우리는 조리법의주의 깊은 검사에, 유익한 토론 Y. 유 M. Hempenius 및 E. 베네 감사, 기술 지원에 대한 그림 1, C. Padberg 및 K. 스 미트의 이미지를 디자인에 대한 M. Vlot. EK 금융 지원을위한 과학 연구에 대한 네덜란드기구 (NWO, TOP 그랜트 700.56.322, 자극과 거대 분자 나노 기술 응답 폴리머)를 인정한다. SDB는 재정적으로 과학 연구에 대한 네덜란드기구 (NWO)에 의해 지원되는 물질에 관한 기초적 연구 재단 (FOM)에 의해 지원되었다.

참고 :도 2는 샘플 제조 절차를 도시한다. 폴리머 브러시는 실리콘으로부터 그래프트되었다 (SI)의 기판 (경로 (a)), 금 - 코팅 된 기판, 및 금 콜로이드 AFM 프로브에서 (100 nm의 금 (b)는 10 nm의 Cr 접착층, 경로를 갖는 실리콘 웨이퍼 상에 증착)로부터 (6 μm의 직경, 경로 (C)) 표면으로는 원자 이동 라디칼 중합 (SI-ATRP) (24)를 시작했다. AFM 측정은 수직 스캐너 및 액체 셀 결합, 저잡음 헤드와 멀티 모드 AFM에서 수행 하였다. 1. 샘플 준비 <ol><li> 기판 준비 <ol><li> 실리콘 표면에 증착 개시제. <ol><li> 클로로포름, 다음 피라냐 용액으로 실리콘 기판을 청소,이어서, 정제수, 에탄올 및 클로로포름으로 헹군다. </li><li> 50 μL (3- 아미노 프로필) 트리에 톡시 실란을 포함하는 유리 병 주위 건조기로 건조 기판을 놓습니다. </li><li> 데시 케이 터 위트 대피하 로터리 베인 15 분 동안 펌프 및 이후 닫습니다. 증기 증착 / N을 O를 할 수있게합니다. </li><li> 삼각 플라스크에 40 ml의 톨루엔 (탈기) 40 μL 트리 에틸 아민 용액을 준비합니다. </li><li> 플라스크에 기판을 놓고 적가 40 μL 2- 브로 모 -2- 메틸 프로피를 추가합니다. 형성된 용액에 염 결정의 석출을 방지하기 위해, 용액 중에 기판을 유지. </li><li> 4 시간 동안 솔루션을 저어. </li><li> 톨루엔과 에탄올로 기판을 씻어. 다음으로, 중합 바이알에 기판을 배치합니다. </li></ol></li><li> 골드 표면에 기자 증착 <ol><li> 단층 용액을 제조 20 ㎖의 2- 브로 모 -2- 메틸 - 프로피온산 11- [11- (2- 브로 모 -2- 메틸 - 프로피 오닐) -undecyldisulfanyl] -undecyl 에스테르를 용해 클로로포름 (0.2 mm)를 탈기. </li><li> 전송 약 이전에 아르곤로 플러싱 작은 유리 병에 1.5 ml의 단층 솔루션입니다. </li><li> 클로로포름으로 금 코팅 된 기판을 청소하고피라 솔루션입니다. 이어서, 정제수, 에탄올 및 클로로포름으로 헹군다. </li><li> 단층 용액에 세척 된 기판을 담그고 플라스크를 닫습니다. 스토어 O / N 어두운 곳에서. </li><li> 용매에 침적에 의해 에탄올 및 클로로포름으로 금 콜로이드 프로브를 청소합니다. </li><li> 단층 함유 용액을 바이알에 프로브를 담궈 콜로이드. 단단히 닫고 어두운 곳의 O / N에 보관합니다. </li><li> 솔루션에서 기판을 제거 클로로포름과 에탄올로 씻는다. 다음에, 중합 개시제 플라스크에 코팅 기판을 이송. </li><li> , 단층 솔루션에서 콜로이드 프로브를 제거 클로로포름과 에탄올로 씻는다. 다음에, 중합 바이알에 개별적으로 각 프로브를 전송. </li></ol></li></ol></li><li> 중합 <ol><li> PMMA의 SI-ATRP <ol><li> 의 Arg와 기자 덮인 기판 (Si 및 금 모두) 및 콜로이드 프로브를 포함, 플라스크 및 튜브를 제거30 분에. </li><li> ATRP 배지에서 10g의 메틸 메타 크릴 레이트 (MMA)를 용해시키고 (비 10 ㎖의 메탄올 / 물 혼합물을 5 : 1)로 2 시간 동안 용액을 가스를 제거. </li><li> (3) 진공 아르곤 백필 싸이클로 145 MG의 CuBr 및 자기 교반 막대가 구비 된 플라스크에 320 mg의 2,2- 피리딘 및 deoxygenize 추가. </li><li> (구리 함유)을 플라스크 내에 탈기 단량체 용액을 전송하고 맑은 용액이 갈색이 관찰 될 때까지 또 다른 15 분 동안 교반한다. </li><li> 2 ML의 주사기에 바늘을 부착하고 바늘과 아르곤과 주사기 2 ~ 3 번 세척. </li><li> 콜로이드 프로브를 함유하는 주사기와 1ml의 중합 용액을 취하여 소규모 반응 바이알에 콘텐츠를 삽입. </li><li> 평면 기판을 포함하는, 주사기와 잔류 액을 취하여, 반응 바이알에 콘텐츠를 삽입. 완전히 각각의 샘플을 잠수 할 수있는 충분한 솔루션을 추가합니다. </li><li> 실온에서 40 시간 동안 중합을 실시한다. </li><li> 다시중합 용액으로부터 샘플을 이동하고 다수의 사이클 에탄올, 클로로포름으로 세척 하였다. 시료의 착색은 브러시의 존재를 나타낸다. </li><li> 마지막으로, 질소 기류 하에서 기판을 건조. </li><li> 질소 상자에서 평평한 기판을 유지합니다. 스토어 폴리머 브러시는 톨루엔에 프로브를 수정했습니다. </li></ol></li><li> PNIPAM 10 SI-ATRP <ol><li> 30 분 동안 아르곤으로 개시제 덮인 기판 (Si 및 금 모두) 및 콜로이드 프로브를 함유하는 플라스크를 퍼지 튜브. </li><li> ATRP 매체 (1.6 ml의 물 18 ㎖의 메탄올)에 5.6 g의 N의 -isopropylacrylamide 320 μL의 PMDETA를 용해시키고, 2 시간 동안 솔루션을 가스를 제거. </li><li> 자기 교반 막대를 구비 한 플라스크에 CuBr 76 mg을 추가하고, 3 진공 아르곤 백필 싸이클로 deoxygenize. </li><li> 구리가 들어있는 플라스크에 탈기 단량체 용액을 전송합니다. 녹색의 맑은 용액이 관찰 될 때까지 또 다른 15 분 동안 교반한다. </리&gt; <li> 2 ML의 주사기에 바늘을 부착하고 바늘과 아르곤과 주사기 2 ~ 3 번 세척. </li><li> 콜로이드 프로브를 함유하는 주사기와 1ml의 중합 용액을 취하여 소규모 반응 바이알에 콘텐츠를 삽입. 모든 프로브에 대해 반복합니다. </li><li> 평면 기판을 포함하는, 주사기와 잔류 액을 인출하고, 반응 플라스크에 콘텐츠를 삽입. 완전히 각각의 샘플을 잠수 할 수있는 충분한 솔루션을 추가합니다. </li><li> RT에서 2 시간 동안 중합을 실시한다. </li><li> 중합 용액에서 샘플을 제거하고 여러 사이클을 통해 에탄올과 물로 씻는다. 샘플 나타나는 색상은 브러시의 존재를 나타낸다. </li><li> 0.1 M EDTA 용액에 시료를 담그고 솔루션 O에 보관 / N 모든 구리를 제거합니다. 정제 된 물과 에탄올로 세척 할 것. </li><li> 질소 상자에서 평평한 기판을 유지합니다. 정제 된 물에 PNIPAM 브러시 수정 프로브를 저장합니다. </li></ol></li></ol></li><li> 브러시 특성은, 푸리에 변환 적외선 (그림 3) 참고 : Si 기판에 고분자 브러쉬 골드 기판 및 전송 FTIR 모드에 고분자 브러쉬를 사용하여 방목 각도 FTIR 모드. 신중하게 모든 샘플을 건조시킵니다. 모든 물과 용매의 오염은 검출기의 심각한 손상을 줄 수 있습니다. <ol><li> 제조업체가 제공 한 설명서에 따라 장비를 시작합니다. </li><li> 샘플 측정을위한 다음 매개 변수를 설정 : 900 3,700cm 사이의 범위 -1 각 측정에 4cm -1 평균 32 스캔 해상도. </li><li> , 시료 전처리에 사용되는 프로토콜에 따라 빈 기판을 청소 조심스럽게 건조 및 측정 챔버에 배치합니다. </li><li> 4 시간 동안 진공을 적용합니다. 다음으로, 배경 스캔을 기록합니다. </li><li> 빈 샘플을 제거하고 시료 챔버에서 건조 폴리머 브러시 코팅 샘플을 배치합니다. </li><li> SAMPL에 진공을 적용E 실 5 시간 동안 주사 샘플마다 30 분을 기록한다. </li><li> 폴리머 브러시의 화학 성분을 확인하기 위해 스펙트럼의 모든 피크를 식별합니다. (만 직선 기준으로 검사를 분석 할 수 있습니다.) </li></ol></li></ol> 2. AFM 측정 <ol><li> 폴리머의 과잉을 제거하고 건조 용매로 씻어, 바늘로 조심스럽게 PMMA 브러시 커버 기판을 스크래치. </li><li> AFM 악기로 샘플을 마운트하고 액체 셀에 프로브를 탑재합니다. </li><li> 캔틸레버의 끝 부분에있는 레이저를 맞 춥니 다. </li><li> 카메라의 사용으로, 스크래치 위의 팁을 맞 춥니 다. </li><li> 접근과 팁을 결합하기 전에, 스캔 크기 0 nm의를 설정합니다. 다음에, 표면에 결합 팁. </li><li> &#39;램프 모드&#39;로 이동하고 힘 거리 곡선을 통해 편향 감도를 결정합니다. 소프트웨어 및 비틀림 스프링 정수 O에서 구현 &#39;열적 튜닝&#39;를 이용하여 통상의 스프링 정수를 보정바그너 등의 방법을 사용하여 칸틸 레버 (F). (25) <ol><li> 소프트웨어 (6.25 메가 헤르츠)의 고속 데​​이터 캡처를 사용하여 2 초 동안 공기 중에서 캔틸레버의 비틀림 열잡음 캡처. </li><li> 푸리에 변환하여 전력 스펙트럼 밀도 (V 2 / Hz로)로 변환 열잡음. </li><li> 기본적인 공진 및 전력 스펙트럼 밀도에 공진 피크와 기준선 잡음 포함한 단순 조화 진동자 대한 식 (당량. 참고 문헌 2. 25)를 사용하여 공기 중에서 캔틸레버의 품질 계수를 결정한다. </li><li> Sader (26)의 방법을 이용하여 단계 2.6.3에서 결정된 캔틸레버의 면내 치수 (길이 및 폭), 밀도 및 주변 매질 (공기)의 점도 및 품질 계수 및 공진 주파수를 이용하여 비틀림 스프링 상수를 계산한다. 참고 : www.ampc.ms.unimelb.edu.au/afm/calibration.html : 우리는 존 Sader의 웹 사이트에서 제공하는 도구를 사용했다. </li><li> 칼슘당량을 사용하는 캔틸레버의 비틀림 각도 편향 감도 lculate. 6 참조 7. 25. </li><li> 콜로이드 크기, 캔틸레버와 당량의 두께를 사​​용하여 횡 방향 스프링 상수 및 편향 감도에 비틀림 스프링 상수 및 편향 감도 변환. 참조 8. 25. 주 : 검출기 신호 이제 통해 강제로 변환 할 수있다 : 힘 [N]를 횡 방향 스프링 정수 [N에 /에서 m] *를 = 횡 편향 감도 [m / V] * 검출기 신호 [V]. </li></ol></li><li> 편향 가능한 최저 설정치에 스크래치에 브러시 촬상하여 드라이 브러쉬의 브러쉬의 높이를 측정한다. 캡처 된 이미지의 선 검사에서 브러시 높이를 결정합니다. </li><li> 부드럽게 주사기 표면에 적용하여 아세토 페논에 브러시 용매화물. 참고 : 용매가 증발로 샘플 변화의 색상입니다. 이 건조 공정에 따라 가능하다. </li><li> AFM에 샘플을 탑재합니다. 에 수직 레이저 신호를 맞 춥니 다-1.0 V. 0 V에 편향 설정 값을 설정하고 캔틸레버 표면을 참여. 주 : 표면과 접촉하는 캔틸레버를 지참 후, 아세토 페논은 팁과 표면 사이의 모세관을 만드는 다리 콜로이드에 브러시로 이동한다. </li><li> 40 μm의 스캔 크기를 설정 한에 느린 스캔 축과 설정 이미지의 화면 비율을 사용하지 않도록 : 4. 높이와 마찰 채널 화상 (추적과 귀선 ​​둘 다)를 기록한다. </li><li> 이미지가 캡처 될 때 캔틸레버를 철회. </li><li> PNIPAM 브러시를 용매화물에, PNIPAM 브러시 덮인 표면에 물 한 방울을 적용합니다. </li><li> 혼합 할 수없는 시스템을 만들 매화 PNIPAM 표면에 의해 PMMA 표면을 대체 신속하게 머리를 들어 올리고. 콜로이드 프로브의 PMMA 브러시에서 아세토 페논의 증발을 방지하기 위해 표면을 교환 할 때 빨리해야합니다. </li><li> 이전과 동일한 매개 변수를 사용하여 팁과 표면 및 기록 이미지를 작동시킵니다. </li></ol>

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J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transient+forces+in+flowing+soft+matter.">Transient forces in flowing soft matter.</a> Soft Matter. 5, 4401-4411 (2009).</li><li>Chen, M., Briscoe, W. H., Armes, S. P., Klein, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lubrication+at+Physiological+Pressures+by+Polyzwitterionic+Brushes.">Lubrication at Physiological Pressures by Polyzwitterionic Brushes.</a> Science. 323, 1698-1701 (2009).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

제시된 결과는 마찰 개별적 매화 브러쉬 혼화 시스템 강하게 용 매화 같은 브러쉬 두 혼화 기존 시스템에 비해 감소되는 것을 보여준다. 두 브러쉬의 다른 용매의 바람직한 흡광도를 제거 맞물 리도록에서 브러쉬 및 폴리머 브러시 마찰 마모 및 소비의 결과 주요 소스를 방지 할 수 있습니다. 제시된 방법에 따라서 마찰 브러시 특정 상호 작용 (27)에 의해 결정될 것이다 소수성 브러시, 건조한 친수성에 슬라이딩 근본적으로 다르다. 사실, 용매의 PNIPAM (붕괴 높이 166 ㎚)에 PMMA 전단에, 우리는 마찰이 50 % 높았다 PMMA (붕괴 높이 236m)에 PMMA를 건조에 비해 것을 발견했다. 이미 &#39;프로토콜&#39;섹션의 노트에 곧 지적한 바와 같이, 수행하는 동안 명심해야 할 중요한 점 몇 가지가 있습니다이러한 특정 실험은 첫째, 아세토 페논 더 나은 용매 물보다 PNIPAM입니다. 따라서, 치료는 아세토 페논은 많은 양의 물을 PNIPAM 브러시를 적시하여 PNIPAM 브러시를 입력하지 않도록주의해야한다. 아세토 페논과 물이 혼합되지 않기 때문에, 아세토 페논 이제 PNIPAM 브러시를 입력하지 않습니다. 그것은 우리가 아세토 페논 완전히 우리의 시스템을 담 그거나, 대신 혼합 시스템에 대한 아세토 페논 모세관을 작성하지 않은 이유입니다. 완전 침수에 대한 또 다른 이유는 우리는 콜로이드와 캔틸레버의 스톡 드래그를 측정하도록 너무 강한 유체 역학에 완전히 담가 결과. 둘째, AFM 실험에서 정상 비틀림 스프링 상수가 결합된다. 낮은 일반 스프링 상수와 캔틸레버 반대의 경우도 마찬가지 상대적으로 낮은 비틀림 스프링 상수 및있을 것이다. 이것은 가장 낮은 측정 마찰 계수&gt; (10) -3를 제한합니다. 따라서, MIS의 전체 마찰 감소, 마찰을 측정하기 위하여cible 시스템은 높아야한다. 이것은 긴 고밀도 브러쉬 통상적 100m / sec의 상대적으로 높은 전단 속도를 사용함으로써 달성된다. 더욱이, 브러쉬 사이 모세관은 마찰력을 증가시킨다. 우리는 200 kPa로의 수직 응력 하에서 예상 μ = 0.003, 혼화 시스템 (22)에 대해, 낮은 마찰 계수를 측정 하였다. 같은 실험 조건을 사용하여, 우리는 μ 발견 = 0.15 혼합 시스템. 실험은 통제 된 실험실 환경에서 수행하고 있고 산업에서 사용되는 표면이 제시된 실험에서 사용 된 것과 같은 이상적되지 않습니다. 대부분의 표면은 불균일 한 조도 분포를 다른 모양 및 크기의 28 때문에 많은 요철이있다. 두 브러쉬 베어링 돌기의 충돌 과정에서 마찰은 다른 소비 채널 29에서 구성되어있다. 이러한 interdigita 같은 정상 상태로 다음 소산 메커니즘,기 및 용매 유동 인해 중합체 및 용매의 느린 완화 시간에 모양 (30)의 히스테리시스 효과가있을 것이다. 게다가, 모세 혈관 형성과 파괴된다. 전통적으로 사용 된 혼화 브러시 시스템에서, 과도 맞물 31까지 형태와 모세관 히스테리시스를 증폭한다. 여기에 제시된 혼합되지 않는 시스템으로 과도 맞물 너무 제거된다. 또한, 모세관 히스테리시스 두 비혼 화성 용매의인가에 의해 회피 될 수있다. 따라서, 또한 일반적인 거친 표면, 마찰 및 마모 섞이지 브러시 시스템 (22)을 사용하여 감소합니다. 남아 마찰의 주요 소스는 브러시 변형이다. 표면 중 하나 상에 내재 저 마찰 32 알려져있다 polyzwitterionic 중합체, 정박 후자를 최소화 할 수있다. 이러한 시스템에서 용매 삼투압 높은 정상 부하에서 약간 변형 브러시 높은 결과 만들어진이다. 비혼 화성 브러쉬 시스템의 제시된 방법은 낮은 마찰이 바람직한 거의 모든 시스템에 적용될 수있다. 또한 높은 압력 아래 방법 기능. 그러나, 용품은 RT 주위 온도가 유지되는 것을주의해야한다. 높은 온도는 접촉 결과적으로 높은 마찰에서 액체 흐름의 원인이됩니다 폴리머를 손상. 잠재적 응용의 예 : 주사기 피스톤 시스템, 액슬 베어링과 힌지.

완벽한 윤활제는 마찰을 줄이고 정상적인 부하가 높은 경우에도 상대 운동에 고체 착용. 이를 달성하기 위해, 윤활제를 슬라​​이딩하고 안정 동안 접촉을 유지한다. 그러나 긍정적 정상 부하 간단 저점도 액체들이 빠르게 접촉 영역에서 압착 및 더 높은 점성 오일은 결국 방출된다. 그러나 생물학적 접점은, 예를 들면, 인간의 관절에서도 항상 저점도 유체로 윤활 유지. 자연은 고체 표면에 부착 한 당 사슬을 사용하여 이러한 효율적인 윤활을 실현한다. 친수성 당 사슬은 상압 용제 (2)의 삼투압을 초과하지 않는 한 연락처에 수성 액체를 유지한다. 따라서, 많은 노력 소위 폴리머 브러시 3-12 고체 표면을 형성하는 중합체에 그 래프팅함으로써 생물학적 윤활제를 흉내 지향되었다. 때 두 개의 반대 폴리머브러시가 접촉 한쪽 중합체 쇄 세그먼트는 반대측 브러시 쇄 세그먼트들로 이동할 수있다. 이 효과는 13 맞물라고합니다. 브러쉬가 상대적으로 슬라이딩 동작에있을 때, 인터 디지 마모 (14)와 마찰 15-17의 주요 원천입니다. 사실, 최근에, 폴리머 브러시 슬라이딩 마찰 속도의 관계는 (18)를 유도하고있다. 이러한 확장 법은 맞물과 그에 따른 스트레칭과 슬라이딩에 폴리머 굽힘을 기반으로합니다. 주요 특성은 표면 힘 장치 실험 (19)의 결과에 동의 및 분자 역학 (MD)의 20 대한 모의. 후자의 오버랩의 정도를 직접 정량화 할 수있다. 또한, 고분자 전해질 브러쉬 간의 중첩이 전기장 (21)을인가함으로써 동조 될 수있는 것으로 나타났다. 인터 디지 이러한 시스템에서, 마찰과 마모를 회피 할 수 있으면 따라서 significan 것TLY 감소. 최근 출판 (22)에서는, 두 비혼 화성 매화 폴리머 브러시 시스템은 브러쉬 사이의 중첩을 방지 MD 시뮬레이션을 통해 보여준다. 또한, 상기 브러시 슬라이딩에, 우리가 우리의 원자 힘 현미경 (AFM) 측정과 매우 잘 일치에서는 전통적인 혼화 브러시 시스템에 비해, 2 차의 크기에 의해 마찰력 감소를 알았다. 여기서 우리는 심판의 AFM 실험을 설정하는 방법을 자세히 설명합니다. 22. 기본 원리는도 1에 스케치된다. 두 반대면, 두 개의 다른 브러쉬 자신 바람직한 용매로 용 매화 각각 필요하다. 이 구성에서 각 브러쉬는 자신의 용매에 남아 있습니다. 따라서, 하나의 브러시에서 폴리머 세그먼트는 다른 브러시에 침투하지 않습니다. 폴리 메틸 메타 크릴 레이트 (PMMA)는 AFM 프로브 콜로이드로부터 그래프트되고 브러시 페논 의해 용해되었다. 평면 폴리 (N의 -isopropylacrylamide) (PNIPAM)는 이식 물에 용해된다. 전통적인 혼합 시스템에 본 시스템을 비교하기 위해, 아세토 페논에 매화 PMMA 브러시가 부착 된 제 2 플랫 반대면된다. PNIPAM에서 PMMA의 혼화 시스템 슬라이딩시 마찰력 측정 된 PMMA가 PMMA에의 혼화 시스템 마찰 대략 1 %이다. 이들 특정 브러쉬 시스템의 사용은 단지 하나의 예임을 유의. 제시된 방법은 제네릭 인해 다른 브러쉬에서 용매의 바람직한 흡수하기 위해 노력하고 있습니다. 따라서, 더 많은 종류의 브러쉬는 한 선택된 용매에서 두 브러쉬 믹스 드로서 적용될 것으로 예상된다. 효과는 추가 미끄러운 유체 온 유체 슬라이딩 22,23 인터페이스를 생성되도록 (페논 및 물과 같은) 두 개의 비 혼합 용매를 사용하여 증폭된다.

<table><tbody><tr><td>Methyl methacrylate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M55909&amp;nbsp;</td><td>Monomer for PMMA synthesis, cleaned by pressing through a basic alumina column</td></tr><tr><td>(3-aminopropyl)triethoxysilane</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>440140</td><td>vapor deposited silane monolayer</td></tr><tr><td>triethylamine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T0886</td><td>Reagent for the ATRP initiator moiety coupling.</td></tr><tr><td>2-bromo-2-methylpropionyl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>252271</td><td>ATRP initiator moiety.</td></tr><tr><td>toluene</td><td>Biosolve</td><td>20150501</td><td>Coupling medium for ATRP moiety</td></tr><tr><td>CuBr</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>212865</td><td>ATRP catalyst.</td></tr><tr><td>2,2&amp;prime;-Bipyridyl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>14453</td><td>Cu complexing ligand for ATRP of MMA</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;N,N,N&amp;prime;,N&quot;,N&quot;&lt;/em&gt;-Pentamethyldiethylenetriamine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>369497</td><td>Cu complexing ligand for ATRP of NIPAM</td></tr><tr><td>acetic acid 98-100%</td><td>Merck</td><td>8187551000</td><td>For cleaning CuBr.</td></tr><tr><td>Sulfuric acid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320501</td><td>For the preparation of Piranha solution</td></tr><tr><td>Hydrogen peroxide 33%</td><td>Merck</td><td>1.07210.1000</td><td>For the preparation of Piranha solution</td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Merck</td><td>1.00983.1000</td><td>For cleaning substrates.</td></tr><tr><td>Basic aluminum oxide 60&amp;nbsp;</td><td>Merck</td><td></td><td>For cleaning monomers.</td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Biosolve</td><td>3080501</td><td>For monolayer deposition and substrate cleaning.</td></tr><tr><td>Methanol</td><td>Biosolve</td><td>13680501</td><td>For polymerization medium.</td></tr><tr><td>Acetophenone</td><td>Acros Organics</td><td>102410010</td><td>For AFM measurement environment.</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;N&lt;/em&gt;-isopropyl acrylamide</td><td>Acros Organics</td><td>412780250</td><td>Monomer for PNIPAM synthesis, recrystallized from toluene/hexane</td></tr><tr><td>Poly(ethylene glycol) methacrylate&amp;nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>409529</td><td>Monomer for Si-POEGMA synthesis, cleaned by pressing through a basic alumina column.</td></tr><tr><td>MilliQ water</td><td>MilliQ Advantage A 10 purification system&amp;nbsp;</td><td></td><td>ATRP medium, AFM measurement environment and for substrate cleaning.</td></tr><tr><td>Silicon substrates&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gold coated substrates</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>AFM probe, CP-FM-Au</td><td>SQube</td><td></td><td>AFM measurement</td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>dithiodiundecane-11,1-diybis[2-bromo-2-methlpropanoate] (DTPR)</td><td></td><td></td><td>Initiator, for Si-ATRP on gold surfaces.&lt;br/&gt; Synthesized according to &lt;em&gt;Macromolecules&lt;/em&gt;, &lt;strong&gt;33&lt;/strong&gt;, 597-605 (2000).</td></tr><tr><td>Atomic Frorce Microscope</td><td>Bruker Multimode V controller</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

preparation and friction force microscopy measurements of immiscible, opposing polymer brushes

매화 폴리머 브러시는 당해 계면에 저 마찰을 유지하면서 이들이 포지티브 정상 부하를 견딜 수 있기 때문에, 고압 접점을 윤활하는 것으로 알려져있다. 그럼에도 불구하고 이러한 시스템으로 인해 대향 브러쉬 맞물 입을에 민감 할 수있다. 최근 공보에서는 기판과 슬라이더 표면을 종료 비혼 화성 폴리머 브러시 시스템을 통해, 각각, 예컨대 맞물 제거 할 수 있음을, 분자 동력학 시뮬레이션 및 원자력 현미경 실험을 통해 보여준다. 결과적으로 감소되고, 콘택트 착용. 또한, 상기 마찰력은 전통적인 혼화 폴리머 브러시 시스템에 비해, 2 차의 크기 이하이다. 새롭게 제안 된 시스템은 따라서 산업의 응용 프로그램에 대한 큰 잠재력을 보유하고있다. 여기서, 방법론이 제시된다 자신 바람직한 용매로 용 매화 개의 각각 다른 브러쉬의 비혼 화성 폴리머 브러시 시스템을 구축 하였다. 페이지를 접목하는 방법을 절차OLY (N의 -isopropylacrylamide) 원 자간 력 현미경 (AFM) 탐침 콜로이드로부터 평탄면과 폴리 메틸 메타 크릴 레이트로부터 (PNIPAM) (PMMA)를 설명한다. PNIPAM는 아세토 페논 물과 PMMA에 용해된다. 마찰력 측정 AFM을 통해,이 시스템은 마찰에 실제로 페논 매화 PMMA에 혼화 PMMA의 시스템에 비해, 2 차의 크기에 의해 감소​​되는 것을 알 수있다.

도 4는 혼화 비혼 화성 폴리머 브러시 시스템 모두 슬라이딩시 대표적인 AFM 동력 트레이스를 도시한다. 마찰력 F는 대칭, 혼화 시스템의 F SYM 슬라이딩 정상 상태에서 마찰력에 의해 정규화된다. 이 실험에 부어 브러시 높이 PMMA를위한 1010 nm의 PNIPAM에 대한 532 nm였다. 힘 트레이스 프로토콜 절에 기재된 절차에 따라도 포착된다. 윈 30의 정상 부하를인가하면서이 실험에서는 표면 앞뒤로이 80㎛ / sec의 속도 v로 이동되었다. 혼합 (왼쪽 패널)에 대한 마찰력과 섞이지 (오른쪽 패널) 브러시 시스템의 차이는 명확하게 관찰 할 수있다. 왼쪽 패널에서 정상 상태의 마찰력은 오른쪽 패널에서 정상 상태의 마찰력보다 90X 높다. 혼화 시스템에 대한 측정 된 마찰력 마찰력 (F)의 측정은 0.5 % 전형적또는 혼합 시스템. 정확한 마찰 감소가 그라프 트 밀도, 중합도, 용매의 양, 및 (약하게) 정상 부하 슬라이딩 속도에 따르지만, 또한 2 차의 크기에 항상 주변이다. 우리는 인자 5 (400 μm의 / 초)에 의해 전술 한 시스템에 대한 슬라이딩 속도를 증가 시키면, 마찰 감소는 2 %로 감소한다. 우리는 (300로 윈) 계수 (10)에 의해 정상 부하를 증가 시키면, 마찰 감소는 3 %로 감소한다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/52285/52285fig1highres.jpg" /> 그림 1. 설정의 도식 스케치. 왼쪽 패널은 같은 고분자가 표면과 콜로이드에서 이식 된 혼합 시스템을 보여줍니다. 브러쉬 하나 상 액체에 용해된다. 오른쪽 패널은 두 개의 서로 다른 고분자 브러쉬의 혼합되지 않는 시스템을 보여줍니다. 각각의 브러시는 선호하는 액체에 용해된다. 전통에서대향 브러쉬 중합체 혼 화성 시스템은 중첩된다. 혼합되지 않는 시스템의 경우, 반대 브러쉬는 마찰을 물리는하지 않고 감소 슬라이딩시 착용하십시오. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/52285/52285fig2highres.jpg" width="700px" /> 프로토콜 절에 설명 된대로 샘플 준비 절차의 그림 2. 도식 스케치. 왼쪽에서 오른쪽으로는 기자 증착 및 표면 시작한 원자 이동 라디칼 중합 (ATRP SI)를 통해 브러시 준비의 과정을 보여줍니다. 경로 (A)는 원자 힘 현미경 프로브에 골드 콜로이드에서 이식 금 코팅 된 실리콘 표면과 (C) 브러쉬에서 이식 실리콘 표면에서 이식 브러쉬, (B) 브러쉬를 설명합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52285/52285fig2highres.jpg" target="_blank">알을 보려면 여기를 클릭하십시오</a>이 그림의 arger 버전. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/52285/52285fig3highres.jpg" /> PMMA (파란색)과 PNIPAM (녹색) 그림 3. FTIR 스펙트럼은 실리콘 (굵은 선)과 금 (가는 선)에 브러쉬. 데이터는 석류에서 촬영했다. 매트. 심판의. (22) PMMA의 파수 (cm - 1) : 3,050-2,990 (CH 신축 진동), 1730 C = O (이중 결합 신축 진동), 1450 (CH 3 CH 2 변형 진동), 1,260-1,040 (COC 단일 결합 신축 진동 ), 880-960 (COC 단일 결합 변형 진동). 1,730cm에서 - 1 C = O 그룹의 특성 신축 진동 피크는 명백하다 PNIPAM의 파수 (cm-1) : 3289 (NH 대칭 및 비대칭 신축 진동), 3078, 2971, 2933은, 2874 (대칭형, 비대칭 형 CH 스트레칭. -CH 진동 &lt;서브&gt; 2 -), 1635 (C = O 신축 진동), 1535 (II 아미드), 1458 (CH의 비대칭 굽힘 변형), 1386 (CH 대칭 굽힘 변형), 1,366-1,170 (CN 비대칭 신축 진동). 1635 및 1,535cm시 - 아미드 기의 신축 진동 특성 피크 1 명백하다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/52285/52285fig4highres.jpg" width="700px" /> 그림 4. 필터링, &#39;평균과 혼화 (왼쪽)와 혼합 할 (오른쪽) 시스템 슬라이딩에 힘 추적을 부드럽게 (참조에서 조정을. 22). 표면은 1 Hz의 스캔 속도로 앞뒤로 40 μm의에 의해 이동되고 30 윈의 정상 부하.

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Preparation and Friction Force Microscopy Measurements of Immiscible, Opposing Polymer Brushes

The methodology to perform friction force microscopy experiments for contacting brushes is presented: Two polymer brushes that are grafted from (a) substrates and (b) colloidal probes are slid to show that, by using two contacting immiscible brush systems, friction in sliding contacts is reduced compared to miscible brush systems.

고분자 브러쉬를 반대 섞이지의 준비 및 마찰 힘 현미경 측정,

Solvated polymer brushes are well known to lubricate high-pressure contacts, because they can sustain a positive normal load while maintaining low ...

preparation-friction-force-microscopy-measurements-immiscible

Research

JoVE Journal

Engineering

14.0K 조회수.  Forschungszentrum Jülich. The methodology to perform friction force microscopy experiments for contacting brushes is presented: Two polymer brushes that are grafted from (a) substrates and (b) colloidal probes are slid to show that, by using two contacting immiscible brush systems, friction in sliding contacts is reduced compared to miscible brush systems.

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Confocal Imaging of Confined Quiescent and Flowing Colloid-polymer Mixtures

The behavior of confined colloidal suspensions with attractive interparticle interactions is critical to the rational design of materials for directed assembly1-3, drug delivery4, improved hydrocarbon recovery5-7, and flowable electrodes for energy storage8. Suspensions containing fluorescent colloids and non-adsorbing polymers are appealing model systems, as the ratio of the polymer radius of gyration to the particle radius&#160;and concentration of polymer control the range and strength of the interparticle attraction, respectively. By tuning the polymer properties and the volume fraction of the colloids, colloid fluids, fluids of clusters, gels, crystals, and glasses can be obtained9.&#160;Confocal microscopy, a variant of fluorescence microscopy, allows an optically transparent and fluorescent sample to be imaged with high spatial and temporal resolution in three dimensions. In this technique, a small pinhole or slit blocks the emitted fluorescent light from regions of the sample that are outside the focal volume of the microscope optical system. As a result, only a thin section of the sample in the focal plane is imaged. This technique is particularly well suited to probe the structure and dynamics in dense colloidal suspensions at the single-particle scale: the particles are large enough to be resolved using visible light and diffuse slowly enough to be captured at typical scan speeds of commercial confocal systems10. Improvements in scan speeds and analysis algorithms have also enabled quantitative confocal imaging of flowing suspensions11-16,37.&#160;In this paper, we demonstrate confocal microscopy experiments to probe the confined phase behavior and flow properties of colloid-polymer mixtures. We first prepare colloid-polymer mixtures that are density- and refractive-index matched. Next, we report a standard protocol for imaging quiescent dense colloid-polymer mixtures under varying confinement in thin wedge-shaped cells. Finally, we demonstrate a protocol for imaging colloid-polymer mixtures during microchannel flow.

Confocal microscopy is used to image quiescent and flowing colloid-polymer mixtures, which are studied as model systems for attractive suspensions. Image analysis algorithms are used to calculate structural and dynamic metrics for the colloidal particles that measure changes due to geometric confinement.

밀폐 무부하 흐르는 콜로이드 중합체 혼합물의 공 촛점 이미징

The behavior of confined colloidal suspensions with attractive interparticle interactions is critical to the rational design of materials for directed ...

연구

화학

Quantitative and Qualitative Examination of Particle-particle Interactions Using Colloidal Probe Nanoscopy

Colloidal Probe Nanoscopy (CPN), the study of the nano-scale interactive forces between a specifically prepared colloidal probe and any chosen substrate using the Atomic Force Microscope (AFM), can provide key insights into physical interactions present within colloidal systems. Colloidal systems are widely existent in several applications including, pharmaceuticals, foods, paints, paper, soil and minerals, detergents, printing and much more.1-3 Furthermore, colloids can exist in many states such as emulsions, foams and suspensions. Using colloidal probe nanoscopy one can obtain key information on the adhesive properties, binding energies and even gain insight into the physical stability and coagulation kinetics of the colloids present within. Additionally, colloidal probe nanoscopy can be used with biological cells to aid in drug discovery and formulation development. In this paper we describe a method for conducting colloidal probe nanoscopy, discuss key factors that are important to consider during the measurement, and show that both quantitative and qualitative data that can be obtained from such measurements.

Colloidal probe nanoscopy can be used within a variety of fields to gain insight into the physical stability and coagulation kinetics of colloidal systems and aid in drug discovery and formulation sciences using biological systems. The method described within provides a quantitative and qualitative means to study such systems.

콜로이드 프로브 Nanoscopy을 사용하여 입자 간 상호 작용의 양적 및 질적 시험

Colloidal Probe Nanoscopy (CPN), the study of the nano-scale interactive forces between a specifically prepared colloidal probe and any chosen substrate ...

Multiplexed Single-molecule Force Proteolysis Measurements Using Magnetic Tweezers

The generation and detection of mechanical forces is a ubiquitous aspect of cell physiology, with direct relevance to cancer metastasis1, atherogenesis2 and wound healing3. In each of these examples, cells both exert force on their surroundings and simultaneously enzymatically remodel the extracellular matrix (ECM). The effect of forces on ECM has thus become an area of considerable interest due to its likely biological and medical importance4-7.
	Single molecule techniques such as optical trapping8, atomic force microscopy9, and magnetic tweezers10,11 allow researchers to probe the function of enzymes at a molecular level by exerting forces on individual proteins. Of these techniques, magnetic tweezers (MT) are notable for their low cost and high throughput. MT exert forces in the range of ~1-100 pN and can provide millisecond temporal resolution, qualities that are well matched to the study of enzyme mechanism at the single-molecule level12. Here we report a highly parallelizable MT assay to study the effect of force on the proteolysis of single protein molecules. We present the specific example of the proteolysis of a trimeric collagen peptide by matrix metalloproteinase 1 (MMP-1); however, this assay can be easily adapted to study other substrates and proteases.

In this article we describe the use of magnetic tweezers to study the effect of force on enzymatic proteolysis at the single molecule level in a highly parallelizable manner.

마그네틱 족집게를 사용하여 다중 단일 분자 강제 Proteolysis 측정

The  generation and detection of mechanical forces is a ubiquitous aspect of cell physiology,  with direct relevance to cancer metastasis1, atherogenesis2 ...

생체공학

Investigating Single Molecule Adhesion by Atomic Force Spectroscopy

Atomic force spectroscopy is an ideal tool to study molecules at surfaces and interfaces. An experimental protocol to couple a large variety of single molecules covalently onto an AFM tip is presented. At the same time the AFM tip is passivated to prevent unspecific interactions between the tip and the substrate, which is a prerequisite to study single molecules attached to the AFM tip. Analyses to determine the adhesion force, the adhesion length, and the free energy of these molecules on solid surfaces and bio-interfaces are shortly presented and external references for further reading are provided. Example molecules are the poly(amino acid) polytyrosine, the graft polymer PI-g-PS and the phospholipid POPE (1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine). These molecules are desorbed from different surfaces like CH3-SAMs, hydrogen terminated diamond and supported lipid bilayers under various solvent conditions. Finally, the advantages of force spectroscopic single molecule experiments are discussed including means to decide if truly a single molecule has been studied in the experiment.

A protocol to couple a large variety of single molecules covalently onto an AFM tip is presented. Procedures and examples to determine the adhesion force and free energy of these molecules on solid supports and bio-interfaces are provided.

원자 힘 분광학에 의해 단일 ​​분자 접착 조사

Atomic force spectroscopy is an ideal tool to study molecules at surfaces and interfaces. An experimental protocol to couple a large variety of single ...

공학

Prescribed 3-D Direct Writing of Suspended Micron/Sub-micron Scale Fiber Structures via a Robotic Dispensing System

A 3-axis dispensing system is utilized to control the initiating and terminating fiber positions and trajectory via the dispensing software. The polymer fiber length and orientation is defined by the spatial positioning of the dispensing system 3-axis stages. The fiber diameter is defined by the prescribed dispense time of the dispensing system valve, the feed rate (the speed at which the stage traverses from an initiating to a terminating position), the gauge diameter of the dispensing tip, the viscosity and surface tension of the polymer solution, and the programmed drawing length. The stage feed rate affects the polymer solution&#8217;s evaporation rate and capillary breakup of the filaments. The dispensing system consists of a pneumatic valve controller, a droplet-dispensing valve and a dispensing tip. Characterization of the direct write process to determine the optimum combination of factors leads to repeatedly acquiring the desired range of fiber diameters. The advantage of this robotic dispensing system is the ease of obtaining a precise range of micron/sub-micron fibers onto a desired, programmed location via automated process control. Here, the discussed self-assembled micron/sub-micron scale 3D structures have been employed to fabricate suspended structures to create micron/sub-micron fluidic devices and bioengineered scaffolds.

Here, we present a protocol to fabricate freely-suspended, micron/sub-micron scale polymer fibers and &#8220;web-like&#8221; structures generated via automated direct writing procedure by means of a 3-axis dispensing system.

일시 중단 된 마이크론 / 서브 마이크론 스케일 섬유 구조의 3 차원 직접 쓰기는 로봇 디스펜스 시스템을 통해 처방

A 3-axis dispensing system is utilized to control the initiating and terminating fiber positions and trajectory via the dispensing software. The polymer ...

Self-assembling Morphologies Obtained from Helical Polycarbodiimide Copolymers and Their Triazole Derivatives

A facile method for the preparation of polycarbodiimide-based secondary structures (e.g., nano-rings, &#34;craters,&#34; fibers, looped fibers, fibrous networks, ribbons, worm-like aggregates, toroidal structures, and spherical particles) is described. These aggregates are morphologically influenced by extensive hydrophobic side chain-side chain interactions of the singular polycarbodiimide strands, as inferred by atomic force microscopy (AFM) and scanning electron microscopy (SEM) techniques. Polycarbodiimide-g-polystyrene copolymers (PS-PCDs) were prepared by a combination of synthetic methods, including coordination-insertion polymerization, copper(I)-catalyzed azide alkyne cycloaddition (CuAAC) &#34;click&#34; chemistry, and atom transfer radical polymerization (ATRP). PS-PCDs were found to form specific toroidal architectures at low concentrations in CHCl3. To determine the influence of a more polar solvent medium (i.e., THF and THF/EtOH) on polymer aggregation behavior, a number of representative PS-PCD composites have been tested to show discrete concentration-dependent spherical particles. These fundamental studies are of practical interest to the development of experimental procedures for desirable architectures by directed self-assembly in thin film. These architectures may be exploited as drug carriers, whereas other morphological findings represent certain interest in the area of novel functional materials.

Here, we present a protocol to prepare and visualize secondary structures (e.g., fibers, toroidal architectures, and nano-spheres) derived from helical polycarbodiimides. The morphology characterized by both atomic force microscopy (AFM) and scanning electron microscopy (SEM) was shown to depend on molecular structure, concentration, and the solvent of choice.

나선형 폴리 카 보디이 미드 공중 합체 및 이들의 트리아 졸 유도체로부터 획득 자기 조립 모폴로지

A facile method for the preparation of polycarbodiimide-based secondary structures (e.g., nano-rings, &#34;craters,&#34; fibers, looped fibers, fibrous ...

Sample Preparation in Quartz Crystal Microbalance Measurements of Protein Adsorption and Polymer Mechanics

In this study, we present various examples of how thin film preparation for quartz crystal microbalance experiments informs the appropriate modeling of the data and determines which properties of the film can be quantified. The quartz crystal microbalance offers a uniquely sensitive platform for measuring fine changes in mass and/or mechanical properties of an applied film by observing the changes in mechanical resonance of a quartz crystal oscillating at high frequency. The advantages of this approach include its experimental versatility, ability to study changes in properties over a wide range of experimental time lengths, and the use of small sample sizes. We demonstrate that, based on the thickness and shear modulus of the layer deposited on the sensor, we can acquire different information from the material. Here, this concept is specifically exploited to display experimental parameters resulting in mass and viscoelastic calculations of adsorbed collagen on gold and polyelectrolyte complexes during swelling as a function of salt concentration.

The quartz crystal microbalance can provide accurate mass and viscoelastic properties for films in the micron or submicron range, which is relevant for investigations in biomedical and environmental sensing, coatings, and polymer science. The sample thickness influences which information can be obtained from the material in contact with the sensor.

단백질 흡착 및 폴리머 역학의 석영 결정 미세 균형 측정시 시료 준비

In this study, we present various examples of how thin film preparation for quartz crystal microbalance experiments informs the appropriate modeling of ...

Covalent Attachment of Single Molecules for AFM-based Force Spectroscopy

Atomic force microscopy (AFM)-based single molecule force spectroscopy is an ideal tool for investigating the interactions between a single polymer and surfaces. For a true single molecule experiment, covalent attachment of the probe molecule is essential because only then can hundreds of force-extension traces with one and the same single molecule be obtained. Many traces are in turn necessary to prove that a single molecule alone is probed. Additionally, passivation is crucial for preventing unwanted interactions between the single probe molecule and the AFM cantilever tip as well as between the AFM cantilever tip and the underlying surface. The functionalization protocol presented here is reliable and can easily be applied to a variety of polymers. Characteristic single molecule events (i.e., stretches and plateaus) are detected in the force-extension traces. From these events, physical parameters such as stretching force, desorption force and desorption length can be obtained. This is particularly important for the precise investigation of stimuli-responsive systems at the single molecule level. As exemplary systems poly(ethylene glycol) (PEG), poly(N-isopropylacrylamide) (PNiPAM) and polystyrene (PS) are stretched and desorbed from SiOx (for PEG and PNiPAM) and from hydrophobic self-assembled monolayer surfaces (for PS) in aqueous environment.

Covalent attachment of probe molecules to atomic force microscopy (AFM) cantilever tips is an essential technique for the investigation of their physical properties. This allows us to determine the stretching force, desorption force and length of polymers via AFM-based single molecule force spectroscopy with high reproducibility.

AFM 기반 힘 분광학을 위한 단일 분자의 공유 부착

Atomic force microscopy (AFM)-based single molecule force spectroscopy is an ideal tool for investigating the interactions between a single polymer and ...

Atomic Force Microscopy Cantilever-Based Nanoindentation: Mechanical Property Measurements at the Nanoscale in Air and Fluid

An atomic force microscope (AFM) fundamentally measures the interaction between a nanoscale AFM probe tip and the sample surface. If the force applied by the probe tip and its contact area with the sample can be quantified, it is possible to determine the nanoscale mechanical properties (e.g., elastic or Young&#39;s modulus) of the surface being probed. A detailed procedure for performing quantitative AFM cantilever-based nanoindentation experiments is provided here, with representative examples of how the technique can be applied to determine the elastic moduli of a wide variety of sample types, ranging from kPa to GPa. These include live mesenchymal stem cells (MSCs) and nuclei in physiological buffer, resin-embedded dehydrated loblolly pine cross-sections, and Bakken shales of varying composition.
Additionally, AFM cantilever-based nanoindentation is used to probe the rupture strength (i.e., breakthrough force) of phospholipid bilayers. Important practical considerations such as method choice and development, probe selection and calibration, region of interest identification, sample heterogeneity, feature size and aspect ratio, tip wear, surface roughness, and data analysis and measurement statistics are discussed to aid proper implementation of the technique. Finally, co-localization of AFM-derived nanomechanical maps with electron microscopy techniques that provide additional information regarding elemental composition is demonstrated.

Quantifying the contact area and force applied by an atomic force microscope (AFM) probe tip to a sample surface enables nanoscale mechanical property determination. Best practices to implement AFM cantilever-based nanoindentation in air or fluid on soft and hard samples to measure elastic modulus or other nanomechanical properties are discussed.

An atomic force microscope (AFM) fundamentally measures the interaction between a nanoscale AFM probe tip and the sample surface. If the force applied by ...

Protrusion Force Microscopy: A Method to Quantify Forces Developed by Cell Protrusions

In numerous biological contexts, animal cells need to interact physically with their environment by developing mechanical forces. Among these, traction forces have been well-characterized, but there is a lack of techniques allowing the measurement of the protrusion forces exerted by cells orthogonally to their substrate. We designed an experimental setup to measure the protrusion forces exerted by adherent cells on their substrate. Cells plated on a compliant Formvar sheet deform this substrate and the resulting topography is mapped by atomic force microscopy (AFM) at the nanometer scale. Force values are then extracted from an analysis of the deformation profile based on the geometry of the protrusive cellular structures. Hence, the forces exerted by the individual protruding units of a living cell can be measured over time. This technique will enable the study of force generation and its regulation in the many cellular processes involving protrusion. Here, we describe its application to measure the protrusive forces generated by podosomes formed by human macrophages.

Here, we detail the experimental techniques used to evaluate the protrusion forces that podosomes apply on a compliant film, from the preparation of the film to the automated analysis of topographical images.

돌출 힘 현미경 검사 법: 셀 돌출에 의해 개발 된 세력을 계량 하는 방법

In numerous biological contexts, animal cells need to interact physically with their environment by developing mechanical forces. Among these, traction ...

고분자 브러쉬를 반대 섞이지의 준비 및 마찰 힘 현미경 측정,

요약

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