저자는 친절에 좋아하는 원고를 교정에 대한 데이터 및 박사 B. Grötsch 제조 박사 J. 루터와 K. Ubieta 감사합니다. 이 작품은 독일 연구 협회 (BO3811 / 1-1 - 에​​미 뇌터)에 의해 지원되었다.

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E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipose+tissue:+from+lipid+storage+compartment+to+endocrine+organ.">Adipose tissue: from lipid storage compartment to endocrine organ.</a> Diabetes. 55, 1537-1545 (2006).</li></ol>

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지방 세포 인해 과도한 에너지 저장에 의한 지방 세포 증식 및 비대를 공개, 크기, 숫자 및 지역에 따라 표현형 특징을 통해 영양 (5). 지방산 조절 곤란 및 후속 대사 증후군 선도 이러한 이벤트는 또한, &quot;정상&quot;지방 확장이라 보존 대사, 증가 체지방량의 상태이다. 예를 들어, Kusminski 등. (21)는 대규모 지방 확대와 마우스는 그 지방의 확장이 필요 대사 증후군에 연결하고 지방 세포의 특성을 평가하기 위해 신중하게 판단 할 필요가되지 제안, 대사 건강을 유지 것으로 나타났다. 지방 조직 (AT)는 신체 대사 조절에 중추적 인 역할을한다. AT는 이상 지질 혈증, 동맥 경화증, 고 인슐린 혈증과 고혈당 3에 영향을 미칠 수있는 가장 큰 내분비 기관이다. 항상성 및 분자 m AT 평가를 조절 echanisms 대사 시스템 장애에 대한 이해를 허용 할 수 있습니다. 그러므로, 지방 세포 분화 조절 기전을 해명, 지방 세포의 크기와 지방 패드 질량은 비만 질환의 새로운 치료를 개발하는 데 도움이된다. 생체 내 및 시험 관내 방법에 사용하면, 지방 세포의 분화와 활성에 식품 및 유전자 발현에 미치는 영향의 역할을 결정할 수있다. 우리 프로토콜은 포도당 및 인슐린 대사 반응 22-24을 분석만큼 중요 의해 제안 지방 세포 분화, 증식 및 세포 자멸사의 밸런스를 결정하고, 상기 항상성을 결정한다. 발현 프로파일 차 지방 세포의 지방 생성, 지방 생성, 지방 분해, 지방산 흡수, 저산소증, 사멸 및 증식에 관여하는 유전자 분석 및 내장 AT는 지방 세포의 항상성과 가능한 장애에 대한 개관을 획득하기위한 높은 처리 방법이다.흥미 후보는 또한 웨스턴 블롯 또는 면역 조직 염색에 의한 단백질 수준에서 분석해야한다. 비대칭 시아닌 계 색소를 사용하여 실시간 PCR 시스템으로 최적의 결과를 얻기 위해 1 내지 10 ng의 범위의 cDNA의 농도는 50 내지 900 nm의 범위의 최적 프라이머 농도 비특이적 증폭을 최소화하기 위해 테스트되어야한다. 중요한 성분은 프라이머이다; 각 실행에 대해, 용융 곡선은 엄격 특이성을 확인하기 위해 프라이머 이량 체의 형성을 배제하도록 제어 될 필요가있다. 따라서, 대신의 cDNA의 H 2 O와 부정적인 컨트롤을 사용하는 것이 좋습니다. 또한, 상용 가능한 비대칭 시아닌 염료 (예 ROX 같이) 수동적 기준 염료를 함유하는 내부 기준 신호를 제공하도록 마스터 믹스로 제공된다. cDNA를 신호는 잘 - 투 - 잘 신호 변동을 해결하기 위해 ROX 신호를 데이터 분석 중에 정규화. 다른 점은 끈적 거리는을 설정하기 위해 고려되어야D qPCR의 시스템은 하우스 키핑 유전자의 선택입니다. 각 조건의 경우, 여러 하우스 키핑 유전자는, 사용 예를 들어, HPRT, β - 굴지, GAPDH, β-2-MG 또는 HSP90. 저산소 조건에 의해 안정화 HIF 단백질 마스터뿐만 아니라 지방 세포 생존을 결정 레귤레이터뿐만 아니라, 글루코스, 인슐린 내성 및 지질 대사 11,25,26 같은 대사 변화이다. 지방 패드에서 저산소 영역을 확인하기 위해, HIF-1α는 면역 조직 화학 염색에 의한 부분 AT에서 결정된다. HIF 단백질을 빠르게 정상 산소의 조건 하에서 5 내지 10 분 이내에 분해되기 때문에, 절차 및 조직 학적 분석을 위해 지방 패드의 단단히 고정 대기 시간을 방지하기 위해 제어되어야한다. 따라서,뿐만 아니라 HIF 염색 통해 저산소증을 보장하기 pimonidazole AT는 저산소 영역을 결정하는데 사용된다. 이미 뼈 (27)에 도시 된 바와 같이 Pimonidazole는 조직에 배포 할 수 있습니다효과적으로 더 특이 항체 (28)를 결합하여 조직 학적 섹션에서 검출 특히 저산소 세포 티올 - 함유 단백질에 결합함으로써 저산소 영역을 표시한다. 그러나, 다른 마커 및 방법은 저산소증 경로를 분석하는데 사용될 수있다. 예를 들면, 수산화 프롤린을 인식 프로 테아 HIF을 중재 폴리 - 유비퀴틴 유도 normoxia 아래 프롤린 잔기의 히드 록 실화를 유도 프 롤릴 수산화 효소 (PHD) 효소뿐만 아니라 폰 Hippel-Lindau의 (VHL) 단백질의 참여 저하는 통로 29, 30의 전체 개요를 분석 할 필요가있다. 또한, 유비쿼터스 HIFs의 검출은도 31, 32을 변경할 수있는 단백질 분해 안정성을 결정한다. 또한, TUNEL 염색에 의한 사료된다하여 증식과 세포 자멸사는 AT 조직 학적 섹션의 염색을 통해 생체 내에서 결정된다. 사료된다 및에 의해 확산의 정량화유동 세포 계측법 분석을 통해 TUNEL 또는 아 넥신 V 염색에 의해 poptosis도 33을 수행한다. 증식 물론 이러한 사료된다 양성 세포 측정에 의해 해결되지 않는 지방 세포의 세포주기의 분석과 같은 다른 기법에 의해 측정 될 수있다. FACS는 아폽토시스 세포 사멸 과정 대 괴사의 수준을 결정 넥신 V 및 TOP-PR-3 분석하여 또한 TUNEL 의한 세포 사멸 연구는 완성 될 수있다. 아폽토시스 AT 항상성에 중요한 세포 사멸의 과정을위한 기본적인 과정이다. 사실, 지방 세포의 세포 사멸의 조절 곤란 비만에 기여하는 과정에서 이전에 연루 및 34 지방 이상증되었습니다. 또한, 2011 년, Keuper 등의 알. 지방 세포의 세포 사멸에 지방 조직의 염증을 연결. 그들은 식세포 차례로 식세포를 유치 전구 지방 세포와 지방 세포에서 세포 사멸을 유도하는 것으로 나타났다. 대 식세포의 모집은 염증, 어느 제어 방식을 가속포도당과 인슐린 내성 35 대사 증후군에 ibutes. 그러나, 지방 세포 사멸이 제대로 공부 현상에 의한 지방 세포의 세포 사멸 체중 감소로 이어질 수 있다는 가설에도 불구하고, 아직도있다. 본 프로토콜은 생체 내에서 증식, 세포 사멸 및 저산소증으로 다른 현상을 연구하기 위해 면역 조직 화학적 방법을 사용합니다. 따라서, 조직은 중요한 단계 4 % 포름 알데히드로 고정 하였다. 확장 된 조직 정착 시간은 상기 항체에 대한 비 액세스 될 에피토프, 변화하도록 이끈다. 반대로, 짧은 정착 시간은 시약 에피토프의 감도를 증가시킨다. 고정의 권장 최적의 시간은 24 시간입니다. 또한, 상기 부분의 두께는 그 에피토프에 결합하는 항체에 영향을 미친다; 최적의 두께는 μm의 2 내지 5이다. 5 μm의보다 두꺼운 부분은 증가 된 결합 부위에 거짓 긍정적 인 결과를 줄 것이다. 대조적으로, s의ections보다 얇은 2 μm의 적은 결합 부위를 포함하고 긍정적 인 부분은 잘 정의되지 않습니다. 또한, 중요한 요소는 에피토프에 결합하는 특정의 품질에 영향을주는 항체 자체, 배양 시간, 농도, 심지어 온도이다. 따라서, 항체 농도와 배양 시간을 확인하는 각 조건에 대한 필요가있다. 연구를 완료하려면, 우리는 다른 치료, 자극 또는 공동 문화에 의해 확장 될 수있는 시험 관내 지방 세포 분화 프로토콜을 제공합니다. 시험 관내 지방 세포 배양에 사용함으로써, 지방 세포 분화 및 기능에 결함을 판별 가능하다. 모든 기본 세포와 같이 ADSCs 및 지방 세포의 건강 행동과 외관이 매우 중요하다, 신뢰할 수있는 결과를 얻을 수있다. 입도, 세포질 vacuolations 및 / 또는 박리 차의 부적절한 매체, 미생물 오염이나 노화를 나타내는 악화의 징후이다세포. 다른 프로토콜 (36)에 의해 기술 된 바와 같이, 골수로부터 단리 된 중간 엽 줄기 세포를 사용하는 것도 가능하다 반면,이 프로토콜은 지방 패드 조직으로부터 격리 된 지방 세포를 사용한다. 최근이 지방 세포 분화의 초기 단계에서 발생하는 추가 차별 문제를 반영 할 수있는 기질 전구 세포를 포함, 이것은 현재의 프로토콜에서 누락 될 수 있습니다. 또한 ADSCs 빠르게 (일주일 이내에 10 배 이상) 확장 될 수 있으며, 일부 유로 후의 장기 배양 ADSCs은 여전히 중간 엽 37,38 능성을 유지한다. ADSCs을 사용하는 다른 이점은 ADSCs 간단하고 최소 침습 방법으로 지방 흡입에 의해 환자로부터 채취 할 수 있기 때문에 용이 한 인간으로 전환 할 수 있다는 것이다. AT는 내분비 방식으로 여러 다른 장기에 영향을 미친다 같이, 프로토콜 adipokines로 확장되어야한다. 이러한 렙틴, 아디포넥틴, 종양 괴사 인자 α (TNF)를 같은 Adipokines,지방 세포에 의해 분비 된 인슐린 저항성 ND는 지방 대사, 에너지 항상성 및 인슐린 감수성 (39)를 제어함으로써 대사성 질환에 영향을 미치는 것으로 알려져있다. 따라서, 혈청 및 지방 세포의 secretome 분석이 수행되어야한다. 이러한 IL-6와 같은 AT 장애, adipokines 및 염증성 사이토 카인의 경우에, 예컨대 췌장, 간, 근육 기능 4로 장기의 조절 이상을 초래할 수있다. 전신 장기 부전을 배제하기 위하여, 동물 모델 또는 세포 배양 물은 자극 포도당 흡수를 그들의 응답을 테스트 할 수있다. 여기에서 우리는 AT 및 생체 내에서 지방 세포의 기본 상태를 분석하기위한 프로토콜을 제공하고 체외에서 지방 세포의 항상성 및 기능의 분자 메커니즘을 공개.

세계 보건기구 (WHO)에서 2014 보고서에 따르면 세계 성인 인구의 39 %가 과체중이며, 13 %가 비만 한 것이다. 가까운 미래에, 사람들이 과체중 노인 인구의 상당 부분을 포함 할 것이다. 비만과 노화의 중요한 특징은 이환율과 사망률이 관련 지방의 조절 곤란하다. Adipokines는 지방 조직 (AT)에 의해 분비되는 단백질, 비만 등 대사 증후군을 유발하고 당뇨병 (3)를 입력 할 수 있습니다. 대사 질환은 대부분 확장 4 AT의 결과 지방 세포의 지질 방울에 과도한 에너지 저장에 의해 발생합니다. 따라서,를 제어 할 기회를 찾기 위해 AT 원인과 확장의 분자 메커니즘을 결정 관심사이다. 위에 영양 두 가지 이벤트에 의해 조절된다 AT 확대로 이어진다 과도한 에너지 저장 지방 세포의 지질 소적으로, 공정또한 지방 세포 증식 5로 알려진 (지방 세포 크기 증가), 증가 된 지방 조직은 비대로 이어지는. 지방 조직은 지방 세포로 다 능성 중간 엽 줄기 세포 (MSC)의 분화 과정이다. 첫째, 중간 엽 줄기 세포는 확약 단계에서 전구 지방 세포로 발전. 둘째, 전구 지방 세포는 또한 성숙한 지방 세포 (6)의 기능적 특징을 취득 구별. 여러 전사 인자는 징크 핑거 단백질 423 (Zfp423) 초기 B 세포 인자 1 (Ebf1) 등의 지방 전구 세포 검지 마스터 레귤레이터로 확인되었다. Zfp423 초기 노력을 유도하는 반면, Ebf1은 지방 세포의 전구 세포 (6)의 생성이 필요합니다. 말단 분화 단단히 페 록시 좀 증식 제 - 활성화 수용체 γ (PPARγ)의 필수 전사 인자 칠해진다 전사 캐스케이드에 의해 제어된다. 또한 키 전사 요소 (C CCAAT / 증강 인자 결합 단백질이다/ EBP) 가족 (즉, C / EBPα, C / EBPβ 및 C / EBPδ), 크 룹펠 같은 요인 (KLFs), 캠프 응답 요소 바인딩 단백질 (CREB) 및 초기 성장 응답 20 (Krox20) 6. 최근에는 활성제 단백질 1 (AP-1) 패밀리는 지방 세포 분화 과정에 관여 8,9 것이 밝혀졌다. 는 AP-1 패밀리는에 Fos 이세 및 / 또는 활성화하는 전사 인자 (ATF) 부재로 이루어진 이량 체 단백질 복합체에 의해 형성된다. FOS 관련 항원 1 및 2 (FRA-1 및 프라-2) 지방 세포의 분화를 조절할 수있다. 훌라-1 훌라-2 제어 지방 세포 회전율 9 반면, / EBPα 8 C를 억제함으로써 지방 세포 분화를 저해. 훌라-2는 이에뿐만 아니라 지방 세포 분화시 PPARγ2 식을 억압하여 지방 세포의 수를 감소뿐만 아니라, 저산소증 유도 인자 (HIFs) 식의 직접적인 억제를 통해 지방 세포의 세포 사멸을 감소시킨다. HIF 제품군은 HETE입니다HIF-1α, HIF-2α와 HIF-1β로 구성 rodimeric 전사 인자 복합체. 이종는 산소에 민감한 HIF-α 단백질 (HIF-1α 또는 HIF-2α)와 산소를 구분하지 HIF-1β 서브 유닛 (10)으로 구성되어 있습니다. normoxia 동안, HIF-α 단백질은 폴리 ubiquitinylated하고 마지막으로 프로 테아 좀 (11)에 의해 분해된다. 확장시 AT에서 발생하는 저산소 조건에서 HIF-α 단백질은 더 이상 수산화 없습니다. 그들은 따라서 구조적으로 표현 HIF-1β와 안정 및 양식 이합체된다. HIF 응답 소자를 제어하는 유전자의 전사 활성은 혈관 형성, 대사 및 염증 (12)의 조절에 관여한다. 실제로, HIF-1α는 글루코스 내성을 유도하는 에너지 비용 및 지질의 사용 억제 주변뿐만 아니라, 렙틴에 의해 레벨과 HFD 유도 간 지방증 (13)을 증가시킴으로써 부전 AT 촉진한다. 또한, HIF-1α는 adipocy을 조절테 세포 사멸의 생체 내 및 생체 외 9인치 본 프로토콜은 성인 쥐의 지방 세포 항상성의 분자 특성을 해명하는 상태에서 공부에 대한 방법을 설명합니다. 그것은 세포 사멸, 증식 및 생체 내 및 생체 외 지방 세포의 분화가 저산소증에 의해 조절 될 수있는 방법을 보여줍니다. 이를 위해, 우리는 Fabp4-CreERT 마우스 (9)와 훌라-2 floxed 대립 유전자를 운반하는 쥐를 교차에 의해 생성 된 훌라-2의 지방 세포 특정 삭제와 마우스를 사용합니다. Fabp4-Cre 호텔 ERT 마우스를 사용하여 결실은 지방 세포 타목시펜 주입 (14)에 의한 비와 유도된다. 성인 모델의 경우 타목시펜의 내부 복강 주사 6 주 세의 나이에 시작하는 연속 5 일 동안 수행된다. 분석이 완료되기 전에 따라서, 마우스 6 주 동안 정상식이 또는 고지방식이 요법을 실시한다. 본 연구에 사용 된 마우스는 남성 같은 에스트로겐과 같은 여성 호르몬을 피하기 위해 C57BL6 배경 근거한신체 지방 분포 (15)를 규제하는 도시. 다른 유전 적 배경을 사용하여 인해 지질 관리 (16)의 변형과 관련된 차이로 대사 표현형을 변경할 수 있습니다. 이 프로토콜은 조직학을 사용하여 저산소증에서 AT를 분석하는 방법과 면역 조직 화학 및 프로파일 링 분석 유전자를 사용하여 생체 내에서 지방 세포의 세포 사멸, 증식 및 분화를 정량화하는 방법을 보여줍니다. 이 연구는 저산소증에 노출에 의해 변경 주 지방 세포 분화 및 세포 사멸을 분석하는 방법을 보여주는 시험 관내 실험에 의해 완성된다.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>RNAlater solution</td>
			<td>Ambion</td>
			<td>AM7021</td>
			<td>RNA stabilization solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-Capacity cDNA Reverse Transcription Kit</td>
			<td rowspan="2">Applied Biosystems</td>
			<td>4368813</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SYBR Select Master Mix</td>
			<td>4472908</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Purified Mouse Anti-Human Ki-67&#160;&#160;</td>
			<td rowspan="2">BD Biosciences</td>
			<td>550609</td>
			<td>Clone &#160;B56&#160;(RUO)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Purified Mouse Anti-Human Ki-67&#160; Clone &#160;B56&#160;(RUO)</td>
			<td>550609</td>
			<td>Proliferation marker</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FITC Annexin V</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>640906</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cleaved Caspase-3 Rabbit mAb</td>
			<td rowspan="2">Cell signalling</td>
			<td>9664S</td>
			<td>&#160;Clone 5A1E</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cleaved Caspase-3 (Asp175) (5A1E) Rabbit mAb</td>
			<td>9664</td>
			<td>Apoptosis marker</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hypoxyprobe-1 Plus Kit</td>
			<td>Hypoxyprobe</td>
			<td>HP2-200Kit</td>
			<td>Hypoxia marker, Solid pimonidazole HCl (Hypoxyprobe-1), FITC conjugated to mouse IgG&#8321; monoclonal antibody (FITC-MAb1), Rabbit anti-FITC conjugated with horseradish peroxidase</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lipofectamine2000 Reagent&#160;</td>
			<td rowspan="2">Invitrogen</td>
			<td>11668-027</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TO-PRO-3 Iodide</td>
			<td>T3605</td>
			<td>Nuclear counterstain, Monomeric cyanine nucleic acid stain, Excitation&#8260;Emission: 642&#8260;661 nm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mayer&#8217;s hemalum</td>
			<td>Merck</td>
			<td>109249</td>
			<td>hematoxylin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pegGOLD TriFast</td>
			<td rowspan="3">Peqlab</td>
			<td>30-2030</td>
			<td>TRIzol, single-phase solution of guanidinisothiocyanat and phenol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Percellys Ceramic Kit 1.4 mm</td>
			<td>91-PCS-CK14</td>
			<td>tubes containing ceramic beads (1.4 mm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Precellys 24</td>
			<td>91-PCS24</td>
			<td>homogenizer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HIF-1 alpha Antibody</td>
			<td rowspan="2">Pierce</td>
			<td>PA1-16601</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HIF-1 alpha Antibody, 16H4L13</td>
			<td>700505</td>
			<td>Hypoxia marker</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>In Situ Cell Death Detection Kit, Fluorescein</td>
			<td>Roche</td>
			<td>11 684 795 001</td>
			<td>TdT-mediated dUTP-biotin nick end labeling (TUNEL)&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eosin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>318906</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNase I Solution (1 unit/&#181;L)</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>EN0525</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>biotinylated anti mouse IgG (H+L)</td>
			<td rowspan="4">Vector Laboratories</td>
			<td>BA-9200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>biotinylated anti mouse IgG (H+L)</td>
			<td>BA-1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vectastain ABC Kit</td>
			<td>PK-4000&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VECTASHIELD Mounting Medium with DAPI</td>
			<td>H-1200</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

mechanism of regulation of adipocyte numbers in adult organisms through differentiation and apoptosis homeostasis

Considering that adipose tissue (AT) is an endocrine organ, it can influence whole body metabolism. Excessive energy storage leads to the dysregulation of adipocytes, which in turn induces abnormal secretion of adipokines, triggering metabolic syndromes such as obesity, dyslipidemia, hyperglycemia, hyperinsulinemia, insulin resistance and type 2 diabetes. Therefore, investigating the molecular mechanisms behind adipocyte dysregulation could help to develop novel therapeutic strategies. Our protocol describes methods for evaluating the molecular mechanism affected by hypoxic conditions of the AT, which correlates with adipocyte apoptosis in adult mice. This protocol describes how to analyze AT in vivo through gene expression profiling as well as histological analysis of adipocyte differentiation, proliferation and apoptosis during hypoxia exposure, ascertained through staining of hypoxic cells or HIF-1&#945; protein. Furthermore, in vitro analysis of adipocyte differentiation and its responses to various stimuli completes the characterization of the molecular pathways behind possible adipocyte dysfunction leading to metabolic syndromes.

우리의 예를 사용하여 생체 내 및 생체 외 지방 세포의 항상성을 결정하는 방법을 보여 훌라을-2 FL / FL 야생형 한배 새끼에 비해 Fabp4-CreERT 마우스. 우리의 프로토콜은 증가 된 지방 세포의 세포 사멸에 의해 지시 된 바와 같이 저산소증에 의해 증가 HIF의 발현이 지방 세포의 기능 장애와 관련되는 방법을 정의합니다. 고지방 다이어트에 증가 된 지방 세포의 크기와 영역 (HFD) 처리 된 마우스 과잉 영양, 다른 요인들, 지질 방울에 과도한 에너지 저장에 의한 지방 세포의 비대, 발생합니다. 지방 세포의 크기와 영역은 비대의 지표이다. 정상에서 지방 패드의 섹션 (ND;도 6a)와 높은 지방 다이어트 (HFD도 6B) 육주 후 지방 세포의 크기와 지역의 마우스뿐만 아니라 정량화 명확하게 표시 지방 세포의 비대HFD 처리 된 마우스 (도 6c 및 d) 증가 지방 세포의 크기에 의해 표시된다 HFD의 S. 성인의 지방 조직 (AT)에서 증가 저산소증 프라 -2- FL / FL-Fabp4 CreERT 마우스 증가 HIF-1α의 레벨 및 지방 세포 자멸사에 이르게 AT에서 저산소증의 생체 상태를 확인하려면 훌라-2 FL / FL Fabp4-CreERT 마우스 12 주 세의 나이에 훌라-2 삭제 후 육주 분석 야생형 한배 새끼와 비교된다. Pimonidazole 복강 효과적인 저산소증 마커와 마우스에 투여; 그 독성 및 AT에 분배 할 수있다. 생체 내에서 AT에서 저산소 지방 세포는 면역 항체 염색 (도 7a)에 의해 정의된다. 또한, 쥐에서의 증가 된 AT 저산소 상태가 증가 HIF-1α 긍정적 ADIP 수반HIF-1α 발현 및 대상 유전자 (9)의 정량화에 의해 확인 된 면역 염색도 7b)로 나타낸 바와 같이 ocytes. 또한, 훌라-2에서 AT 섹션의 TUNEL 염색 FL / FL Fabp4-CreERT 마우스 및 제어 한배 새끼 (그림 7C) 지방 세포의 세포 사멸이 저산소증과 HIF-1α 식의 존재와 상관 관계가 증가 보여줍니다. 저산소증에 의한 지방 세포의 세포 사멸을 통해 차 지방 세포에서 HIF-1α 발현을 증가 다른 20 바와 같이 시험 관내 지방 세포 사멸을 분석하기 위해 피하 지방 패드에서 생성 된 지방 세포를 사용한다. 예상대로, 지방 세포에서 HIF-1α 발현은 저산소증 (그림 8a)의 24 시간 후에 증가한다. 상기 HIF-1α 활동 HIF 표적 RNA의 수준을 분석이러한 iNOS의 (유도 성 산화 질소 합성 효소)와 같은 유전자 qPCR에 의해 정량화된다.도 8b는 저산소 상태에서 HIF-1α의 발현 증가는 iNOS의 mRNA 발현 증가에 이르게 것을 보여줍니다. 우리가 이미 지방 세포에서 HIF-1α 발현을 증가 지방 세포의 세포 사멸과 관련이 증가 생체 내 (그림 8)에 도시 한 이후, 세포 사멸은 저산소 조건에서 넥신 V 염색으로 체외 문화에서 계량입니다. 생체 데이터 (도 7)과 일치하는, 증가 된 HIF-1α의 레벨은 저산소 조건에 의해 유도되는 증가 된 지방 세포가 아폽토시스 (도 8b)를 수반한다. 또한, 그 저산소에 의한 세포 사멸을 증명하는 HIF-의존; HIF-1α 또는 HIF-2α는 야생형 또는 훌라-2 결핍 생쥐에서 파생 된 지방 세포에 RNA 간섭에 의해 침묵된다. 넥신 같이 증가 된 지방 세포 사멸은 HIF-1α 또는 HIF-2α 입을 의해 복원<html> 저산소증 센서 HIF-α는 지방 세포 사멸을 조절하는 것을 증명도 8b에 V 염색. <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/53822/53822fig6.jpg" /> 그림 6 : 높은 지방 다이어트 (HFD) 쥐의 지방 세포의 크기와 면적 증가 정상적인 다이어트 (ND)가 공급 남성 야생형 마우스의 perigonadal 지방 패드에서 섹션 (A, B) H &amp; E 염색 (a) 또는 높은. 지방질 다이어트 (HFD) (b)에 육주합니다. 바는 500 μm의를 나타냅니다. (c, d) (b) 6- 주 ND (a) 또는 HFD가 공급 야생형 마우스의 perigonadal 지방 패드에서 지방 세포의 크기 (C) 및 영역 (D)의 정량화. N = 10 데이터는 SEM ±로 평균 값을 나타낸다. 통계 분석은 Student&#39;s의 t -test를 사용하여 수행 하였다. *** p &lt;0.0001.: //www.jove.com/files/ftp_upload/53822/53822fig6large.jpg &quot;대상 =&quot;_ 빈 &quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="그림 7" src="/files/ftp_upload/53822/53822fig7.jpg" /> 훌라-2 FL / FL Fabp4-CreERT 마우스 성인의 지방 세포에서 증가 HIF-1α 수준 및 세포 사멸 그림 7. 저산소증 (a)와 HIF-1α 남성 훌라-2 FL / FL Fabp4-creERT 마우스 남성 제어 한배 새끼 육주 후 타목시펜 주입의 AT (b)에서 염색. 배율 20 배는 40X를 삽입합니다. 검은 색 화살표는 저산소 영역과 HIF-1α 양성 세포를 나타냅니다. (c)에서 TUNEL 염색 훌라-2 FL / FL 타목시펜 주입 후 6 주에 Fabp4-CreERT 마우스 및 제어 한배 새끼. 배율 20 배는 40X를 삽입합니다. 검은 색 화살표는 TUNEL 양성 세포를 나타냅니다. 이 수치는 루터 등에서 수정되었습니다알. 9. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53822/53822fig7large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 8" src="/files/ftp_upload/53822/53822fig8.jpg" /> 도 8. 저산소증에 의한 차 지방 세포에서 증가 HIF-1α 발현 및 지방 세포 자멸사 저산소 챔버에 넣고 차 지방 세포에서 HIF-1α와 HIFs 대상 iNOS의 mRNA 수준의 (a) 실시간 PCR 분석은 지정된 시점에서 분석 하였다. 분리 주 지방 세포에서 넥신 V FACS 염색에 의한 세포 사멸의 (b)에 정량 훌라-2 FL / 플라이 쉬 제어 또는 HIF-1α 또는 HIF-2α에 대한 쉬 플라스미드로 형질과 저산소증 아래에 배치 Fabp4-CreERT 마우스 또는 야생 형 제어 24 시간 동안 (1 % O 2). 이 수치는 루터 등의 알에서 수정되었습니다. <sup&gt; 9. 데이터는 SD 통계 분석은 학생의 T- 테스트를 사용하여 수행 하였다 ±로 평균 값을 나타낸다. * P &lt;0.05 ** P &lt;0.01 상당한으로 인정 하였다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53822/53822fig8large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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Mechanism of Regulation of Adipocyte Numbers in Adult Organisms Through Differentiation and Apoptosis Homeostasis

Adipose tissue (AT) can influence whole body homeostasis, therefore understanding the molecular mechanisms of adipocyte differentiation and function is of importance. We provide a protocol for gaining new insights into these processes by analyzing adipocyte homeostasis, differentiation and hypoxia exposure as a model for induced adipocyte apoptosis.

분화 및 세포 사멸 항상성을 통해 성인 유기체에있는 지방 세포의 숫자의 규제의 메커니즘

Considering that adipose tissue (AT) is an endocrine organ, it can influence whole body metabolism. Excessive energy storage leads to the dysregulation of ...

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

14.9K 조회수.  Universitätsklinikum Erlangen. Adipose tissue (AT) can influence whole body homeostasis, therefore understanding the molecular mechanisms of adipocyte differentiation and function is of importance. We provide a protocol for gaining new insights into these processes by analyzing adipocyte homeostasis, differentiation and hypoxia exposure as a model for induced adipocyte apoptosis.

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Analysis of Zebrafish Larvae Skeletal Muscle Integrity with Evans Blue Dye

The zebrafish model is an emerging system for the study of neuromuscular disorders. In the study of neuromuscular diseases, the integrity of the muscle membrane is a critical disease determinant. To date, numerous neuromuscular conditions display degenerating muscle fibers with abnormal membrane integrity; this is most commonly observed in muscular dystrophies. Evans Blue Dye (EBD) is a vital, cell permeable dye that is rapidly taken into degenerating, damaged, or apoptotic cells; in contrast, it is not taken up by cells with an intact membrane. EBD injection is commonly employed to ascertain muscle integrity in mouse models of neuromuscular diseases. However, such EBD experiments require muscle dissection and/or sectioning prior to analysis. In contrast, EBD uptake in zebrafish is visualized in live, intact preparations. Here, we demonstrate a simple and straightforward methodology for performing EBD injections and analysis in live zebrafish. In addition, we demonstrate a co-injection strategy to increase efficacy of EBD analysis. Overall, this video article provides an outline to perform EBD injection and characterization in zebrafish models of neuromuscular disease.

In this study, we describe a straightforward method to perform Evans Blue Dye (EBD) analysis on zebrafish larvae. This technique is a powerful tool for the characterization of skeletal muscle integrity and delineation of zebrafish models of muscular dystrophy, and is a valuable method for the development of novel therapeutics.

에반스 블루 염료와 Zebrafish의 애벌레 골격 근육 무결성 분석

The zebrafish model is an emerging system for the study of neuromuscular disorders.  In the study of neuromuscular diseases, the integrity of the muscle ...

연구

발생학

Epigenetic Regulation of Cardiac Differentiation of Embryonic Stem Cells and Tissues

Specific gene transcription is a key biological process that underlies cell fate decision during embryonic development. The biological process is mediated by transcription factors which bind genomic regulatory regions including enhancers and promoters of cardiac constitutive genes. DNA is wrapped around histones that are subjected to chemical modifications. Modifications of histones further lead to repressed, activated or poised gene transcription, thus bringing another level of fine tuning regulation of gene transcription. Embryonic Stem cells (ES cells) recapitulate within embryoid bodies (i.e., cell aggregates) or in 2D culture the early steps of cardiac development. They provide in principle enough material for chromatin immunoprecipitation (ChIP), a technology broadly used to identify gene regulatory regions. Furthermore, human ES cells represent a human cell model of cardiogenesis. At later stages of development, mouse embryonic tissues allow for investigating specific epigenetic landscapes required for determination of cell identity. Herein, we describe protocols of ChIP, sequential ChIP followed by PCR or ChIP-sequencing using ES cells, embryoid bodies and cardiac specific embryonic regions. These protocols allow to investigating the epigenetic regulation of cardiac gene transcription.

A fine tuning regulation of gene transcription underlies embryonic cell fate decision. Herein, we describe chromatin immunoprecipitation assays used to investigate epigenetic regulation of both cardiac differentiation of stem cells and cardiac development of mouse embryos.

배아 줄기 세포와 조직의 심장 차별화의 성적인 규정

Specific gene transcription is a key biological process that underlies cell fate decision during embryonic development. The biological process is mediated ...

Isolating Hair Follicle Stem Cells and Epidermal Keratinocytes from Dorsal Mouse Skin

The hair follicle (HF) is an ideal system for studying the biology and regulation of adult stem cells (SCs). This dynamic mini organ is replenished by distinct pools of SCs, which are located in the permanent portion of the HF, a region known as the bulge. These multipotent bulge SCs were initially identified as slow cycling label retaining cells; however, their isolation has been made feasible after identification of specific cell markers, such as CD34 and keratin 15 (K15). Here, we describe a robust method for isolating bulge SCs and epidermal keratinocytes from mouse HFs utilizing fluorescence activated cell-sorting (FACS) technology. Isolated hair follicle SCs (HFSCs) can be utilized in various in vivo grafting models and are a valuable in vitro model for studying the mechanisms that govern multipotency, quiescence and activation.

An ideal model for studying adult stem cell biology is the mouse hair follicle. Here we present a protocol for isolating different populations of hair follicles stem cells and epidermal keratinocytes, employing enzymatic digestion of mouse dorsal skin followed by FACS analysis.

등쪽 마우스 피부에서 헤어 난포 줄기 세포와 표피 각질 형성 세포를 분리

The hair follicle (HF) is an ideal system for studying the biology and regulation of adult stem cells (SCs). This dynamic mini organ is replenished by ...

Directed Differentiation of Primitive and Definitive Hematopoietic Progenitors from Human Pluripotent Stem Cells

One of the major goals for regenerative medicine is the generation and maintenance of hematopoietic stem cells (HSCs) derived from human pluripotent stem cells (hPSCs). Until recently, efforts to differentiate hPSCs into HSCs have predominantly generated hematopoietic progenitors that lack HSC potential, and instead resemble yolk sac hematopoiesis.&#160;These resulting hematopoietic progenitors may have limited utility for in vitro disease modeling of various adult hematopoietic disorders, particularly those of the lymphoid lineages. However, we have recently described methods to generate erythro-myelo-lymphoid multilineage definitive hematopoietic progenitors from hPSCs using a stage-specific directed differentiation protocol, which we outline here. Through enzymatic dissociation of hPSCs on basement membrane matrix-coated plasticware, embryoid bodies (EBs) are formed. EBs are differentiated to mesoderm by recombinant BMP4, which is subsequently specified to the definitive hematopoietic program by the GSK3&#946; inhibitor, CHIR99021. Alternatively, primitive hematopoiesis is specified by the PORCN inhibitor, IWP2. Hematopoiesis is further driven through the addition of recombinant VEGF and supportive hematopoietic cytokines. The resulting hematopoietic progenitors generated using this method have the potential to be used for disease and developmental modeling, in vitro.

Here, we present human pluripotent stem cell (hPSC) culture protocols, used to differentiate hPSCs into CD34+ hematopoietic progenitors. This method uses stage-specific manipulation of canonical WNT signaling to specify cells exclusively to either the definitive or primitive hematopoietic program.

기본 및 확실 한 조 혈 창시자 인간 만능 줄기 세포에서의 감독

One of the major goals for regenerative medicine is the generation and maintenance of hematopoietic stem cells (HSCs) derived from human pluripotent stem ...

Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains

Nervous system development involves a sequential series of events that are coordinated by several signaling pathways and regulatory networks. Many of the proteins involved in these pathways are evolutionarily conserved between mammals and other eukaryotes, such as the fruit fly Drosophila melanogaster, suggesting that similar organizing principles exist during the development of these organisms. Importantly, Drosophila has been used extensively to identify cellular and molecular mechanisms regulating processes that are required in mammals including neurogenesis, differentiation, axonal guidance, and synaptogenesis. Flies have also been used successfully to model a variety of human neurodevelopmental diseases. Here we describe a protocol for the step-by-step microdissection, fixation, and immunofluorescent localization of proteins within the adult Drosophila brain. This protocol focuses on two example neuronal populations, mushroom body neurons and retinal photoreceptors, and includes optional steps to trace individual mushroom body neurons using Mosaic Analysis with a Repressible Cell Marker (MARCM) technique. Example data from both wild-type and mutant brains are shown along with a brief description of a scoring criteria for axonal guidance defects. While this protocol highlights two well-established antibodies for investigating the morphology of mushroom body and photoreceptor neurons, other Drosophila brain regions and the localization of proteins within other brain regions can also be investigated using this protocol.

Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains

This protocol describes the dissection and immunostaining of adult Drosophila melanogaster brain tissues. Specifically, this protocol highlights the use of Drosophila mushroom body and photoreceptor neurons as example neuronal subsets that can be accurately used to uncover general principles underlying many aspects of neuronal development.

해 부 및 Immunofluorescent 얼룩의 버섯 몸과 성인 초파리 melanogaster 두뇌 신경 세포 포토 리셉터

Nervous system development involves a sequential series of events that are coordinated by several signaling pathways and regulatory networks. Many of the ...

Identification of Skeletal Muscle Satellite Cells by Immunofluorescence with Pax7 and Laminin Antibodies

Immunofluorescence is an effective method that helps to identify different cell types on tissue sections. In order to study the desired cell population, antibodies for specific cell markers are applied on tissue sections. In adult skeletal muscle, satellite cells (SCs) are stem cells that contribute to muscle repair and regeneration. Therefore, it is important to visualize and trace the satellite cell population under different physiological conditions. In resting skeletal muscle, SCs reside between the basal lamina and myofiber plasma membrane. A commonly used marker for identifying SCs on the myofibers or in cell culture is the paired box protein Pax7. In this article, an optimized Pax7 immunofluorescence protocol on skeletal muscle sections is presented that minimizes non-specific staining and background. Another antibody that recognizes a protein (laminin) of the basal lamina was also added to help identify SCs. Similar protocols can also be used to perform double or triple labeling with Pax7 and antibodies for additional proteins of interest.

The precise identification of satellite cells is essential for studying their functions under various physiological and pathological conditions. This article presents a protocol to identify satellite cells on adult skeletal muscle sections by immunofluorescence-based staining.

Pax7 Laminin 항 체와 면역 형광에 의해 골격 근육 인공위성 세포의 식별

Immunofluorescence is an effective method that helps to identify different cell types on tissue sections. In order to study the desired cell population, ...

Derivation and Differentiation of Canine Ovarian Mesenchymal Stem Cells

Interest in mesenchymal stem cells (MSCs) has increased over the past decade due to their ease of isolation, expansion, and culture. Recently, studies have demonstrated the wide differentiation capacity that these cells possess. The ovary represents a promising candidate for cell-based therapies due to the fact that it is rich in MSCs and that it is frequently discarded after ovariectomy surgeries as biological waste. This article describes procedures for the isolation, expansion, and differentiation of MSCs derived from the canine ovary, without the necessity of cell-sorting techniques. This protocol represents an important tool for regenerative medicine because of the broad applicability of these highly differentiable cells in clinical trials and therapeutic uses.

Herein, we describe a method for the isolation, expansion, and differentiation of mesenchymal stem cells from canine ovarian tissue.

파생 및 개 난소 중간 엽 줄기 세포의 분화

Interest in mesenchymal stem cells (MSCs) has increased over the past decade due to their ease of isolation, expansion, and culture. Recently, studies ...

Visualize Drosophila Leg Motor Neuron Axons Through the Adult Cuticle

The majority of work on the neuronal specification has been carried out in genetically and physiologically tractable models such as C. elegans, Drosophila larvae, and fish, which all engage in undulatory movements (like crawling or swimming) as their primary mode of locomotion. However, a more sophisticated understanding of the individual motor neuron (MN) specification&#8212;at least in terms of informing disease therapies&#8212;demands an equally tractable system that better models the complex appendage-based locomotion schemes of vertebrates. The adult Drosophila locomotor system in charge of walking meets all of these criteria with ease, since in this model it is possible to study the specification of a small number of easily distinguished leg MNs (approximately 50 MNs per leg) both using a vast array of powerful genetic tools, and in the physiological context of an appendage-based locomotion scheme. Here we describe a protocol to visualize the leg muscle innervation in an adult fly.

Visualize Drosophila Leg Motor Neuron Axons Through the Adult Cuticle

Here we describe a protocol to visualize the axonal targeting with a florescent protein in adult legs of Drosophila by fixation, mounting, imaging, and post-imaging steps.

성인 표 피를 통해 초파리 다리 모터 신경 축 삭을 시각화

The majority of work on the neuronal specification has been carried out in genetically and physiologically tractable models such as C. elegans, Drosophila ...

Induction of Endothelial Differentiation in Cardiac Progenitor Cells Under Low Serum Conditions

Cardiac progenitor cells (CPCs) may have therapeutic potential for cardiac regeneration after injury. In the adult mammalian heart, intrinsic CPCs are extremely scarce, but expanded CPCs could be useful for cell therapy. A prerequisite for their use is their ability to differentiate in a controlled manner into the various cardiac lineages using defined and efficient protocols. In addition, upon in vitro expansion, CPCs isolated from patients or preclinical disease models may offer fruitful research tools for the investigation of disease mechanisms.
Current studies use different markers to identify CPCs. However, not all of them are expressed in humans, which limits the translational impact of some preclinical studies. Differentiation protocols that are applicable irrespective of the isolation technique and marker expression will allow for the standardized expansion and priming of CPCs for cell therapy purpose. Here we describe that the priming of CPCs under a low fetal bovine serum (FBS) concentration and low cell density conditions facilitates the endothelial differentiation of CPCs. Using two different subpopulations of mouse and rat CPCs, we show that laminin is a more suitable substrate than fibronectin for this purpose under the following protocol: after culturing for 2 - 3 days in medium including supplements that maintain multipotency and with 3.5% FBS, CPCs are seeded on laminin at &#60;60% confluence and cultured in supplement-free medium with low concentrations of FBS (0.1%) for 20 - 24 hours before differentiation in endothelial differentiation medium. Because CPCs are a heterogeneous population, serum concentrations and incubation times may need to be adjusted depending on the properties of the respective CPC subpopulation. Considering this, the technique can be applied to other types of CPCs as well and provides a useful method to investigate the potential and mechanisms of differentiation and how they are affected by disease when using CPCs isolated from respective disease models.

This protocol describes an endothelial differentiation technique for cardiac progenitor cells. It particularly focuses on how serum concentration and cell-seeding density affect the endothelial differentiation potential.

낮은 혈 청 조건 하에서 심장 조상 세포에서 내 피 분화의 유도

Cardiac progenitor cells (CPCs) may have therapeutic potential for cardiac regeneration after injury. In the adult mammalian heart, intrinsic CPCs are ...

Accurate Follicle Enumeration in Adult Mouse Ovaries

Sexually reproducing female mammals are born with their entire lifetime supply of oocytes. Immature, quiescent oocytes are found within primordial follicles, the storage unit of the female germline. They are non-renewable, thus their number at birth and subsequent rate of loss largely dictates the female fertile lifespan. Accurate quantification of primordial follicle numbers in women and animals is essential for determining the impact of medicines and toxicants on the ovarian reserve. It is also necessary for evaluating the need for, and success of, existing and emerging fertility preservation techniques. Currently, no methods exist to accurately measure the number of primordial follicles comprising the ovarian reserve in women. Furthermore, obtaining ovarian tissue from large animals or endangered species for experimentation is often not feasible. Thus, mice have become an essential model for such studies, and the ability to evaluate primordial follicle numbers in whole mouse ovaries is a critical tool. However, reports of absolute follicle numbers in mouse ovaries in the literature are highly variable, making it difficult to compare and/or replicate data. This is due to a number of factors including strain, age, treatment groups, as well as technical differences in the methods of counting employed. In this article, we provide a step-by-step instructional guide for preparing histological sections and counting primordial follicles in mouse ovaries using two different methods: [1] stereology, which relies on the fractionator/optical dissector technique; and [2] the direct count technique. Some of the key advantages and drawbacks of each method will be highlighted so that reproducibility can be improved in the field and to enable researchers to select the most appropriate method for their studies.

Here, we describe, compare, and contrast two different techniques for accurate follicle counting of fixed mouse ovarian tissues.