저자는 강화 된 유전자 총 배럴의 생산을위한 MRC-LMB 워크샵에게 감사의 말씀을 전합니다. 우리는 또한 장비와 자원의 사용을 위해 토론토 대학에서 박사 데이비드 R. Hampson에게 감사의 말씀을 전합니다.

동물과 동물 조직의 사용은 엄격하게 현지 법률과 규정에 따라 윤리위원회의 승인을 준수해야합니다. 모든 조직은 MRC-LMB의 동물 실험 지침을 준수이 연구 기간 동안 얻을. 재료 및 문화 미디어의 1 준비 <ol><li> 밀리 포어 물을 사용하여 모든 용액을 제조; 만 분석 급 시약을 사용합니다. 준비하고 (별도의 지시가없는 한) RT 모든 시약을 저장합니다. </li><li> HEPES 완충 식염수 (10 mM의 HEPES, 120 mM의 염화나트륨의 pH 7.2)의 500 mL로한다. 0.2 μm의 살균 필터 장치를 통해 필터링합니다. 4 ℃에서 보관하십시오. </li><li> (10 mM의 나 2 HPO 4, 2 mM의 KH 2 PO 4, 137 밀리미터의 NaCl, 2.7 mM의 KCl을 pH 7.4의 PBS) 인산염 완충 생리 식염수 500 mL로한다. 고압 증기 멸균에 의해 소독. </li><li> 100 N2 SU : 25 mM의 HEPES, 10 % 소 태아 혈청, 30 mM의 글루코스, 1 DMEM (둘 베코 변성 이글 배지)를 보완함으로써 신경 세포 배지를 준비pplement, 페니실린 - 스트렙토 마이신 1,100 U / ㎖; pH가 7.2. 0.2 μm의 살균 필터 장치와 필터. 4 ℃에서 보관하십시오. </li><li> 한 ML 100 % 에탄올에 20 mg을 PVP와 폴리 비닐 피 롤리 돈 (PVP) 원액을 확인합니다. -20 ° C에서 1 ㎖의 양, 동결 및 저장소로 나누어지는이. 솔루션을 작업하는 것은 0.05 밀리그램 / ㎖, 따라서 100 % 에탄올의 모든 4 ml의 PVP 원액의 10 μl를 추가합니다. </li><li> 밀리 포어 물에 0.05 M 스퍼 미딘 스톡 용액을 준비한다; 7.2로 pH를 조정합니다. </li><li> (멸균 스크류 캡 병 100 ㎖의 DMEM에서 2g 전기 등급 아가로 오스) DMEM에서 2 % 아가로 오스 솔루션을 확인하십시오. 아가로 오스가 용해 될 때까지이 전자 레인지. 필요한 경우, 몇 주 동안 4 ° C 냉장고에 보관하십시오. </li></ol> 의 Organotypic 조각의 2 준비 <ol><li> CO에 의해 C57 검은 색 잘린 다음이 질식을 원하는 시대의 여섯 쥐를 안락사. 측면 두개골 인하 난원 매그넘에서 시작에서 종료를 사용하여 뇌를 제거후각 엽 (叶). 조심스럽게 뇌를 노출 뒤쪽에서 두개골을 들어 올립니다. </li><li> 소뇌에 후각 엽 (叶)과 전두엽 피질, 그리고 주동이의 사이에 잘​​라. 조심스럽게 뇌의 주동이의 부분을 들어 올려 시신경을 잘라. 마지막으로, 뇌를 제거하고 얼음에 얼음 차가운의 HEPES 완충 식염수로 가득 배양 접시에 넣습니다. </li><li> 미세 집게를 사용하여 피아를 벗겨, 해부 현미경을 사용하여; 신중하게 뇌 주위 혈관과 수막을 제거합니다. </li><li> 작은받는 금형에 신선한 두뇌를 배치하고 약간 RT 이상으로 냉각 아가로 오스 솔루션을 포함한다. 그런 다음 신속하게 얼음에 배치하여 4 ° C에 금형을 냉각. NOTE : 생존의 손실을 피하기 위해 가능한 한 신속 슬라이스를 처리한다. </li><li> 아가로 오스가 설정되면 (5-10 분), 몰드로부터 아가로 편입 뇌를 제거 (필요한 경우 트림) 다음 vibroslicer 플랫폼에 접착제. 살균 얼음 차가운 PBS를 포함하는 vibroslicer 실이 점을 놓습니다. 디이후의 오염을 최소화하기 위해 70 % 에탄올로 사용되기 전에 vibroslicer 챔버 sinfect. </li><li> 사용자 정의 내장 vibroslicer 또는 상업적 상당을 사용하여 뇌를 잘라. 모델의 개념은 수직 진동을 최소화하면서 블레이드의 가장자리에 수평 및 큰 진폭 고주파 움직임을 생성 할 수있는 티슈 슬라이서를 설계하는 것이었다. </li><li> 1.5의 진폭, 90 Hz에서의 발진 주파수를 사용하는 - 2.0 mm 및 수평면에 대해 15도 각도에 위치하는 칼날; 1.7 mm / 블레이드를 향해 분에 이동하는 아가로 오스 - 임베디드 두뇌를 들고 장착 블록을 설정합니다. 실 포함 차가운 얼음 배양 배지에 섹션 (150 μm의) 부담 (DMEM 펜 / 패 혈성 + 10 % FCS). 스 아르와 오브라이언 (13)에 보조 비디오와 같은 조직 슬라이스보기 절단 및 조작. </li><li> 부드럽게 문화 메드 6 멀티 잘 트레이에 세포 배양 삽입에 조각 (0.4 μm의, 30mm 직경) 배치인서트의 외부에 아이오와, 및 5 % CO 2와 37 ° C에서 가습 배양기에서 배양한다. 참고 : 전송과 조각을 조작하는 동안 적절한 조직의 생존을 위해 매우 부드럽게. 또한, 너무 많은 유체가 필터 인서트의 막에 부착의 Organotypic 슬라이스를 방지한다. 이 경우, 과잉 액체를 제거하거나 다시 접시. </li><li> 의 Organotypic 조각 몇 주 동안 배양 될 수 있지만, 가장 좋은 형질 전환 수율에 대한 도금 끝난 후 사일에 비해 형질 전환을 진행합니다. 참고 : 장기 배양 조건, 사용 AraC 혈청 배지 2의 폐해과 성장을 방지하려면. </li></ol> DNA 코팅 된 마이크로 및 나노 발사체의 3 준비 <ol><li> 40 나노 미터 직경의 금 입자를 이용하여 나노 발사체를 준비합니다. 간단히, 0.05 M 스퍼 미딘과 금 입자 10 ㎎을 1 ㎎ / ㎖ (pEYFP-N1)에서 10 ㎕의 DNA의 50 μl를 추가합니다. <ol><li> 솔루션 믹스에 칼슘과 스퍼 미딘 추가골드 DNA 마이크로 동안 스트럭처는 금 나노 입자에 DNA 분자의 결합을 돕기 위해 제제 입자. 참고 : 골드 캐리어의 MG (DLR) 당 사용 된 DNA의 양은, 금의 1 당 DNA μg 1 ~ 5 mg의 범위해야합니다. 또한, 카트리지 (MLQ) 당 샷한다 금 캐리어 입자의 양이, 그 자체는 0.1 내지 0.5 mg의 금의 범위한다. DLR과 MLQ 시도 및 연구중인 특정 시스템뿐만 아니라 사용되는 유전자 총 입자의 종류에 따라 각각의 사용자에 대해 최적화되어야한다. </li></ol></li><li> 15 μL - 천천히 (10)의 분수에서 한 M 염화칼슘의 50 μl를 추가하는 동안 소용돌이를 사용하여 섞는다. 30 초 동안 1,000 XG에 가끔 소용돌이로 교반의 5 분 원심 분리기에 이어 다음 상층 액을 제거합니다. 0.075 M PVP의 3.5 ml의 금 입자 펠렛을 재현 탁. </li><li> 주사기를 사용하여 튜브로 현탁액 (2.36 mm 내경)를 그립니다. 튜브 준비 역에서 튜브를 놓습니다. 허용금 입자는 정착 및 주사기로 흡인하여 상층 액을 제거합니다. 균등 이후 분당 5 L에 일정한 질소 흐름 하에서 건조 된 금 입자를 확산하기 위해 튜브를 돌립니다. </li><li> DNA-총알을 만들려면 1cm 길이로 튜브 커터를 사용하여 튜브를 잘라. 어느 유전자 총 카트리지에 바로 삽입하거나 필요한 때까지 건조 된 (4 °의 C)를 유지한다. </li></ol> 의 Organotypic 조각에 4과 유전자 형질 <ol><li> 멸균 층류 후드 내에서 다음 단계를 수행하십시오. </li><li> 헬리오스 유전자 총에 9 V 배터리와 빈 카트리지 홀더를 삽입합니다. </li><li> 헬륨 호스와 헬륨 탱크에 유전자 총을 연결합니다. 화재 2 - 50 PSI에서 3 공백 (빈 슬롯)는 헬륨 호스 및 건에서 저수지에 압력을합니다. </li><li> 카트리지 홀더에 DNA 코팅 된 금이 들어있는 카트리지를로드하고 유전자 총에 홀더를로드합니다. </li><li> 유전자 총 스페이서를 풀고 첨부유전자 건에 수정 된 유전자 총신. </li><li> 무균 핀셋을 사용하여, 멸균 플라스틱 접시에 Organotypic 슬라이스를 포함하는 필터를 배치 인서트. </li><li> 의 Organotypic 조각에서 용지를 제거합니다. </li><li> 50 PSI의 가스 압력을 설정합니다. 주 : 눈의 보호가 필수적이며 귀 보호 것이 좋습니다. </li><li> 10mm까지 측정 마운트를 사용하여 적절한 거리에서 유전자 총을 놓습니다. 조심 유전자 전달을위한 원하는 영역 위에 배럴의 중심을 목표로한다. </li><li> 5 % CO 2 배양기로, 즉 37 ° C를 발사 한 후, 신선한 매체와 다시 자신의 접시에 삽입을 교체하고 정상적인 성장 상태로 돌아갑니다. </li><li> 끝나면, 헬륨 탱크를 닫 유전자 건에서 압력을 해제하고 헬륨 탱크에서 유전자 총을 분리. </li><li> 카트리지 홀더를 제거하고 카트리지를 폐기하고 유전자 총을 청소합니다. </li><li> 형태 및 visua에 의해 성공적으로 침투 조직을 확인거꾸로 현미경을 사용하여 조각을 LIZING. 마이크로 입자를 사용하는 경우, 균등하게 금을 분산; 조각에서 볼 금 입자의 치밀한 영역이 없어야합니다. 작은 크기로 인해 나노 입자는 종래의 현미경 기술에 의해 하나의 단위로 볼 수 없다. </li><li> 적절한 시간 간격 후 (보통 1-2일), 현미경 관찰을 위해 4 % 파라 포름 알데히드 (PFA)에 조각을 수정. 참고 : PFA에 고정 항상 원하는되지 않습니다. 라이브 세포 이미징에 대해이 단계를 피할 수 있습니다. </li></ol> (5) 고정 및 뇌 조각의 시각화 <ol><li> 과 유전자 형질 전환 한 후 2 분 동안 PBS에 두 번 조각을 씻는다. </li><li> 20 분 동안 PBS에서 갓 만든 얼음 차가운 4 % PFA에 배양하여 조각을 수정. </li><li> 2 분 동안 PBS에 두 번 조각을 씻으십시오. </li><li> 멤브레인이 그들에 탑재 슬라이스 방해없이, 메스를 이용하여 지원 부드럽게 라운드 잘랐다. 현미경 슬라이드에 각각의 막 지원 / 슬라이스를 배치 집게를 사용합니다. organotyp 휴식을 취하십시오유리 슬라이드에 막 위에 IC 조각. </li><li> 슬라이스의 상단에 장착 매체의 한 방울을 추가하고의 Organotypic 슬라이스와 직접 접촉 힘이없이 부드럽게 커버 슬립을 추가합니다. </li><li> 네일 광택의 얇은 층으로 커버 슬립을 고정합니다. </li><li> 적절한 현미경의 조각을 볼 수 있습니다. </li></ol> 6 공 초점 응용 프로그램 <ol><li> 60X / 1.4 개구 수 (NA) 오일 액침 대물 렌즈로 직립 주사 레이저 공 초점 현미경을 사용하여 슬라이스를 가시화. 주 : 공 초점 현미경의 가장 문제 기능은 따라서 일반적으로 형광 샘플 볼 초점 &#39;안개&#39;의 제한을 제거, 분리 및 초점 비행기를 수집 할 수있다 (1 AU 설정) 핀홀 크기입니다. 좋은 정보는 종종이 연무에 의해 가려하고 nonconfocal 현미경에서 검출 할 수 없습니다. </li><li> 488 나노 미터의 여기 파장에 아르곤 레이저를 설정하고 그들의 수집을 위해 최적화500-520 nm의 대역 itted 빛입니다. 일반적으로 분석 된 각 신경 세포의 전체 폭을 포함하는 1024 X 1024 픽셀에서 0.5 μm의 간격으로 Z-섹션의 스택 이미지를 수집합니다. <ol><li> 핵의 형태를 관찰하기 위해, 카운터 (- 4 40 내지 420 nm 사이에 수집 된 405 nm의 방출 빛을 설정 여기 파장)이 DAPI와 세포를 얼룩. 방출 620 nm의 - 마지막으로, 적색 형광을 검사하는, 여기에 대한 561 nm의 565에서 레이저를 설정합니다. </li></ol></li><li> 일반적으로 57.6 μm의 2의 영역을 커버 4X 스캔 줌을 사용하여 이미지를 수집; 이미지 크기는 1024 X 1024 픽셀의 영역에 있었다. 기록 0.5 μm의 간격으로 Z-섹션의 스택 및 (5)의 전망 - 결합 8 프레임입니다. </li></ol>

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R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transduction+of+the+central+nervous+system+after+intracerebroventricular+injection+of+adeno-associated+viral+vectors+in+neonatal+and+juvenile+mice.">Transduction of the central nervous system after intracerebroventricular injection of adeno-associated viral vectors in neonatal and juvenile mice.</a> Human Gene Therapy Methods. 24, 205-213 (2013).</li><li>Arsenault, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Botulinum+protease-cleaved+SNARE+fragments+induce+cytotoxicity+in+neuroblastoma+cells.">Botulinum protease-cleaved SNARE fragments induce cytotoxicity in neuroblastoma cells.</a> Journal of Neurochemistry. 129, 781-791 (2014).</li><li>Arsenault, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stapling+of+the+botulinum+type+A+protease+to+growth+factors+and+neuropeptides+allows+selective+targeting+of+neuroendocrine+cells.">Stapling of the botulinum type A protease to growth factors and neuropeptides allows selective targeting of neuroendocrine cells.</a> Journal of Neurochemistry. 126, 223-233 (2013).</li></ol>

Dr. John A. O'Brien holds patents for the improved gene gun barrel. US patent number 10/380,452 and European patent Number 01974517.3.

프로토콜은 향상된 유전자 총을 사용하여 성인의 Organotypic 조각으로 염료 및 유전 물질을 전달하는 방법을 설명한다. 본질적으로, 염료의 종류와 가능한 유전자의 다양한 생물학적 질문에 다양한 답변을이 방법은 다각적와 의무합니다. 뇌의 특정 영역이 경우, 사용되는 위치 선택적 전달 방법은 생물학적으로 관련 아키텍처 내에서 지역화 된 영역의 이종 유전자 변조 등의 실험에 대한 새로운 길을 여는 것은 전에 쉽게 실현되지 않았습니다. 우리는 이전에이 방법이 많은 주 (13)에 대한 향상된 세포 생존 및 이종 유전자 발현을 가리 켰을 때, 성숙한 시냅스가 완전히 형성되고, 성인의 Organotypic 조각에 사용될 수 있음을 확인했다. 포유 동물의 뇌에 대한 새롭고 개선 된 배양 조건뿐만 아니라 다른 조직의 출현으로, 위치 선택적 유전 변조의 사용은 bioche 다양한 점점 유용해질 것이다화학적 인 분석. 우리가 다른 사람 (24)에 의해 언급 여기에 이전에 강조한다, 많은 ​​다른 요인이 용이과 유전자 전달의 정확성과 신뢰성에 영향을 미칠 수 있습니다. 첫째로, 염료 또는 DNA 연결 금 입자의 제조는 적절한 응집을 방지하고, 카트리지화물 제명을 용이하게 균형을 이루어야한다. DNA-금 미세 입자 용액에 칼슘과 스퍼 미딘이 금 나노 입자에 DNA 분자의 결합을 도울 수있다. 감압하에 세포를 침투 나노 입자는 이전 기능 (17)을 결정 하였다. 둘째, 유전자 총은 정확한 각도와 거리를 최대한 상승 장착되어야한다. 안정적인 압력 게이지는 직물의 무결성을 유지하기 위해, 적절하게 그들의 의도 된 타겟에 금 입자를 가속하기 위해, 또한 재현성이 필요하다. 사실, 장치의 거리, 방향 및 안정성도 t위한 중요한 요인argeting 및 위치 선택적 전달의 정밀도. 이들 뇌 구조가 매우 작을 경우, 점 호각의 사소한 변화가 쉽게 전체 절차가 적은 안정적인 렌더링 할 수있다. 그리고 마지막으로, 준비 및 실행 가능한의 Organotypic 조각의 유지 보수는 다른 동물, 뇌 영역, 연령과 공 배양을 위해 아직 풍부하고 신뢰할 수있는 프로토콜은 현재 2,4,25,26 사용할 수있는 수십 년에 대한 어려움을 내포하고있다. 이러한 절차는 사용자에 최적화 된 유전자 총 절차에 조직을 제출하기 전에해야합니다. 이것은 더 쉽게 unbiasedly 유전자 총 입자의 영향과 자신 배양에 이종성 유전자의 효과를 확인하기 위해 사용자를 허용 할 것이다. 이를 위해, 예컨대 EYFP EGFP와 같은 형광 유전자의 사용은 타겟팅 정확성을 테스트하고 또한 13 시간의 지속 기간 동안 이종 유전자 발현을 통해 세포 생존력을 따르는 신규 사용자를 허용 할 수있는 두. 신뢰성을위한 중요한 단계의 많은이 프로토콜의 재현 사용은 다음과 같은 세 단락으로 강조 표시됩니다. 효율적인 형질를 들어, DNA 농도가 적절해야합니다. 너무 높은 농도의 나노 입자의 응집을 일으킬 수있는 반면 너무 낮은 농도는 형질 전환 수율을 방해하는 것입니다. 금의 응집체 극적 형질 전환 효율을 감소 불균일 분포를 야기하고, 증가 된 산화 적 스트레스 및 세포 독성을 초래할 수있다. 스퍼 미딘 용액의 만료 (매 2-3개월 대체되어야한다) 때문에 코팅 효율의 문제가 예상된다. 적절한과 유전자 확산을 위해, 라벨도 있어야합니다. 금 나노 입자 / DNA 서스펜션의 비 균일 한 라벨은 PVP 솔루션에 기인 할 수있다. 또한 모든 2~3개월 교체해야합니다. 금 나노 입자의 코팅은 높은 MW 밴드 (27)로서, 아가 로스 겔 전기 영동에 알 수있다. 각 생물 SYST조사중인 그들뿐만 아니라 형질 전환 유전자 총 확산의 최적화 수준에 도달하는 가스 압력의 작은 변화가 필요할 수 있습니다 사용 된 각각의 서로 다른 악기. 임계 파라미터는 플라스틱 카트리지에서 마이크로 또는 나노 캐리어 스트립과 티슈로 추진하기 위해 필요한 펄스의 헬륨 압력이다. 그것은 목표 걸쳐 충격파를 생성하고 방해 또는 매트릭스 (17)로부터 조직을 분리하기 때문에 높은 가스 압력은 세포 생존에 영향을 미칠 것이다. 유전자 총 배럴을 목표로 정확히 수직 조직에 장치를 갖는 정확한과 유전자 전달을위한 중요합니다. 선택된 영역은 외측 개구로부터 정확히 10mm에서 배럴의 직접 중앙에 위치해야한다. 이 진원지 주위에 금 입자 전달의 3mm 직경 발생합니다. 유전자 총신은 각 사용 후 70 % 에탄올로 세척해야한다. 큰 입자 집합체로부터 조직을 보호하기 위해, 배럴도 SHO 나일론 메쉬를 포함최적의 성능을 유지하기 위해 주기적으로 교체 될 ULD. 바꾸기 위해 메쉬 캡 후 캡과 O-링 사이에 새로운 나일론 메쉬를 삽입 푼다. 2 일 진원지 주위에 형질 전환 후 - 형광 표지 세포는 적어도 1 볼 수 있어야합니다. 부재 또는 라벨의 어긋남은 유전자 총 설치의 불충분 준비와 불안정성이 발생할 수 있습니다. 공 초점 현미경을 사용하여 세포의 관찰은 여러 가지 요인에 의존한다 : 여기 / 발광 광의 파장, 핀홀 크기, 대물 렌즈의 NA, 광로 구성 요소의 굴절률, 조직, 그리고 배향의 깊이 악기. 이러한 요소는 조사중인 각 시스템에 맞게 최적화되어야한다. 바이오리 스틱스 (biolistics)의 최근 발전은이 방법의 성공을 위해 이용되었다. 본 연구에 사용 된 유전자 총신은 필요한 압력을 줄일뿐만 아니라, 유전자 총을 깔때기 위해 수정더 제약 및 특정 영역 (17, 19)에 산란 패턴. 기타 배럴 수정과 유전자 확산을 제한하고 유출 압력 28을 줄이기 위해 노력했다 아직 박사 오브라이언에 의해 디자인이 사용자 정의 설계 유전자 총신은 표준 헬리오스 유전자 총에 장착 된 하나의 구성 요소입니다. 이어서, 서브 마이크로 미터의 금 입자는 세포 손상 및 궁극적으로 지속 이종성 유전자 발현의 상실을 야기 우리는 이전에 결정된 한 마이크로 입자의 침입을 줄이기 위해 사용되었다. 과 유전자 절차 이러한 변화는 방법 (13)의 전반적인 타당성과 재현성을 향상시켰다. 등의 Organotypic 뇌 슬라이스 준비에 대한 심층적 인 슬라이싱 절차의 문제 해결, 뇌를 유지하기 위해 DMEM-아가로 오스 행렬을 사용하여, 수많은 다른 유용한 진보로 슬라이스 준비에 다른 개선 사항은 이전에 13 성인 조각의 사용을 탐구 할 수있게보고했다 성숙한 개발시냅스 네트워크. 우리의 연구에서 우리는 주로 형질 전환 효율에 판독 및 이미지 기능을 마우스의 뇌 조직에서 신경 세포의 형태 학적 특성으로 세포 형태를 시각화하기 위해 염료 및 형광 이종 유전자를 사용했다. 정의 된 반경 스토캐스틱 전달 신호 대 잡음비는 완전히 원래 문맥 내 하나의 셀의 dentritic 항구를 분리 할 수​​있게. 많은 노력이 이러한 형태 학적 특성을 조사하기 위해 사용하는, 매핑 &#39;connectomics&#39;또는 다양한 분석을위한 단일 세포를 라벨,이 방법은 쉽게 같은 전기 생리학 및 신경 돌기 측정 (29, 30)과 같은 기존 프로토콜과 결합 될 수있다. 분명히, 형광 이종 유전자의 조합은 형광 단백질의 확률 분포와 같은 단일 셀의 훨씬 더 강력한 묘사 할 수있게하고, 그들의 조합은 각각의 셀 (31, 32)의 색을 결정하는 것이. 이러한 synapsin 및 이종 유전자 엑손의 상류 신경교 원 섬유 산 단백질로서 세포 특이 적 프로모터의 사용은 또한 소집단 (33) 식을 제한 할 수있다. 사실, 유전 물질의 끝없는 다양한이 같은 절차를 사용하여 금 나노 입자에 의해 위치 선택적 방식으로 전달 될 수있다. 총 형질 지역 따라서 전통적인 방법, 같은 절개로하고 이종 유전자의 지역화 효과를 분석하기 위해 서부 면역 블로에 그 지역을 제출하여 분석 할 수있다. Organotypic 슬라이스 절차의 개선은 또한 넓은 장기 실험을위한 뇌 조직의 사용 허가뿐만 아니라 다른 조직과 공 배양의 사용을 허용하는 방법 및 형질 전환을 용이하게한다. 지질 중합체 형질는 이전 34 자주은 Te 트랜 매우 낮은 효율을 보여 막 항상성, 내재화 단백질 투과성에 영향을 미치는 것으로보고되었다rminally 신경 세포를 분화. 셀 특정화물 타겟팅은 단지 필요한 내면화 세포 표면 수용체를 발현하는 세포에도 순종하며,이 방법이 매우 선택적이 될 수 있지만, 위치 선택성 (35)를 대상으로 결여 할 수있다. 바이러스 성 벡터는 달리, 생산 종종 어렵고 비용이 많이 드는 엄격한 규정이 필요하고 경우에이 안전 문제를 보여 주었다. 과 유전자 전달은 따라서 위치 선택적으로 실행 가능한 조직 내에서 신경 세포와 다른 세포 유형에 감염 될 수있는 비교할 수없는 기능이 있습니다. 금은 비이기 때문에 바이오리 스틱스 (biolistics)의 사용에 독성이 더 진보는 경피 제약 배달, 비 침습적 생체 내 유전자 전달뿐만 아니라 지역화 된 비 바이러스 성 유전자 치료와 같은 생물 의학 사용에 대한 방법을 포장 수 있습니다.

원래 유전자 총 기술, &quot;생물학적 탄도&quot;에 대한 차례의 문구는, 식물 세포 하나에 입자 매개 유전자 전달을 위해 설립되었다. 셀이 변환의 물리적 방법은 DNA 또는 염료화물을 제공하기 위해 불 투과성 세포막의 물리적 장벽을 극복하기 위해 높은 속도로 마이크로 또는 나노 입자를 가속. 그것이 특정 리간드 - 수용체 및 / 또는 세포 표면 막에서 생화학 적 특성에 의존하지 않기 때문에, 입자 - 매개 유전자 전달을 용이 등의 Organotypic 뇌 조각으로 생물학적 시스템의 다양한 적용 할 수있다. 그들은 생체 생물학 2-4 관련된 많은 해부학 적, 생화학 적 특성을 유지하기 때문에 사용의 Organotypic 슬라이스 체외 플랫폼에서 다른 이상 장점이있다. 조각은 대부분 그들이 유래 preser 한 곳에서 지역의 건축 특성을 보존신경 화학적 활동과 시냅스의 연결을했습니다. 기초 연구를위한 뇌 조각의 사용은 제약 노력에서, 병용 측정 문맥 3,5-7 같이 생체 내에서 뇌의 신경 생물학적 행동을 모니터링하는 바이오 가능한 조작의 수와 함께 증가하고있다. Organotypic 슬라이스 기반의 분석 시스템을 사용하는 주요 장점은 쉽게 실험을 제어하고, 세포 외 환경을 정확하게 조작을 허용한다는 것이다. 이러한 결실, Organotypic 슬라이스 배양 시스템과 같은 뇌 영역의 다양한 수립했지만 피질 척수, 소뇌 및 8-10에 한정되지되었다. 더욱이, 공 배양의 수는 원위 뇌 영역을 가로 질러뿐만 아니라 신경 병적 세포 간 통신 (11, 12) 사이의 평가를 허용하는 입증되었다. 대부분의 프로토콜은 이미 s로 설립되어uccessfully 문화의 Organotypic 슬라이스와 장기적인 생존 능력을 유지할 수 많은 최근의 연구는 지금 13에 막 인터페이스 방법과 다양한 변형을 사용합니다. 이 원리는 다공성 멤브레인 필터를 슬라이스를 배치함으로써 매체의 가습 인큐베이터 대기 사이의 계면에서의 Organotypic 슬라이스를 유지한다. 매체는 따라서 모세관 운동을 통해의 Organotypic 슬라이스를 공급하기에 충분한 영양분을 제공 할 수 있습니다. 일반적으로 조각이 출생 초기 동물에서 작성되었습니다 (- 9 일 이전 3, P3 - 9). 그러나, 이들 조각에서 뇌 조직은 세포 가소성의 높은 수준을 표시 가능한 배양을 구하는 것이 유용하다 기계적 응력에 고유 저항을 가지고, 아직 성숙 시냅스와 신경 해부학 회로는 완전히 연령 2-3주까지는 생체 내에서 개발하지 14. 예를 들어, 이전의 관찰은 P0에 의한 것 해마 조각을 (를) 찾았습니다 -, 한 신생아를 매우 viab 있지만제작은 준비 다음, 점차적으로 어떤 형태 학적 특성을 잃었다. 본질적으로, 그들은 오래된 동물 (15, 16)에서의 Organotypic 문화 비교 - 차별화 해제 할 가능성이 더 높았다 미성숙 세포를 제안 장기 문화에 적합하지 않은 것으로 밝혀졌다. 이러한 이유로 우리의 방법은 성숙과 건축 개발이 자신의 말기 13,17-21에 도달하는 성인의 Organotypic 뇌 조각에 최적화되어 있습니다. 그럼에도 불구하고,이 방법은 신생아와 청소년의 Organotypic 조각에 적합하다. 생존의 Organotypic 조각이 생성 된 이후에 조각을 포함하는 전체 판과 유전자 마운트에 가져 와서 배달 및 형질 전환을 위치 선택성에 제출 될 수있다. (조직에 개구로부터) 직접 조각 위에 10mm의 거리에서 90도 배향 (도 1에서 설명) 유전자 총의 적정 부착은, 40 나노 미터의 신속한 이동과 유전자 전달이 허용LD 입자화물 코팅. 이러한 형광 염료 및 DNA 벡터로서 선택된화물뿐만 아니라, 관심있는 유전자는 쉽게 용이 가능한 슬라이스로 전달된다. 이 방법을 따라서 위치 선택적 방식으로 제공 할 수있는 프로토콜이 필요 설명 가능한의 Organotypic 뇌 조각으로화물 코팅 된 금 나노 입자. 유전자 총신과 최적의 설치는 그림 1에서 볼 수 있습니다. 개선 배럴 및 나노 입자의 탄도에 대한 자세한 내용은, 등. 17 오브라이언을 참조하십시오. 후속 세목 또한 사용자는 마이크로 캐리어 로딩 수량 (MLQ)로​​ 정의 대상 면적당 전달 금 적당량 같은 조건을 최적화하기 위해, 그리고 DNA 로딩 비로 정의 금 밀리그램 당로드 DNA의 양을 결정하기 위해 표시된다 (DLR). 금 입자에 DNA를 침전과 실제 유전자 총 &#39;카트리지를 포함하는 TEFZEL 튜브에로드하기 전에9 ;,는 조직과 조건 사이에서 약간 다를 수 있습니다 각 형질에 필요한 DNA와 골드의 양을 계산하는 것이 필요하다 (비율이 1에 1 mg의 골드와 1 μg의 DNA 사이에 유지되어야한다 : 5). 이것은 달리 DNA 코팅 된 금 입자는 증가 조직 손상과 세포 독성뿐만 아니라 유전자 총 확산 전체적인 균질성를 낮출 수있는 것으로 응집,보다 크게 형성 함께 부착 할 수 DLR하는 MLQ의 적절한 비율을 제조하는 것이 중요하다. 이 방법과 유전자 전달의 최근 개선, 테스트, 신생아 청소년 및 성인의 Organotypic 뇌 조각에 대한 의무로 결정되었습니다 보여줍니다. 또한, 유전자 총 배럴의 저감과 유전자 확산을 이용하여, 사용자가 현재 선택적 뇌 영역 폭시 형질 할 수있다. 적절한 배양 시간 후에, 24과 48 사이의 최대 속도에 도달 형광 단백질의 발현,시간은 표면 형광 및 공 초점 현미경으로 시각화 할 수 있습니다. 이 형광 물질은 생물학적으로 관련 구조 내에서 형태 학적 분석 및 개별 셀의 현지화를 허용합니다. 그러나, 다른 이종 유전자로의 Organotypic 조각의 위치 선택적 변조는 이러한 준비 의무가 다른 시험으로 모니터링 할 수 있습니다. 지역화 된 유전자 전달에 가능한 작업 전략은 그림 2에 제시되어있다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="656">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:141px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:173px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Helios gene gun system</td>
			<td style="width:141px;">Bio Rad</td>
			<td>165-2431</td>
			<td>Gene gun and tube prep station</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">HEPES&#160;</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>83264-100ML-F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">NaCl</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>S7653-250G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">KCl</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>P9333-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:223px;">Na2HPO4</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>S7907-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">KH2PO4</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>P9791-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">0.2 &#181;m sterile filter unit</td>
			<td style="width:141px;">Millipore</td>
			<td>SCGPU05RE</td>
			<td>to filter media</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">DMEM</td>
			<td style="width:141px;">Gibco</td>
			<td>21885-025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Fetal calf serum</td>
			<td style="width:141px;">Gibco</td>
			<td>10270-098</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">D-Glucose</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>G8270-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">N2</td>
			<td style="width:141px;">Life Technologies</td>
			<td>17502-048</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Penicillin/Streptomycin</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>p4333</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Polyvinylpyrrolidone</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>856568-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Ethanol&#160;</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>277649-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Spermidine</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>S2626</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Agarose</td>
			<td style="width:141px;">Bio Rad</td>
			<td>161-3100EDU</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Vibroslicer</td>
			<td style="width:141px;">Laica</td>
			<td style="width:119px;">VT1200</td>
			<td>We used a custom design</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Gene gun mount</td>
			<td style="width:141px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Built in house at U of T</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Humidified cell culture incubator</td>
			<td style="width:141px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Gold nanoparticles</td>
			<td style="width:141px;">cytodiagnostics</td>
			<td style="width:119px;">G-40-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">pEYFP-N1</td>
			<td style="width:141px;">Clontech</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Tubing cutter</td>
			<td style="width:141px;">Bio Rad</td>
			<td>165-2422</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Tefzel tubing</td>
			<td style="width:141px;">Bio Rad</td>
			<td>165-2441</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Barrel</td>
			<td style="width:141px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Custom made by the LMB</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Cell culture insert</td>
			<td style="width:141px;">Millipore</td>
			<td>PICM0RG50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Paraformaldehyde</td>
			<td style="width:141px;">Sigma</td>
			<td>76240 Fluka</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Dissecting microscope</td>
			<td style="width:141px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>for convenience</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Confocal microscope</td>
			<td style="width:141px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>user defined for usage</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Glass slide</td>
			<td style="width:141px;">VWR</td>
			<td>2588-CA48323-185</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Microcover glass</td>
			<td style="width:141px;">VWR</td>
			<td colspan="2">2448-CA48366-067-1</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Vectashield mounting media</td>
			<td style="width:141px;">Vector laboratories</td>
			<td>H-1400&#160;&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

regioselective biolistic targeting in organotypic brain slices using a modified gene gun

생체 생물학의 여러 측면을 유지하면서, DNA의 형질 생물학 및 뇌 슬라이스의 Organotypic 제제로 최근 발전으로 귀중한왔다 다양한 이종 유전자의 효과는 따라서 용이하게 조사 할 수있다. 기존의 형질 전환 방법은 낮은 수율과 생존에 상당한 손실로 어려움을 내포왔다있는 말기 차별화 된 신경 세포를 트랜 관심이 증가되고있다. 과 유전자 형질 감염은 포유 동물 조직에서의 사용을위한 의무가되도록 이러한 어려움의 많은 또 최근에이 기법이 수정 된 피할 수있다. 가속기 실 뉴 변형 유전자 총의 발사의 정확도를 개선하고 또한 형질 전환 효율의 손실없이 더 낮은 가스 압력 (50 PSI)의 사용을 허용하면서 침투의 깊이를 증가뿐만 아니라 PA의 포커스 위치 선택적 확산을 허용했다3mm 이내 rticles. 또한,이 기술은 곧장 앞으로 빠르게 지루한 microinjections보다 수행하는 것입니다. 에피 솜 발현이 24 시간 이내에 검출 될 수 있으며, 세포 생존을보다, 또는, 종래의 방법과 적어도 동일한 것으로 도시 된 위치 과도 안정적인 발현 모두 나노 입자 폭격으로 가능하다. 그러나이 기술은 하나의 중요한 장점을 갖는다 : 그것은 이렇게 해부학 이종 유전자의 효과를 분리하는 것은 사용자를 활성화 한 억제 반경 지역화되는 형질 감염을 허용한다. 여기에서 우리는 개선 된 유전자 총을 사용하여 형질 전환을 위치 선택적하기 위해 가능한 성인의 Organotypic 슬라이스를 준비하고 제출에 대한 깊이있는 프로토콜을 제시한다.

이전에 13,22을보고으로 Organotypic 슬라이스의 가능성은 젖산 탈수소 효소 활동, 요오드화 프로피 듐 라벨 및 각 군 염색으로 모니터링 할 수 있습니다. 분명히, 슬라이스의 생존과 무결성을 제공 유전화물 장기간 지속적인 발현에 중요하다. 슬라이스의 Organotypic과 유전자 전달에 이어, 형광 이종 유전자의 발현은 공 초점 현미경에 의해 모니터링 하였다. 변성 배럴을 사용하는 유전자 총 확산 밀폐성은도 3a에서 볼 수있다.도 3b는 DNA 코팅 된 금 나노 입자를 이용하여 형질 해마 영역의 대표 화상을 나타낸다. 4 형질 성인 마우스의 Organotypic 슬라이스 대표 사진을 보여준다. 도 4a, 조롱박 층의 계면과 CER의 분자 층에서 발견 현저한 수지상 하버 조롱박 뉴런에서 알 수있는 바와 같이ebellum가 pEGFP-N1 과도과 유전자 형질 다음과 같은 뚜렷한 라벨을 보여줍니다. 그림 (b)는 등뼈를 관찰 할 수 이러한 수상 돌기의 높은 배율을 보여줍니다. 그림 4c는 pDSredFP 코팅 된 금 나노 입자의과 유전자 전달 다음 해마의 CA1 지역에서 발견 피라미드 셀을 보여줍니다 . 대신 형광 인코딩 DNA의화물의 염료도의 Organotypic 슬라이스 형태에 특징을 시각화하는 유사한 방식으로 사용될 수있다. 원형질막 레이블 DIO는 더 빠르게 개별 셀 모폴로지를 서술하거나 regioselection을 확인하기 위해 동일한 영역에 전달되는 코팅과 유전자 DNA와 함께 사용될 수있다. 도 5a에서 알 수있는 바와 같이 해마에서 DIO 물들 신경 세포는 많은 쪽이 긴 돌기를 보여줍니다. 화살표는 dentrit에 비해 시냅스 종말의 존재에 의해 식별되는 축삭을 나타냅니다IC는 다른 신경 돌기에 등뼈.도 5b는 핵에 라벨.도 5c 수많은 등뼈 평행 수지상 이러한 유형의 더 높은 배율을 나타내는 DAPI 카운터 얼룩 수많은 해마 돌기 하이라이트 CA1의 또 다른 예를 나타낸다. 분명, 이러한 이미지는 휴대 라벨 다음과 같은 형태 학적 특성을 보여줍니다. 어떠한 금 나노 입자에 코팅 외인성 유전자의 번호를 제공하기 위해 적용되는 동일한 방법론을 배제하지. 성공적인 형질 감염의 시각적 확인을 허용하기 위해, 하나의 플라스미드는 관심 유전자와 동일한 벡터에 형광 리포터 단백질을 모두 공동 표현하도록 구성 될 수있다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/52148/52148fig1highres.jpg" /> 그림 1 유전자 총신 및 설치. (A) 개선<html> 입자 가속에 필요한 압력을 낮춤으로써 조직 손상을 최소화 제한과 유전자 확산을 갖는다 MRC-LMB 박사 오브라이언 의해 개발 D 배럴. (B)에 최적화 된 유전자 총의 측면도 박사 헨더슨 의해 개발 실장 토론토 대학에서 박사 안드라스 나기. 장착 정확하게 90˚의 Organotypic 슬라이스 직교 정확하게과 유전자 전달의 거리를 제어하기 위해 사용자를 허용하는 반면에 유전자 총을 보유하고있다. 최적의 조건과 유전자의 경우 배럴 조리개의 Organotypic 조각에서 10mm 거리에서 관심 영역 바로 위에 배치해야합니다. 장착 유전자 총 (C) 다시보기를. 형질 할 관심 영역은 배럴 개구 바로 아래에 배치 할 필요가있다. 대상은 염료 (diolistic) 또는 형광 단백질 tranfection (과 유전자)로 확인할 수 있습니다.ANK &quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="그림이" src="/files/ftp_upload/52148/52148fig2highres.jpg" /> 그림 2의 Organotypic 슬라이스 준비와 위치 선택적 타겟팅. (A) 슬라이싱을위한 준비 DMEM 포함 된 성인 마우스 뇌. (B) 금형 조각을 잘라 준비 블레이드 장착 vibroslicer에 붙어있다. (C) 위치 선택적 이종 유전자 발현 관상의 Organotypic 뇌 조각으로과 유전자 전달을위한 전략. 앨런 뇌지도 책 해부학 적 기준 아틀라스 23에서 얻은 사진에서 준비 이미지. 왼쪽 패널은 예를 들어 대상이 다른 뇌 영역을 나타낸다. 좌반구의 피질 영역에 유전자 발현 (1)를 제한한다. 뇌의 시상 하부 영역에 이종성 유전자 발현 (2)를 제한한다. 중앙 패널은 그쪽을 보여줍니다이 이종 유전자의 발현 T (3, 4)은 절연 및 본질적으로 영향으로부터 원위 누화를 해결할 가능성을 다른 부분을 이용 및 / 또는 허가의 치우침을 제거 동일한 Organotypic 슬라이스 두 반구의 해마를 비교 될 수있다 그 유전자. 오른쪽 패널은 다른 유전자 (6) 이종 아직 중복 대뇌 피질의 영역을 표현하는 동안 형질 전환 배달 가능한 중복 정확한 대뇌 피질 영역의 첫 번째 유전자 (5)를 표현하는 방법을 보여줍니다. 이것은 동일한 슬라이스 내에서 조합 단독으로 각 이종 유전자의 유전 적 조절의 효과를 분석 할 수 있습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52148/52148fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/52148/52148fig3highres.jpg" /> 그림 3과 유전자 산란 패턴은 여과 및 볼ER 종이와 저배율 이미지. (A) 개선 배럴은 금 입자의 확산을 결정하는 여과지로 소성 하였다. 오른쪽 패널은 통상 배럴을 보여 주지만 좌측 개선 배럴의 분포를 나타낸다. 검은 색 막대 : 1cm. 이미지, 등. 오브라이언에서 촬영과 유전자 확산 육주 된 생쥐의 해마 영역 내 3mm 내에서 확률 적 형질 두둑을 보여주는 17. (B) 낮은 배율 이미지. 흰색 막대 :. 100 μm의 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52148/52148fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/52148/52148fig4highres.jpg" /> 육주 된 쥐의 Organotypic 조각으로 형광 단백질 인코딩 된 DNA의 그림 4과 유전자 전달. (A) InvertepEGFP-N1 코팅 된 금 입자는 형질 조롱박 셀의 소뇌의 고정 Organotypic 슬라이스의 D 공 촛점 이미지. 이미지는 40 배 배율로 촬영했다. 검은 색 막대 :. 30 μm의 (B)는 쪽을 강조하는 또 다른 조롱박 세포의 dentritic 항구의 60 배 배율을 표시합니다. 검은 색 막대 :. 5 μm의 (C)는 DSredFP이 피라미드 세포를 형질 네의 60 배 배율에서 해마 영역에서 가져온 고정 조각의 공 초점 이미지를 표시합니다. 검은 색 막대 :. 10 μm의 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52148/52148fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/52148/52148fig5highres.jpg" /> 멤브레인의 Organotypic 조각으로 라벨링 형광 염료도 5 Diolistic 배달. (A)은 해마 신경 세포 (L)의 라이브 영상을 도시20 배 배율에서 DIO와 abeled. dentritic 등뼈 명확 dentritic 쪽의 부재 및 흰색 화살표로 나타낸 시냅스 종말의 존재에 의해 식별되는 축삭뿐만 아니라 관찰 될 수있다. 흰색 막대 :. 해마 영역 DIO으로 표시하고 DAPI와 대조의 30 μm의 (B) 발음 염색. 흰색 막대 :. 해마의 CA1 지역에서 발견 dentritic 쪽의 30 μm의 (C) 높은 배율 (60 배). 흰색 막대 :. 5 μm의 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52148/52148fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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Regioselective Biolistic Targeting in Organotypic Brain Slices Using a Modified Gene Gun

Recent improvements in organotypic brain slice preparations have permitted their exploitation for biotechnological applications. Organotypic slices maintain local structural characteristics of in vivo biology, including functional synaptic connections. Here we present a regioselective biolistic delivery method to label and genetically manipulate these slices.

위치 선택성과 유전자는 수정 된 유전자 총을 사용의 Organotypic 뇌 조각에 타겟팅

Transfection of DNA has been invaluable for biological sciences and with recent advances to organotypic brain slice preparations, the effect of various ...

regioselective-biolistic-targeting-organotypic-brain-slices-using

Research

JoVE Journal

Neuroscience

16.2K 조회수.  University of Toronto. Recent improvements in organotypic brain slice preparations have permitted their exploitation for biotechnological applications. Organotypic slices maintain local structural characteristics of in vivo biology, including functional synaptic connections. Here we present a regioselective biolistic delivery method to label and genetically manipulate these slices. 

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Slice Preparation, Organotypic Tissue Culturing and Luciferase Recording of Clock Gene Activity in the Suprachiasmatic Nucleus

A central circadian (~24 hr) clock coordinating daily rhythms in physiology and behavior resides in the suprachiasmatic nucleus (SCN) located in the anterior hypothalamus. The clock is directly synchronized by light via the retina and optic nerve. Circadian oscillations are generated by interacting negative feedback loops of a number of so called "clock genes" and their protein products, including the Period (Per) genes. The core clock is also dependent on membrane depolarization, calcium and cAMP 1. The SCN shows daily oscillations in clock gene expression, metabolic activity and spontaneous electrical activity. Remarkably, this endogenous cyclic activity persists in adult tissue slices of the SCN 2-4. In this way, the biological clock can easily be studied in vitro, allowing molecular, electrophysiological and metabolic investigations of the pacemaker function.
The SCN is a small, well-defined bilateral structure located right above the optic chiasm 5. In the rat it contains ~8.000 neurons in each nucleus and has dimensions of approximately 947 &mu;m (length, rostrocaudal axis) x 424 &mu;m (width) x 390 &mu;m (height) 6. To dissect out the SCN it is necessary to cut a brain slice at the specific level of the brain where the SCN can be identified. Here, we describe the dissecting and slicing procedure of the SCN, which is similar for mouse and rat brains. Further, we show how to culture the dissected tissue organotypically on a membrane 7, a technique developed for SCN tissue culture by Yamazaki et al. 8. Finally, we demonstrate how transgenic tissue can be used for measuring expression of clock genes/proteins using dynamic luciferase reporter technology, a method that originally was used for circadian measurements by Geusz et al. 9. We here use SCN tissues from the transgenic knock-in PERIOD2::LUCIFERASE mice produced by Yoo et al. 10. The mice contain a fusion protein of PERIOD (PER) 2 and the firefly enzyme LUCIFERASE. When PER2 is translated in the presence of the substrate for luciferase, i.e. luciferin, the PER2 expression can be monitored as bioluminescence when luciferase catalyzes the oxidation of luciferin. The number of emitted photons positively correlates to the amount of produced PER2 protein, and the bioluminescence rhythms match the PER2 protein rhythm in vivo 10. In this way the cyclic variation in PER2 expression can be continuously monitored real time during many days. The protocol we follow for tissue culturing and real-time bioluminescence recording has been thoroughly described by Yamazaki and Takahashi 11.

The procedure of preparing slices containing the adult mouse hypothalamic suprachiasmatic nucleus (SCN), and a rapid way to culture the SCN tissue in organotypic culture condition, are reported. Further, the measurement of oscillatory clock gene protein expression using dynamic luciferase reporter technology is described.

슬라이스 준비, Organotypic 조직 Culturing과 Suprachiasmatic 핵의 시계 유전자 활동의 루시페라제 녹음

A central circadian (~24 hr) clock coordinating daily rhythms in physiology and behavior resides in the suprachiasmatic nucleus (SCN) located in the ...

연구

신경과학

Mosaic Analysis of Gene Function in Postnatal Mouse Brain Development by Using Virus-based Cre Recombination

Normal brain function relies not only on embryonic development when major neuronal pathways are established, but also on postnatal 
development when neural circuits are matured and refined. Misregulation at this stage may lead to neurological and psychiatric disorders such as autism 
and schizophrenia1,2. Many genes have been studied in the prenatal brain and found crucial to many developmental processes3-5. However, their 
function in the postnatal brain is largely unknown, partly because their deletion in mice often leads to lethality during neonatal development, and partly because their requirement in early development hampers the postnatal analysis. To overcome these obstacles, floxed alleles of these genes are currently being generated in mice 6. When combined with transgenic alleles that express Cre recombinase in specific cell types, conditional deletion can be achieved to study gene function in the postnatal brain. However, this method requires additional alleles and extra time (3-6 months) to generate the mice with appropriate genotypes, thereby limiting the expansion of the genetic analysis to a large scale in the mouse brain.
Here we demonstrate a complementary approach that uses virally-expressed Cre to study these floxed alleles rapidly and 
systematically in postnatal brain development. By injecting recombinant adeno-associated viruses (rAAVs)7,8 encoding Cre into the neonatal brain, 
we are able to delete the gene of interest in different regions of the brain. By controlling the viral titer and coexpressing a fluorescent 
protein marker, we can simultaneously achieve mosaic gene inactivation and sparse neuronal labeling. This method bypasses the requirement of 
many genes in early development, and allows us to study their cell autonomous function in many critical processes in postnatal brain development,
 including axonal and dendritic growth, branching, and tiling, as well as synapse formation and refinement. This method has been used successfully 
in our own lab (unpublished results) and others8,9, and can be extended to other viruses, such as lentivirus 9, as well as to the expression of 
shRNA or dominant active proteins 10. Furthermore, by combining this technique with electrophysiology as well as recently-developed optical 
imaging tools 11, this method provides a new strategy to study how genetic pathways influence neural circuit development and function in mice 
and rats.

An in vivo method to test gene function in postnatal brain is described. Recombinant AAVs expressing Cre and/or a fluorescent protein are injected into neonatal mouse brain. Mosaic gene inactivation and sparse neuronal labeling are achieved, allowing rapid analysis of gene function in processes critical to neural circuit development.

바이러스 기반 Cre 호텔의 재조합을 사용하여 출생 후의 마우스 두뇌 개발의 유전자 기능의 모자이크 분석

Normal brain function relies not only on embryonic development when major neuronal pathways are established, but also on postnatal 
development when ...

Multi-electrode Array Recordings of Neuronal Avalanches in Organotypic Cultures

The cortex is spontaneously active, even in the absence of any particular input or motor output. During development, this activity is important for the migration and differentiation of cortex cell types and the formation of neuronal connections1. In the mature animal, ongoing activity reflects the past and the present state of an animal into which sensory stimuli are seamlessly integrated to compute future actions. Thus, a clear understanding of the organization of ongoing i.e. spontaneous activity is a prerequisite to understand cortex function. 
Numerous recording techniques revealed that ongoing activity in cortex is comprised of many neurons whose individual activities transiently sum to larger events that can be detected in the local field potential (LFP) with extracellular microelectrodes, or in the electroencephalogram (EEG), the magnetoencephalogram (MEG), and the BOLD signal from functional magnetic resonance imaging (fMRI). The LFP is currently the method of choice when studying neuronal population activity with high temporal and spatial resolution at the mesoscopic scale (several thousands of neurons). At the extracellular microelectrode, locally synchronized activities of spatially neighbored neurons result in rapid deflections in the LFP up to several hundreds of microvolts. When using an array of microelectrodes, the organizations of such deflections can be conveniently monitored in space and time. 
Neuronal avalanches describe the scale-invariant spatiotemporal organization of ongoing neuronal activity in the brain2,3. They are specific to the superficial layers of cortex as established in vitro4,5, in vivo in the anesthetized rat 6, and in the awake monkey7. Importantly, both theoretical and empirical studies2,8-10 suggest that neuronal avalanches indicate an exquisitely balanced critical state dynamics of cortex that optimizes information transfer and information processing.
In order to study the mechanisms of neuronal avalanche development, maintenance, and regulation, in vitro preparations are highly beneficial, as they allow for stable recordings of avalanche activity under precisely controlled conditions. The current protocol describes how to study neuronal avalanches in vitro by taking advantage of superficial layer development in organotypic cortex cultures, i.e. slice cultures, grown on planar, integrated microelectrode arrays (MEA; see also 11-14).

A robust way to study neuronal avalanches, i.e. scale-invariant spatio-temporal activity bursts, indicative of critical state dynamics in cortex. Avalanches emerge spontaneously in developing superficial layers of cultured cortex which allows for long-term measurements of the activity with planar integrated multi-electrode arrays (MEA) under precisely controlled conditions.

Organotypic 문화에의 연결을 눈사태의 다중 전극 어레이 레코딩

The cortex is spontaneously active, even in the absence of any particular input or motor output.  During development, this activity is important for the ...

Efficient Gene Delivery into Multiple CNS Territories Using In Utero Electroporation

The ability to manipulate gene expression is the cornerstone of modern day experimental embryology, leading to the elucidation of multiple developmental pathways. Several powerful and well established transgenic technologies are available to manipulate gene expression levels in mouse, allowing for the generation of both loss- and gain-of-function models. However, the generation of mouse transgenics is both costly and time consuming. Alternative methods of gene manipulation have therefore been widely sought. In utero electroporation is a method of gene delivery into live mouse embryos1,2 that we have successfully adapted3,4. It is largely based on the success of in ovo electroporation technologies that are commonly used in chick5. Briefly, DNA is injected into the open ventricles of the developing brain and the application of an electrical current causes the formation of transient pores in cell membranes, allowing for the uptake of DNA into the cell. In our hands, embryos can be efficiently electroporated as early as embryonic day (E) 11.5, while the targeting of younger embryos would require an ultrasound-guided microinjection protocol, as previously described6. Conversely, E15.5 is the latest stage we can easily electroporate, due to the onset of parietal and frontal bone differentiation, which hampers microinjection into the brain. In contrast, the retina is accessible through the end of embryogenesis. Embryos can be collected at any time point throughout the embryonic or early postnatal period. Injection of a reporter construct facilitates the identification of transfected cells.
To date, in utero electroporation has been most widely used for the analysis of neocortical development1,2,3,4. More recent studies have targeted the embryonic retina7,8,9 and thalamus10,11,12. Here, we present a modified in utero electroporation protocol that can be easily adapted to target different domains of the embryonic CNS. We provide evidence that by using this technique, we can target the embryonic telencephalon, diencephalon and retina. Representative results are presented, first showing the use of this technique to introduce DNA expression constructs into the lateral ventricles, allowing us to monitor progenitor maturation, differentiation and migration in the embryonic telencephalon. We also show that this technique can be used to target DNA to the diencephalic territories surrounding the 3rd ventricle, allowing the migratory routes of differentiating neurons into diencephalic nuclei to be monitored. Finally, we show that the use of micromanipulators allows us to accurately introduce DNA constructs into small target areas, including the subretinal space, allowing us to analyse the effects of manipulating gene expression on retinal development.

Efficient Gene Delivery into Multiple CNS Territories Using In Utero Electroporation

In utero electroporation allows for rapid gene delivery in a spatially- and temporally-controlled manner in the developing central nervous system (CNS). Here we describe a highly adaptable in utero electroporation protocol that can be used to deliver expression constructs into multiple embryonic CNS domains, including the telencephalon, diencephalon and retina.

사용하여 여러 개의 CNS 준주로 효율적인 유전자 전달 Utero에서 Electroporation

The ability to manipulate gene expression is the cornerstone of modern day experimental embryology, leading to the elucidation of multiple developmental ...

Presynaptic Dopamine Dynamics in Striatal Brain Slices with Fast-scan Cyclic Voltammetry

Extensive research has focused on the neurotransmitter dopamine because of its importance in the mechanism of action of drugs of abuse (e.g. cocaine and amphetamine), the role it plays in psychiatric illnesses (e.g. schizophrenia and Attention Deficit Hyperactivity Disorder), and its involvement in degenerative disorders like Parkinson's and Huntington's disease. Under normal physiological conditions, dopamine is known to regulate locomotor activity, cognition, learning, emotional affect, and neuroendocrine hormone secretion. One of the largest densities of dopamine neurons is within the striatum, which can be divided in two distinct neuroanatomical regions known as the nucleus accumbens and the caudate-putamen. The objective is to illustrate a general protocol for slice fast-scan cyclic voltammetry (FSCV) within the mouse striatum. FSCV is a well-defined electrochemical technique providing the opportunity to measure dopamine release and uptake in real time in discrete brain regions. Carbon fiber microelectrodes (diameter of ~ 7 &mu;m) are used in FSCV to detect dopamine oxidation. The analytical advantage of using FSCV to detect dopamine is its enhanced temporal resolution of 100 milliseconds and spatial resolution of less than ten microns, providing complementary information to in vivo microdialysis.

Using fast-scan cyclic voltammetry to measure electrically evoked presynaptic dopamine dynamics in striatal brain slices.

빠른 스캔 순환 Voltammetry와 Striatal 뇌 조각의 Presynaptic 도파민 역학

Extensive research has focused on the neurotransmitter dopamine because of its importance in the mechanism of action of drugs of abuse (e.g. cocaine and ...

Paired Whole Cell Recordings in Organotypic Hippocampal Slices

Pair recordings involve simultaneous whole cell patch clamp recordings from two synaptically connected neurons, enabling not only direct electrophysiological characterization of the synaptic connections between individual neurons, but also pharmacological manipulation of either the presynaptic or the postsynaptic neuron. When carried out in organotypic hippocampal slice cultures, the probability that two neurons are synaptically connected is significantly increased. This preparation readily enables identification of cell types, and the neurons maintain their morphology and properties of synaptic function similar to that in native brain tissue. A major advantage of paired whole cell recordings is the highly precise information it can provide on the properties of synaptic transmission and plasticity that are not possible with other more crude techniques utilizing extracellular axonal stimulation. Paired whole cell recordings are often perceived as too challenging to perform. While there are challenging aspects to this technique, paired recordings can be performed by anyone trained in whole cell patch clamping provided specific hardware and methodological criteria are followed. The probability of attaining synaptically connected paired recordings significantly increases with healthy organotypic slices and stable micromanipulation allowing independent attainment of pre- and postsynaptic whole cell recordings. While CA3-CA3 pyramidal cell pairs are most widely used in the organotypic slice hippocampal preparation, this technique has also been successful in CA3-CA1 pairs and can be adapted to any neurons that are synaptically connected in the same slice preparation. In this manuscript we provide the detailed methodology and requirements for establishing this technique in any laboratory equipped for electrophysiology.

Pair recordings are simultaneous whole cell patch clamp recordings from two synaptically connected neurons, enabling precise electrophysiological and pharmacological characterization of the synapses between individual neurons. Here we describe the detailed methodology and requirements for establishing this technique in organotypic hippocampal slice cultures in any laboratory equipped for electrophysiology.

해마의 Organotypic 조각의 쌍으로 전체 셀 녹음

Pair recordings involve simultaneous whole cell patch clamp recordings from two synaptically connected neurons, enabling not only direct ...

Recording Synaptic Plasticity in Acute Hippocampal Slices Maintained in a Small-volume Recycling-, Perfusion-, and Submersion-type Chamber System

Even though experiments on brain slices have been in use since 1951, problems remain that reduce the probability of achieving a stable and successful analysis of synaptic transmission modulation when performing field potential or intracellular recordings. This manuscript describes methodological aspects that might be helpful in improving experimental conditions for the maintenance of acute brain slices and for recording field excitatory postsynaptic potentials in a commercially available submersion chamber with an outflow-carbogenation unit. The outflow-carbogenation helps to stabilize the oxygen level in experiments that rely on the recycling of a small buffer reservoir to enhance the cost-efficiency of drug experiments. In addition, the manuscript presents representative experiments that examine the effects of different carbogenation modes and stimulation paradigms on the activity-dependent synaptic plasticity of synaptic transmission.

This protocol describes the stabilization of the oxygen level in a small volume of recycled buffer and methodological aspects of recording activity-dependent synaptic plasticity in submerged acute hippocampal slices.

급성 Hippocampal 조각에 작은 볼륨 재활용-, 관류-침수 형 챔버 시스템 유지에 시 냅 스가 소성을 기록

Even though experiments on brain slices have been in use since 1951, problems remain that reduce the probability of achieving a stable and successful ...

Visualization and Live Imaging of Oligodendrocyte Organelles in Organotypic Brain Slices Using Adeno-associated Virus and Confocal Microscopy

Neurons rely on the electric insulation and trophic support of myelinating oligodendrocytes. Despite the importance of oligodendrocytes, the advanced tools currently used to study neurons, have only partly been taken on by oligodendrocyte researchers. Cell type-specific staining by viral transduction is a useful approach to study live organelle dynamics. This paper describes a protocol for visualizing oligodendrocyte mitochondria in organotypic brain slices by transduction with adeno-associated virus (AAV) carrying genes for mitochondrial targeted fluorescent proteins under the transcriptional control of the myelin basic protein promoter. It includes the protocol for making organotypic coronal mouse brain slices. A procedure for time-lapse imaging of mitochondria then follows. These methods can be transferred to other organelles and may be particularly useful for studying organelles in the myelin sheath. Finally, we describe a readily available technique for visualization of unstained myelin in living slices by Confocal Reflectance microscopy (CoRe). CoRe requires no extra equipment and can be useful to identify the myelin sheath during live imaging.

Myelinating oligodendrocytes promote rapid action potential propagation and neuronal survival. Described here is a protocol for oligodendrocyte-specific expression of fluorescent proteins in organotypic brain slices with subsequent time-lapse imaging. Further, a simple procedure for visualizing unstained myelin is presented.

시각화 및 Adeno 관련 바이러스 및 Confocal 현미경 검사 법을 사용 하 여 Organotypic 뇌 조각에서 Oligodendrocyte 세포의 라이브 영상

Neurons rely on the electric insulation and trophic support of myelinating oligodendrocytes. Despite the importance of oligodendrocytes, the advanced ...

An Alternative Approach to Study Primary Events in Neurodegeneration Using Ex Vivo Rat Brain Slices

Despite&#160;numerous studies that attempt to develop reliable animal models&#160;which reflecting the primary processes underlying neurodegeneration, very few have been widely accepted. Here, we propose&#160;a new procedure&#160;adapted from the well-known ex vivo brain slice technique, which offers a closer in vivo-like scenario than in vitro preparations, for investigating the early events triggering cell degeneration, as observed in Alzheimer&#39;s disease (AD). This variation consists of simple and easily reproducible steps, which enable preservation of the anatomical cytoarchitecture of the selected brain region and its local functionality in a physiological milieu. Different anatomical areas can be obtained from the same brain, providing the opportunity to perform multiple experiments with the treatments in question in a site-, dose-, and time-dependent manner. Potential limitations&#160;which could affect the outcomes related to this methodology are related to the conservation of the tissue, i.e., the maintenance of its anatomical integrity during the slicing and incubation steps and the section thickness, which can influence the biochemical and immunohistochemical analysis. This approach can be employed for different purposes, such as exploring molecular mechanisms involved in physiological or pathological conditions, drug screening, or dose-response assays. Finally, this protocol could also reduce the number of animals employed in behavioral studies. The application reported here has been recently described and tested for the first time on ex vivo rat brain slices containing the basal forebrain (BF), which is one of the cerebral regions primarily affected in AD. Specifically, it has been demonstrated that the administration of a toxic peptide derived from the C-terminus of acetylcholinesterase (AChE) could prompt an AD-like profile, triggering, along the antero-posterior axis of the BF, a differential expression of proteins altered in AD, such as the alpha7 nicotinic receptor (&#945;7-nAChR), phosphorylated Tau (p-Tau), and amyloid beta (A&#946;).

An Alternative Approach to Study Primary Events in Neurodegeneration Using Ex Vivo Rat Brain Slices

We present a method which can&#160;provide further insights into the early events underlying neurodegeneration and based on the established ex-vivo brain technique, combining the advantages of in vivo and in vitro experiments. Moreover, it represents a unique opportunity for direct comparison of treated and untreated group in the same anatomical plane.

Neurodegeneration Ex Vivo 쥐 두뇌 분할 영역을 사용 하 여 기본 이벤트를 공부 하는 양자 택일 접근

Despite&#160;numerous studies that attempt to develop reliable animal models&#160;which reflecting the primary processes underlying neurodegeneration, ...

Assessment of Long-term Depression Induction in Adult Cerebellar Slices

Synaptic plasticity provides a mechanism for learning and memory. For cerebellar motor learning, long-term depression (LTD) of synaptic transmissions from parallel fibers (PF) to Purkinje cells (PC) is considered the basis for motor learning, and deficiencies of both LTD and motor learning are observed in various gene-manipulated animals. Common motor learning sets, such as adaptation of the optokinetic reflex (OKR), the vestibular-ocular reflex (VOR), and rotarod test were used for evaluation of motor learning ability. However, results obtained from the GluA2-carboxy terminus modified knock-in mice demonstrated normal adaptation of the VOR and the OKR, despite lacking PF-LTD. In that report, induction of LTD was only attempted using one type of stimulation protocol at room temperature. Thus, conditions to induce cerebellar LTD were explored in the same knock-in mutants using various protocols at near physiological temperature. Finally, we found stimulation protocols, by which LTD could be induced in these gene-manipulated mice. In this study, a set of protocols are proposed to evaluate LTD-induction, which will more accurately allow examination of the causal relationship between LTD and motor learning. In conclusion, experimental conditions are crucial when evaluating LTD in gene-manipulated mice.

In some gene-manipulated animals, using a single protocol may fail to induce LTD in cerebellar Purkinje cells, and there may be a discrepancy between LTD and motor learning. Multiple protocols are necessary to assess LTD-induction in gene-manipulated animals. Standard protocols are shown.

성인 소뇌 슬라이스에 장기 우울증 유도의 평가

Synaptic plasticity provides a mechanism for learning and memory. For cerebellar motor learning, long-term depression (LTD) of synaptic transmissions from ...