., Hobbs, E. C., Losick, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cannibalism+by+sporulating+bacteria.">Cannibalism by sporulating bacteria.</a> Science. 301, 510-513 (2003).</li><li>Aguilar, C., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thinking+about+Bacillus+subtilis+as+a+multicellular+organism.">Thinking about Bacillus subtilis as a multicellular organism.</a> Curr. Opin. Microbiol. 10, 638-643 (2007).</li><li>Shapiro, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thinking+about+bacterial+populations+as+multicellular+organisms.">Thinking about bacterial populations as multicellular organisms.</a> Annu. Rev. Microbiol. 52, 81-104 (1998).</li></ol>

우리는 공개 할게 없다.

세균성 커뮤니티 유전자 증거 미생물 커뮤니티 33,34의 복잡의 특정 집합을 표현하는 세포의 subpopulations 보여주는 사실. 이 프로토콜은 관심사의 유전자의 표현이 미생물 지역 사회 내에서 전문화된 세포의 특정 subpopulation로 제한 여부를 확인하는 데 도움이됩니다. 전통적인 방법은 전체 미생물 커뮤니티 및 미생물 지역 사회 내에서 유전자 발현의 변동에 대한 유전자 발현이나 microarray 분...

<table border="1"><tbody><tr><td> 기술 </td><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td rowspan="11"> 조성을 MSgg </td><td> 5mM 인산 칼륨 </td><td> 로스 </td><td> 6878 </td></tr><tr><td> 100mM 맙스 </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> M1254 </td></tr><tr><td> 마그네슘 염화물 2mM </td><td> 로스 </td><td> 2189.1 </td></tr><tr><td> 칼슘 염화물 700μM </td><td> 로스 </td><td> A119.1 </td></tr><tr><td> 산화철 염화물 50μM </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> 157,740 </td></tr><tr><td> 아연 염화물 1μM </td><td> Applichem </td><td> A2076 </td></tr><tr><td> 티아민 2μM </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> 74,625 </td></tr><tr><td> 글리세롤 0.5 % </td><td> 로스 </td><td> 7533 </td></tr><tr><td> Gluta친구 0.5 % </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> 49,621 </td></tr><tr><td> 트립토판 50μg/ml </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> T0254 </td></tr><tr><td> 페닐알라닌 50μg/ml </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> P2126 </td></tr><tr><td> 세포 고정 </td><td> Paraformaldehyde </td><td> 로스 </td><td> 0335 </td></tr><tr><td></td><td> 장비의 명칭 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> Sonication </td><td> 세포 Sonicator </td><td> Bandelin </td><td> D-1000 </td></tr><tr><td> 형광 현미경 </td><td> 형광 현미경 </td><td> Leica </td><td> DMI6000B </td></tr><tr><td></td><td> 소프트웨어의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> 형광 현미경 </td> &lt;TD&gt; AsaF </td><td> Leica </td><td></td></tr><tr><td> 유동세포계측법 </td><td> FCASDiva </td><td> BD </td><td></td></tr><tr><td> 유동세포계측법 </td><td> FlowJo </td><td> Treestar </td><td></td></tr></tbody></table>

single-cell analysis of bacillus subtilis biofilms using fluorescence microscopy and flow cytometry

Biofilm 형성은 거의 모든 박테리아 1-6에 일반 속성입니다. 박테리아가 biofilms를 형성하면, 전지는 주로 7-10 기타 요인 중에서 단백질과 exopolysaccharides에 의해 형성되는 세포외 기질에 쌌다 있습니다. 미생물 커뮤니티는 종종 11-17 특화된 세포의 뚜렷한 subpopulation의 분화를 보여줍니다 biofilm 내에서 이탈식. 이러한 subpopulations가 공존하며 종종 biofilm 18-21 사이 공간과 시간적 조직을 보여줍니다. 모델 유기체 바실러스 subtilis의 Biofilm 형성은 전문적인 세포의 뚜렷한 subpopulations의 분화가 필요합니다. 그중 biofilm의 세포외 기질을 생산하고 분비하는 책임 매트릭스 제작자의 subpopulation는 biofilm 형성 11,19 위해 필수적입니다. 따라서 매트릭스 생산자의 차별화는 B에 biofilm 형성에 각인되어있는 것입니다 subtilis. 우리는 B.의 biofilms에서 매트릭스 생산 subpopulation을 시각화하고 수치 형광 기자를 사용한 subtilis 15,19,22-24. 구체적으로, 우리는 매트릭스 생산 subpopulation 자기 생산 세포 신호 surfactin 25 존재에 대한 응답으로 차별화 것을 관찰했습니다. 흥미롭게도 surfactin는 매트릭스 생산자 15 subpopulation과 다른 특수 세포 subpopulation에 의해 생산됩니다. 우리는이 보고서 바실러스 subtilis의 biofilms 이내 매트릭스 생산자와 surfactin 생산자의 subpopulation을 시각화하고 계량하는 데 필요한 기술적인 접근 방식에 자세히 있습니다. 이렇게하려면 행렬 생산 및 surfactin 생산에 필요한 유전자의 형광 기자 B.의 염색체에 삽입됩니다 subtilis. 기자는 전문화된 세포 subpopulation에 표현됩니다. 다음 subpopulations가 될 수 있습니다형광 현미경 및 유동세포계측법합니다 (그림 1 참조)을 사용하여 모니터. 전문 세포의 다른 subpopulations는 박테리아의 다세포 지역 사회 내에 공존한다는 사실은 우리에게 prokaryotes의 유전자 발현의 조절에 대해 다른 관점을 제공합니다. 이 프로토콜은 실험적으로 이러한 현상을 해결하고 쉽게 미생물 지역 사회 내에서 phenotypic 이질의 기본 분자 메커니즘을 명료하게하다하기 위해 다른 작업 모델에 적용할 수 있습니다.

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Single-cell Analysis of Bacillus subtilis Biofilms Using Fluorescence Microscopy and Flow Cytometry

미생물 biofilms은 일반적으로 전문의 세포 독특한 subpopulations에 의해 형성된다. 이러한 subpopulations의 단일 세포 분석은 형광 기자의 사용을 필요로합니다. 여기 몇 가지 subpopulationswithin을 시각화하고 모니터하는 프로토콜을 설명<em&gt; B. subtilis</em&gt; 형광 현미경 및 유동세포계측법을 사용 biofilms.

의 단일 세포 분석 바실러스 subtilis</em형광 현미경 및 유동세포계측법 사용> Biofilms

Biofilm formation is a general attribute to almost all bacteria 1-6. When bacteria form biofilms, cells are encased in extracellular matrix that is mostly ...

single-cell-analysis-bacillus-subtilis-biofilms-using-fluorescence

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Single-cell Analysis of Bacillus subtilis Biofilms Using Fluorescence Microscopy and Flow Cytometry

20.3K 조회수.  University of Würzburg. 미생물 biofilms은 일반적으로 전문의 세포 독특한 subpopulations에 의해 형성된다. 이러한 subpopulations의 단일 세포 분석은 형광 기자의 사용을 필요로합니다. 여기 몇 가지 subpopulationswithin을 시각화하고 모니터하는 프로토콜을 설명 B. subtilis 형광 현미경 및 유동세포계측법을 사용 biofilms.

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Flow Cytometry Analysis of Immune Cells Within Murine Aortas

Atherosclerosis is a chronic inflammatory process of medium and large size vessels that is characterized by the formation of plaques consisting of foam cells, immune cells, vascular endothelial and smooth muscle cells, platelets, extracellular matrix, and a lipid-rich core with extensive necrosis and fibrosis of surrounding tissues.1 The innate and adaptive arms of the immune response are involved in the initiation, development and persistence of atherosclerosis.2, 3 There is a significant body of evidence that different subsets of the immune cells, such as macrophages, dendritic cells, T and B lymphocytes, are present within the aortas of healthy and atherosclerosis-prone mice4. Additionally, immune cells are found in the surrounding aortic adventitia which suggests an important role of this tissue in atherogenesis.2
For some time, the quantitative detection of different types of immune cells, their activation status, and the cellular composition within the aortic wall was limited by RT-PCR and immunohistochemical methods for the study of atherosclerosis. Few attempts were made to perform flow cytometry using human aortas, and a number of problems, such as a high autofluorescence, have been reported5,6. Human atherosclerotic plaques were digested with collagenase 1, and free cells were collected and stained for CD14+/CD11c+ to highlight macrophage-derived foam cells. In this study, a "mock" channel was used to avoid false-positive staining.6 Necrotic materials accumulating during the digestion process give rise in a large amount of debris that generates a high autofluorescence in aortic samples. To resolve this problem, a panel of negative and positive controls has been proposed, but only double staining could be applied in these samples. We have developed a new flow cytometry-based method7 to analyze the immune cell composition and characterize the activation, proliferation, differentiation of immune cells in healthy and atherosclerosis-prone aorta. This method allows the investigation of the immune cell composition of the aortic wall and opens possibilities to use a broad spectrum of immunological methods for investigations of immune aspects of this disease.

This paper presents a flow cytometry-based method to investigate the immune composition of aortas. The paper also illustrates an additional technique that allows examining surrounding adventitia and vessel wall separately. This method opens possibilities to perform phenotypical analyses of aortic leukocytes and apply several immunological assays for atherosclerosis studies.

Murine Aortas 이내에 면역 세포의 흐름 Cytometry 분석

Atherosclerosis is a chronic inflammatory process of medium and large size vessels that is characterized by the formation of plaques consisting of foam ...

연구

면역학 및 감염병학

Live Cell Imaging of Bacillus subtilis and Streptococcus pneumoniae using Automated Time-lapse Microscopy

During the last few years scientists became increasingly aware that average data obtained from microbial population based experiments are not representative of the behavior, status or phenotype of single cells. Due to this new insight the number of single cell studies rises continuously (for recent reviews see 1,2,3). However, many of the single cell techniques applied do not allow monitoring the development and behavior of one specific single cell in time (e.g. flow cytometry or standard microscopy).
Here, we provide a detailed description of a microscopy method used in several recent studies 4, 5, 6, 7, which allows following and recording (fluorescence of) individual bacterial cells of Bacillus subtilis and Streptococcus pneumoniae through growth and division for many generations. The resulting movies can be used to construct phylogenetic lineage trees by tracing back the history of a single cell within a population that originated from one common ancestor. This time-lapse fluorescence microscopy method cannot only be used to investigate growth, division and differentiation of individual cells, but also to analyze the effect of cell history and ancestry on specific cellular behavior. Furthermore, time-lapse microscopy is ideally suited to examine gene expression dynamics and protein localization during the bacterial cell cycle. The method explains how to prepare the bacterial cells and construct the microscope slide to enable the outgrowth of single cells into a microcolony. In short, single cells are spotted on a semi-solid surface consisting of growth medium supplemented with agarose on which they grow and divide under a fluorescence microscope within a temperature controlled environmental chamber. Images are captured at specific intervals and are later analyzed using the open source software ImageJ.

Live Cell Imaging of Bacillus subtilis and Streptococcus pneumoniae using Automated Time-lapse Microscopy

This protocol provides a step-by-step procedure to monitor single cell behavior of different bacteria in time using automated fluorescence time-lapse microscopy. Furthermore, we provide guidelines how to analyze the microscopy images.

라이브 셀 이미징 바실러스 subtilis과 연쇄상 구균 pneumoniae 자동 시간 저속 현미경을 사용하여

During the last few years scientists became increasingly aware that average data obtained from microbial population based experiments are not ...

A Simple and Rapid Protocol to Non-enzymatically Dissociate Fresh Human Tissues for the Analysis of Infiltrating Lymphocytes

The ability of malignant cells to evade the immune system, characterized by tumor escape from both innate and adaptive immune responses, is now accepted as an important hallmark of cancer. Our research on breast cancer focuses on the active role that tumor infiltrating lymphocytes play in tumor progression and patient outcome. Toward this goal, we developed a methodology for the rapid isolation of intact lymphoid cells from normal and abnormal tissues in an effort to evaluate them proximate to their native state. Homogenates prepared using a mechanical dissociator show both increased viability and cell recovery while preserving surface receptor expression compared to enzyme-digested tissues. Furthermore, enzymatic digestion of the remaining insoluble material did not recover additional CD45+ cells indicating that quantitative and qualitative measurements in the primary homogenate likely genuinely reflect infiltrating subpopulations in the tissue fragment. The lymphoid cells in these homogenates can be easily characterized using immunological (phenotype, proliferation, etc.) or molecular (DNA, RNA and/or protein) approaches. CD45+ cells can also be used for subpopulation purification, in vitro expansion or cryopreservation. An additional benefit of this approach is that the primary tissue supernatant from the homogenates can be used to characterize and compare cytokines, chemokines, immunoglobulins and antigens present in normal and malignant tissues. This protocol functions extremely well for human breast tissues and should be applicable to a wide variety of normal and abnormal tissues.

This protocol describes the rapid non-enzymatic dissociation of fresh human tissue fragments for qualitative and quantitative assessment of CD45+ cells (lymphocytes/leukocytes) present in various normal and malignant human tissues. Additionally, the supernatant obtained from the primary tissue homogenate can be collected and stored for further analysis or experimentation.

침투 림프구의 분석을위한 비 효소 해리 신선한 인간의 조직에 대한 간단하고 빠른 프로토콜

The ability of malignant cells to evade the immune system, characterized by tumor escape from both innate and adaptive immune responses, is now accepted ...

Prevention of Heat Stress Adverse Effects in Rats by Bacillus subtilis Strain

This study was designed to evaluate the protective effect of the Bacillus subtilis strain against complications related to heat stress. Thirty-two Sprague-Dawley rats were used in this study. Animals were orally treated twice a day for two days with B. subtilis BSB3 strain or PBS. The next day after the last treatment, each group was divided and two experimental groups (one treated with PBS and one treated with B. subtilis) were placed at 45 oC for 25 min. Two control groups stayed for 25 min at room temperature. All rats were euthanized and different parameters were analyzed in all groups. Adverse effects of heat stress are registered by the decrease of villi height and total mucosal thickness in the intestinal epithelium; translocation of bacteria from the lumen; increased vesiculation of erythrocytes and elevation of the lipopolysaccharides (LPS) level in the blood. The protective efficacy of treatment is evaluated by prevention of these side effects. The protocol was set up for the oral treatment of rats with bacteria for prevention of heat stress complications, but this protocol can be modified and used for other routes of administration and for analysis of different compounds.

Prevention of Heat Stress Adverse Effects in Rats by Bacillus subtilis Strain

We described a protocol for prevention of heat stress effects in rats by oral pre-treatment with beneficial bacteria. This protocol can be modified and used for various routes of administration and for analysis of different compounds.

히트의 예방에 의한 흰쥐의 반작용을 스트레스<em&gt; 고초균</em&gt; 스트레인

This study was designed to evaluate the protective effect of the Bacillus subtilis strain against complications related to heat stress. Thirty-two ...

Methodologies for Studying B. subtilis Biofilms as a Model for Characterizing Small Molecule Biofilm Inhibitors

This work assesses different methodologies to study the impact of small molecule biofilm inhibitors, such as D-amino acids, on the development and resilience of Bacillus subtilis biofilms. First, methods are presented that select for small molecule inhibitors with biofilm-specific targets in order to separate the effect of the small molecule inhibitors on planktonic growth from their effect on biofilm formation. Next, we focus on how inoculation conditions affect the sensitivity of multicellular, floating B. subtilis cultures to small molecule inhibitors. The results suggest that discrepancies in the reported effects of such inhibitors such as D-amino acids are due to inconsistent pre-culture conditions. Furthermore, a recently developed protocol is described for evaluating the contribution of small molecule treatments towards biofilm resistance to antibacterial substances. Lastly, scanning electron microscopy (SEM) techniques are presented to analyze the three-dimensional spatial arrangement of cells and their surrounding extracellular matrix in a B. subtilis biofilm. SEM facilitates insight into the three-dimensional biofilm architecture and the matrix texture. A combination of the methods described here can greatly assist the study of biofilm development in the presence and absence of biofilm inhibitors, and shed light on the mechanism of action of these inhibitors.

Methodologies for Studying B. subtilis Biofilms as a Model for Characterizing Small Molecule Biofilm Inhibitors

This study presents the development of reproducible methodologies to study biofilm inhibitors and their effects on Bacillus subtilis multicellularity.

유학을위한 방법론<em&gt; B. 서브 틸리</em작은 분자 바이오 필름 억제제를 특성화 모델로&gt; 바이오 필름

This work assesses different methodologies to study the impact of small molecule biofilm inhibitors, such as D-amino acids, on the development and ...

Fluorescence-activated Cell Sorting for Purification of Plasmacytoid Dendritic Cells from the Mouse Bone Marrow

Fluorescence-activated cell sorting (FACS) is a technique to purify specific cell populations based on phenotypes detected by flow cytometry. This method enables researchers to better understand the characteristics of a single cell population without the influence of other cells. Compared to other methods of cell enrichment, such as magnetic-activated cell sorting (MCS), FACS is more flexible and accurate for cell separation due to the ability of phenotype detection by flow cytometry. In addition, FACS is usually capable of separating multiple cell populations simultaneously, which improves the efficiency and diversity of experiments. Although FACS has some limitations, it has been broadly used to purify cells for functional studies in both in vitro and in vivo settings. Here we report a protocol using fluorescence-activated cell sorting to isolate a very rare population of immune cells, plasmacytoid dendritic cells (pDC), with high purity from the bone marrow of lupus-prone mice for in vitro functional studies of pDC.

We report a protocol using fluorescence-activated cell sorting to isolate plasmacytoid dendritic cells (pDC) with high purity from the bone marrow of lupus-prone mice for functional studies of pDC.

마우스 골수에서 형질 수지상 세포의 정화를위한 형광 활성화 셀 정렬

Fluorescence-activated cell sorting (FACS) is a technique to purify specific cell populations based on phenotypes detected by flow cytometry. This method ...

Isolation and In Vitro Culture of Murine and Human Alveolar Macrophages

Alveolar macrophages are terminally differentiated, lung-resident macrophages of prenatal origin. Alveolar macrophages are unique in their long life and their important role in lung development and function, as well as their lung-localized responses to infection and inflammation. To date, no unified method for identification, isolation, and handling of alveolar macrophages from humans and mice exists. Such a method is needed for studies on these important innate immune cells in various experimental settings. The method described here, which can be easily adopted by any laboratory, is a simplified approach to harvesting alveolar macrophages from bronchoalveolar lavage fluid or from lung tissue and maintaining them in vitro. Because alveolar macrophages primarily occur as adherent cells in the alveoli, the focus of this method is on dislodging them prior to harvest and identification. The lung is a highly vascularized organ, and various cell types of myeloid and lymphoid origin inhabit, interact, and are influenced by the lung microenvironment. By using the set of surface markers described here, researchers can easily and unambiguously distinguish alveolar macrophages from other leukocytes, and purify them for downstream applications. The culture method developed herein supports both human and mouse alveolar macrophages for in vitro growth, and is compatible with cellular and molecular studies.

Isolation and In Vitro Culture of Murine and Human Alveolar Macrophages

This communication describes methodologies for isolation and culture of alveolar macrophages from humans and murine models for experimental purposes.

고립과 Murine 인간과 치경 대 식 세포의 생체 외에서 문화

Alveolar macrophages are terminally differentiated, lung-resident macrophages of prenatal origin. Alveolar macrophages are unique in their long life and ...

Characterization of Human Monocyte Subsets by Whole Blood Flow Cytometry Analysis

Monocytes are key contributors in various inflammatory disorders and alterations to these cells, including their subset proportions and functions, can have pathological significance. An ideal method for examining alterations to monocytes is whole blood flow cytometry as the minimal handling of samples by this method limits artifactual cell activation. However, many different approaches are taken to gate the monocyte subsets leading to inconsistent identification of the subsets between studies. Here we demonstrate a method using whole blood flow cytometry to identify and characterize human monocyte subsets (classical, intermediate, and non-classical). We outline how to prepare the blood samples for flow cytometry, gate the subsets (ensure contaminating cells have been removed), and determine monocyte subset expression of surface markers &#8212; in this example M1 and M2 markers. This protocol can be extended to other studies that require a standard gating method for assessing monocyte subset proportions and monocyte subset expression of other functional markers.

Here we present a protocol for characterizing monocyte subsets by whole blood flow cytometry. This includes outlining how to gate the subsets and assess their expression of surface markers and giving an example of the assessment of the expression of M1 (inflammatory) and M2 markers (anti-inflammatory).

전체 혈액에 의해 인간 Monocyte 하위 집합의 Flow Cytometry 분석

Monocytes are key contributors in various inflammatory disorders and alterations to these cells, including their subset proportions and functions, can ...

Quantification of Efferocytosis by Single-cell Fluorescence Microscopy

Studying the regulation of efferocytosis requires methods that are able to accurately quantify the uptake of apoptotic cells and to probe the signaling and cellular processes that control efferocytosis. This quantification can be difficult to perform as apoptotic cells are often efferocytosed piecemeal, thus necessitating methods which can accurately delineate between the efferocytosed portion of an apoptotic target versus residual unengulfed cellular fragments. The approach outlined herein utilizes dual-labeling approaches to accurately quantify the dynamics of efferocytosis and efferocytic capacity of efferocytes such as macrophages. The cytosol of the apoptotic cell is labeled with a cell-tracking dye to enable monitoring of all apoptotic cell-derived materials, while surface biotinylation of the apoptotic cell allows for differentiation between internalized and non-internalized apoptotic cell fractions. The efferocytic capacity of efferocytes is determined by taking fluorescent images of live or fixed cells and quantifying the amount of bound versus internalized targets, as differentiated by streptavidin staining. This approach offers several advantages over methods such as flow cytometry, namely the accurate delineation of non-efferocytosed versus efferocytosed apoptotic cell fractions, the ability to measure efferocytic dynamics by live-cell microscopy, and the capacity to perform studies of cellular signaling in cells expressing fluorescently-labeled transgenes. Combined, the methods outlined in this protocol serve as the basis for a flexible experimental approach that can be used to accurately quantify efferocytic activity and interrogate cellular signaling pathways active during efferocytosis.

Efferocytosis, the phagocytic removal of apoptotic cells, is required to maintain homeostasis and is facilitated by receptors and signaling pathways that allow for the recognition, engulfment, and internalization of apoptotic cells. Herein, we present a fluorescence microscopy protocol for the quantification of efferocytosis and the activity of efferocytic signaling pathways.

단일 세포 형광 현미경 검사 법에 의해 Efferocytosis의 정량화

Studying the regulation of efferocytosis requires methods that are able to accurately quantify the uptake of apoptotic cells and to probe the signaling ...

Preparation of Whole Bone Marrow for Mass Cytometry Analysis of Neutrophil-lineage Cells

In this article, we present a protocol that is optimized to preserve neutrophil-lineage cells in fresh BM for whole BM CyTOF analysis. We utilized a myeloid-biased 39-antibody CyTOF panel to evaluate the hematopoietic system with a focus on the neutrophil-lineage cells by using this protocol. The CyTOF result was analyzed with an open-resource dimensional reduction algorithm, viSNE, and the data was presented to demonstrate the outcome of this protocol. We have discovered new neutrophil-lineage cell populations based on this protocol. This protocol of fresh whole BM preparation may be used for 1), CyTOF analysis to discover unidentified cell populations from whole BM, 2), investigating whole BM defects for patients with blood disorders such as leukemia, 3), assisting optimization of fluorescence-activated flow cytometry protocols that utilize fresh whole BM.

Here, we present a protocol to process fresh bone marrow (BM) isolated from mouse or human for high-dimensional mass cytometry (Cytometry by Time-Of-Flight, CyTOF) analysis of neutrophil-lineage cells.

호중구 계보 세포의 질량 세포 분석 분석을위한 전체 골수의 준비

In this article, we present a protocol that is optimized to preserve neutrophil-lineage cells in fresh BM for whole BM CyTOF analysis. We utilized a ...

의 단일 세포 분석 바실러스 subtilis Biofilms