Name: sequential extraction of soluble and insoluble alpha-synuclein from parkinsonian brains
Uploaded: 2016-01-05T14:00:01.000+00:00
Duration: 9 min 27 s
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I thank Dr Adamantios Mamais for extracting &#945;-synuclein from human tissue and running of blots. This work was supported in part by a MRC Grant (MR/L010933/1) and in part by the Wellcome Trust/MRC Joint Call in Neurodegeneration award (WT089698) to the UK Parkinson's Disease Consortium (UKPDC) whose members are from the UCL Institute of Neurology, the University of Sheffield and the MRC Protein Phosphorylation Unit at the University of Dundee. RB received funding from MJFox foundation for this work and is also funded by the Reta Lila Weston Trust.

사후 뇌 조직은 신경 질환에 대한 여왕 광장 뇌 은행에 기증, 런던 대학, 윤리적으로 승인 된 프로토콜을 사용하여 신경 연구소 인체 조직 기관에서 발급 라이선스에 따라 연구를위한 저장 (HTA) 영국 (NO. 12198). 이 프로토콜 (표 1)에 사용되는 경우의 목록을 참조하십시오. 버퍼 1. 준비 <ol><li> 1X TBS (트리스 완충 식염수) 버퍼를 준비합니다 <ol><li> 500 mM 트리스 - 염산 pH 7.4의 1,500 밀리미터의 NaCl과 원액으로 10 배 TBS를 준비합니다. <ol><li> 밖으로 60.5 g의 트리스 - CL 산도 7.6 및 고순도 물 800 ㎖ 중의 염화나트륨 87.6 g의 무게. 1 M 염산으로 pH를 조정하고 1 L.에 최종 재고 볼륨을 </li></ol></li><li> 증류수 스톡을 10 배 희석하여 1X TBS의 최종 농도를 준비한다. </li><li> 추가 단백질 분해 효소 억제제 (PI), (50 ㎖ 버퍼 당 1 정제) 및 PHOS 스톱 포스 파타 아제 억제제 정 (1 정 버퍼 ml의 10 당)에프로테아제 및 포스파타제의 비 특정 효소 활동의 효과를 폐지. 참고 : 여기에서 우리는 제조업체의 지침에 따라 사용할 수 있습니다 로슈에서 정제하지만 똑같이 다른 상업적으로 이용 가능한 억제제 억제제 효소를 사용하고 있습니다. </li></ol></li><li> (PH 7.4) 1X TBS에 / 나트륨 V 도데 실 설페이트 (SDS) 승 버퍼를 5 %를 추가하여 TBS-SDS 버퍼를 준비합니다. SDS를 가용화 자기 교반기를 사용하여 일정한 교반과 함께 60 ℃로 용액을 가열한다. </li><li> 8 M / TBS-1X SDS 버퍼 V w (PH 7.4)의 최종 농도로 우레아를 첨가하여 TBS-SDS 우레아 버퍼를 준비한다. 우레아를 용해 교반기 일정한 교반과 함께 60 ℃로 용액을 가열한다. </li></ol> 2. 샘플 균질화 및 차등 초 원심 분리 주 : 작업의 다음 부분 HTA UK의 규칙들에 따라 인간의 뇌 조직의 처리를 포함한다. 지역 표준 운영 절차는 모든 TI에 따른다MES. 뇌 시료는 부압 유지 microcabinet 균질화 동결 뇌 조직 블록 재료 해부된다. 일회용 가운 장갑, 얼굴 마스크, 오버 신발 보호 및 안전 고글 절차 전반에 걸쳐 착용. 인체 조직의 폐기물은 안전 처리를위한 20 분 동안 121 ℃에서 고온 가압 멸균 후 폐기됩니다. 샤프 (메스 블레이드) 봉쇄 및 안전한 폐기를위한 적절한 날카로운 컨테이너에 배치된다. <ol><li> (기저핵 지역에서 무게가 약 0.5 g)을 냉동 인간 조직의 덩어리를 타고 빠르게 작은 페트리 접시 및 멸균 메스 블레이드를 사용하여 얼음에 작은 조각 (약 1 ㎜ × 2)로 말하다. 각 샘플에 대한 별도의 배양 접시와 메스 블레이드를 사용합니다. 15 ML 튜브에 다진 조직을 수집하고 튜브에 얼음처럼 차가운 1XTBS 버퍼의 10 권을 추가합니다. </li><li> 10 초 동안 20,000 rpm에서 기계적 균질기를 사용하여 샘​​플을 균질화. 2 분 동안 얼음에 냉각. 이 단계에서 세 시간을 반복에스. 주 : 균질화 동안 샘플 가열되지 않도록이 행해진 다. </li><li> 4 ℃에서 5 분 동안 1,000 XG에서 원심 분리하여 명확히. 비 균질 재료의 펠렛을 폐기하십시오. </li><li> 상층 액 (원유 균질)를 가지고, (튜브의 크기는 로터의 크기에 따라 달라집니다) 원심 분리기 튜브 폴리 카보네이트 조심스럽게 균형을 추가 할 수 있습니다. 4 ℃에서 1 시간 동안 100,000 XG에 원심 분리기. </li><li> 이 TBS 분획 그대로 뜨는을 유지. </li><li> 워시는 4 ℃에서 15 분 동안 10 만 XG에 1X TBS 버퍼와 원심 분리기마다의 5 권에 두 번 펠렛. 상층 액을 버린다. <ol><li> 실온에서 1X TBS-SDS의 약 5 볼륨에서 20 kHz에서 10 초 동안 펠렛을 초음파 처리하여 최종 펠렛을 재현 탁. 주 : SDS 함유 완충액 샘플 첨가 SDS 침전을 방지하기 위해 10 ℃에서 가져온되어야 전에. </li><li> 25 ° C에서 30 분 동안 10 만 XG에 초 원심 분리기. </li></ol></li><li> 이 일 같이 뜨는 유지전자는 가용성 분획을 SDS. <ol><li> 워시 실온에서 1X TBS-SDS 버퍼의 두 번에 5 볼륨을 펠렛. 원심 분리기 25 ° C에서 15 분 동안 10 만 XG에 때마다. </li><li> 완전한 용해를 달성하기 위해 10 초 동안 20 kHz로 설정 초음파기를 사용하여 1X TBS-SDS 우레아 완충액 50 μL에 최종 펠렛을 용해; 이것은 우레아 가용성 분획으로 불린다. </li></ol></li><li> 제조사의 프로토콜에 따라 상업적 단백질 분석 키트를 사용하여 총 단백질 함량에 대한 각각의 분획을 분석. 단백질 분석 시약과의 호환성을 허용하는 1X TBS 완충액으로 1 : SDS-TBS 우레아 샘플 1 희석. -80 ° C에서 작은 분액 (20 μL)에 동결 샘플을 동결 - 해동 사이클을 감소시킨다. 주의 : 샘플을 10 % 글리세롤을 추가하면 -80 ° C에서 장기간 저장을 위해 권장된다. </li></ol> 샘플 및 분석 결과 3. 면역 블 롯팅 <ol><li> 10 웰 4~12% 비스 - 트리스 폴리 아크릴 아미드 겔에 TBS, TBS-SDS와 TBS-SDS-우레아 추출물에서 실행 샘플표준 기술을 사용하여 버퍼를 실행하는 것과 함께 MOPS. 참조 갤러거와 Chakravarti (2008)에 대한 자세한 서양 얼룩 프로토콜 (29). </li><li> TBS와 SDS 및 요소 분획에 대한 분자량 마커와 함께 각 레인 위에로드 각 샘플에서 단백질의 10 μg의를. </li><li> 1 시간 동안 또는 로딩 버퍼로부터 청색 염료 겔의 바닥에 도달 할 때까지 200 V에서 젤을 실행. </li><li> 전기 영동 나일론 막 (28)에 젤에서 단백질을 이동, 20 % 메탄올을 포함하는 전송 버퍼에 처음으로 100 % 메탄올 다음 사전 젖은. 단백질 측과 분자량 크기 마커의 방향을 결정하기 위해 오점에 식별 표시를 제공한다. <ol><li> 젖은 종이 필터와 함께 막과 젤 샌드위치. 멤브레인의 정확한 위치는 겔과 양극 사이에 분리막으로 중요하다. V. 40에서 2 시간 동안 전송을 수행 </li><li> 1X PBS-트윈 (1X PBS-T) 버퍼 메이크업 : 200 ml의 PBS에 1 정을 녹여물은 0.01 M 인산염 완충액, 0.0027 M 염화칼륨 및 0.137 M 염화나트륨, pH가 7.4을 얻었다. </li><li> 70 rpm으로 진탕하면서 30 분 동안 1X PBS-T에서 5 % BSA 용액을 차단하는 멤브레인. 이 막에 차 항체의 결합 비특이적을 방지 할 수 있습니다. </li></ol></li><li> (1X PBS-T와 세척 일련의 뒤에 (4 ° C에서 O / N) (750) 희석 : 1에서, α-SYN 차 항체 SYN-1 (마우스 단일 클론 항체 BD 바이오 사이언스) 6 mL를 단백질 얼룩을 프로브 3 × 5 분마다) 28. </li><li> 1 차 항체 결합 된 적절한 HRP와 얼룩을 품어 : 2,000 희석을 30 분 동안. 1X PBS-T와 세척 일련의 (3 × 5 분마다)을 수행합니다. <ol><li> 어두운 방에 15 초 동안 강화 된 화학 발광 솔루션의 말을 담근다. 빛 증거 카세트 단백질면이 위로와 얼룩에 대한 집착 필름과 장소자가 방사선 필름과 커버 말은 적절한 신호 (적절한 크기의 밴드)를 촬영합니다. </li><li> 자동화 된 개발자의자가 방사선 필름을 개발합니다. 참고 : 오도 자동화 개발 기계를 사용할 수없는 경우에는 상용 소스 개발자와 해결사를 사용하여 수동으로 개발 될 수있다. </li></ol></li><li> 웨스턴 블롯 6 ml의 상수 α-SYN 항체 신호의 얼룩을 제거하기 위해 진탕 10 분 동안 버퍼를 제거하여 웨스턴 블롯을 품어. 8,000 희석 : 1에서 베타 - 액틴 차 항체 (마우스 단일 클론)을 사용하여 3.6.2에 이르기까지 단계 3.43를 수행합니다. </li><li> 검사 및 정량을 위해 NIH ImageJ에 (무료로 다운로드 할 수있는 소프트웨어)를 사용하여 TIFF 이미지 및 측정 밀도에 최종 이미지를 변환 할 수 있습니다. 주 : 소프트웨어가 관심의 상대 영역 (적절한 크기의 밴드)의 밀도의 판독이 가능하고, 데이터가 하나의 임의 단위 또는 α-SYN 밀도 / β 액틴 (하우스 키핑 유전자)의 비율로 표현 될 수있다 집 유지 유전자 (우레아 - 가용성 샘플의 경우에서와 같이) 유효하지 않은 경우 자신. </li&gt; </ol>

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J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+method+for+quantitative+immunoblotting+of+endogenous+&#945;-synuclein.">A new method for quantitative immunoblotting of endogenous &#945;-synuclein.</a> PLoS ONE. 8 (11), e81314 (2013).</li></ol>

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이 문서에서는 변성 겔 실행 조건을 사용하여 병에 걸린 뇌에서 추출 및 모노머, 올리고머의 차동 용해도 특성 검사 및 집계 α-SYN에 대한 생화학 적 프로토콜을 설명합니다. 이것은 공부 잘 확립 된 기술이다 집계 α-SYN 17, 18, ​​20, 21의 기본 형태로 일반적으로 용해 될 수 있지만, 질병의 진행 또는 유전 적 돌연변이 아밀로이드 나 증가 집계 특성을 얻을 단백질. 그럼에도 불구하고, 일부 그룹은 (8 % 또는 10 % 대신 5 %) 21, 22, 30. SDS는 α-SYN의 막 결합 된 형태를 포함 할 수 올리고머 음이온 세제와 solubilises을 그들의 버퍼에 SDS 농도에 약간의 차이를 사용했다 α-가 SYN, 요소 반면, 카오 트로픽 시약은 α-SYN (20)의 불용성 집계 및 원 섬유 또는 아밀로이드 형태의 변성. 이와 관련 Paleologou 등의 알 (31)에 의해 체계적인 연구는 안정성을 조사α-SYN 올리고머 및 요소의 다양한 농도와 섬유의 (6.5-8 M) 또는 SDS (0.25-2 %)하고 있음을보고 요소의 높은 농도 SDS 농도 안정하지만 올리고머. α-SYN 올리고머 및 섬유에 대한 특정 그들의 FILA-1 항체는, 비 변성 조건에서 6.5 M 요소 농도에서 섬유의 높은 농도를 감지했습니다. 이 프로토콜에서 사용하는 버퍼의 농도는 밀접한 Culvenor 동부 알에 설명 된 내용을 반영한다. (1999) 32. 불용성 α-SYN의 생화학 추출을위한 해부학 적 뇌 영역은 신중하게 선택해야하고이 질병의 진행 (33, 34)에 따라 α-SYN LB 및 LN 부하를 반영해야한다. 여기에 사용되는 경우가 McKeith에 따라 PD의 진행의 말과 중간 단계를 반영하는 PD의 신피질과 변연계 아형에서 기저핵 샘플 (34) ctriteria 있습니다. 여왕 광장 두뇌 은행, 뇌의 절반이다일상적으로 조직 화학적 분석을 위해 포르말린에 고정하고, 나머지 절반은 신중하게 다른 해부학 적 영역으로 해부하고 플래시가 냉동 생화학 추가 및 DNA / RNA 분석 연구에 -80 오 C의 냉동고에 보관. neuropathologists에 의해 뇌와 절개의 포르말린 고정에 이어, 면역 보관 α-SYN 항체 및 결과를 사용하여 수행됩니다. 또한 루틴 절차로서, 뇌 조직의 pH는 뇌 조직의 agonal 상태의 척도로서 도착시 측정된다. 이 생화학 적 분석을위한 조직 보존의 품질에 대한 확고한 기초를 형성한다. 여기에 우리의 데이터는 더 SDS에게 컨트롤에 비해 PD의 경우에 용해 α-SYN 단량체가 있음을 보여줍니다; 특히 신피질 PD의 경우는 변연 PD의 다양한에 비해 높은 α-SYN 부하가 있습니다. 신피질의 경우는 전두엽과 두정엽 고전으로 신피질 지역에서 PD α-SYN 병리의 큰 진행을 나타냅니다33, 34을 tices. 변연 PD의 경우는 편도, transentorhinal과에 cingulate 영역과 기초 전뇌 / 변연 지역의 지역에서 더 높은 LB 점수를 가지고있다. 의미있는 데이터 및 통계 분석을 위해, 하나는 각 코호트에서 최소 4 케이스를 실행해야합니다. 마찬가지로 우리는 여기에 제시된 오점 데이터의 통계 분석을 시도하지 않았습니다. 또 다른 항체가 서로 다른 형태 / 고차 α-SYN 올리고머 조성물을 인식 할 수 있고, 각각은 자신의 상대적인 감도 및 선호도를 가질 수 있다는 것을 유의해야한다. 그들은 4 개의 α-SYN 항체 (SYN-1, SS, Onco 및 LB509)은 α-SYN 올리고머 / 집계를 위해 적어도 변경 결과를 보여 곳 통 등. 29의 결과에서 알 수있다. 이러한 α-SYN 항체 항원 중 N- 말단 또는 C에 위치하는지 여부에 따라 변동이있을 수 있지만, α-SYN 단량체는 4 항체 유사 범위에 인식하고 있었다29 말단. 종 (20, 21)을 synuclein의 α-마찬가지로, 포스 알파에 대한 특정 항체는 synuclein의 고유 한 고 분자량을 결정합니다. 여기에 기술 된 프로토콜로, 고도로 특징 SYN-1 항체는 19-21 사용되고있다. 그러나, 세포 또한 단백질의 과발현 및 최저 항체 preabsorption 실험을 통해 서양 말에 새로운 항체를 검증하고 고려하는 것이 중요합니다. 그것은 α-SYN과 불안정한 사량의 α-SYN 형태의 작은 조각을 결정하기 위해 연구자들에 의해 적용된 다른 변화를 고려하는 것이 중요합니다. 이 사량 (36)을 안정화 α-SYN (35) 또는 크로스 링커 샘플 균질의 치료의 절단 형태를 유지하기 위해 PBS에 0.4 % PFA와 세포막의 온화한 고정을 포함 할 수있다. 사후 TI를 사용하여 단백질의 정확한 생화학 적 평가ssue는 효소 단백질 분해 및 수정의 최소화가 필요합니다. 이 경우 코호트 내에서 일치하는 샘플을 최단 사후 ​​지연으로 조직을 사용 및 / 또는 선택하는 것이 좋습니다. α-SYN의 표준 면역 항체를 사용하여 면역 조직 화학 법은 분리 프로토콜을 시작하기 전에 수행되어야한다. α-SYN 병리의 정도는 매우 다양하고 선택한 지역에 따라 달라질 수 있습니다. 그것은 모든 실행 최적의 수율에 대한 양성 대조군으로 풍부한 병리와 지역을 선택하는 것이 좋습니다. 필요한 포스파타제 억제제, 프로테아제 억제제 및 만약 사용 세포 용해 중에 발생하고 4 ℃에서 시료를 유지하는 세포 내 단백질 분해 효소 또는 포스 파타 아제의 방출 후에 중요 효소 불필요한 저하를 방지 할 수있다. 이 실험의 배치 내의 모든 샘플 내 사용자 변동을 피하기 위해 균일하고 일관성있게 처리하는 것이 중요하다; 여러 FRE이것은 잠재적으로 인산화 같은 번역 후 변형을 후퇴 있으므로 에즈 - 해동 사이클은 피해야한다. 많은 수의 샘플을 검사하는 면역 블롯에서 데이터 겔상의 다른 모든 샘플 및 해당 시료에 참조 된 모든 데이터를 병렬로 실행해야 하나의 샘플로 정규화되어야한다고 때 중요한 점은 유념. 이것은 여러 면역 블롯 사이에 데이터의 정규화를 보장하기 위해 수행된다. 이것은 우리의 최근의 연구 22 년에 채택 된 방법이다. 이는 낮은 배경 ECL을 유지하기 위하여, 블롯 웨스턴 블롯 프로토콜 중 언제든지 건조하도록 허용되지 않는 것을 주목해야한다. 이 ECL 신호의 포화로 이어질 것입니다 및 부정확 한 정량으로 이어질 것 같이 또한,자가 방사선 필름에 매우 장시간 노출 (&gt; 10 분)은 피해야한다. 이 프로토콜은 상술 한 일반적인 실험실 시약을 사용하고 비교적 간단한 기술이다악기로 및 PD의 연구에서 α-SYN 단백질의 병태 생리를 조사하는 유용한 도구가 될 수 있습니다. 이 방법은 α-SYN 형질 전환 동물의 α-SYN 생물학의 연구에 적절한 수정뿐만 아니라, 광고, MSA, 루이체 치매, HD 및 frontotemporaldementias으로 집계 된 단백질의 이상 예금을 특징으로 다른 신경 퇴행성 질환으로 확장 할 수 없습니다. 그러나 여기에 설명 된 웨스턴 블랏 데이터는 α-SYN (31)의 특정 형태에 대한 항체를 사용하여 효소 면역 분석법을 이용하여 확인 될 수있다.

몇 가지 신경 퇴행성 질환 사이 공통 키 병적 특징 중 하나는 단백질 / 질병 특정 방법 1에서 발생 비정상적인 단백질 응집체의 형성이다. 따라서, 알츠하이머 병 (AD)의 신경 세포 내의 특성 extraneuronal 아밀로이드 베타 플라크 집계 hyperphosphorylated 타우 예금이있​​다; 루이 기관 intraneuronal 흠도 있습니다 (LBS), 및 또한 루이 신경 돌기 (림프절) 루이 기관 (DLBS) 2-4와 PD, PD 치매와 치매에라는 이영 신경 프로세스 내에서 집계 된 α-SYN 예금. 이상 α-SYN 예금은 MSA 5 아교 세포질 흠도의 특징 병변에서 볼 수 있습니다. 헌팅턴의 질병에서,이 특성 폴리-Q 예금이 있고, 비정상적인 타르 DNA는 단백질-43 및 육종 단백질 (FUS)의 융합이 전 측두엽 치매에 증착 바인딩. 중요한 것은 PD에 대해, α-SYN 유전자 돌연변이는 CAU에 발견되었다PD 6-11 지배적 자체의 염색체. 또한, α-SYN 유전자 삼배 (12)과 중복 (13)도 따라서 PD의 pathomechanisms 증가 α-SYN 식을 연결하는 가족 PD가 발생합니다. 특히, 산발적과 가족 모두 PD의 경우는 α-SYN 병리 (14)의 이상 예금을 항구. PD의 현재 가능한 치료는 완화 적 전용이며 불변 중지 또는 질병의 진행을 지연에 영향을 미치지 않는다. α-SYN가 풍부 인간의 뇌에서 발현 및 뇌 총 단백질의 약 1 %를 차지하게된다. 이 신경 세포 내에서보다 구체적으로 존재하지만 아교 세포 내에서 낮은 금액에 불구하고 존재할 수 있습니다. 논쟁 점은 임의의 모노머 (15) 또는 접힌 사량 (16)로 존재할 수 α-SYN의 기본 구조입니다. 질병 중에 α-SYN은 잘못 폴딩을 얻을 수 있도록 그 형태를 변경하고,이 프로세스는 pathoge 질환의 원인으로 생각된다nesis. α-SYN과 질병의 병태 생리 학적 측면으로 조사 몇 년간에도 불구하고, 질병 메커니즘의 정확한 원인은 14 애매 남아있다. 파킨슨 두뇌의 사후 분석을 사용하여 연구는 지금까지 α-SYN 산발적 PD와도 모두 LRRK2 유전자 17 ~ 22의 돌연변이와 관련된 PD의 정상 및 비정상 생물학에 관한 중요한 단서를 제공하고 있습니다. 여기에, 다양한 수준에 α-SYN 집계 항구 인간의 사후 PD의 뇌 조직에서 점점 불용성 α-SYN 예금 생화학 추출 프로토콜 (참조 방식은 그림 1에 제시) 기술되었다. 이 기술은 또한 다른 신경 퇴행성 질환 (23, 24)에서 총 단백질을 연구하는 버퍼 조성물에 수정 또한 형질 전환 동물의 뇌 조직 25-27에서 적용 할 수 있습니다. 적응에 대한 주요 고려 사항은 solubi의 차이입니다lity과 중 일부 각각의 단백질의 총 금액은 주로 핵이며, FUS 28과 같이 최적의 추출 높은 소금 버퍼를해야 할 수도 있습니다.

<table><tbody><tr><td>Tris-HCL</td><td>Sigma</td><td>T5912</td><td></td></tr><tr><td>sodium chloride</td><td>VWR</td><td>27800.291</td><td></td></tr><tr><td>SDS</td><td>Fluka</td><td>71727</td><td></td></tr><tr><td>Urea</td><td>Sigma</td><td>U5378</td><td></td></tr><tr><td>Protease inhibitor tablets&amp;nbsp;</td><td>Roche</td><td>04 693 116001</td><td></td></tr><tr><td>Phosphatase inhibitor tablets&amp;nbsp;</td><td>Roche&amp;nbsp;</td><td>04 906 837001</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate buffered saline tablets&amp;nbsp;</td><td>Sigma&amp;nbsp;</td><td>P4417</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>P9416</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE MOPS SDS running buffer</td><td>Invitrogen</td><td>NP0001</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE transfer buffer</td><td>Invitrogen</td><td>NP0006-1</td><td></td></tr><tr><td>Hybond-P membrane&amp;nbsp;</td><td>GE Healthcare</td><td>RPN303F</td><td></td></tr><tr><td>Whatman 3MM filter paper</td><td>Sigma</td><td>WHA30306185</td><td></td></tr><tr><td>Bis-tris gels 4-12%&amp;nbsp;</td><td>Invitrogen&amp;nbsp;</td><td>NP0322BOX</td><td></td></tr><tr><td>Supersignal West Pico Chemiluminescent substrate</td><td>Pierce</td><td>34080</td><td></td></tr><tr><td>Bio-RAD DC protein assay kit&amp;nbsp;</td><td>Bio-Rad</td><td>500-0112</td><td></td></tr><tr><td>Thickwall Beckman Polycarbonate tubes</td><td>Beckman</td><td>355630</td><td></td></tr><tr><td>Western blot stripping buffer</td><td>Thermo scientific</td><td>46430</td><td></td></tr><tr><td>Syn-1 primary antibody (mouse monoclonal)</td><td>BD Biosciences</td><td>610786</td><td></td></tr><tr><td>beta-actin primary antibody (mouse monoclonal&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>A5441</td><td></td></tr><tr><td>HRP cojugated goat anti-mouse secondary antibody</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-2031</td><td></td></tr><tr><td>Bovine serum albumin</td><td>Sigma</td><td>A7030</td><td></td></tr><tr><td>Instrument</td><td>Company</td><td>Rotor/ model no&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Benchtop Ultracentrifuge Optima Max</td><td>Beckman</td><td>MLA-80</td><td></td></tr><tr><td>Sonicator</td><td>Heat Systems</td><td>XL20-20</td><td></td></tr><tr><td>Homogeniser</td><td>Jenke and Kunkel</td><td>TP18/10</td><td></td></tr></tbody></table>

sequential extraction of soluble and insoluble alpha-synuclein from parkinsonian brains

알파 - 시누 클레인 (α-SYN) 단백질이 풍부 주로 신경 세포 내에서 발현, 그리고 다른 형태의 다수 존재한다 - 단량체, 테트라, 올리고머 및 섬유. 질병 중에 α-SYN은 불용성 단백질이 더 만드는 경향 올리고머 및 고 분자량의 응집체를 형성하는 구조적인 변화를 겪는다. 비정상적 응집 α-SYN 파킨슨 병 (PD), 루이체 복수 시스템 위축증 (MSA)와 치매의 신경 병리학 적 특징이다. 생화학 적 특성 및 강도 증가 세제 고속 초 원심 불용성 α-SYN하여 버퍼의 분석은 질병 진행과 연관된 α-SYN 병리의 개발을 결정하는 강력한 도구를 제공한다. 이 프로토콜은 사후 인간의 뇌 조직에서 점점 불용성 / 집계 α-SYN의 분리에 대해 설명합니다. 이 방법은 정상 및 비정상 α의 연구에 수정을 적용 할 수있다다른 α-SYN 돌연변이를 보유하는 형질 전환 동물 모델에서뿐만 아니라 각각의 병리와 관련된 단백질의 비정상적인 섬유의 예금을 특징으로 다른 신경 퇴행성 질환에서 -syn 생물학.

TBS, SDS와 그림 1의 프로토콜 다음 기저핵에서 추출 우레아 수용성 단백질은 젤에서 실행 α-SYN SYN-1 마우스 단일 클론 차 항체 immunoblotted했다. TBS 수용성 분획 검사 PD 제어의 경우 단량체 α-SYN (~ 14 KDa의 종) (그림 2A)의 존재를 표시. SDS 수용성 분획 또한 낮은 노출 오 (그림 2C)에 표시되는 연구의 경우 세 가지 아형에 풍부한 단량체 α-SYN을 보였다. PD의 경우에는 올리고머 (도 2C)이 될 가능성이 높은 노광 블롯에 표시되는 더 높은 분자량 (MW) α-SYN 종을 나타내었다. PD의 경우와 우레아 수용성 분획을 α-SYN 모노머, 올리고머 및 케이스를 대조군에 비해 증가 된 응집 종의 양을 나타내었다. 신피질 특발성 PD의 경우는 aggreg 더 많은 양을 보여<html> 변연계의 경우는 불용성 α-SYN의 중간 수준을 표시하는 동안 ated의, 종 α는-SYN. 모두 특발성 PD의 경우에서 SDS 및 요소 분획 변수 12 kDa의에서 절단 된 α-SYN 제품의 수준과 6 kDa의 20 설명한대로를 보여줍니다. 대조적으로, 제어 케이스 불용 또는 응집 SYN-α ​​(도 2e)을 나타내지 않았다. 세미 양적 밀도 측정은 신피질과 변연계 PD의 경우 집계 α-SYN의 녹지 자연 (그림 2B, 2D, 2 층)를 보여 α-SYN의 면역 조직 화학 염색을 사용 categoriesd으로 LB 부하의 양을 반영한다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/53415/53415fig1.jpg" /> 그림 1. 불용성 α -syn 추출 과정의 개략도.rget = &quot;_ 빈&quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/53415/53415fig2.jpg" /> 그림 2. PD에서 α -syn 수준의 대표적인 면역 블롯 및 인체 조직을 제어 할 수 있습니다. TBS, SDS 및 요소 수용성 분획 기저핵 (제어) 특발성 PD 사례 및 신경 학적으로 정상 (PD의 경우 α-SYN 병리 항만 지역)에서 뇌는 웨스턴 면역 블롯을 이용하여 α-SYN의 존재에 대해 분석 하였다. 단백질 10 μg의 각 레인에로드했습니다. TBS 분획 (A)에서, 주로 α-SYN 단량체는 모든 경우에 존재한다. SDS 분획 (C)에서, α-SYN 올리고머의 일부는 주로 PD 조직에서 단량체와 함께 보인다. 우레아 분획 (C), 모노머, 올리고머 및 응집 α-SYN 가변적 PD 케이스을 reflectin 표현된다G 각각의 LB로드. 신경 학적으로 정상 샘플 단량체 α-SYN의 소량의 존재를 보여줍니다. 높은 LB 부하의 경우 일부에서 볼 수 있습니다 α-SYN 가능한 해산물을 유의하시기 바랍니다. 고체 화살표 머리 α-SYN의 단량체 형태를 나타냅니다. *이 아마도 이전에 20, 26 설명 된대로 α-SYN의 C 말단 절단 된 형태를 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53415/53415fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> 케이스 </td><td> 섹스 </td><td> 죽음의 세 연령 </td><td> 사후 지연 (시간) </td><td> 조직의 pH를 </td></tr><tr><td> 신피질 1 </td><td> 엠 </td><td> (82) </td><td> (40) </td><td> 6.3 </td></tr><tr><td> 신피질 2 </td><td> 에프</td><td> (75) </td><td> 35.3 </td><td> 6.4 </td></tr><tr><td> 변연 1 </td><td> 엠 </td><td> (81) </td><td> 28.5 </td><td> 6.2 </td></tr><tr><td> 변연 2 </td><td> 에프 </td><td> 79 </td><td> 36.5 </td><td> 6.2 </td></tr><tr><td> 제어 1 </td><td> 엠 </td><td> (80) </td><td> (38) </td><td> 6.1 </td></tr><tr><td> 제어 2 </td><td> 에프 </td><td> (83) </td><td> 32.5 </td><td> 6.3 </td></tr></tbody></table> 사용되는 경우 표 1. 제한 인구 통계

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Sequential Extraction of Soluble and Insoluble Alpha-Synuclein from Parkinsonian Brains

Here, we present a protocol for the isolation of increasingly insoluble/aggregated alpha-synuclein (&#945;-syn) from post-mortem human brain tissue. Through the utilization of buffers with increasing detergent strength and high-speed ultracentrifugation techniques, the variable properties of &#945;-syn aggregation in diseased and non-diseased tissue can be examined.

파킨슨 뇌에서, 수용성 알파 시누 클레인의 순차 추출

Alpha-synuclein (&#945;-syn) protein is abundantly expressed mainly within neurons, and exists in a number of different forms - monomers, tetramers, ...

sequential-extraction-soluble-insoluble-alpha-synuclein-from

Research

JoVE Journal

Neuroscience

17.2K 조회수.  UCL Institute of Neurology. Here, we present a protocol for the isolation of increasingly insoluble/aggregated alpha-synuclein (α-syn) from post-mortem human brain tissue. Through the utilization of buffers with increasing detergent strength and high-speed ultracentrifugation techniques, the variable properties of α-syn aggregation in diseased and non-diseased tissue can be examined.

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Enrichment of Detergent-insoluble Protein Aggregates from Human Postmortem Brain

In this study, we describe an abbreviated single-step fractionation protocol for the enrichment of detergent-insoluble protein aggregates from human postmortem brain. The ionic detergent N-lauryl-sarcosine (sarkosyl) effectively solubilizes natively folded proteins in brain tissue allowing the enrichment of detergent-insoluble protein aggregates from a wide range of neurodegenerative proteinopathies, such as Alzheimer&#39;s disease (AD), Parkinson&#39;s disease and amyotrophic lateral sclerosis, and prion diseases. Human control and AD postmortem brain tissues were homogenized and sedimented by ultracentrifugation in the presence of sarkosyl to enrich detergent-insoluble protein aggregates including pathologic phosphorylated tau, the core component of neurofibrillary tangles in AD. Western blotting demonstrated the differential solubility of aggregated phosphorylated-tau and the detergent-soluble protein, Early Endosome Antigen 1 (EEA1) in control and AD brain. Proteomic analysis also revealed enrichment of &#946;-amyloid (A&#946;), tau, snRNP70 (U1-70K), and apolipoprotein E (APOE) in the sarkosyl-insoluble fractions of AD brain compared to those of control, consistent with previous tissue fractionation strategies. Thus, this simple enrichment protocol is ideal for a wide range of experimental applications ranging from Western blotting and functional protein co-aggregation assays to mass spectrometry-based proteomics.

An abbreviated fractionation protocol for the enrichment of detergent-insoluble protein aggregates from human postmortem brain is described.

인간의 사후 뇌에서 세제 불용 성 단백질의 농축

In this study, we describe an abbreviated single-step fractionation protocol for the enrichment of detergent-insoluble protein aggregates from human ...

연구

생화학

Novel Atomic Force Microscopy Based Biopanning for Isolation of Morphology Specific Reagents against TDP-43 Variants in Amyotrophic Lateral Sclerosis

Because protein variants play critical roles in many diseases including TDP-43 in Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS), alpha-synuclein in Parkinson&#8217;s disease and beta-amyloid and tau in Alzheimer&#8217;s disease, it is critically important to develop morphology specific reagents that can selectively target these disease-specific protein variants to study the role of these variants in disease pathology and for potential diagnostic and therapeutic applications. We have developed novel atomic force microscopy (AFM) based biopanning techniques that enable isolation of reagents that selectively recognize disease-specific protein variants. There are two key phases involved in the process, the negative and positive panning phases. During the negative panning phase, phages that are reactive to off-target antigens are eliminated through multiple rounds of subtractive panning utilizing a series of carefully selected off-target antigens. A key feature in the negative panning phase is utilizing AFM imaging to monitor the process and confirm that all undesired phage particles are removed. For the positive panning phase, the target antigen of interest is fixed on a mica surface and bound phages are eluted and screened to identify phages that selectively bind the target antigen. The target protein variant does not need to be purified providing the appropriate negative panning controls have been used. Even target protein variants that are only present at very low concentrations in complex biological material can be utilized in the positive panning step. Through application of this technology, we acquired antibodies to protein variants of TDP-43 that are selectively found in human ALS brain tissue. We expect that this protocol should be applicable to generating reagents that selectively bind protein variants present in a wide variety of different biological processes and diseases.

Using atomic force microscopy in combination with biopanning technology we created a negative and positive biopanning system to acquire antibodies against disease-specific protein variants present in any biological material, even at low concentrations. We were successful in obtaining antibodies to TDP-43 protein variants involved in Amyotrophic Lateral Sclerosis.

루게릭 병에 TDP-43 변종 형태론 특정 시약의 분리에 대한 소설 원자 힘 현미경 기반 Biopanning

Because protein variants play critical roles in many diseases including TDP-43 in Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS), alpha-synuclein in ...

생체공학

Detection of Disease-associated &#945;-synuclein by Enhanced ELISA in the Brain of Transgenic Mice Overexpressing Human A53T Mutated &#945;-synuclein

In addition to established methods like Western blot, new methods are needed to quickly and easily quantify disease-associated &#945;-synuclein (&#945;SD) in experimental models of synucleopathies. A transgenic mouse line (M83) over-expressing the human A53T &#945;S and spontaneously developing a dramatic clinical phenotype between eight and 22 months of age, characterized by symptoms including weight loss, prostration, and severe motor impairment, was used in this study. For molecular analyses of &#945;SD (disease-associated &#945;S) in these mice, an ELISA was designed to specifically quantify &#945;SD in sick mice. Analysis of the central nervous system in this mouse model showed the presence of &#945;SD mainly in the caudal brain regions and the spinal cord. There were no differences in &#945;SD distribution between different experimental conditions leading to clinical disease, i.e., in uninoculated and normally aging transgenic mice and in mice inoculated with brain extracts from sick mice. The specific detection of &#945;SD immunoreactivity using an antibody against Ser129 phosphorylated &#945;S by ELISA essentially correlated with that obtained by Western blot and immunohistochemistry. Unexpectedly, similar results were observed with several other antibodies against the C-terminal part of &#945;S. The propagation of &#945;SD, suggesting the involvement of a &#8220;prion-like&#8221; mechanism, can thus be easily monitored and quantified in this mouse model using an ELISA approach.

An ELISA offering a novel quantitative approach is described. It specifically detects disease-associated &#945;-synuclein (&#945;SD) in a transgenic mouse model (M83) of synucleinopathy using several antibodies against either the Ser129 phosphorylated &#945;S form or the C-terminal part of the protein.

인간 A53T를 과발현 형질 전환 마우스의 뇌에 강화 된 ELISA에 의한 질병 관련 α-synuclein의 검출은 α-synuclein의 돌연변이

In addition to established methods like Western blot, new methods are needed to quickly and easily quantify disease-associated &#945;-synuclein (&#945;SD) ...

의학

Exogenous Administration of Microsomes-associated Alpha-synuclein Aggregates to Primary Neurons As a Powerful Cell Model of Fibrils Formation

For years, the inability of replicating formation of insoluble alpha-synuclein (&#945;S) inclusions in cell cultures has been a great limitation in the study of &#945;S aggregation in Parkinson&#39;s Disease (PD). Recently, the development of new animal models through the exogenous inoculation of brain extracts from diseased &#945;S transgenic mice or PD patients has given new hopes to the possibility of creating more adequate cell models of &#945;S aggregation. Unfortunately, when it comes to cells in cultures, administration of raw brain extracts has not proven as successful as in mice and the source of choice of exogenous aggregates is still in vitro preformed &#945;S fibrils.
We have developed a method to induce the formation of intracellular &#945;S inclusions in primary neurons through the exogenous administration of native microsomes-associated &#945;S aggregates, a highly toxic &#945;S species isolated from diseased areas of transgenic mice. This fraction of &#945;S aggregates that is associated with the microsomes vesicles, is efficiently internalized and induces the formation of intracellular inclusions positive for aggregated and phosphorylated &#945;S. Compared to in vitro-preformed fibrils which are made from recombinant &#945;S, our method is faster and guarantees that the pathogenic seeding is made with authentic &#945;S aggregates extracted from diseased animal models of PD, mimicking more closely the type of inclusions obtained in vivo. As a result, availability of tissues rich in &#945;S inclusions is mandatory.
We believe that this method will provide a versatile cell-based model to study the microscopic aspects of &#945;S aggregation and the related cellular pathophysiology in vivo and will be a starting point for the creation of more accurate and sophisticated cell paradigm of PD.

The goal of this protocol is to provide a cell-based system that replicates the formation of alpha-synuclein aggregates in vivo. Intracellular alpha-synuclein inclusions are seeded in primary neurons by the internalization and propagation of exogenous administered native microsomes-associated alpha-synuclein aggregates isolated from diseased alpha-synuclein transgenic mice.

소 대형의 강력한 셀 모델로 기본 신경 하 Microsomes 관련 알파 synuclein 집계의 외 인 관리

For years, the inability of replicating formation of insoluble alpha-synuclein (&#945;S) inclusions in cell cultures has been a great limitation in the ...

신경과학

Targeting Alpha Synuclein Aggregates in Cutaneous Peripheral Nerve Fibers by Free-floating Immunofluorescence Assay

To date, for most neurodegenerative diseases only a post-mortem histopathological definitive diagnosis is available. For Parkinson&#39;s disease (PD), the diagnosis still relies only on clinical signs of motor involvement that appear later on in the disease course, when most of the dopaminergic neurons are already lost. Hence, there is a strong need for a biomarker that can identify patients at the beginning of disease or at the risk of developing it. Over the last few years, skin biopsy has proved to be an excellent research and diagnostic tool for peripheral nerve diseases such as small fiber neuropathy. Interestingly, a small fiber neuropathy and alpha synuclein (&#945;Syn) neural deposits have been shown by skin biopsy in PD patients. Indeed, skin biopsy has the great advantage of being an easily accessible, minimally invasive and painless procedure that allows the analysis of peripheral nervous tissue prone to the pathology. Moreover, the possibility of repeating the skin biopsy in the course of the follow-up of the same patient allows studying the longitudinal correlation with the disease progression. We set up a standardized reliable protocol to investigate the presence of &#945;Syn aggregates in skin nerve fibers of the PD patient. This protocol involves few short fixation steps, a cryotome sectioning and then a free-floating immunofluorescence double-staining with two specific antibodies: anti Protein Gene Product 9.5 (PGP9.5) to mark the cutaneous nerve fibers and anti 5G4 for detecting &#945;Syn aggregates. It is a versatile, sensitive and easy to perform protocol that can also be applied for targeting other proteins of interest in skin nerves. The ability to mark &#945;Syn aggregates is another step forward to the use of skin biopsy as a tool for establishing a pre-mortem histopathological diagnosis of PD.

Here, we present a protocol for a free-floating indirect immunofluorescence assay on skin biopsy sections that allows for the identification of disease specific conformation variants of alpha synuclein involved in Parkinson disease and multiple proteins of the peripheral nervous system.

자유 부동 면역 형광 분석에 의하여 절단 말초 신경 섬유에 있는 알파 Synuclein 응집체를 표적으로 하는

To date, for most neurodegenerative diseases only a post-mortem histopathological definitive diagnosis is available. For Parkinson&#39;s disease (PD), the ...

Generation of Alpha-Synuclein Preformed Fibrils from Monomers and Use In Vivo

Use of the in vivo alpha-synuclein preformed fibril (&#945;-syn PFF) model of synucleinopathy is gaining popularity among researchers aiming to model Parkinson&#39;s disease synucleinopathy and nigrostriatal degeneration. The standardization of &#945;-syn PFF generation and in vivo application is critical in order to ensure consistent, robust &#945;-syn pathology. Here, we present a detailed protocol for the generation of fibrils from monomeric &#945;-syn, post-fibrilization quality control steps, and suggested parameters for successful neurosurgical injection of &#945;-syn PFFs into rats or mice. Starting with monomeric &#945;-syn, fibrilization occurs over a 7-day incubation period while shaking at optimal buffer conditions, concentration, and temperature. Post-fibrilization quality control is assessed by the presence of pelletable fibrils via sedimentation assay, the formation of amyloid conformation in the fibrils with a thioflavin T assay, and electron microscopic visualization of the fibrils. Whereas successful validation using these assays is necessary for success, they are not sufficient to guarantee PFFs will seed &#945;-syn inclusions in neurons, as such aggregation activity of each PFF batch should be tested in cell culture or in pilot animal cohorts. Prior to use, PFFs must be sonicated under precisely standardized conditions, followed by examination using electron microscopy or dynamic light scattering to confirm fibril lengths are within optimal size range, with an average length of 50 nm. PFFs can then be added to cell culture media or used in animals. Pathology detectable by immunostaining for phosphorylated &#945;-syn (psyn; serine 129) is apparent days or weeks later in cell culture and rodent models, respectively.&#160;

The goal of this article is to outline the steps required for the generation of fibrils from monomeric alpha-synuclein, subsequent quality control, and use of the preformed fibrils in vivo.

모노 머 로부터 미리 형성 된 섬유 소의 알파-시 뉴 클레 인 생성 및 생체 내 사용

Use of the in vivo alpha-synuclein preformed fibril (&#945;-syn PFF) model of synucleinopathy is gaining popularity among researchers aiming to model ...

Studying Pre-formed Fibril Induced &#945;-Synuclein Accumulation in Primary Embryonic Mouse Midbrain Dopamine Neurons

The goal of this protocol is to establish a robust and reproducible model of &#945;-synuclein accumulation in primary dopamine neurons. Combined with immunostaining and unbiased automated image analysis, this model allows for the analysis of the effects of drugs and genetic manipulations on &#945;-synuclein aggregation in neuronal cultures. Primary midbrain cultures provide a reliable source of bona fide embryonic dopamine neurons. In this protocol, the hallmark histopathology of Parkinson&#8217;s disease, Lewy bodies (LB), is mimicked by the addition of &#945;-synuclein pre-formed fibrils (PFFs) directly to neuronal culture media. Accumulation of endogenous phosphorylated &#945;-synuclein in the soma of dopamine neurons is detected by immunostaining already at 7 days after the PFF addition. In vitro cell culture conditions are also suitable for the application and evaluation of treatments preventing &#945;-synuclein accumulation, such as small molecule drugs and neurotrophic factors, as well as lentivirus vectors for genetic manipulation (e.g., with CRISPR/Cas9). Culturing the neurons in 96 well plates increases the robustness and power of the experimental setups. At the end of the experiment, the cells are fixed with paraformaldehyde for immunocytochemistry and fluorescence microscopy imaging. Multispectral fluorescence images are obtained via automated microscopy of 96 well plates. These data are quantified (e.g., counting the number of phospho-&#945;-synuclein-containing dopamine neurons per well) with the use of free software that provides a platform for unbiased high-content phenotype analysis. PFF-induced modeling of phosphorylated &#945;-synuclein accumulation in primary dopamine neurons provides a reliable tool to study the underlying mechanisms mediating formation and elimination of &#945;-synuclein inclusions, with the opportunity for high-throughput drug screening and cellular phenotype analysis.

Here, we present a detailed protocol to study neuronal &#945;-synuclein accumulation in primary mouse dopamine neurons. Phosphorylated &#945;-synuclein aggregates in neurons are induced with pre-formed &#945;-synuclein fibrils. Automated imaging of immunofluorescently labeled cells and unbiased image analysis make this robust protocol suitable for medium-to-high throughput screening of drugs that inhibit &#945;-synuclein accumulation.

1 차 배아 마우스 중뇌 도파민 뉴런에서 사전 형성 된 피브릴 유도 α-시뉴클레인 축적 연구

The goal of this protocol is to establish a robust and reproducible model of &#945;-synuclein accumulation in primary dopamine neurons. Combined with ...

Analyzing the Parkinson's Disease Mouse Model Induced by Adeno-associated Viral Vectors Encoding Human &#945;-Synuclein

Parkinson&#39;s disease is a neurodegenerative disorder that involves the death of the dopaminergic neurons of the nigrostriatal pathway and, consequently, the progressive loss of control of voluntary movements. This neurodegenerative process is triggered by the deposition of protein aggregates in the brain, which are mainly constituted of &#945;-synuclein. Several studies have indicated that neuroinflammation is required to develop the neurodegeneration associated with Parkinson&#39;s disease. Notably, the neuroinflammatory process involves microglial activation as well as the infiltration of peripheral T cells into the substantia nigra (SN). This work analyzes a mouse model of Parkinson&#39;s disease that recapitulates microglial activation, T-cell infiltration into the SN, the neurodegeneration of nigral dopaminergic neurons, and motor impairment. This mouse model of Parkinson&#39;s disease is induced by the stereotaxic delivery of adeno-associated viral vectors encoding the human wild-type &#945;-synuclein (AAV-h&#945;Syn) into the SN. The correct delivery of viral vectors into the SN was confirmed using control vectors encoding green fluorescent protein (GFP). Afterward, how the dose of AAV-h&#945;Syn administered in the SN affected the extent of h&#945;Syn expression, the loss of nigral dopaminergic neurons, and motor impairment were evaluated. Moreover, the dynamics of h&#945;Syn expression, microglial activation, and T-cell infiltration were determined throughout the time course of disease development. Thus, this study provides critical time points that may be useful for targeting synuclein pathology and neuroinflammation in this preclinical model of Parkinson&#39;s disease.

This work analyzes the vector dose and exposure time required to induce neuroinflammation, neurodegeneration, and motor impairment in this preclinical model of Parkinson&#39;s disease. These vectors encoding the human &#945;-synuclein are delivered into the substantia nigra&#160;to recapitulate the synuclein pathology associated with Parkinson&#39;s disease.

인간 α-시누클레인을 코딩하는 아데노 관련 바이러스 벡터에 의해 유도된 파킨슨병 마우스 모델 분석

Parkinson&#39;s disease is a neurodegenerative disorder that involves the death of the dopaminergic neurons of the nigrostriatal pathway and, ...

<meta charset="utf8"></head><body>α-Synuclein 증식: 파킨슨병의 비강 내 투여

Technique for Intranasal Administration of &#945;-Synuclein Aggregates

Parkinson's disease (PD) is a neurodegenerative disorder characterized by the presence of Lewy bodies, which are aggregates of &#945;-synuclein (&#945;-Syn). Recently, the disease was proposed to develop and progress through the prion-like propagation of &#945;-Syn aggregates from the olfactory bulb (OB) or dorsal nucleus of the vagus nerve. Although the origin of &#945;-Syn aggregates in the OB remains unclear, their propagation from the olfactory mucosa has been recently suggested. We previously showed that intranasal administration of &#945;-Syn aggregates in a mouse model induced &#945;-Syn pathology in the OB of mice. In this study, we present a method of intranasal administration of &#945;-Syn aggregates that induced &#945;-Syn pathology in the OB of mice. Intranasal administration of &#945;-Syn aggregates is a very simple and straightforward method, and we believe it will be a useful tool in the research for elucidating the origin of &#945;-Syn pathology in the OB and the pathway of &#945;-Syn propagation through the olfactory system.

<meta charset="utf8"></head><body>α-Synuclein 응집체의 비강 내 투여 기법

The present protocol describes a method for intranasal administration of &#945;-synuclein aggregates. This method provides insights into &#945;-synuclein propagation from the olfactory mucosa to the olfactory bulb in Parkinson's disease.