이 연구는 중국 국가 중점 연구 개발 프로그램(2022YFA1104600)과 중국 저장성 자연과학 재단(LQ23H160011)의 지원을 받았습니다.

1. 3D 음향 조립 장치 제작
<ol><li>레이저 절단(30)을 통해 1mm 두께의 PMMA 시트 4장을 제조하는 것으로 시작한 후, 이들을 함께 접착하여 내부 폭 21mm, 높이 10mm의 정사각형 챔버를 형성한다.</li>
	<li>다음으로, 챔버 바닥에 1mm 두께의 PMMA 시트를 부착하여 바이오잉크 홀더 역할을 합니다.</li>
	<li>3개의 PZT(납 지르콘산염 티타네이트) 트랜스듀서(각각 길이 20mm, 너비 10mm, 두께 0.7mm, 1차 공진 주파수 3MHz, 재료 표 참조)를 챔버의 3개 직교 벽 외부에 각각 조심스럽게 부착합니다. 하단 PZT 변환기가 챔버 아래 중앙에 있는지 확인합니다.</li>
	<li>각 PZT 변환기의 두 전도성 영역에 와이어를 납땜합니다.</li>
	<li>마지막으로 하단 PZT가 다른 조리대와 접촉하지 않도록 속이 빈 바닥에 장치를 고정합니다.</li>
</ol>2. 음향 조립 시스템 설정
<ol><li>음향 장치를 현미경 스테이지에 장착하여 챔버 내부를 위에서 관찰할 수 있도록 합니다.</li>
	<li>PZT 변환기가 없는 장치 측면에 디지털 현미경을 배치하여 챔버 내부를 측면으로 관찰할 수 있습니다.</li>
	<li>직렬로 연결된 3개의 PZT 트랜스듀서에서 3개의 전력 증폭기 및 함수 발생기의 3개 출력 채널에 와이어를 독립적으로 연결합니다( 재료 표 참조).</li>
	<li>각 PZT 변환기에 대한 함수 발생기의 설정을 프로그래밍하여 정현파 파형, 주파수 및 진폭과 같은 파라미터를 지정합니다.</li>
	<li>멸균을 위해 음향 장치의 챔버를 75% 알코올로 5분 동안 채운 다음 멸균 PBS 용액으로 철저히 세척합니다. 그런 다음 깨끗한 벤치에서 최소 1시간 동안 챔버에 UV 광선을 조사합니다.</li>
</ol>3. 세포 배양 및 수확 절차
<ol><li>10% 소 태아 혈청과 1% 페니실린-스트렙토마이신이 보충된 Dulbecco의 변형 Eagle 배지(DMEM)를 사용하여 T25 세포 배양 플라스크에서 인간 간세포 암종 세포주인 C3A 세포를 배양하는 것으로 시작합니다( 재료 표 참조).</li>
	<li>C3A 세포가 약 80% 합류에 도달하면 다음과 같이 세포 통과를 수행합니다: 먼저 배양 플라스크 바닥을 PBS로 두 번 세척합니다. 그런 다음 0.05% 트립신-EDTA 2mL를 세포 배양 플라스크에 넣고 세포 분리를 촉진하기 위해 37°C에서 배양합니다. 2mL의 완전 배양 배지를 추가하여 트립신화 과정을 중지합니다.</li>
	<li>세포 용액을 15mL 튜브로 옮기고 실온에서 200× g 에서 5분 동안 원심분리하여 세포 펠릿을 얻습니다.</li>
</ol>4. 바이오잉크의 제조
<ol><li>0.5g(w/v) 리튬 페닐-2,4,6-트리메틸벤조일포스피네이트(LAP)를 함유한 6%(w/v) GelMA 용액 5mL에 0.3g의 LAP( 재료 표 참조)를 5mL의 인산염 완충 용액(PBS)에 용해시켜 준비합니다. 혼합물을 47°C 수조에 1시간 동안 그대로 둡니다.</li>
	<li>세포와 혼합하기 전에 멸균을 위해 GelMA 용액을 0.22μm 필터( 재료 표 참조)에 통과시킵니다.</li>
	<li>위에서 언급한 세포 펠릿을 세포 배양 배지에 재현탁시키십시오(단계 3.3). 0.4% 트리판 블루 용액으로 소량의 세포를 염색한 다음 세포 계수를 위해 깨끗한 혈구계를 사용합니다.</li>
	<li>위에서 얻은 세포 밀도를 기준으로 계산된 적절한 양의 C3A 세포를 멸균된 GelMA 용액과 혼합하여 세포 밀도가 2 × 106 cells/mL인 바이오잉크를 준비합니다.</li>
	<li>조립된 세포 스페로이드를 시각화하기 위해 C3A 세포를 37°C에서 20분 동안 2μM 세포 추적기(DiO 염료, 재료 표 참조)로 배양하여 사전 염색합니다. 그 후, 사용하기 전에 표지된 세포를 신선한 세포 배양 배지로 3회 세척하십시오.</li>
</ol>5. 음향 장치를 이용한 세포 스페로이드 조립
<ol><li>1mL 이상의 바이오잉크를 멸균된 챔버에 피펫팅합니다. 액체 표면과 챔버 바닥 사이의 대면 거리가 음향 파장의 절반의 정수 배수인지 확인하십시오. 알림: 추가된 바이오잉크의 양을 조절하여 이 거리를 제어할 수 있습니다. 음향 파장(λ)은 공식 λ = c/f를 사용하여 추정할 수 있으며, 여기서 c는 매체의 음속을 나타내고 f는 PZT 변환기의 주파수를 나타냅니다.</li>
	<li>함수 발생기 및 전원 켜기ampliifier를 사용하여 각 PZT 변환기의 작동을 시작합니다. 알림: 최적의 평행선 셀룰러 패턴을 얻기 위해 먼저 각 PZT 변환기를 개별적으로 작동하는 것이 좋습니다. 이는 각 PZT 변환기의 1차 공진 주파수 근처에서 0.001MHz의 단계 크기로 주파수 스위프를 수행하여 달성할 수 있습니다. 그런 다음 이러한 최적의 신호를 3개의 PZT 트랜스듀서 모두에 동시에 적용하여 예상되는 3D 도트 셀룰러 패턴을 얻습니다. 각 입력 신호를 적용하기 전에 세포가 부드럽게 교반하여 바이오잉크에 고르게 분산되어 있는지 확인하십시오.</li>
	<li>청색광(405nm, 60mW/cm2, 30초)을 사용하여 바이오잉크를 가교하여 음향적으로 조립된 세포 응집체를 캡슐화하는 3D 하이드로겔 스캐폴드를 만듭니다. 그런 다음 함수 발생기와 전력 증폭기를 끕니다.</li>
	<li>챔버에서 페트리 접시로 3D 하이드로겔 스캐폴드를 조심스럽게 옮기고 깨끗한 면도기를 사용하여 작은 조각(예: 2mm × 2mm × 2mm)으로 자릅니다.</li>
	<li>배양을 위해 세포 배양 배지를 추가합니다. 참고: 매일 배양 매체를 변경하는 것을 잊지 마십시오.</li>
</ol>6. 세포 스페로이드 회수
<ol><li>도립 현미경을 사용하여 지지체의 여러 층에서 스페로이드 형성을 관찰하는 것으로 시작합니다.</li>
	<li>배양 3일 후 배양액을 제거하고 하이드로겔 스캐폴드를 PBS로 두 번 철저히 세척합니다.</li>
	<li>세포 배양 배지로 1:200 희석하여 세포 배양 배지에서 30분 동안 2mL 이상의 GelMA 용해 완충액으로 스캐폴드를 배양합니다. 이 단계는 하이드로겔 스캐폴드를 용해하는 것을 목표로 합니다.</li>
	<li>이전 단계의 용액을 튜브에 옮긴 다음 실온에서 200× g 에서 5분 동안 원심분리하여 셀 스페로이드 펠릿을 얻습니다.</li>
	<li>상층액을 버리고 다운스트림 적용을 위해 펠릿을 신선한 배양 배지에 재현탁시킵니다.</li>
</ol>7. 스페로이드 생존력 분석
<ol><li>하이드로겔 스캐폴드 내 또는 살아있는/죽은 염색 키트를 사용하여 회수된 스페로이드에서 세포 스페로이드의 생존력을 평가합니다( 재료 표 참조).</li>
	<li>1 μL의 Calcein-AM과 2 μL의 Propidium Iodide (PI)를 함유 한 PBS 용액 1 mL를 사용하여 37 °C에서 15 분 동안 다른 배양 시점에서 샘플을 배양합니다.</li>
	<li>하이드로겔 스캐폴드 내 샘플의 경우 PBS로 직접 두 번 세척합니다. 회수된 스페로이드의 경우 실온에서 200× g 에서 5분 동안 원심분리하여 스페로이드 펠릿을 얻고 관찰 전에 두 번 세척합니다.</li>
	<li>형광 현미경을 사용하여 샘플을 관찰하고 형광 이미지를 캡처합니다.</li>
	<li>ImageJ를 사용하여 Calcein-AM 및 PI로 염색된 전체 면적에 대한 Calcein-AM 염색 면적의 비율을 계산하여 스페로이드 생존율을 결정합니다.</li>
</ol>

3D Acoustic Assembly Device를 사용한 균일한 세포 스페로이드의 확장 가능한 생성

<ol>
	<li>Eiraku, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-organizing+optic-cup+morphogenesis+in+three-dimensional+culture.">Self-organizing optic-cup morphogenesis in three-dimensional culture.</a> Nature. 472 (7341), 51-56 (2011).</li><li>Lancaster, M. A., Knoblich, J. 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K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+fabrication+of+cell+spheroids+with+3D+acoustic+assembly+devices.">High-throughput fabrication of cell spheroids with 3D acoustic assembly devices.</a> International Journal of Bioprinting. 9 (4), 733 (2023).</li><li>Jeger-Madiot, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-organization+and+culture+of+Mesenchymal+Stem+Cell+spheroids+in+acoustic+levitation.">Self-organization and culture of Mesenchymal Stem Cell spheroids in acoustic levitation.</a> Scientific Reports. 11 (1), 8355 (2021).</li><li>Cai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acoustofluidic+assembly+of+3D+neurospheroids+to+model+Alzheimer's+disease.">Acoustofluidic assembly of 3D neurospheroids to model Alzheimer's disease.</a> Analyst. 145 (19), 6243-6253 (2020).</li><li>Mei, J., Zhang, N., Friend, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fabrication+of+surface+acoustic+wave+devices+on+lithium+niobate.">Fabrication of surface acoustic wave devices on lithium niobate.</a> Jove-Journal of Visualized Experiments. (160), e61013 (2020).</li><li>Niculescu, A. G., Chircov, C., B&#238;rc&#259;, A. C., Grumezescu, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fabrication+and+applications+of+microfluidic+devices:+a+review.">Fabrication and applications of microfluidic devices: a review.</a> International Journal of Molecular Sciences. 22 (4), 2011 (2011).</li></ol>

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3D 음향 조립 장치와 같은 기술을 사용하여 높은 처리량으로 세포 스페로이드를 효율적이고 안정적으로 제조하는 것은 생물 의학 공학 및 약물 스크리닝을 발전시키는 데 큰 가능성을 가지고있습니다 1,2,3. 이 접근법은 간단한 절차를 통해 세포 스페로이드의 대량 생산을 단순화합니다.
그러나 이 음향 장?...

기존의 2D 배양 모델에 비해 in vivo와 유사한 구조적 및 형태학적 특성을 더 많이 제공하는 3D in vitro 배양 모델은 조직 공학, 질병 모델링 및 약물 스크리닝과 같은 다양한 생물의학 응용 분야에서 유망한 시스템으로 인정받고 있습니다 1,2,3. 3D 배양 모델의 한 유형인 세포 스페로이드는 일반적으로 세포 응집을 의미하며, 향상된 세포-세포 및 세포-기질 상호 작용을 특징으로 하는 3D 구상체 구조를 생성합니다 4,5,6. 따라서 세포 스페로이드 제조는 다양한 생물학적 연구를 가능하게 하는 강력한 도구가 되었습니다.
스페로이드를 얻기 위해 행잉 드롭(hanging drop)7, 비접착 플레이트(non-adhesive plate)8 또는 마이크로웰 장치(microwell device)9를 포함한 다양한 기술들이 개발되었다. 원칙적으로, 이러한 방법은 일반적으로 세포와 기판 사이의 상호 작용을 최소화하면서 중력과 같은 물리적 힘을 이용하여 세포 조립을 용이하게 합니다. 그러나 종종 노동 집약적인 공정이 포함되고 생산성이 낮으며 스페로이드 크기10,11을 제어하는 데 어려움이 있습니다. 중요한 것은 원하는 크기와 균일성을 가진 스페로이드를 충분한 양으로 생산하는 것이 특정 생물학적 응용 분야를 충족하는 데 가장 중요하다는 것입니다. 상술한 방법들과는 대조적으로, 음파는, 외력-구동 기술(12,13,14)의 한 유형으로서, 외력(15,16,17,18)을 통해 세포 응집을 강화하는 원리에 기초하여, 높은 품질과 처리량을 갖는 세포 스페로이드의 대량 제조에 대한 가능성을 보여주었다 . 전자기 또는 자기력과 달리 음향 기반 세포 조작 기술은 비침습적이고 표지가 없어 우수한 생체 적합성으로 스페로이드 형성을 가능하게 합니다19,20.
일반적으로, 스탠딩 표면 음향파(SAW) 및 벌크 음파(BOW) 기반 장치는 대응하는 스탠딩 음향장(21,22,23)에 의해 생성된 음향 노드(AN)를 활용하여 스페로이드를 생성하기 위해 개발되었다. 특히, BAW를 기반으로 하는 음향 조립 장치는 제조가 편리하고, 조작이 용이하며, 확장성이 우수하다는 장점이 있어 셀 스페로이드24,25 제조에 주목받고 있다. 우리는 최근에 높은 처리량을 가진 스페로이드를 생성할 수 있는 손쉬운 BAW 기반 음향 조립 장치를 개발했습니다26. 제안된 장치는 X/Y/Z 평면에 각각 배열된 3개의 지르콘산 납 티타네이트(PZT) 변환기가 있는 정사각형 폴리메틸 메타크릴레이트(PMMA) 챔버로 구성됩니다. 이러한 배열은 구동 셀 조립을 위한 공중 부양 음향 노드(LAN)의 3D 도트 어레이 패턴을 생성할 수 있습니다. ANs 27,28,29의 1D 또는 2D 어레이만을 생성할 수 있는 이전에 보고된 BAW 또는 SAW 기반 디바이스와 비교하여, 본 디바이스는 젤라틴 메타크릴로일(GelMA) 용액 내에서 신속한 세포 응집체 형성을 위한 LAN의 3D 도트 어레이를 가능하게 합니다. 그 후, 세포 응집체는 배양 3일 후 광경화된 GelMA 스캐폴드 내에서 생존력이 높은 스페로이드로 성숙되었습니다. 마지막으로, 균일한 크기의 많은 스페로이드를 다운스트림 응용 분야를 위해 GelMA 스캐폴드에서 쉽게 얻을 수 있었습니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.22-&#956;m filter</td>
			<td>Merck</td>
			<td>SLGSM33SS</td>
			<td>Used for GelMA solution sterilization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>35 mm-cell culture dish</td>
			<td>Corning</td>
			<td>430165</td>
			<td>Used for culturing cells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Confocal microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>A1RHD25</td>
			<td>Fluorescent cell observation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DiO dye</td>
			<td>Beyotime</td>
			<td>C1038</td>
			<td>Dye used to stain cells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>12430054</td>
			<td>Cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10099141C</td>
			<td>Cell culture media supplement</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Function generator</td>
			<td>Rigol</td>
			<td>DG5352</td>
			<td>For RF signal generation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GelMA</td>
			<td>Regenovo</td>
			<td>none</td>
			<td>Used to prepare bioink</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GelMA lysis buffer</td>
			<td>EFL</td>
			<td>EFL-GM-LS-001</td>
			<td>Used to dissolve GelMA scaffolds</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>Ti-U</td>
			<td>Cell observation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LAP</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>900889</td>
			<td>Used as photoinitiator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Live-Dead kit</td>
			<td>Beyotime</td>
			<td>C2015M</td>
			<td>Cell vability analysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010002</td>
			<td>Used as buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-streptomycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15070063</td>
			<td>Prevent cell culture contamination</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Power amplifer</td>
			<td>Minicircuit</td>
			<td>LCY-22+</td>
			<td>Increase the voltage amplitude of the RF signal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PZT transducers</td>
			<td>Yantai Xingzhiwen Trading Co.,Ltd.</td>
			<td>PZT-41</td>
			<td>Functional units for acoustic assembly device</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T25 cell culture flask</td>
			<td>Corning</td>
			<td>430639</td>
			<td>Used for culturing cells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan blue&#160;</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15250061</td>
			<td>Cell counting</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin-EDTA&#160;</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>25200056</td>
			<td>Cell dissociation enzyme</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three-dimensional acoustic assembly device for mass manufacturing of cell spheroids

세포 스페로이드는 많은 생물학 분야에서 광범위하게 응용되고 있는 유망한 3차원(3D) 모델입니다. 이 프로토콜은 기동성 있는 절차를 통해 3D 음향 조립 장치를 사용하여 고품질 및 고처리량 세포 스페로이드를 제조하는 방법을 제시합니다. 음향 조립 장치는 3개의 PZT(납 지르콘산염 티타네이트) 변환기로 구성되며, 각 변환기는 정사각형 폴리메틸 메타크릴레이트(PMMA) 챔버의 X/Y/Z 평면에 배열됩니다. 이 구성을 사용하면 3개의 신호가 적용될 때 부상 음향 노드(LAN)의 3D 도트 어레이 패턴을 생성할 수 있습니다. 그 결과, 젤라틴 메타크릴로일(GelMA) 용액의 세포를 LAN으로 유도하여 3차원에서 균일한 세포 응집체를 형성할 수 있습니다. 그런 다음 GelMA 용액을 UV 광경화 및 가교 결합하여 세포 응집체의 성장을 지원하는 스캐폴드 역할을 합니다. 마지막으로, 성숙된 스페로이드 덩어리를 얻어 온화한 조건에서 GelMA 스캐폴드를 용해시켜 회수합니다. 제안된 새로운 3D 음향 세포 조립 장치는 세포 스페로이드 및 오가노이드의 스케일업 제조를 가능하게 하여 생물학 분야에서 큰 잠재력을 가진 기술을 제공할 것입니다.

3D in vitro culture models, which provide more in vivo-like structural and morphological characteristics compared to conventional 2D culture models, have been recognized as promising systems in various biomedical applications such as tissue engineering, disease modeling, and drug screening1,2,3. As one type of 3D culture model, cell spheroids typically refer to cell aggregation, creating 3D spheroidal structures characterized by enhanced cell-cell and cell-matrix interactions4,5,6. Therefore, fabricating cell spheroids has become a powerful tool for enabling diverse biological studies.
Various techniques, including hanging drop7, non-adhesive plates8, or microwell devices9, have been developed to obtain spheroids. In principle, these methods commonly facilitate cell assembly by utilizing physical forces such as gravitational force while minimizing interactions between cells and the substrate. However, they often involve labor-intensive processes, have low productivity, and pose challenges for controlling spheroid size10,11. Importantly, the production of spheroids with the desired size and uniformity in sufficient quantity is of utmost importance to satisfy specific biological applications. In contrast to the above-mentioned methods, acoustic waves, as one type of external-force-driven technique12,13,14, have shown potential for mass manufacturing of cell spheroids with high quality and throughput, based on the principle of enhancing cell aggregation through external forces15,16,17,18. Unlike electromagnetic or magnetic forces, acoustic-based cell manipulation techniques are non-invasive and label-free, enabling spheroid formation with excellent biocompatibility19,20.
Commonly, standing surface acoustic waves (SAWs) and bulk acoustic waves (BAWs)-based devices have been developed to generate spheroids, utilizing the acoustic nodes (ANs) produced by corresponding standing acoustic fields21,22,23. Particularly, acoustic assembly devices based on BAWs, with the merits of convenient manufacture, easy operation, and excellent scalability, have gained attention for fabricating cell spheroids24,25. We have recently developed a facile BAWs-based acoustic assembly device with the ability to generate spheroids with high throughput26. The proposed device consists of a square polymethyl methacrylate (PMMA) chamber with three lead zirconate titanate (PZT) transducers arranged respectively in the X/Y/Z plane. This arrangement enables the creation of a 3D dot-array pattern of levitated acoustic nodes (LANs) for driving cell assembly. Compared to previously reported BAWs- or SAWs-based devices, which can only create a 1D or 2D array of ANs27,28,29, the present device enables a 3D dot-array of LANs for rapid cell aggregate formation within the gelatin methacryloyl (GelMA) solution. Subsequently, cell aggregates matured into spheroids with high viability within the photocured GelMA scaffolds after three days of cultivation. Finally, a large number of spheroids with uniform size were easily obtained from the GelMA scaffolds for downstream applications.

저자 스포트라이트: 고품질 3D 세포 스페로이드 배양을 위한 스캐폴드가 없는 음향 조립 방법 개발 

세포 스페로이드의 대량 생산을 위한 3차원 음향 조립 장치

3D in vitro culture models, like cell spheroids, have been widely used in the fields of tissue engineering, disease modeling, and drug screening. Our research focuses on developing and invest per engineering method to fabricate spheroids or other 3D in vitro culture models with high quality for diverse biological studies. In the current protocol, the spheroids grew within the GelMA scaffold and are retrieved at the final layback, dissolving the scaffold, causing additional procedures.We will try to acoustically assemble cell aggregates in a cultural medium to enable them to grow within spheroids without scaffold. Compared to magnetic assembly techniques, acoustic waves can directly assemble cells in a label-free manner without potential toxic effects on cells. Besides, our protocol enables cell spheroids to be assembled in a three-dimensional array, substantially increasing throughput.

이 연구는 세포 스페로이드의 대량 제조를 위한 3D 음향 조립 장치를 설계했습니다. 음향 장치는 챔버 외부 표면의 X-평면과 Y-평면에 부착된 2개의 PZT 변환기와 챔버 바닥에 1개의 PZT 변환기가 부착된 정사각형 챔버로 구성되었습니다(그림 1A,B). 2개의 함수 발생기에서 3개의 출력 채널을 3개의 전력 증폭기에 연결하여 PZT 트랜스듀서를 작동시키기 위한 3개의 독립...

Watch this Scientific Journal Video about Development of a Scaffold-Free Acoustic Assembly Method for High-Quality 3D Cell Spheroid Culture at JoVE.com

세포 스페로이드는 생물학적 응용 분야에서 하나의 잠재적 모델로 간주되어 왔습니다. 이 기사에서는 균일한 세포 스페로이드를 견고하고 신속하게 제조할 수 있는 효율적인 방법을 제공하는 3D 음향 조립 장치를 사용하여 세포 스페로이드를 확장 가능하게 생성하는 프로토콜에 대해 설명합니다.

Cell spheroids are promising three-dimensional (3D) models that have gained wide applications in many biological fields. This protocol presents a method ...

세포 스페로이드와 같은 3D 체외 배양 모델은 조직 공학, 질병 모델링 및 약물 스크리닝 분야에서 널리 사용되었습니다. 우리의 연구는 다양한 생물학적 연구를 위해 스페로이드 또는 기타 3D 체외 배양 모델을 고품질로 제작하기 위한 엔지니어링 방법별 개발 및 투자에 중점을 둡니다. 현재 프로토콜에서 스페로이드는 GelMA 스캐폴드 내에서 성장했으며 최종 레이백에서 회수되어 스캐폴드를 용해시켜 추가 절차를 유발합니다.우리는 세포 응집체를 배양 배지에서 음향적으로 조립하여 스캐폴드 없이 스페로이드 내에서 자랄 수 있도록 할 것입니다. 자기 조립 기술과 비교할 때 음파는 세포에 대한 잠재적인 독성 영향 없이 표지가 없는 방식으로 세포를 직접 조립할 수 있습니다. 또한, 당사의 프로토콜은 세포 스페로이드를 3차원 어레이로 조립할 수 있도록 하여 처리량을 크게 증가시킵니다.

three-dimensional-acoustic-assembly-device-for-mass-manufacturing

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Three-Dimensional Acoustic Assembly Device for Mass Manufacturing of Cell Spheroids

777 조회수.  Hangzhou Dianzi University. 세포 스페로이드와 같은 3D 체외 배양 모델은 조직 공학, 질병 모델링 및 약물 스크리닝 분야에서 널리 사용되었습니다. 우리의 연구는 다양한 생물학적 연구를 위해 스페로이드 또는 기타 3D 체외 배양 모델을 고품질로 제작하기 위한 엔지니어링 방법별 개발 및 투자에 중점을 둡니다. 현재 프로토콜에서 스페로이드는 GelMA 스캐폴드 내에서 성장했으며 최종 레이백에서 회수?...

비디오: 저자 스포트라이트: 고품질 3D 세포 스페로이드 배양을 위한 스캐폴드가 없는 음향 조립 방법 개발 

Cell spheroids are promising three-dimensional (3D) models that have gained wide applications in many biological fields. This protocol presents a method for manufacturing high-quality and high-throughput cell spheroids using a 3D acoustic assembly device through maneuverable procedures. The acoustic assembly device consists of three lead zirconate titanate (PZT) transducers, each arranged in the X/Y/Z plane of a square polymethyl methacrylate (PMMA) chamber. This configuration enables the generation of a 3D dot-array pattern of levitated acoustic nodes (LANs) when three signals are applied. As a result, cells in the gelatin methacryloyl (GelMA) solution can be driven to the LANs, forming uniform cell aggregates in three dimensions. The GelMA solution is then UV-photocured and crosslinked to serve as a scaffold that supports the growth of cell aggregates. Finally, masses of matured spheroids are obtained and retrieved by subsequently dissolving the GelMA scaffolds under mild conditions. The proposed new 3D acoustic cell assembly device will enable the scale-up fabrication of cell spheroids, and even organoids, offering great potential technology in the biological field.

Cell spheroids have been considered one potential model in the field of biological applications. This article describes protocols for scalably generating cell spheroids using a 3D acoustic assembly device, which provides an efficient method for the robust and rapid fabrication of uniform cell spheroids.

연구

생체공학

Setting Up an Acoustic Assembly System and Cell Culture Harvesting for Generating Uniform Cell Spheroids

To begin, sterilize the chamber of the acoustic device with 75%alcohol for five minutes. Then, clean the device with sterile PBS and irradiate it with UV light for one hour. Mount the sterile acoustic device onto a microscope stage for top-view observation of the chamber's interior.Position a digital microscope on the side of the device that is free from PZT transducers, enabling side-view observation of the chamber's interior. Independently connect the wires from the three PZT transducers in series to three power amplifiers and three output channels of function generators. Program the settings on the function generators for each PCT transducer, specifying parameters such as sinusoidal waveforms, frequency, and amplitude.Culture 3CA cells in DMEM supplemented with 10%FBS and 1%penicillin streptomycin in a T25 cell culture flask. When the cells become 80%confluent, wash the culture twice with PBS. After removing the PBS, add two milliliters of 0.05%trypsin-EDTA to the flask and incubate at 37 degrees Celsius for cell detachment.Add two milliliters of complete cell culture medium into the flask to stop the trypsinization. Transfer the cell suspension to a 15-milliliter tube and centrifuge at 200 G for five minutes.

균일한 세포 스페로이드 생성을 위한 음향 조립 시스템 및 세포 배양 수확 설정

Bioink Preparation, Acoustic Device Assembly, and Viability Analysis of Cell Spheroids

To prepare the bio ink solution mix an appropriate amount of C3A cell suspension with the sterilized gelMA solution. Prestain the C3A cell spheroids with two micromolar cell tracker solution at 37 degrees for 20 minutes. To wash the cells, first, remove the supernatin by centrifuging and then add fresh cell culture medium.Add at least two milliliters of bio ink into the sterilized acoustic device chamber. Turn on the function generator and power amplifier to initiate the actuation of each PZT transducer to generate a 3D array of cell aggregates. Crosslink the bio ink using blue light for 30 seconds to create 3D hydrogel scaffolds, encapsulating the assembled cell aggregates acoustically.Next, carefully transfer the 3D hydrogel scaffold from the chamber into a Petri dish. Cut it into small pieces using a clean razor, and then add cell culture medium into the Petri dish. Incubate the C3A cell spheroids at different culture time points in one milliliter of PBS containing one microliter of calcium am and two microliters of propidium iodide for 15 minutes at 37 degrees Celsius.Rinse the sample embedded in hydrogel scaffolds twice with PBS. For retrieved spheroids, perform centrifugation at 200 G for five minutes and wash twice with PBS. Using a fluorescence microscope, observe the spheroids and capture the images.The cell aggregates were arranged in the regular 3D dot array pattern with a green fluorescent signal. The assembled C3A gelMA aggregates gradually integrated and formed tight spheroids by day three, accompanied by an increase in spheroid diameter. The viability of the cell spheroids remained good before day three, but slightly decreased after a week of culture.The released spheroids maintained a good spherical morphology with a narrow size distribution along with desirable viability and expression of albumin.