Financial support from the Flanders Research Foundation FWO (contract n. 12C9112N to DL), the 7th Framework Programme of the European Commission (Marie Curie Network &#8220;C7&#8221;, contract n. 238214; ICT Future Emerging Technology &#8220;ENLIGHTENMENT&#8221; project, contract n. 306502), the Interuniversity Attraction Poles Program initiated by the Belgian Science Policy Office (contract n. IUAP-VII/20), and the University of Antwerp is kindly acknowledged.

여기에 설명 된 프로토콜은 추천 앤트워프 대학의 생명 과학학과의 윤리위원회의 가이드 라인을 준수합니다. 이 프로토콜은 승인 인도적 안락사 기술에 의해 수득 청소년의 Wistar 쥐의 뇌 외식로부터 비 감지 물질의 제조를 필요로한다. 1. 장비 준비 <ol><li> 설치 및 데이터 수집 및 자극 시스템을 구성. <ol><li> 신호를 기록 및 전기 생리 학적 증폭기에 아날로그 제어 전압을 보낼 Comedi 지원 데이터 획득 (DAQ) 카드를 장착 한 퍼스널 컴퓨터 (PC)를 사용한다. 참고 : 자세한 내용은 http://www.comedi.org를 방문하십시오 Comedi 가장 일반적인 제조업체의 DAQ 카드의 다수를 지원하는 리눅스 모듈과 라이브러리입니다. </li><li> 컴퓨터 제어 패치 클램프 증폭기가 사용중인 경우, 상기 증폭기에 전용 한 외에 초 PC를 채용제어 할 수 있습니다. 주 : 후자는 통상적 인 운영 체제를 실행할 수 있지만, 별도의 PC는 특별한 운영 시스템을 이용하여 실시간으로 작동 될 것이다. 전용 PC에 원격 데스크톱 애플리케이션에 의해 연결하는 동안 이러한 조건 하에서는, 여분의 PC에 연결된 단일 모니터, 마우스 및 키보드를 사용하는 것이 편리하다. </li><li> http://www.tnb.ua.ac.be/software/LCG_Live_CD.iso에서 LCG와 실시간 리눅스 운영 체제를 포함하는 라이브 CD의 ISO 이미지를 사전 설치 다운로드하여 빈 CD 또는 USB 스틱 &quot;에 구워서 . </li><li> 단순히 DAQ 카드를 포함하는 PC의 드라이브에 CD를 삽입하고 시작합니다. 또는 Linux 운영 체제 (예를 들어, 데비안이나 우분투)를 실행하는 PC에서 온라인 소스 저장소에서 LCG를 설치합니다. 설치 절차에 대한 자세한 내용은 온라인 설명서를 참조하십시오. 매뉴얼은 http://danielelinaro.github.io/dynclamp/lcg_manual.pdf에서 온라인으로 사용할 수 있습니다. </li><li> 라이브 CD로 부팅 : 생S 자동으로 완벽하게 구성된 시스템을로드합니다. 이를 위해, 컴퓨터 CD-ROM ​​드라이브에 LCG 라이브 CD를 넣고 CD로부터 컴퓨터를 부팅; 부팅 메뉴가 나타나면 즉시 실시간 커널 (기본 옵션)을 선택하고 시스템이 초기화 될 때까지 기다립니다. </li><li> 명령 프롬프트에 입력하여 DAQ 카드를 보정 : sudo는 comedi_calibrate 또는 sudo는 comedi_soft_calibrate 데이터 수집 보드는 각각의 하드웨어 또는 소프트웨어 교정, (기판에 대한 정보를 획득하기 위해 명령 sudo는 comedi_board_info를 사용)를 지원하는지 여부에 따라. </li><li> 적절한 아날로그 - 디지털 및 디지털 - 아날로그 변환 계수를 설정 이것은 셀룰러 전기 생리 학적 증폭기의 사용 설명서를 갖는 액세스를 필요로하며, 특히 그 변환 계수에 미치는 사양. </li><li> 환경 변수, 파일 /home/user/.lcg-env에 해당하는 숫자 값을 지정하는 텍스트 편집기를 사용하여 AI_CONVERSION_FACTOR_CC, AI_CONVERSION_FACTOR_VC, AO_CONVERSION_FACTOR_CC, AO_CONVERSION_FACTOR_VC. 주 : 이러한 증폭기에 의해 생성 된 입력 (AI) 및 전류 클램프 (CC)와 전압 클램프 (VC) 모드에 대한 출력 (AO) 이득, 및 컴퓨터에 의해 제공되는 전압 명령 및 전류 또는 전압 간의 변환 인자를 대표 각각. </li><li> 선택적으로, 자신의 시스템의 변환 계수를 찾는 (LCG 찾기 컨버전 팩터)가 제공 LCG 스크립트를 사용한다. 참고에 의해 계산 된 값 LCG 찾기 컨버전 팩터는 일부 경우에 절단 된 수치 일 필요 또는 변환 계수의 정확한 값을 반영하도록 반올림 추측이다. </li><li> 사용하려면, LCG을-변환 요인을 찾아 종종 해당 headstage에 앰프 구입 &#39;모델 세포&#39;를 연결하여 시작합니다. 그런 다음, 라이브 CD를 실행하고 쉘 프롬프트에서 다음 명령을 입력하는 리눅스 시스템의 터미널을 엽니 다 LCg을 찾기 변환 요인을 -i의 $ HOME / .lcg-ENV -o $ 홈 / .lcg-ENV 참고 : 두 경우 모두 (즉, 수동 /home/user/.lcg-env 또는 LCG 찾기 변환 요인의 사용 수정), 가까이는 변경 사항을 적용하기 위해 터미널을 엽니 다. </li><li> 여러 headstages 사용하는 경우, 모든 채널에 동일한 값으로 환산 계수를 설정; 가능하지 않은 경우,보다 사용자의 요구에 맞게 구성 파일을 생성하기 위해 LCG 자극치 얼마나 여러 환산 계수를 사용하는 방법을 이해하기 위해 LCG 온라인 매뉴얼을 참조. </li></ol></li></ol> 체성 감각 피질에서 급성 뇌 조각 2. 준비 <ol><li> 전기 생리학을위한 솔루션의 준비. <ol><li> (125)의 NaCl, 2.5의 KCl (mm 단위)을 혼합하여 인공 세리 - 척수 (ACSF)를 준비 1.25의 NaH 2 PO 4, 26 NaHCO3를, 25 포도당, 2 염화칼슘 2, 1의 MgCl 2. 을 줄이기 위해 10 배 재고 솔루션을 준비실험 당일 준비 시간. 한 조각의 제조 및 다른 기록에 사용되는 어느 2 L를 준비한다. </li><li> 절차의 시작에 앞서 적어도 30 분 동안 95 % O 2 및 5 % CO 2 ACSF 적신. </li><li> 현재 클램프 녹음을 위해, (mm 단위)를 포함하는 세포 내 솔루션 (ICS)를 사용하여 115 K-글루코 네이트, (20)의 KCl, 10 HEPES, 4 ATP-㎎, 0.3 나 2 -GTP, 10 2 -phosphocreatine 나. 얼음 용액을 준비하고 피펫 막힘의 위험을 제거하기 위해 녹화의 시작에 앞서이를 필터링. </li></ol></li><li> 뇌 추출. <ol><li> 4 % 이소 플루 란 유도 챔버에 동물을 배치 동물을 마취하고 신속 단두대 또는 대형 가위를 사용하여 참살. </li><li> 중간 선을 따라 피부를 잘라 그것은 귀에 밀어 넣습니다. </li><li> 가위의 벌금 쌍을 사용하여 중간 선을 따라 두개골을 잘라. 토륨 최대한 가까운 블레이드 유지E면은 하부 뇌 손상을 최소화하기 위해. , 핀셋 한 쌍의 두개골을 열고 시신경과 뇌간을 절단하고 부드럽게 얼음처럼 차가운 ACSF의 뇌를 드롭 주걱을 사용합니다. </li><li> 소뇌와 메스 (블레이드 24)와 두 개의 반구를 분리합니다. </li><li> 두 반구 중 하나에서 여분의 물을 제거하고 superglue 한 방울을 사용하여 경사 플랫폼에 접착제. 빨리 뇌 위에 ACSF 몇 방울을 추가하고 vibratome 챔버로 옮긴다. 주 : 시상 조각을 제조 할 때, 플랫폼의 각도 슬라이싱 절차 중에 피라미드 세포의 돌기의 손상을 방지하는 것이 중요하다. </li></ol></li><li> 조각의 준비. <ol><li> 뇌를 통해 블레이드를 배치 및 제 2.5 폐기 - 3mm를. 반면 슬라이싱 절차에 필요한 시간을 최소화하는 동시에 조각의 표면에 대한 손상을 제한하는 속도 및 주파수를 조정한다. </li><li> 300 μ 두께로 설정M과 슬라이스를 시작합니다. 날이 피질을지나 간 후, 면도날 또는 해마 이상 관심의 대뇌 피질 영역의 가장자리에서 절단 할 수있는 구부러진 바늘을 사용합니다. </li><li> 34 ° C - 멀티 웰 배양 챔버에서 슬라이스 (32)에서 유지 놓는다. </li><li> 블레이드를 후퇴 5 점까지 2.3.2과 2.3.3를 반복 - 8 조각이 절단된다. 가장 일반적으로 슬라이스 혈관 표면에 평행 한 것들이다. </li><li> 마지막 슬라이스 챔버에 배치 된 후 30 분 동안 인큐베이션 슬라이스. </li></ol></li></ol> 레이어 5 피라미드 뉴런 3. 패치 클램프 녹음 <ol><li> 녹화 실에서 조각을 놓고 건강한 세포를 검색합니다. 이 세포는 일반적으로 낮은 반면, 매끄러운 외관이 부어 없습니다. </li><li> 뇌의 표면에서 약 600 μm의 1,000에 위치하고, 40X 배율 렌즈와 현미경 슬라이스를 검사하고 층 (5)에서 세포를 검색합니다. </li&gt; <li> 적절한 세포가 발견되면, ICS와 마이크로 피펫의 부하 삼분하고 headstage에 넣습니다. </li><li> 라이브 CD 또는 사전 구성된 리눅스 운영 체제를 실행하는 개인용 컴퓨터에서 명령 쉘 (예를 들어, bash는)이 실행되고 프롬프트에서 명령 LCG 제로. 이것은 DAQ 보드 증폭기를 구동되지 않는 것을 보장한다. </li><li> (30) 적용 - 현미경의 도움으로, 피펫 홀더에 튜브에 의해 연결되어있는 일반적인 주사기의 피스톤을 눌러 긍정적 인 압력의 50 밀리바을, 슬라이스 위의 피펫을 약 100 ㎛를 놓습니다. 참고 : 바람직하게는 미세 조작기의 접근 모드를 사용하여, 표적 세포에 직접 경로를 할 수있는 위치에 피펫을 놓습니다. </li><li> 컨트롤에 전기 생리학 증폭기 연기, 오프셋 피펫 및 출력 전압 클램프 모드에서 테스트 펄스 (10 MV)를 조정한다. </li><li> 철수 30 밀리바 (피펫의 크기에 따라) - (10)에 압력을 감소주사기의 피스톤; 부드럽게 세포 접근과 비디오 카메라 모니터에 화상을 관찰함으로써 딤플의 형성을 확인. 항상 저항의 증가에 대한 테스트 펄스 모니터, 전기 생리학 증폭기에 연결된 오실로스코프에 표시 전류 파형을 보면서 (또는 당신 피펫 저항을 모니터링하는 명령 LCG 밀봉 테스트를 사용할 수있다). </li><li> 압력을 해제하고 피펫 저항의 증가 및 셀에 &quot;딤플&quot;의 형성을 확인할 때 필요하다면 밀봉 형성을 돕기 위해 부드럽게 피펫에 부압을 적용한다. </li><li> 씰 형태이지만, 점차 MV를 -70 유지 가능성을 줄입니다. </li><li> 30 pA를 - 기가 옴 밀봉을 얻을되면, 홀딩 전류가 0 사이에 있는지 확인하십시오. 멤브레인을 깰 전체 셀 구성을 설정하는 부압 (흡입)의 짧은 펄스를 적용합니다. 또는, (전압의 강하고 짧은 펄스를 삽입 할 수 <em&gt; 즉, 사용 준비 및 유리 피펫에 따라 막을 파열) 증폭기에 &#39;ZAP&#39;명령을 사용하거나 매우 부정적 셀에서 유지. </li><li> 현재 클램프 모드로 전환하고 휴식 막 잠재력이 건강한 세포의 전형적인 있는지 확인합니다. 글루 콘산 칼륨 계 용액을 사용하여 피라미드 피질 뉴런의 경우,이 값은 일반적으로 사이 -65 -75 MV이다. </li></ol> 신경 세포의 전기 응답 특성의 4. 반자동 특성 <ol><li> 사용자의 데이터를 저장할 디렉토리를 작성하십시오. 스크립트가 날짜를 기준으로 폴더를 생성 라이브 LCG CD에 포함이 고용을하기 위해. 명령 프롬프트에서 그것을 사용하려면 CD ~ / 실험 LCG가 작성-실험 폴더는 PSP, in_vivo_like을 -s 이것은 그 셀에 대한 데이터가 저장 될 폴더 (및 하위 폴더 &#39;in_vivo_like&#39; &#39;PSP&#39;등) 생성하고이 단말기에 자사의 이름을 인쇄합니다창문; 그러한 피펫 저항이 스크립트를 사용하는 세포의 종류에 따라 추가 정보를 저장하는 것도 가능하다. </li><li> 명령을 사용하여 새로 만든 폴더로 디렉토리를 변경 CD ~ / &lt;폴더 이름&gt; 폴더 이름은 20140331A01에서와 같이 명령의 LCG-- 실험 - 폴더를 생성하고 현재 날짜의 타임 스탬프를해야합니다 (즉, 년 - 월 - 일)에 의해 표시되는 것입니다. </li><li> 증폭기는 클램프 전류 모드로 동작하도록 설정되어 케이블이 연결되고, 상기 증폭기의 외부 전압 명령이 존재하는 경우, 활성화되어 있는지 확인. </li><li> 명령 LCG-ecodeat에게 명령 프롬프트를 입력합니다. 이 셀의 기본 응답 특성을 특성화하는 데 사용되는 일련의 명령 (즉 LCG-AP, LCG-VI, LCG-램프, LCG 타우와 LCG-단계)를 호출합니다. LCG-ecode는 사용자가 두 개의 매개 변수를 지정하는 것이 필요하다 : 단일 셀에서 스파이크를 유발하기 위해 사용되는 전류의 MS-1 긴 펄스의 진폭 및 RAM 전류의 최대 진폭을P는 rheobase을 찾는 셀에 주입. 다음 명령 구문을 사용합니다 : LCG-ecode --pulse 진폭 X --ramp 진폭 Y 각각 한 MS-긴 펄스 전류의 지속적인 주입에 응답하여 셀 불을하기에 충분한 값 X와 (PA)에서의 Y와 선택. 주 :이 프로토콜은 전극 활성 보정 (AEC) (15)를 사용하기 위해 &#39;전극 커널&#39;의 수치 추정을 수행 필요. 노이즈 전류 주입은 커널을 추정하는데 사용되며, 사용자는 커널을 이루는 샘플 개수를 확인하는 메시지가 표시된다. 전극 커널의 의미와 방법 커널 샘플의 수를 선택하는 방법에 대한 자세한 정보는 15을 참조하십시오. </li></ol> 시뮬레이션 시냅스 및 생체 -like 배경 작업의 시뮬레이션을 통해 컨덕턴스 5. 주입 <ol><li> 시뮬레이션 흥분성 시냅스 후 전위의 주입 <ol><li>당신은 쉘의 명령 프롬프트에서 다음 명령을 입력하여 다음 실험을 절약 할 디렉토리로 변경 CD의 PSP / 01 </li><li> 현재 디렉토리에 LCG 구성 파일을 복사하고 (이 예제 구성 파일이 소스 코드와 라이브 CD에 포함되어 있습니다) 쉘의 명령 프롬프트에서 다음 명령을 입력하여 (이 예에서는 나노) 텍스트 편집기에서 엽니 다 : CP ~ / 지역 / SRC / LCG / 구성 / epsp.xml 나노 epsp.xml 주 :이 단순히 서로 연결 다른 기관과 텍스트 파일이다. 자세한 내용은 대표 결과 섹션을 참조하십시오. </li><li> 필요한 편집 inputChannel, outputChannel, inputConversionFactor이 파일의 outputConversionFactor는 사용자의 설정과 일치하도록합니다. </li><li> COM을 실행하여 &#39;단일 전극 동적 클램프를 수행하기 위해 LCG에 의해 사용 된 방법&#39;전극 활성 보정을 수행하기 위해 필요한 전극 커널을 계산MAND LCG 커널 이 커널에서 점의 수를 입력하라는 메시지가 표시됩니다. 전극 커널 지수 감쇠 꼬리의 끝 부분을 덮도록 다시 번호를 선택한다. </li><li> 명령을 사용하여 동적 클램프 실험을 수행 -c epsp.xml을 LCG는-실험 </li><li> 파일리스트 및 명령을 사용하여 결과를 시각화 LS -l 마지막 -f LCG-플롯 파일 </li></ol></li><li> 시뮬레이션 억제 시냅스 후 전위의 주입 <ol><li> 폴더를 생성하고 쉘의 명령 프롬프트에서 다음 명령을 입력하여에 epsp.xml 파일을 복사 : MKDIR ../02 CP epsp.xml ../02/ipsp.xml CD ../02 </li><li> 텍스트 편집기를 이용하여 구성 파일을 편집 반전 시냅스 전위를 변경하고 다음에 모델 시냅스 Exp2Synapse 상수의 상승 및 감쇠 시간 : 매개 변수&gt; &lt;E&gt; -80 &lt;/ E&gt; &lt;tauRise&gt; 0.8e-3 &lt;/ tauRise&gt; &lt;TauDecay&gt; 10E-3 &lt;/ tauDecay&gt; &lt;매개 변수&gt; 텍스트 편집기를 종료합니다. </li><li> 전극 커널을 계산하고 쉘의 명령 프롬프트에서 다음 명령을 입력하여, 5.1에서와 같이 실험을 수행 : LCG 커널 -c ipsp.xml을 LCG는-실험 </li><li> 파일을 나열하고 쉘의 명령 프롬프트에서 다음 명령을 입력하여, 그 결과를 시각화 : LS -l LCG-플롯 파일 -f &lt;filename.h5&gt; </li></ol></li><li> 생체 -like 배경 활성의 시뮬레이션 : <ol><li> 이전 쉘의 명령 프롬프트에서 다음 명령을 입력하여 그림과 같이, 다음과 같은 실험을 저장할 디렉토리로 변경 CD ../../in_vivo_like/01 </li><li> LCG 소스 디렉토리에서, 쉘의 명령 프롬프트에서 다음 명령을 입력하여 구성 파일을 복사합니다 CP ~ / 지역 / SRC / LCG / 구성 / in_vivo_like.xml 나노 in_vivo_like.xml <li> 5.1.3에 기술 된 바와 같이, 사용자의 설정에 DAQ 구성 매개 변수를 조정하고 편집기를 종료합니다. </li><li> 전극 커널을 계산하고 쉘의 명령 프롬프트에서 다음 명령을 입력하여, 5.1에서와 같이 실험을 수행 : LCG 커널 10 -i 3 -n -c in_vivo_like.xml을 LCG는-실험 -N &#39;10&#39;및 &#39;-i 3&#39;스위치 자극 세 초 간격으로 10 회 반복되어야한다는 것을 나타낸다. </li><li> 쉘의 명령 프롬프트에서 다음 명령을 사용하여 원시 흔적을 시각화 : LCG-플롯 파일 -f 모든 </li></ol></li></ol>

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T., Kole, M. H. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dendritic+patch-clamp+recording.">Dendritic patch-clamp recording.</a> Nature Protocols. 1 (3), 1235-1247 (2006).</li><li>Gold, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Axon Guide for Electrophysiolog., &amp; Biophysics Laboratory Techniques... , (2007).</li><li>Mainen, Z. F., Sejnowski, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reliability+of+spike+timing+in+neocortical+neurons.">Reliability of spike timing in neocortical neurons.</a> Science. 268 (5216), 1503-1506 (1995).</li><li>Buzs&#225;ki, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Action+potential+threshold+of+hippocampal+pyramidal+cells+in+vivo+is+increased+by+recent+spiking+activity.">Action potential threshold of hippocampal pyramidal cells in vivo is increased by recent spiking activity.</a> Neuroscience. 105 (1), 121-130 (2001).</li><li>Koch, C., Segev, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Methods in Neuronal Modeling: From Synapses to Networks. , (1988).</li><li>Silberberg, G., Markram, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Disynaptic+inhibition+between+neocortical+pyramidal+cells+mediated+by+Martinotti+cells.">Disynaptic inhibition between neocortical pyramidal cells mediated by Martinotti cells.</a> Neuron. 53 (5), 735-746 (2007).</li><li>Berger, T. K., Silberberg, G., Perin, R., Markram, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brief+bursts+self-inhibit+and+correlate+the+pyramidal+network.">Brief bursts self-inhibit and correlate the pyramidal network.</a> PLoS biology. 8 (9), (2010).</li><li>Tsodyks, M., Pawelzik, K., Markram, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+networks+with+dynamic+synapses.">Neural networks with dynamic synapses.</a> Neural computation. 10 (4), 821-835 (1998).</li><li>Kapfer, C., Glickfeld, L. L., Atallah, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Supralinear+increase+of+recurrent+inhibition+during+sparse+activity+in+the+somatosensory+cortex.">Supralinear increase of recurrent inhibition during sparse activity in the somatosensory cortex.</a> Nature. 10 (6), 743-753 (2007).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

이 텍스트 실시간 구현에 대한 전체 프로토콜에서, 폐쇄 루프 단일 세포 전기 생리 실험은 패치 클램프 기술과 LCG라는 최근에 개발 된 소프트웨어 도구를 사용하여, 기술되었다. 레코딩의 품질을 최적화하기 위해 그 녹화 설정이 적절하게 접지 된 프리 실드 진동 인 것이 중요하다 :이 셀, 안정적이고 지속적인 전체 세포 접근을 보장 함께 자극 프로토콜의 전체 부분을 자동화 가능성있는 실험의 ?...

<html> 최근, 셀룰러 전기 생리학 현대 폐쇄 루프 프로토콜 전압 및 전류 클램프 실험에 이용 전통적인 개방 루프 패러다임에서 진화했다. 가장 잘 알려진 폐 루프 기술은 아마도 신경 세포막 전압 (8)를 결정하기 위해 인공 전압 관문 이온 채널의 합성 주입 활성화 동적 클램프 6,7이며, 비 결정적가 플리커 효과 심층 연구 이온 신경 응답 역학 9 채널뿐만 아니라, 시냅스 백그라운드 작업 (10)와 같은 vivo-에서 실제의 체외에서 휴양. 제안 된 다른 폐쇄 루프 패러다임은 세포 메커니즘을 기본 신경 흥분을 조사하기 위해, 4,12 클램프 반응 클램프 (11), 생체 자기 유지 지속적인 활동의 세대에서 공부하고, 응답을 포함한다. &quot;ontent&gt; 다음은 급성 뇌 조각 수행 전체 셀 패치 클램프 기록의 맥락에서 폐 루프 전기 생리 다양한 프로토콜을 적용 할 수있는 강력한 구조를 설명한다. 우리는 패치 클램프 기록을 이용하여 체세포 멤브레인 전압을 기록하는 방법을 보여 청소년 쥐의 체 감각 피질과에서 피라미드 뉴런에 LCG, 이론적 신경 생물학 및 Neuroengineering의 실험실에서 개발 된 명령 줄 기반 소프트웨어 도구를 사용하여 세 가지 다른 폐 루프 프로토콜을 적용 할 수 있습니다. 간단히 설명 프로토콜은 능동 및 수동 막 특성의 큰 집합의 특성에 대한 관련 현재 클램프 자극 파형의 시리즈의 첫 번째 자동 주입입니다. 이러한 자극 파형의 정형화 된 일련의 응답 특성면에서 세포의 전기 생리 학적 표현형을 캡처하도록 제안되어왔다. 셀의 전자 코드로 알려진 (예를 들어, 참조 &amp; #160; 13,14)는, 예컨대 전기 응답의 컬렉션 객관적 그들의 전기적 특성에 기초하여 신경 세포를 분류하기 위해 여러 실험실에서 사용된다. 이 비례 적분 미분 (PID) 제어기에 의하여 발화 속도의 폐 루프, 실시간 제어를 포함 혁신 기술에 의해 고정 된 입력 - 출력 전송 관계 (FI 곡선)의 분석을 포함 , 체외 준비 (10)과, 컴퓨터 시뮬레이션 가상의 GABA 성 interneuron의 수단으로이 동시에 기록 피라미드 뉴런의 실시간 세 번째 인공 관련하여 사실적인 생체 -like 배경 시냅스 활동의 두 번째 휴양. 또한, LCG는 단일 전극을 사용하여 동적 클램프 프로토콜을 구현 허용 전극 활성 보정 (AEC) (15)로 알려진 기술을 구현한다. 이 원하지 않는 효과를 보정 할 수 있습니다 (rtifacts) 세포가 자극을 전달하기 위해 사용될 때 발생하는 기록 전극. 방법은 기록 회로의 등가 전기 특성의 비모수 추정치에 기초한다. 이 논문에서 설명 된 기술 및 실험 프로토콜 용이 종래 개방 루프 전압 및 전류 클램프 실험에 적용 할 수 있고, 생체 내에서 그러한 세포 외 17,18 4,16와 같은 다른 제제 또는 세포 내 레코딩로 확장 될 수있다. 전체 셀 패치 클램프 전기 생리학에 대한 설정의주의 조립체 안정된 고품질 레코딩을위한 매우 중요한 단계이다. 다음에 우리는 실험 장치는 실험에 이미 사용할 수 있다고 가정하고, LCG의 사용을 설명하기에 우리의 관심을 집중한다. 독자는 최적화 및 디버깅에 대한 자세한 팁은 19-22로 지적되고있다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Tissue slicer</td>
			<td>Leica</td>
			<td>VT-1000S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette puller</td>
			<td>Sutter</td>
			<td>P-97</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipettes</td>
			<td>WPI</td>
			<td>1B150F-4</td>
			<td>1.5/0.84 mm OD/ID, with filament</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vibration isolation table</td>
			<td>TMC</td>
			<td>20 Series</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>DMLFS</td>
			<td>40X Immersion Objective</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Manipulators</td>
			<td>Scientifica</td>
			<td>PatchStar</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amplifiers</td>
			<td>Axon Instruments</td>
			<td>MultiClamp 700B</td>
			<td>Computer controlled</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Data acquisition card</td>
			<td>National Instruments</td>
			<td>PCI-6229</td>
			<td>Supported by Comedi Linux Drivers</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Desktop computer</td>
			<td>Dell</td>
			<td>Optiplex 7010 Tower</td>
			<td>OS: real-time Linux</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oscilloscopes</td>
			<td>Tektronix</td>
			<td>TDS-1002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Perfusion Pump</td>
			<td>Gibson</td>
			<td>MINIPULS3</td>
			<td>Used with R4 Pump head (F117606)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Temperature controller</td>
			<td>Multichannel Systems</td>
			<td>TC02</td>
			<td>PH01 Perfusion Cannula</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Manometer</td>
			<td>Testo</td>
			<td>510</td>
			<td>Optional</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Incubator</td>
			<td>Memmert</td>
			<td>WB14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>71376</td>
			<td>ACSF</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KCl</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P9541</td>
			<td>ACSF, ICS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaH2PO4</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S3139</td>
			<td>ACSF</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaHCO3</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S6014</td>
			<td>ACSF</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CaCl2</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>C1016</td>
			<td>ACSF</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgCl2</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>M8266</td>
			<td>ACSF</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glucose</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G7528</td>
			<td>ACSF</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K-Gluconate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G4500</td>
			<td>ICS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H3375</td>
			<td>ICS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mg-ATP</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A9187</td>
			<td>ICS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Na2-GTP</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>51120</td>
			<td>ICS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Na2-Phosphocreatine</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P7936</td>
			<td>ICS</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

real-time electrophysiology: using closed-loop protocols to probe neuronal dynamics and beyond

실험은 신경 자극 시스템의 응답에 대한 실시간에 의존인가 개발 및 신규 적용 종종 복잡한 폐쇄 - 루프 프로토콜에 대한 관심이 증가 목격된다. 최근 애플리케이션 optogenetics 3을 사용 피질 스트로크 다음 발작 제어 생쥐 1 및 지브라 피쉬 2 모두 모터 반응 연구를위한 가상 현실 시스템의 구현에 이르기까지 다양. 폐쇄 루프 기술의 주요 장점은 직접 액세스 할 수없는 또는 동시에 실험 처리량을 최대화하면서, 이러한 신경 흥분성 4 및 신뢰성 등 여러 변수에 의존하는 더 높은 차원의 특성을 프로빙하는 능력에있다. 이 기여 및 세포 전기 생리학의 맥락에서, 우리는 피라미드 대뇌 피질의 뉴런, REC의 응답 특성의 연구에 폐쇄 루프 다양한 프로토콜을 적용하는 방법에 대해 설명합니다청소년 쥐의 체 감각 피질에서 급성 뇌 조각에서 패치 클램프 기술로 세포 내 orded. 어떠한 시판 또는 개방 소스 소프트웨어를 효율적으로 여기에 설명 된 실험을 수행하는 데 필요한 모든 기능을 제공하지 같이, LCG 5라는 새로운 소프트웨어 도구는 그 모듈러 구조 컴퓨터 코드의 재사용을 극대화하고 새로운 실험 패러다임의 구현을 용이하게 개발되었다. 자극 파형은 컴팩트 한 메타 설명을 사용하여 지정하고 전체 실험 프로토콜은 텍스트 기반의 구성 파일에 설명되어 있습니다. 또한, LCG는 시험의 반복 실험 프로토콜의 자동화에 적합 명령 줄 인터페이스를 가지고 있습니다.

이전 섹션에서, 우리는 L5 피라미드 세포의 전기 생리 학적 특성을 특성화하는 소프트웨어 툴박스 LCG를 사용하고, 슬라이스 조제에서 생체 -like 시냅스 활성을 다시하는 방법을 설명 하였다. 명령 라인 인터페이스 및 반자동 프로토콜의 사용은 생성 된 데이터의 출력과 품질에 큰 영향을 미칠 수 실험의 재현성과 효율을 선호. 데이터가 일관된 방식으로 저장이기 때문에, 실제로는 특정 목?...

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Real-time Electrophysiology: Using Closed-loop Protocols to Probe Neuronal Dynamics and Beyond

Closed-loop protocols are becoming increasingly widespread in modern day electrophysiology. We present a simple, versatile and inexpensive way to perform complex electrophysiological protocols in cortical pyramidal neurons in vitro, using a desktop computer and a digital acquisition board.

실시간 전기 생리학 : 프로브 신경 역학과 저쪽​​에 폐쇄 루프 프로토콜을 사용하여

Experimental neuroscience is witnessing an increased interest in the development and application of novel and often complex, closed-loop protocols, where ...

real-time-electrophysiology-using-closed-loop-protocols-to-probe

Research

JoVE Journal

Neuroscience

11.3K 조회수.  University of Antwerp. Closed-loop protocols are becoming increasingly widespread in modern day electrophysiology. We present a simple, versatile and inexpensive way to perform complex electrophysiological protocols in cortical pyramidal neurons in vitro, using a desktop computer and a digital acquisition board. 

비디오: Real-time Electrophysiology: Using Closed-loop Protocols to Probe Neuronal Dynamics and Beyond

An Experimental Platform to Study the Closed-loop Performance of Brain-machine Interfaces

The non-stationary nature and variability of neuronal signals is a fundamental problem in brain-machine interfacing. We developed a brain-machine interface to assess the robustness of different control-laws applied to a closed-loop image stabilization task. Taking advantage of the well-characterized fly visuomotor pathway we record the electrical activity from an identified, motion-sensitive neuron, H1, to control the yaw rotation of a two-wheeled robot. The robot is equipped with 2 high-speed video cameras providing visual motion input to a fly placed in front of 2 CRT computer monitors. The activity of the H1 neuron indicates the direction and relative speed of the robot's rotation. The neural activity is filtered and fed back into the steering system of the robot by means of proportional and proportional/adaptive control. Our goal is to test and optimize the performance of various control laws under closed-loop conditions for a broader application also in other brain machine interfaces.

We use a closed-loop fly-machine interface to investigate general principles in neuronal control.

뇌 - 기계 인터페이스의 폐쇄 루프 성능을 연구하기 위해 실험 플랫폼

The non-stationary nature and variability of neuronal signals is a fundamental problem in brain-machine interfacing. We developed a brain-machine ...

연구

신경과학

Multi-electrode Array Recordings of Neuronal Avalanches in Organotypic Cultures

The cortex is spontaneously active, even in the absence of any particular input or motor output. During development, this activity is important for the migration and differentiation of cortex cell types and the formation of neuronal connections1. In the mature animal, ongoing activity reflects the past and the present state of an animal into which sensory stimuli are seamlessly integrated to compute future actions. Thus, a clear understanding of the organization of ongoing i.e. spontaneous activity is a prerequisite to understand cortex function. 
Numerous recording techniques revealed that ongoing activity in cortex is comprised of many neurons whose individual activities transiently sum to larger events that can be detected in the local field potential (LFP) with extracellular microelectrodes, or in the electroencephalogram (EEG), the magnetoencephalogram (MEG), and the BOLD signal from functional magnetic resonance imaging (fMRI). The LFP is currently the method of choice when studying neuronal population activity with high temporal and spatial resolution at the mesoscopic scale (several thousands of neurons). At the extracellular microelectrode, locally synchronized activities of spatially neighbored neurons result in rapid deflections in the LFP up to several hundreds of microvolts. When using an array of microelectrodes, the organizations of such deflections can be conveniently monitored in space and time. 
Neuronal avalanches describe the scale-invariant spatiotemporal organization of ongoing neuronal activity in the brain2,3. They are specific to the superficial layers of cortex as established in vitro4,5, in vivo in the anesthetized rat 6, and in the awake monkey7. Importantly, both theoretical and empirical studies2,8-10 suggest that neuronal avalanches indicate an exquisitely balanced critical state dynamics of cortex that optimizes information transfer and information processing.
In order to study the mechanisms of neuronal avalanche development, maintenance, and regulation, in vitro preparations are highly beneficial, as they allow for stable recordings of avalanche activity under precisely controlled conditions. The current protocol describes how to study neuronal avalanches in vitro by taking advantage of superficial layer development in organotypic cortex cultures, i.e. slice cultures, grown on planar, integrated microelectrode arrays (MEA; see also 11-14).

A robust way to study neuronal avalanches, i.e. scale-invariant spatio-temporal activity bursts, indicative of critical state dynamics in cortex. Avalanches emerge spontaneously in developing superficial layers of cultured cortex which allows for long-term measurements of the activity with planar integrated multi-electrode arrays (MEA) under precisely controlled conditions.

Organotypic 문화에의 연결을 눈사태의 다중 전극 어레이 레코딩

The cortex is spontaneously active, even in the absence of any particular input or motor output.  During development, this activity is important for the ...

Simultaneous Electroencephalography, Real-time Measurement of Lactate Concentration and Optogenetic Manipulation of Neuronal Activity in the Rodent Cerebral Cortex

Although the brain represents less than 5% of the body by mass, it utilizes approximately one quarter of the glucose used by the body at rest1. The function of non rapid eye movement sleep (NREMS), the largest portion of sleep by time, is uncertain. However, one salient feature of NREMS is a significant reduction in the rate of cerebral glucose utilization relative to wakefulness2-4. This and other findings have led to the widely held belief that sleep serves a function related to cerebral metabolism. Yet, the mechanisms underlying the reduction in cerebral glucose metabolism during NREMS remain to be elucidated.
	One phenomenon associated with NREMS that might impact cerebral metabolic rate is the occurrence of slow waves, oscillations at frequencies less than 4 Hz, in the electroencephalogram5,6. These slow waves detected at the level of the skull or cerebral cortical surface reflect the oscillations of underlying neurons between a depolarized/up state and a hyperpolarized/down state7. During the down state, cells do not undergo action potentials for intervals of up to several hundred milliseconds. Restoration of ionic concentration gradients subsequent to action potentials represents a significant metabolic load on the cell8; absence of action potentials during down states associated with NREMS may contribute to reduced metabolism relative to wake.
	Two technical challenges had to be addressed in order for this hypothetical relationship to be tested. First, it was necessary to measure cerebral glycolytic metabolism with a temporal resolution reflective of the dynamics of the cerebral EEG (that is, over seconds rather than minutes). To do so, we measured the concentration of lactate, the product of aerobic glycolysis, and therefore a readout of the rate of glucose metabolism in the brains of mice. Lactate was measured using a lactate oxidase based real time sensor embedded in the frontal cortex. The sensing mechanism consists of a platinum-iridium electrode surrounded by a layer of lactate oxidase molecules. Metabolism of lactate by lactate oxidase produces hydrogen peroxide, which produces a current in the platinum-iridium electrode. So a ramping up of cerebral glycolysis provides an increase in the concentration of substrate for lactate oxidase, which then is reflected in increased current at the sensing electrode. It was additionally necessary to measure these variables while manipulating the excitability of the cerebral cortex, in order to isolate this variable from other facets of NREMS.
	We devised an experimental system for simultaneous measurement of neuronal activity via the elecetroencephalogram, measurement of glycolytic flux via a lactate biosensor, and manipulation of cerebral cortical neuronal activity via optogenetic activation of pyramidal neurons. We have utilized this system to document the relationship between sleep-related electroencephalographic waveforms and the moment-to-moment dynamics of lactate concentration in the cerebral cortex. The protocol may be useful for any individual interested in studying, in freely behaving rodents, the relationship between neuronal activity measured at the electroencephalographic level and cellular energetics within the brain.

A procedure is described for manipulating the activity of cerebral cortical pyramidal neurons optogenetically while the electroencephalogram, electromyogram, and cerebral lactate concentration are monitored. Experimental recordings are performed on cable-tethered mice while they undergo spontaneous sleep/wake cycles. Optogenetic equipment is assembled in our laboratory; recording equipment is commercially available.

동시 Electroencephalography, 설치류 대뇌 피질의 젖산 농도와 Neuronal 활동 Optogenetic 조작의 실시간 측정

Although the brain represents less than 5% of the body  by mass, it utilizes approximately one quarter of the glucose used by the body  at rest1. The ...

Real-Time Impedance-based Cell Analyzer as a Tool to Delineate Molecular Pathways Involved in Neurotoxicity and Neuroprotection in a Neuronal Cell Line

Many brain-related disorders have neuronal cell death involved in their pathophysiology. Improved in vitro models to study neuroprotective or neurotoxic effects of drugs and downstream pathways involved would help gain insight into the molecular mechanisms of neuroprotection/neurotoxicity and could potentially facilitate drug development. However, many existing in vitro toxicity assays have major limitations &#8211; most assess neurotoxicity and neuroprotection at a single time point, not allowing to observe the time-course and kinetics of the effect. Furthermore, the opportunity to collect information about downstream signaling pathways involved in neuroprotection in real-time would be of great importance. In the current protocol we describe the use of a real-time impedance-based cell analyzer to determine neuroprotective effects of serotonin 2A (5-HT2A) receptor agonists in a neuronal cell line under label-free and real-time conditions using impedance measurements. Furthermore, we demonstrate that inhibitors of second messenger pathways can be used to delineate downstream molecules involved in the neuroprotective effect. We also describe the utility of this technique to determine whether an effect on cell proliferation contributes to an observed neuroprotective effect. The system utilizes special microelectronic plates referred to as E-Plates which contain alternating gold microelectrode arrays on the bottom surface of the wells, serving as cell sensors. The impedance readout is modified by the number of adherent cells, cell viability, morphology, and adhesion. A dimensionless parameter called Cell Index is derived from the electrical impedance measurements and is used to represent the cell status. Overall, the real-time impedance-based cell analyzer allows for real-time, label-free assessment of neuroprotection and neurotoxicity, and the evaluation of second messenger pathways involvement, contributing to more detailed and high-throughput assessment of potential neuroprotective compounds in vitro, for selecting therapeutic candidates.

Improved in vitro neurotoxicity assays would aid the identification of new neuroprotective compounds. The utility of a real-time impedance-based cell analyzer to determine cytotoxicity and cytoprotection in neuronal cell lines and to delineate the involvement of second messenger pathways, thus gaining insight in the mechanism of neuroprotection is presented.

신경 세포주에 신경 독성과 신경에 관여하는 분자 진학의 윤곽을하는 도구로 실시간 임피던스 기반의 세포 분석기

Many brain-related disorders have neuronal cell death involved in their pathophysiology. Improved in vitro models to study neuroprotective or neurotoxic ...

Closed-loop Neuro-robotic Experiments to Test Computational Properties of Neuronal Networks

Information coding in the Central Nervous System (CNS) remains unexplored. There is mounting evidence that, even at a very low level, the representation of a given stimulus might be dependent on context and history. If this is actually the case, bi-directional interactions between the brain (or if need be a reduced model of it) and sensory-motor system can shed a light on how encoding and decoding of information is performed. Here an experimental system is introduced and described in which the activity of a neuronal element (i.e., a network of neurons extracted from embryonic mammalian hippocampi) is given context and used to control the movement of an artificial agent, while environmental information is fed back to the culture as a sequence of electrical stimuli. This architecture allows a quick selection of diverse encoding, decoding, and learning algorithms to test different hypotheses on the computational properties of neuronal networks.

In this paper, an experimental framework to perform closed-loop experiments is presented, in which information processing (i.e., coding and decoding) and learning of neuronal assemblies are studied during the continuous interaction with a robotic body.

폐쇄 루프 신경 로봇 실험은 신경 네트워크의 전산 등록을 테스트하는

Information coding in the Central Nervous System (CNS) remains unexplored. There is mounting evidence that, even at a very low level, the representation ...

Prolonged Incubation of Acute Neuronal Tissue for Electrophysiology and Calcium-imaging

Acute neuronal tissue preparations, brain slices and retinal wholemount, can usually only be maintained for 6 - 8 h following dissection. This limits the experimental time, and increases the number of animals that are utilized per study. This limitation specifically impacts protocols such as calcium imaging that require prolonged pre-incubation with bath-applied dyes. Exponential bacterial growth within 3 - 4 h after slicing is tightly correlated with a decrease in tissue health. This study describes a method for&#160;limiting the proliferation of bacteria in acute preparations to maintain viable neuronal tissue for prolonged periods of time (&#62;24 h) without the need for antibiotics, sterile procedures, or tissue culture media containing growth factors. By cycling the extracellular fluid through UV irradiation and keeping the tissue in a custom holding chamber at 15 - 16 &#176;C, the tissue shows no difference in electrophysiological properties, or calcium signaling through intracellular calcium dyes at &#62;24 h postdissection. These methods will not only extend experimental time for those using acute neuronal tissue, but will reduce the number of animals required to complete experimental goals, and will set a gold standard for acute neuronal tissue incubation.

Once removed from the body, neuronal tissue is greatly affected by environmental conditions, leading to eventual degradation of the tissue after 6 - 8 h. Using a unique incubation method, which closely monitors and regulates the extracellular environment of the tissue, tissue viability can be significantly extended for &#62;24 h.

전기 생리학 및 칼슘 이미징에 대한 급성 신경 조직의 장기간 배양

Acute neuronal tissue preparations, brain slices and retinal wholemount, can usually only be maintained for 6 - 8 h following dissection. This limits the ...

Using Neuron Spiking Activity to Trigger Closed-Loop Stimuli in Neurophysiological Experiments

Closed-loop neurophysiological systems use patterns of neuronal activity to trigger stimuli, which in turn affect brain activity. Such closed-loop systems are already found in clinical applications, and are important tools for basic brain research. A particularly interesting recent development is the integration of closed-loop approaches with optogenetics, such that specific patterns of neuronal activity can trigger optical stimulation of selected neuronal groups. However, setting up an electrophysiological system for closed-loop experiments can be difficult. Here, a ready-to-apply Matlab code is provided for triggering stimuli based on the activity of single or multiple neurons. This sample code can be easily modified based on individual needs. For instance, it shows how to trigger sound stimuli and how to change it to trigger an external device connected to a PC serial port. The presented protocol is designed to work with a popular neuronal recording system for animal studies (Neuralynx). The implementation of closed-loop stimulation is demonstrated in an awake rat.

This protocol demonstrates how to use an electrophysiological system for closed-loop stimulation triggered by neuronal activity patterns. Sample Matlab code that can be easily modified for different stimulation devices is also provided.

신경 생리학적 실험에서 신경 스파이크 활동을 사용하여 폐쇄 루프 자극을 트리거합니다.

Closed-loop neurophysiological systems use patterns of neuronal activity to trigger stimuli, which in turn affect brain activity. Such closed-loop systems ...

Open-Source Real-Time Closed-Loop Electrical Threshold Tracking for Translational Pain Research

Nociceptors are a class of primary afferent neurons that signal potentially harmful noxious stimuli. An increase in nociceptor excitability occurs in acute and chronic pain conditions. This produces abnormal ongoing activity or reduced activation thresholds to noxious stimuli. Identifying the cause of this increased excitability is required for the development and validation of mechanism-based treatments. Single-neuron electrical threshold tracking can quantify nociceptor excitability. Therefore, we have developed an application to allow such measurements and demonstrate its use in humans and rodents. APTrack provides real-time data visualization and action potential identification using a temporal raster plot. Algorithms detect action potentials by threshold crossing and monitor their latency after electrical stimulation. The plugin then modulates the electrical stimulation amplitude using an up-down method to estimate the electrical threshold of the nociceptors. The software was built upon the Open Ephys system (V0.54) and coded in C++ using the JUCE framework. It runs on Windows, Linux, and Mac operating systems. The open-source code is available (<a data-saferedirecturl="https://www.google.com/url?q=https://github.com/Microneurography/APTrack&amp;source=gmail&amp;ust=1680789829274000&amp;usg=AOvVaw0nMk9J_EI2jUn8SlmC5JJm" href="https://github.com/Microneurography/APTrack" target="_blank">https://github.com/Microneurography/APTrack</a>). The electrophysiological recordings were taken from nociceptors in both a mouse skin-nerve preparation using the teased fiber method in the saphenous nerve and in healthy human volunteers using microneurography in the superficial peroneal nerve. Nociceptors were classified by their response to thermal and mechanical stimuli, as well as by monitoring the activity-dependent slowing of the conduction velocity. The software facilitated the experiment by simplifying the action potential identification through the temporal raster plot. We demonstrate real-time closed-loop electrical threshold tracking of single-neuron action potentials during&#160;in vivo&#160;human microneurography, for the first time, and during&#160;ex vivo&#160;mouse electrophysiological recordings of C-fibers and A&#948;-fibers. We establish proof of principle by showing that the electrical threshold of a human heat-sensitive C-fiber nociceptor is reduced by heating the receptive field. This plugin enables the electrical threshold tracking of single-neuron action potentials and allows the quantification of changes in nociceptor excitability.

APTrack is a software plugin developed for the Open Ephys platform that enables real-time data visualization and the closed-loop electrical threshold tracking of neuronal action potentials. We have successfully used this in microneurography for human C-fiber nociceptors and mouse C-fiber and A&#948;-fiber nociceptors.

Nociceptors are a class of primary afferent neurons that signal potentially harmful noxious stimuli. An increase in nociceptor excitability occurs in ...

주요 우울증 치료를 위한 뇌심부자극술

Closed-Loop Neurostimulation for Biomarker-Driven, Personalized Treatment of Major Depressive Disorder

Deep brain stimulation involves the administration of electrical stimulation to targeted brain regions for therapeutic benefit. In the context of major depressive disorder (MDD), most studies to date have administered continuous or open-loop stimulation with promising but mixed results. One factor contributing to these mixed results may stem from when the stimulation is applied. Stimulation administration specific to high-symptom states in a personalized and responsive manner may be more effective at reducing symptoms compared to continuous stimulation and may avoid diminished therapeutic effects related to habituation. Additionally, a lower total duration of stimulation per day is advantageous for reducing device energy consumption. This protocol describes an experimental workflow using a chronically implanted neurostimulation device to achieve closed-loop stimulation for individuals with treatment-refractory MDD. This paradigm hinges on determining a patient-specific neural biomarker that is related to states of high symptoms and programming the device detectors, such that stimulation is triggered by this read-out of symptom state. The described procedures include how to obtain neural recordings concurrent with patient symptom reports, how to use these data in a state-space model approach to differentiate low- and high-symptom states and corresponding neural features, and how to subsequently program and tune the device to deliver closed-loop stimulation therapy.

저자 스포트라이트: 우울증 치료에서 폐쇄 루프 심부 뇌 자극의 치료 이점 

Deep brain stimulation triggered by a patient-specific neural biomarker of a high-symptom state may better control symptoms of major depressive disorder compared to continuous, open-loop stimulation. This protocol provides a workflow for identifying a patient-specific neural biomarker and controlling the delivery of therapeutic stimulation based on the identified biomarker.

주요 우울 장애의 바이오마커 중심의 맞춤형 치료를 위한 폐쇄 루프 신경자극

Deep brain stimulation involves the administration of electrical stimulation to targeted brain regions for therapeutic benefit. In the context of major ...

실시간 전기 생리학 : 프로브 신경 역학과 저쪽​​에 폐쇄 루프 프로토콜을 사용하여

실시간 전기 생리학 : 프로브 신경 역학과 저쪽에 폐쇄 루프 프로토콜을 사용하여