DIY 극저온 회수 장치 프로젝트 암 연구 프로그램, 과학 버지니아 학원에 메리 루이스 앤드류스 수상의 후원 &quot;생물 정보학 및 분자 접근법을 사용하여 진핵 세포의 모델링 세균성 단백질 prenylation&quot;, &quot;플라즈마에서 RNA 편집의 생리 의미의 과정에서 테스트되었습니다 토마스 F. Jeffress와 케이트 밀러 Jeffress 기념관 신뢰와 국가 계약 16.740.11.0364 (과학 교육부, 러시아)의 후원 돌기 세포. &quot; 우리는 RNA 무결성 실험과 도움 베스 EOM 감사드립니다.

1. Cryoboxes의 검색을 위해 Cryotolerant 장치의 조립 <ol><li> . 펜치를 사용하여, 3 양면 강한 넥타이 (그림 1A)하게 패 모양의 강한 타이 그림 1B에 표시된 참고 한쪽을 평탄케 : 강한 타이의 크기는 Dewar의 목의 직경에 따라 선택하실 수 있습니다 . </li><li> . 그림 3 (AB)와 같이 Cryoscoop 기반을 형성 크라운 볼트 너트, 와셔 및 나사를 사용하여 강한 타이 T 스트랩 (그림 2) 참고 두 같은 강한 유대 관계를 확보 : 두 개의 강한 유대 관계는의 검색을 허용하는 데 사용됩니다 5 ½ 인치 × 5 ½ 인치 cryoboxes. </li><li> 홈 붙이 플레이트 (그림 4)를 사용하여 홈 붙이 플레이트의 한쪽 끝을에 슬롯이 강한 넥타이 T 스트랩의 슬롯을 정렬하고 Hillman 너트와 볼트 (그림 5)의 도움으로 두 가지를 확보 참고 :. 경우 홈 붙이 플레이트와 강한 넥타이가 공동되지 않습니다내가 미리 뚫고 구멍으로, 당신은 구멍이 초경 드릴 비트를 사용 뚫고해야 할 것이다. </li><li> 그림 6과 같이 펜치의 도움으로 홈 붙이 접시의 다른 쪽 끝을 구부려. (이 단계는 선택 사항입니다.) </li><li> 때 액체 질소에서 그림 6과 같이 좋은 장비를 파악하기 위해 거품으로 핸들을 넣어. (선택 사항) 참고 : autoclaving 이전에 거품을 제거합니다. </li></ol> 2. Cryovials의 검색을 위해 Cryotolerant 장치의 조립 Cryotolerant DIY 복구 장치도 cryovials의 검색에 맞게 조정 할 수 있습니다. 이것은 액체 질소 (그림 7)에서 튜브를 떠서 위해 변조와 같이 스테인리스 스트레이너와 플랫베이스를 대체하는 것입니다. <ol><li> 나사가 빠지다 크라운 견과류와 홈 붙이 접시에 강한 타이 T 스트랩을 장착 볼트. </li><li> 홈 붙이 접시에 스테인리스 스트레이너를 부착하기 전에 조심스럽게의 목을 구부., 이것은 쉽게 장치와 함께 작전을하게 스트레이너는 입술로 온다면, 입술을 아래로 구부 위해 펜치를 사용하여 레이 (그림 8) 참고 닮은 각도에서 동양 기지 펜치의 도움으로 거르는. </li><li> 홈 붙이 접시 구멍과 함께 스트레이너의 손잡이에 구멍을 정렬하고 Hillman 견과류와 그림 8과 같이 볼트 도움 참고로 여과기를 확보 :. 스트레이너는 사전 뚫고 구멍으로 나오지 않으면, 당신이 필요합니다 초경 드릴 비트로 뚫고 구멍을 가지고 준비합니다. </li></ol> 3. Dewar에서 Cryoboxes 및 Cryovials 검색 중 <ol><li> 시작하려면 극저온 장갑을 끼도록하고 안전한 공간을 허용하도록 Dewar에서 1 개 또는 2 개 냉장고 선반을 제거합니다. </li><li> 부드럽게 강한 타이 T 스트랩베이스 (그림 5)를 들으며 직립 Cryotolerant DIY 복구 장치와 Dewar 하단 데리고 상자 falle를 수집즉시 따뜻한 물체와 접촉에 액체 질소 종기 질소 가스 (Leidenfrost 효과) 절연에 개체를 뒤덮었 :. Dewar 탱크주의의 하단으로 그렇죠. 샘플 회수하기 전에 장치를 냉각하기 위해 천천히 Dewar에 장치를 담가 액체 질소가 위의 단계를 진행하기 전에 충분히 장치를 냉각 수 있습니다. </li><li> 항아리 밖으로 나가게 냉동고 상자와 약속 Dewar의 성벽을 따라 수직으로 장치를 당겨. </li><li> Dewar의 바닥에서 가져온 상자를 잡아. </li><li> cryovials를 검색하는 경우, 부드럽게 스트레이너 (그림 9)를 들으며 cryoscoop와 Dewar의 바닥을 다쳤어요. </li><li> cryobox 검색과 마찬가지로 직립 장치를 끌어와 스트레이너에서 수집한 튜브를 잡아 야지. </li></ol> 4. 대표 결과 유전자 발현 연구의 주요 과제는 RNA의 품질은 저장 조건에 따라 다릅니다있다는 것입니다냉동 조직 샘플 및 RNA 추출 4. 그림 10 모두에 대해 총 RNA의 무결성에 대한 시료 처리의 효과가 나타납니다. 동일한 조직 소스 (인간 지방)에서 총 RNA는 다양한 샘플 처리를 받게되었다. 이전 실험, 손상 총 RNA 움직여 약 두배 18S rRNA 밴드 (그림 10, 레인 1)과 같은 강렬한 같은 28S rRNA 밴드가있는 명확 28S와 18S rRNA 밴드를 보여줍니다. 18S 강도 비율 2시 1분 5에서 출발 :이 2시 1분 비율 (28S : 18S)는 부분적으로 저하 RNA는 얼룩, 또는 28S로 나타나는 반면, RNA이 그대로 있다고 표시입니다. 3-4 차선이 상당한 저하와 RNA 샘플을 묘사. 이러한 RNA 샘플은 따라서 정기가 타락한 튜브와 상자의 검색 (그림 10, 레인 3-4의 필요성으로 인해 decanting와 장기 저장 장치를 모델링, Dewar (방법)에서 단기 retrievals에 의해 반복되는 부분 defreezing를 받게되었다 ). 그러나 샘플 Dewar 서비스에 저장DIY 장치 (방법 B)을 사용하지 않고, 따라서 어떠한 부분 defreezing, 그대로 RNA를 (그림 10, 레인 2)이 포함되어 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig1.jpg" /> 1 그림. )베이스는 2 개의 3 양면의 강한 넥타이 표시된 치수로 구성되어 있습니다. 각 강력한 넥타이 하나의 큰 사전 뚫고 구멍 (고체 화살표) 및 각 얼굴에 여러 개의 작은 구멍 (작은 화살표)가 포함되어 있습니다. 이것은 너트와 볼트로 조임 허용하는 옵션을 제공합니다. 또한 작은 구멍 샘플 검색시 액체 질소의 빠른 배수를 허용합니다. B)에 강한 타이 각각의 한 측면은 L은 모양의 강한 넥타이 만드는 펜치의 도움으로 정리하고 있습니다. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig2.jpg" /> 그림 2. 강한 타이 T 스트랩이 함께 강한 유대 관계를 확보하는 데 사용됩니다. 강한 넥타이와 마찬가지로 T-스트랩 하나의 큰 사전 뚫고 구멍 (고체 화살표) 두 개의 작은 구멍 (smal 있습니다각 모서리에 &#39;화살표). 너트와 볼트를 사용하여 스트랩 - 이것은 T의 길이를 따라 강한 유대 관계를 확보하실 수 있습니다. 또한 홈 붙이 접시에 T-스트랩을 고정 수 있습니다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig3.jpg" /> 그림 3. ) 각 강한 넥타이) 나. 크라운 볼트 너트, 볼트와 와셔를 사용하여 길이를 따라, T-스트랩 중 한 코너로 고정되는 두 강한 유대은 5 ½ 인치 × 5 ½를 검색할 수 있도록 서로 인접 확보 cryoboxes 인치. X 2인치 등이 같은 작은 cryoboxes 들어,, 하나의 강한 넥타이는 T-스트랩없이 홈 붙이 판에 직접 고정 할 수 있습니다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig4.jpg" /> 그림 4. 플랫 플레이트는 손잡이로 사용됩니다 끌어들 였는데. 홈 붙이 접시의 길이는 Dewar의 깊이에 따라 달라집니다. 이 경우에는 홈 붙이 플레이트 4 피트가 사용되었습니다. 홈 붙이 판재의 두께는 중요 s입니다Dewar을 가득 액체 질소에서 샘플을 검색하는 동안 얇은 홈 붙이 번호판 (&lt;14 게이지) 장치가 어설픈하게 ince. <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig5.jpg" /> 그림 5는. 강한 유대 관계와 T 스트랩으로 구성된 플랫베이스 그런 다음 홈 붙이 접시의 한쪽 끝에 고정합니다. T 스트랩의 남은 모서리에있는 큰 구멍은 평면 접시 슬롯과 ​​정렬과 진수 볼트와 너트를 사용하여 고정한다. 이 장치는 현재 Dewar에서 cryoboxes를 검색하는 데 사용할 수 있습니다. <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig6.jpg" /> 그림 6. 홈 붙이 플랫 플레이트의 한쪽 끝을은 펜치를 사용하여 구부 러 특히 본 사건과 같이 깊은 Dewars을 위해 더 나은 손잡이를 제공하기 위해 거품으로 덮여있다. <img alt="그림 7" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig7.jpg" /> 그림 7. 와이어 메쉬와 스테인레스 스틸 손잡이와 스트레이너Dewar에서 cryovials를 검색하는 데 사용됩니다. 핸들 슬롯이 함께 제공되지 않은 경우 초경 비트와 드릴은 구멍을 뚫는 데 필요한 것입니다. <img alt="그림 8" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig8.jpg" /> 그림 8. cryovials의 검색을 쉽게하기 위해서는 스트레이너는 국자 모양의 스트레이너를 얻을 펜치를 사용하여 목을 따라 굽습니다. 스트레이너는이 사건에서와 같이 입술과 함께 제공되는 경우, 펜치는 그것을 구부하는 데 사용할 수 있습니다. 이 여과기는 Dewar 내에 잡히지 않길 보장합니다. <img alt="그림 9" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig9.jpg" /> 그림 9. 스트레이너는 16 진수 너트와 볼트를 사용하여 한쪽 끝에 홈 붙이 플랫 플레이트로 고정됩니다. <img alt="그림 10" src="/files/ftp_upload/3903/3903fig10.jpg" /> 10 그림. 총 RNA의 샘플 무결성은 다른 시료 처리 조건에 노출. 탐구 RNA 품질이 C를 처리 샘플에 영향하는 방법onditions는 같은 소스로부터 RNA 샘플의 집합 handlings 두 가지 방법을 받게되었다. 방법 따라서 DIY 장치를 사용하여 샘​​플 retrievals를 받게 Dewar, 아니 일부 defreezing에서 RNA의 스토리지로 구성되어. 방법 B는 따라서 정기가 무너졌다 샘플을 가져오기위한 decanting와 장기 저장 장치를 모델링, Dewar에서 단기 retrievals에 의해 반복되는 부분 defreezing 들어서는 Dewar의 RNA의 스토리지로 구성되어. 총 RNA 무결성 후 겔 전기 영동에 의해 분석되었다. Lane1 : 샘플 전에 Dewar의 저장 공간, 레인 2 : 방법에 의해 검색 들어서는 Dewar의 샘플, 레인 3, 4 : 방법 B로 검색 들어서는 Dewar의 샘플, M : 100 BP의 사다리.

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관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

Dewar 탱크의 바닥에서 cryoboxes 및 cryovials를 검색하는 가장 일반적인 방법 중 하나는 여분의 용기에 액체 질소를 가만히 따르다하고 플라스크에 남아있는 또는 decanted 액체 질소에 떠 샘플을 끄집어하는 것입니다. 그러나 이것은 액체 질소 증기에 장시간 노출이에 의한 극저온 화상이나 질식의 원인이 될 수 있습니다 안전 연습이다. 타락한의 cryovials의 검색의 다른 일반적인 방법은 cryovial ?...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 댓글 </td></tr><tr><td> Hillman 그룹 도금 홈 붙이 작은 1-3/8 X 4피트, 14 게이지 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td> N / A </td><td> 1 단위 필수 </td></tr><tr><td> 크라운 볼트 스테인레스 # 6 - 타원형 헤드 십자 드라이브 머신 스크류 인치 32 X 8분의 3 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td> 모델 # 42281 </td><td> 필수 4 대 </td></tr><tr><td> 크라운 볼트 아연 도금 강판 펜더 와셔 인치 X 1-1/2 인치 8분의 3 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td> 모델 # 20122 </td><td> 필수 4 대 </td></tr><tr><td> 크라운 볼트 아연 도금 # 8-32 머신 스크류 너트 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td> 모델 # 18512 </td><td> 필수 4 대 </td></tr><tr><td> 심슨 강한 - 타이 BC40Z 절반 자료 인치 4 In.x4 </td><td> 로컬 하드웨어쇼핑 </td><td> 모델 # BC40Z </td><td> 필수 2 대 </td></tr><tr><td> T 벨트 매세요 X 6인치 심슨 강한 타이 6 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td> 모델 # 66T </td><td> 1 단위 필수 </td></tr><tr><td> Oneida 6 &quot;메쉬 스트레이너 </td><td> 지역 식료품 가게 </td><td> 모델 # 7859W </td><td> 1 단위 필수 </td></tr><tr><td> Hillman 그룹은 16 진수 너트 3/8-16을 아연 도금 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td> 모델 # : 810509 </td><td> 필수 6 대 </td></tr><tr><td> Hillman 그룹은 16 진 볼트 3/8- 16 아연 도금 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td></td><td> 필수 4 대 </td></tr><tr><td> 절연을위한 폼 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td></td><td> 1 단위 필수 </td></tr><tr><td> 드라이버 스크류 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td></td><td> 1 단위 필수 </td></tr><tr><td> 펜치 </td><td> 로컬 하드웨어 상점 </td><td></td><td> 1 단위 필수 </td></tr></tbody></table>

do-it-yourself device for recovery of cryopreserved samples accidentally dropped into cryogenic storage tanks

액체 질소 (-196도 ℃) 액체 압력 하에서 보관 매우 춥고, 무취, 무색이다. 그것은 일반적으로 같은 혈액, 세포 및 조직의 1,2 등 생물 학적 물질의 장기 보관을위한 극저온 유체로 사용됩니다. 액체 질소 극저온 자연, 샘플 보존에 적합 반면, 문의에 대한 살아있는 조직의 급속한 동결을 일으킬 수 있습니다 - &#39;극저온 화상&#39;2로 알려진, 밀접하게 저장 및 Dewars에서 샘플 검색에 관련된 사람에 심한 동상으로 이어질 수 있습니다. 또한 액체 질소가 증발은 공기 중의 산소 농도를 줄이고, 특히 밀폐된 공간 2, 질식을 일으킬 수 있습니다. 실험실에서 생물 학적 샘플은 종종 Dewar 탱크 1 ~ 스테인레스 스틸 선반에 쌓인 cryovials 또는 cryoboxes에 저장됩니다. 이러한 스토리지 랙에은 랙에으로부터 줄어 드에서 박스를 방지하기 위해 긴 샤프트와 함께 하단에 제공됩니다루틴 처리시 Dewars. 모든 너무 자주, 그러나 귀중한 표본과 상자나 유리병 삐져 나올 액체 질소 채워 탱크의 바닥에 가라 앉다. 그러한 경우에는 샘플은 지루하고 여분의 용기 또는 폐기 그것에 액체 질소를 전송 후 검색할 수 있습니다. 상자와 유리병 후 비교적 안전하게 비우지 Dewar에서 회복 될 수 있습니다. 그러나, 액체 질소와 그 팽창 률의 극저온 자연 침몰한 샘플 회수 위험을 만듭니다. 이것은 일반적으로 시료 회수가 한 사람에 의해 실시 않을 것이 안전 기관에 의해 권장합니다. 또 다른 대안은 유리병 3 끄집어 상용 시원한 그래버이나 집게를 사용하는 것입니다. 그러나, 짙은 액체 충​​만 Dewars 내에서 제한된 가시들이 사용하는 주요 제한 포즈. 이 문서에서 우리는 안전하고 모두 극저온 유체를 포함하는 Dewar에서 샘플 검색을하게 Cryotolerant DIY 복구 장치의 건설을 설명기 쉬운.

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Do-It-Yourself Device for Recovery of Cryopreserved Samples Accidentally Dropped into Cryogenic Storage Tanks

여기에서 우리는 액체 질소로 가득 Dewar 탱크에서 샘플 검색을 위해 저렴한 비용, 내구성 cryotolerant 장치를 제시. 건설 장비의 모듈식 설계의 용이성은 극저온 탱크에서 시료를 쓰는 과정이 안전하고 쉽습니다.

Cryopreserved 샘플 복구를 위해 손수 함 장치 실수로 극저온 저장 탱크 떨어졌고

Liquid nitrogen is colorless, odorless, extremely cold (-196 &deg;C) liquid kept under pressure. It is commonly used as a cryogenic fluid for long term ...

do-it-yourself-device-for-recovery-cryopreserved-samples-accidentally

Research

JoVE Journal

Biology

25.0K 조회수.  George Mason University. 여기에서 우리는 액체 질소로 가득 Dewar 탱크에서 샘플 검색을 위해 저렴한 비용, 내구성 cryotolerant 장치를 제시. 건설 장비의 모듈식 설계의 용이성은 극저온 탱크에서 시료를 쓰는 과정이 안전하고 쉽습니다.

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Fabrication of a Microfluidic Device for the Compartmentalization of Neuron Soma and Axons

In this video, we demonstrate the technique of soft lithography with polydimethyl siloxane (PDMS) which we use to fabricate a microfluidic device for culturing neurons. Previously, a silicon wafer was patterned with the design for the neuron microfluidic device using SU-8 and photolithography to create a master mold, or what we simply refer to as a "master". Next, we pour the silicon polymer PDMS on top of the master which is then cured by heating the PDMS to 80&deg;C for 1 hour. The PDMS forms a negative mold of the device. The PDMS is then carefully cut and lifted away from the master. Holes are punched where the reservoirs will be and the excess PDMS trimmed away from the device. Nitrogen is used to blow away any excess debris from the device. At this point the devices are now ready for use and can either bonded to corning No. 1 cover glass with a plasma sterilizer/cleaner or can be reversibly bound to the cover glass by simply placing the device on top of the cover glass. The reversible bonding of the device to glass is covered in a separate video and requires first that the device be sterilized either with 70% ethanol or by autoclaving. Plasma treating sterilizes the devices so no further treatment is necessary. It is, however, important, when plasma-treating the devices, to add liquid to the devices within 10 minutes of the plasma treatment while the surfaces are still hydrophilic. Waiting longer than 10 minutes to add liquid to the device makes it difficult for the liquid to enter the device. The neuron devices are typically plasma-bound to cover glass and 0.5 mg/ml poly-L-lysine (PLL) in pH 8.5 borate buffer is immediately added to the device. After a minimum of 3 hours incubating with PLL, the devices are washed with dH2O water a minimum of 3 times with at least 15 minutes between each wash. Next, the water is removed and fresh media is added to the device. At this point the device is ready for use. It is important to remember at this point to never remove all the media from the device. Always leave media in the main channel.

In this video we demonstrate the technique of soft lithography with polydimethyl siloxane (PDMS) which we use to farbricate a microfluidic device for culturing neurons.

신경 소마와 Axons의 Compartmentalization위한 Microfluidic 장치의 제작

In this video, we demonstrate the technique of soft lithography with polydimethyl siloxane (PDMS) which we use to fabricate a microfluidic device for ...

연구

생물학

A Gradient-generating Microfluidic Device for Cell Biology

 The fabrication and operation of a gradient-generating microfluidic device for studying cellular behavior is described.  A microfluidic platform is an enabling experimental tool, because it can precisely manipulate fluid flows, enable high-throughput experiments, and generate stable soluble concentration gradients.  Compared to conventional gradient generators, poly(dimethylsiloxane) (PDMS)-based  microfluidic devices can generate stable concentration gradients of growth factors with well-defined profiles.  Here, we developed simple gradient-generating microfluidic devices with three separate inlets.  Three microchannels combined into one microchannel to generate concentration gradients.  The stability and shape of growth factor gradients were confirmed by fluorescein isothyiocyanate (FITC)-dextran with a molecular weight similar to epidermal growth factor (EGF).  Using this microfluidic device, we demonstrated that fibroblasts exposed to concentration gradients of EGF migrated toward higher concentrations.  The directional orientation of cell migration and motility of migrating cells were quantitatively assessed by cell tracking analysis.  Thus, this gradient-generating microfluidic device might be useful for studying and analyzing the behavior of migrating cells.

We describe a protocol for the microfabrication of the gradient-generating microfluidic device that can generate spatial and temporal gradients in well-defined microenvironment. In this approach, the gradient-generating microfluidic device can be used to study directed cell migration, embryogenesis, wound healing, and cancer metastasis.

세포 생물학을위한 그라디언트 생성 Microfluidic 장치

 The fabrication and operation of a gradient-generating microfluidic device for studying cellular behavior is described.  A microfluidic platform is an ...

Direct Tracheal Instillation of Solutes into Mouse Lung

Intratracheal instillations deliver solutes directly into the lungs. This procedure targets the delivery of the instillate into the distal regions of the lung, and is therefore often incorporated in studies aimed at studying alveoli. We provide a detailed survival protocol for performing intratracheal instillations in mice. Using this approach, one can target delivery of test solutes or solids (such as lung therapeutics, surfactants, viruses, and small oligonucleotides) into the distal lung. Tracheal instillations may be the preferred methodology, over inhalation protocols that may primarily target the upper respiratory tract and possibly expose the investigator to potentially hazardous substances. Additionally, in using the tracheal instillation protocol, animals can fully recover from the non-invasive procedure. This allows for making subsequent physiological measurements on test animals, or reinstallation using the same animal. The amount of instillate introduced into the lung must be carefully determined and osmotically balanced to ensure animal recovery. Typically, 30-75 &mu;L instillate volume can be introduced into mouse lung.

Intratracheal instillations deliver solutes directly into the lungs. This procedure targets the delivery of the instillate into the distal regions of the lung, and is therefore often incorporated in studies aimed at studying alveoli. We provide a detailed survival protocol for performing intratracheal instillations in mice.

마우스 폐에 Solutes 직접 Tracheal 떨어뜨림

Intratracheal instillations deliver solutes directly into the lungs.  This procedure targets the delivery of the instillate into the distal regions of the ...

Transplantation of Cells Directly into the Kidney of Adult Zebrafish

Regenerative medicine based on the transplantation of stem or progenitor cells into damaged tissues has the potential to treat a wide range of chronic diseases1. However, most organs are not easily accessible, necessitating the need to develop surgical methods to gain access to these structures. In this video article, we describe a method for transplanting cells directly into the kidney of adult zebrafish, a popular model to study regeneration and disease2. Recipient fish are pre-conditioned by irradiation to suppress the immune rejection of the injected cells3. We demonstrate how the head kidney can be exposed by a lateral incision in the flank of the fish, followed by the injection of cells directly in to the organ. Using fluorescently labeled whole kidney marrow cells comprising a mixed population of renal and hematopoietic precursors, we show that nephron progenitors can engraft and differentiate into new renal tissue - the gold standard of any cell-based regenerative therapy. This technique can be adapted to deliver purified stem or progenitor cells and/or small molecules to the kidney as well as other internal organs and further enhances the zebrafish as a versatile model to study regenerative medicine.

Cell transplantation is an essential technique for studying tissue regeneration and for developing cell-based therapies of disease. We demonstrate here a microsurgical technique that permits the transplantation of genetically labeled cells directly into the kidney of adult zebrafish fish.

직접 성인 Zebrafish의 신장에 세포의 이식

Regenerative medicine based on the transplantation of stem or progenitor cells into damaged tissues has the potential to treat a wide range of chronic ...

Test Samples for Optimizing STORM Super-Resolution Microscopy

STORM is a recently developed super-resolution microscopy technique with up to 10 times better resolution than standard fluorescence microscopy techniques. However, as the image is acquired in a very different way than normal, by building up an image molecule-by-molecule, there are some significant challenges for users in trying to optimize their image acquisition. In order to aid this process and gain more insight into how STORM works we present the preparation of 3 test samples and the methodology of acquiring and processing STORM super-resolution images with typical resolutions of between 30-50 nm. By combining the test samples with the use of the freely available rainSTORM processing software it is possible to obtain a great deal of information about image quality and resolution. Using these metrics it is then possible to optimize the imaging procedure from the optics, to sample preparation, dye choice, buffer conditions, and image acquisition settings. We also show examples of some common problems that result in poor image quality, such as lateral drift, where the sample moves during image acquisition and density related problems resulting in the 'mislocalization' phenomenon.

We describe the preparation of three test samples and how they can be used to optimize and assess the performance of STORM microscopes. Using these examples we show how to acquire raw data and then process it to acquire super-resolution images in cells of approximately 30-50 nm resolution.

최적화 STORM 슈퍼 해상도 현미경에 대한 테스트 샘플

STORM is a recently developed super-resolution microscopy technique with up to 10 times better resolution than standard fluorescence microscopy ...

Recovery of Adult Zebrafish Hearts for High-throughput Applications

Use of the zebrafish model system for studying development, regeneration, and disease is expanding toward use of adult hearts for cell dissociation and purification of RNA, DNA, and proteins. All of these applications demand the rapid recovery of significant numbers of zebrafish hearts to avoid gene regulatory, metabolic, and other changes that begin after death. Adult zebrafish hearts are also required for studying heart structure for a variety of mutants and for studying heart regeneration. However, the traditional zebrafish heart dissection is slow and difficult and requires specialized tools, making large-scale dissection of adult zebrafish hearts tedious. Traditional methods also harbor the risk of damaging the heart during the dissection. Here, we describe a method for dissection of adult zebrafish hearts that is fast, reproducible, and preserves heart architecture. Furthermore, this method does not require specialized tools, is painless for the zebrafish, can be performed on fresh or fixed specimens, and can be performed on zebrafish as young as one month old. The approach described expands the use of adult zebrafish for cardiovascular research.

Use of zebrafish for cardiovascular research is expanding towards research on adult hearts. For these applications, quick and simple isolation of cardiac tissues is key to avoid post-mortem changes and to obtain an adequate number of samples. Here, we describe a fast and reproducible method for dissecting adult zebrafish hearts.

높은 처리량 응용 프로그램에 대한 성인 Zebrafish의 마음의 복구

Use of the zebrafish model system for studying development, regeneration, and disease is expanding toward use of adult hearts for cell dissociation and ...

Quasi-metagenomic Analysis of Salmonella from Food and Environmental Samples

Quasi-metagenomics sequencing refers to the sequencing-based analysis of modified microbiomes of food and environmental samples. In this protocol, microbiome modification is designed to concentrate genomic DNA of a target foodborne pathogen contaminant to facilitate the detection and subtyping of the pathogen in a single workflow. Here, we explain and demonstrate the sample preparation steps for the quasi-metagenomics analysis of Salmonella enterica from representative food and environmental samples including alfalfa sprouts, ground black pepper, ground beef, chicken breast and environmental swabs. Samples are first subjected to the culture enrichment of Salmonella for a shortened and adjustable duration (4&#8211;24 h). Salmonella cells are then selectively captured from the enrichment culture by immunomagnetic separation (IMS). Finally, multiple displacement amplification (MDA) is performed to amplify DNA from IMS-captured cells. The DNA output of this protocol can be sequenced by high throughput sequencing platforms. An optional quantitative PCR analysis can be performed to replace sequencing for Salmonella detection or assess the concentration of Salmonella DNA before sequencing.

Quasi-metagenomic Analysis of Salmonella from Food and Environmental Samples

Here, we present a protocol to prepare DNA samples from food and environmental microbiomes for concerted detection and subtyping of Salmonella through quasimetagenomic sequencing. The combined use of culture enrichment, immunomagnetic separation (IMS), and multiple displacement amplification (MDA) allows effective concentration of Salmonella genomic DNA from food and environmental samples.&#160;

음식과 환경 샘플에서 살 모 넬 라 의 준 metagenomic 분석

Quasi-metagenomics sequencing refers to the sequencing-based analysis of modified microbiomes of food and environmental samples. In this protocol, ...

Reproductive Techniques for Ovarian Monitoring and Control in Amphibians

Ovarian control and monitoring in amphibians require a multi-faceted approach. There are several applications that can successfully induce reproductive behaviors and the acquisition of gametes and embryos for physiological or molecular research. Amphibians contribute to one-quarter to one-third of vertebrate research, and of interest in this context is their contribution to the scientific community&#39;s knowledge of reproductive processes and embryological development. However, most of this knowledge is derived from a small number of species. In recent times, the decimation of amphibians across the globe has required increasing intervention by conservationists. The captive recovery and assurance colonies that continue to emerge in response to the extinction risk make existing research and clinical applications invaluable to the survival and reproduction of amphibians held under human care. The success of any captive population is founded on its health and reproduction and the ability to develop viable offspring that carry forward the most diverse genetic representation of their species. For researchers and veterinarians, the ability to monitor and control ovarian development and health is, therefore, imperative. The focus of this article is to highlight the different assisted reproductive techniques that can be used to monitor and, where appropriate or necessary, control ovarian function in amphibians. Ideally, any reproductive and health issues should be reduced through proper captive husbandry, but, as with any animal, issues of health and reproductive pathologies are inevitable. Non-invasive techniques include behavioral assessments, visual inspection and palpation and morphometric measurements for the calculation of body condition indices and ultrasound. Invasive techniques include hormonal injections, blood sampling, and surgery. Ovarian control can be exercised in a number of ways depending on the application required and species of interest.

The study of amphibian biology provides valuable information on the reproductive, physiological, embryological and developmental processes that drive organisms of many taxonomic groups. Here, we present a comprehensive guide on different methodologies that can be used to study ovarian control and monitoring in amphibians.

양서류에서 난소 모니터링 및 제어를위한 생식 기술

Ovarian control and monitoring in amphibians require a multi-faceted approach. There are several applications that can successfully induce reproductive ...

Cryogenic Sample Loading into a Magic Angle Spinning Nuclear Magnetic Resonance Spectrometer that Preserves Cellular Viability

Dynamic nuclear polarization (DNP) can dramatically increase the sensitivity of magic angle spinning (MAS) nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy. These sensitivity gains increase as temperatures decrease and are large enough to enable the study of molecules at very low concentrations at the operating temperatures (~100 K) of most commercial DNP-equipped NMR spectrometers. This leads to the possibility of in-cell structural biology on cryopreserved cells for macromolecules at their endogenous levels in their native environments. However, the freezing rates required for cellular cryopreservation are exceeded during typical sample handling for DNP MAS NMR and this results in loss of cellular integrity and viability. This article describes a detailed protocol for the preparation and cryogenic transfer of a frozen sample of mammalian cells into a MAS NMR spectrometer.

Presented here is a protocol for cryogenic transfer of frozen samples into the dynamic nuclear polarization (DNP) magic angle spinning (MAS) nuclear magnetic resonance (NMR) probe. The protocol includes directions for rotor storage prior to the experiment and directions for viability measurements before and after the experiment.

셀룰러 생존력을 보존하는 마법의 각도 회전 핵 자기 공명 분광기에 극저온 샘플 로딩

Dynamic nuclear polarization (DNP) can dramatically increase the sensitivity of magic angle spinning (MAS) nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy. ...

Label-Free Imaging of Lipid Storage Dynamics in Caenorhabditis elegans using Stimulated Raman Scattering Microscopy

Lipid metabolism is a fundamental physiological process necessary for cellular and organism health. Dysregulation of lipid metabolism often elicits obesity and many associated diseases including cardiovascular disorders, type II diabetes, and cancer. To advance the current understanding of lipid metabolic regulation, quantitative methods to precisely measure in vivo lipid storage levels in time and space have become increasingly important and useful. Traditional approaches to analyze lipid storage are semi-quantitative for microscopic assessment or lacking spatio-temporal information for biochemical measurement. Stimulated Raman scattering (SRS) microscopy is a label-free chemical imaging technology that enables rapid and quantitative detection of lipids in live cells with a subcellular resolution. As the contrast is exploited from intrinsic molecular vibrations, SRS microscopy also permits four-dimensional tracking of lipids in live animals. In the last decade, SRS microscopy has been widely used for small molecule imaging in biomedical research and overcome the major limitations of conventional fluorescent staining and lipid extraction methods. In the laboratory, we have combined SRS microscopy with the genetic and biochemical tools available to the powerful model organism, Caenorhabditis elegans, to investigate the distribution and heterogeneity of lipid droplets across different cells and tissues and ultimately to discover novel conserved signaling pathways that modulate lipid metabolism. Here, we present the working principles and the detailed setup of the SRS microscope and provide methods for its use in quantifying lipid storage at distinct developmental timepoints of wild-type and insulin signaling deficient mutant C. elegans.

Label-Free Imaging of Lipid Storage Dynamics in Caenorhabditis elegans using Stimulated Raman Scattering Microscopy

Stimulated Raman scattering (SRS) microscopy allows selective, label-free imaging of specific chemical moieties and it has been effectively employed to image lipid molecules in vivo. Here, we provide a brief introduction to the principle of SRS microscopy and describe methods for its use in imaging lipid storage in Caenorhabditis elegans.

자극라만 산란 현미경 검사를 사용하여 Caenorhabditis elegans의 지질 저장 역학의 라벨 프리 이미징

Lipid metabolism is a fundamental physiological process necessary for cellular and organism health. Dysregulation of lipid metabolism often elicits ...