Síntese rápida e Triagem de fatores de transcrição ativada quimicamente com jornalistas baseados em GFP

Resumo

Este protocolo descreve o procedimento experimental para a rápida construção de factores de transcrição artificiais (ATFs) com repórteres GFP cognatas e quantificação da capacidade ATFs para estimular a expressão de GFP por meio de citometria de fluxo.

Resumo

A biologia sintética visa racionalmente projetar e construir circuitos sintéticos com propriedades quantitativas desejadas, bem como fornecer ferramentas para interrogar a estrutura dos circuitos de controle de origem. Em ambos os casos, a capacidade de programar a expressão do gene de uma forma rápida e sintonizável, sem efeitos fora do alvo, podem ser úteis. Foram construídas estirpes de levedura contendo o promotor a montante ACT1 de uma cassete URA3 seguido pelo domínio de ligação ao ligando do receptor estrogénio humano e VP16. Ao transformar essa tensão, com um produto de PCR linear contendo um domínio de ligação ao ADN e de selecção contra a presença de URA3, um factor de transcrição artificial constitutivamente expresso (ATF) podem ser gerados por recombinação homóloga. ATFs modificadas desta forma podem activar um gene alvo único, na presença de indutor, eliminando assim tanto a activação fora do alvo e das condições de crescimento não fisiológicas encontrados com condiciona utilizadaOs sistemas de expressão de genes onal. Um método simples para a rápida construção de plasmídeos repórter GFP que respondem especificamente a um factor de transcrição nativo ou artificial de interesse também é fornecido.

Introdução

Desenvolvimento de interruptores genéticos em leveduras é de grande interesse na pesquisa, tanto acadêmica e industrial. No caso ideal, interruptores genéticos pode ser usado para activar um gene particular (ou o conjunto de genes) apenas quando desejado pelo experimentador. Uma sequência de codificação do gene colocado a jusante de um promotor sintético que não é expressa na ausência de uma molécula de indução: depois da adição do indutor do gene deve ser expresso rapidamente. Foi recentemente demonstrado que uma tal mudança pode ser manipulada em levedura, em que, na ausência do indutor, a estirpe exibe um fenótipo de supressão, mas na presença de indutor, a expressão é activada em proporção com o nível de indutor em todas as células ^1,2. Historicamente, os sistemas de expressão condicional em leveduras têm dependido pesadamente sobre seqüências de DNA em nutrientes sensível, incluindo o MET, PHO, e promotores GAL (cujas atividades são sensíveis aos níveis extracelulares de metionina, fosfato egalactose, respectivamente). Enquanto expressão condicional pode ser alcançado, ele vem com o custo de efeitos pleiotrópicos significativos.

Receptores hormonais, tais como os receptores de estrogênio humanos provaram ser eficazes interruptores em eucariotos ^3,4. Na ausência de hormona, uma proteína fundida a um receptor hormonal pode ser sequestrado no citoplasma onde interage com o complexo Hsp90 chaperone. Após a ligação do ligando apropriado, o receptor sofre uma alteração conformacional, fazendo com que seja libertada a partir do complexo Hsp90 chaperone e revelando um sinal de localização nuclear. Para observar a dinâmica de localização de uma determinada proteína contendo o receptor da hormona, foi criada uma fusão C-terminal do Gal4dbd.ER.VP16 (GEV, um factor de transcrição sintética, contendo o domínio de ligação ao ADN Gal4p, o domínio de ligação ao ligando do receptor estrogénio humano , e VP16) com GFP ^2. A localização nuclear foi observada a cerca de 8 minutos após a adição dequantidades saturantes do indutor, ß-estradiol, para o tipo selvagem de levedura é completamente inerte. Por esta altura, a maioria das células têm sítios de transcrição activas claramente visíveis para os genes alvo (GEV ensaiadas através de hibridação in situ fluorescente), bem como os ARNm totalmente maduros ^2,5. Genes-alvo GEV aumento na expressão> 2 vezes dentro de 2,5 min ^2,6 (medido utilizando microarrays), demonstrando que leva <2,5 min para o activador quimérico para translocar para o núcleo, ligar ao ADN e activar a transcrição.

Enquanto vários outros on-chaves foram aplicadas em leveduras que utilizam várias moléculas pequenas ou drogas (incluindo as opções de base em doxiciclina clássicos da Escherichia coli ^7,8 e um switch baseado em indigo ⁹ de Arabidopsis thaliana), nenhum alcançaram a velocidade, especificidade, ou aperto da regulação exibida pelos interruptores à base de hormônios. Vale ressaltar tchapéu rápida fora dos interruptores, também têm sido desenvolvidas na levedura, e normalmente funcionam por fusão de um gene para uma protease ou ubiquitina ligase sequência de direccionamento ^2,10,11,12. A capacidade de remover rapidamente uma proteína alvo a partir da célula facilita o estudo de genes essenciais, bem como os genes que são propensas a supressão genético quando apagados ^10.

Os métodos descritos neste protocolo são para a construção e caracterização sintética on-chaves em levedura. Primeiro, vamos mostrar como gerar rapidamente as proteínas de fusão genomically integrados constituídos por um domínio de ligação ao DNA de interesse, a ligação do ligante de domínio do receptor de estrógeno humano e VP16 (DBD-EV). Conforme o protocolo, a proteína de fusão é expressa a partir de um promotor ACT1. Em seguida, mostramos como criar um plasmídeo repórter cognato para o ATF e testar sua funcionalidade usando citometria de fluxo. Embora prevemos estes plasmídeos repórter sendo usado com novas ATFs (Figura 1), que pode be utilizado como repórteres para um activador da transcrição nativo bem. Finalmente, os detalhes para testar o efeito de activação do ATF no crescimento celular em placas de 96 poços e para a engenharia de alelos genómicas indutíveis são fornecidos.

Protocolo

A Figura 2 proporciona um esquema de secções de protocolo 1-3.

1. Criação de ATFs

1. Criar iniciadores para amplificar por PCR o ADN do domínio de ligação de interesse. A homologia com o receptor de promotor ACT1 e hormona (tal como descrito nas Figuras 3 e 4) é adicionado por meio de PCR para facilitar a recombinação correcta na estirpe yMN15.
2. PCR amplificar DBD de interesse, utilizando uma polimerase de alta fidelidade.
3. Transform> 1 ug de produto de PCR purificado em levedura usando o método do acetato de lítio ^13.
4. Após a transformação, as células de rotação em alta velocidade por 15 segundos em microcentrífuga e remover mix de transformação.
5. Ressuspender em ~ 200 mL de água estéril e placa YPD.
6. No dia seguinte, a placa de YPD réplica em placas de 5-FOA (5-FOA placas são feitas, como descrito no Manual de levedura Cold Spring Harbor) ^13.
7. Permitir o crescimento de 2-4 days, e restreak pelo menos 5-10 colónias em meio YPD. Realizar PCR de colónias, utilizando os iniciadores do quadro 1 e a sequência para verificar a inserção.

2. Criação de ATF plasmídeo repórter

1. Determinar o sítio de ligação do ATF (maior probabilidade de vir a partir da literatura).
2. Ordem desejada região de ligação como oligos (ou Ultramers, se necessário). Encomende como superior e fios de fundo com saliências corretos para NotI e XbaI, como mostrado na Tabela 2.
3. Diluir oligos para concentrações equimolares (100 uM).
4. Fosforilar usando polinucleótido cinase de T4 e, em seguida, recozer num termociclador. As condições de reacção estão na Tabela 3.
5. Digest ~ 1-2 ug de pMN8 com NotI-XbaI de HF e durante 1 hora a 37 ° C (condições de reacção do Quadro 4).
6. Gel purificar a banda backbone.
7. Dilui-se a espinha dorsal purificada a 10 ng / mL.
8. Dilua a cadeia dupla, fosforilated local de ligação 5x a concentração molar da espinha dorsal por ul.
9. Utilizando ligase de ADN T4, ligadura dos sítios de ligação para o backbone digerida à temperatura ambiente durante 30 minutos (Quadro 5).
10. Para a transformação, adicione metade da reação de ligação para 50 mL de padrão, Escherichia coli quimicamente competentes, tais como XL1-Blue ou DH5-Alpha.
11. Células de choque térmico durante 45 segundos num banho de água a 42 C ° e, em seguida, colocar em gelo durante 2 min.
12. Adicionar 900 ul de meio SOC a reacção de transformação.
13. Crescer a 37 ° C durante 1 hora, num tambor de rolos.
14. Espalhe 100-200 células por uL de LB + Amp (100 ug / ml) da placa e incubar durante a noite.
15. Cresce E. coli em meio LB + AMP ADN plasmídeo líquido e colheita. Seqüência verificar novo plasmídeo repórter do colônias laqueadura com o primer 5'-GTACCTTATATTGAATTTTC-3 '.
16. Transformar novo plasmídeo repórter em contendo ATF levedura strain da Seção 1, usando a transformação acetato de lítio.

3. Quantificar o efeito da ATF indução na expressão do gene GFP Usando Reporter

Preparação das amostras:

1. Adicione 25 mM estoque β-estradiol (10 ml de etanol + 0,0681 g de β-estradiol). Mantenha refrigerado.
2. Crescer ATF + Reporter contendo tensão durante a noite em 5 ml SC-URA.
3. Obter nove frascos de 250 ml agitar e adicionar 25 ml SC-URA para cada um.
4. Adicionar 0 nM, 0,1 nM, 1 nM, 10 nM, 100 nM, 1 pM, ou 10 pM β-estradiol. Isso é mais facilmente feito através de diluições em série de 10 vezes de o estoque de β-estradiol 25 mM. Para uma concentração final de 10 uM β-estradiol, adicionar 10 ul de estoque β-estradiol a 25 mM e 25 ml de SC-URA.
5. Adicionar 125 ul de culturas de uma noite de frascos (1:200 de diluição).
6. Para os restantes dois frascos, inocular com uma produção de GFP strai constitutivan e uma estirpe sem GFP. Estes são necessários para a calibração do citómetro de fluxo.
7. Agitar a 200 rpm a 30 ° C durante 12-18 horas.
   Nota: O tempo de incubação óptimo é determinado pela identificação de indução GFP quando não altera a seguir à adição de β-estradiol.
8. Tome 500 mL de cada cultura e girar em tubos de 1,7 ml de microcentrífuga separados.
9. Aspirar SC-URA.
10. Lavar uma vez em 1 ml de PBS 0,1% Tween-20 e aspirado.
11. Adicionar 1 ml de PBS 0,1% Tween-20 e ressuspender.
12. Adicionar 1 ml de PBS 0,1% de Tween-20 para tubos Falcon.
13. Adicionar as células ressuspensas para tubos de 5 ml (volume final = 2 mL) (podem ser armazenados a 4 ° C durante vários dias).
14. Opcional: células sonicate levemente para separação quaisquer células agregada.
    A citometria de fluxo análise: Resumo: A fluorescência de 10.000-100.000 células normalmente é analisado por amostra. Os dados podem ser processadas em FlowJo ou usando scripts personalizados em MATLAB ouR. Certifique-se de calibrar a tensão do canal de GFP utilizando controles GFP positivos e negativos. Uma vez que os ficheiros de FCS são exportados, um roteiro tal como o mostrado na Figura 6, juntamente com as funções (fca_readfcs http://www.mathworks.com/matlabcentral/fileexchange/9608-fcs-data-reader ) pode ser usado para processar o dados.
15. Realizar citometria de fluxo.
    1. Use dispersão frontal (FSC) e dispersão lateral (SSC) para identificar células de levedura.
    2. Defina a taxa de fluxo para ~ 3.000 células / seg.
    3. Meça GFP (canal ITCF).
    4. Uma vez que os dados são coletados, de exportação. FCS arquivos
16. Carregar MATLAB.
17. Mova os arquivos. FCS, fcs_readfcs.m, e um script semelhante ao da Figura 6 para a mesma pasta.
18. Alterar o atual diretório de trabalho para a pasta que contém os dados e scripts.
19. Execute o script a partir da Figura 6 (nota: olenda foi digitado manualmente para produzir o que é visto na Figura 7).

4. Quantificar o efeito da ATF indução no crescimento celular

1. De estoques congelados, raia fora tanto (1) uma cepa contendo ATF e (2) uma cepa falta ATF (como yMN15) em placas de YPD separados.
2. Após 2 dias de crescimento, inocular tubos de cultura separados contendo 5 ml de meio YPD líquido com cada uma das estirpes e crescer durante a noite a 30 ° C.
3. Realizar 10 diluições em série de uma solução de estoque mM β-estradiol 0,25 até 10.000 vezes (0.025 uM β-estradiol) em etanol a 100%.
4. Adicionar 40 ul de culturas de uma noite de 10 ml de líquido de YPD (1-250 diluição).
5. Para cada estirpe, adicionar 96 ul de células diluídas para 18 cavidades de uma placa de 96 poços.
6. Adicionar 4 mL de β-estradiol para as células. Um ponto essencial é certificar-se cada poço tem a mesma quantidade de etanol total. (Alternativamente, um mo re Estoque concentrado de β-estradiol podem ser utilizados e subsequentemente diluída até ao ponto do efeito do álcool sobre o crescimento não é mensurável).
7. Realiza-se em triplicado. Três dos poços para cada cepa deve ser de etanol somente controles.
8. Cobrir a placa de 96 poços na membrana permeável ao gás.
9. Monitorar o crescimento (OD ₆₀₀₎ no leitor de placas.
10. Quantificar as taxas de crescimento, utilizando qualquer número de métodos standard, tais como encontrar o declive máximo.
    Nota: Nós tivemos um bom sucesso com o open source software grofit ^14, que é executado no ambiente de programação R Vale ressaltar que, embora as taxas de crescimento calculadas a partir de ensaios de placa de 96 poços em relação a agitar-frascos (25 ml culturas). não são necessariamente os mesmos (devido a diferenças na fisiologia e na instrumentação), temos observado que as taxas de crescimento relativo são similares (embora isso nem sempre pode ser o caso).

tle "> 5. Criar induzíveis Genomic alelos

1. Obter pMN10, um plasmídeo com o promotor noncentromeric ATF-responsivo de pMN8 fundido com KanMX (na orientação oposta).
2. Restrição digerir a espinha dorsal do vetor e extrato de gel como na Seção 2.
3. Anneal, fosforilam e oligos ligadura contendo sítios de ligação apropriadas conforme descrito na Seção 2.
4. Sequência de verificar. Este plasmídeo será agora servir como um molde de ADN para criar o alelo indutível.
5. Obter a estirpe de levedura que expressa o ATF correspondente de interesse.
6. PCR amplificar a cassete KanMX-Promotor (~ 2 kb), utilizando os iniciadores a partir da Tabela 6.
7. Transformar o produto de PCR para a estirpe que expressa ATF usando o método do acetato de lítio.
8. Placa em YPD e placa réplica em YPD + G418 no dia seguinte.
9. Confirmar a inserção apropriada do promotor utilizando o iniciador directo (5'-CTGCAGCGAGGAGCCGTAAT-3 ') e um iniciador interno reverso para poe gene cujo promotor foi substituído. O iniciador reverso é tipicamente concebida para estar entre 200-300 pb a jusante do primeiro ATG ^15. O produto de PCR final é de aproximadamente de 1,2 kb.

Resultados

A Figura 5 mostra a indução de GFP por Z ₃ EV, Z ₄ VE, ou GEV ao longo do tempo. Notar o aumento na produção de GFP em resposta aos ATFs contendo ADN nonyeast domínios de ligação. Recentemente, especulou que isto resulta a partir destes factores alcançar especificidade de um único gene no genoma de levedura ^1. GEV indução por si só conduz à activação / repressão de centenas de genes, enquanto que Z ₃ e Z ₄ VE VE apenas activar a expressão de um gene alvo colocado a jusante de um promotor sintético que contém os locais de ligação adequados (5'-GCGTGGGCG-3 'e 5'- GCGGCGGAGGAG-3 ', respectivamente), ^1. Figura 7 demonstra a regulação apertada do sistema (não há resultados indutor em não detectável GFP) e todas as células que se induzida em resposta ao indutor A capacidade de Z ₃ EV para induzir GFP através de uma variedade de concentrações β-estradiol é mostrado na Figura 8.

ent "fo: manter-together.within-page =" always ">
Figura 1. Factores de transcrição artificiais interagir com Hsp90 na ausência de β-estradiol. Quando β-estradiol se liga com o ATF, Hsp90 dissocia, permitindo que o ATF para entrar no núcleo e activar a expressão a partir do plasmídeo repórter.

Figura 2. Esquemática do protocolo para as estirpes de engenharia que contêm fatores de transcrição artificiais e construção / testando repórteres GFP cognatos.

load/51153/51153fig3highres.jpg "src =" / files/ftp_upload/51153/51153fig3.jpg "/>
Figura 3. A sequência ACT1pr-URA3-VE na estirpe yMN15 no locus LEU2.

Figura 4. Desenho de primers de PCR para a amplificação de um domínio de ligação de ADN de interesse com uma homologia de sequência adicional para gerar uma nova proteína de fusão quando transformado com sucesso em yMN15.

Figura 5. Indução GFP por três pares de ATF-promotores diferentes em resposta a 1 uM β-estradiol.

Figura 6. Um script MATLAB para o fluxo de processamento de dados de citometria. Este roteiro foi adaptado de http://openwetware.org/wiki/McClean:_Matlab_Code_for_Analyzing_FACS_Data .

Figura 7. Indução de GFP por Z ₃ EV em resposta a 0 μ M β-estradiol e 1 uM β-estradiol seguinte de 18 horas de indução. Fluorescência foi também meamedido a partir de células sem GFP para ilustrar a forte regulamentação do sistema Z ₃ EV. Esta figura foi gerada usando o código na Figura 6.

Figura 8. A relação entre a concentração de indutor e saída de expressão é classificada com um coeficiente de Hill de 1 ~. (A) As distribuições de expressão da GFP como uma função da concentração de β-estradiol. (B) O valor médio de fluorescência das distribuições de (A). Os dados foram ajustados à função G (D) = L + _min (L-L _{max min)} D ⁿ / ⁽ⁿ + K D ⁿ⁾ onde D é a dose β-estradiol, L _min e G são o _máximo e mínimo valores máximos GFP, respectivamente, n é o coeficiente de Hill, e K é a dose β-estradiol que produz ½ (L _max + L _min).

Seqüência de oligonucleotídeos	Nome
5'-TTGAAACCA AACTCGCCTCT-3 '	DBD Verifique Encaminhar
5'-tccagagac ttcagggtgct-3 '	DBD check Reversa

Tabela 1. Primers para confirmar fusão correcta de DBD de interesse para o receptor de estrogênio. O iniciador directo é homóloga do promotor ACT1 e o iniciador reverso é homólogo ao receptor de estrogénio. Para DBDs típicas (~ 300 pb), o produto de PCR é <1,5 kb.

Seqüência de oligonucleotídeos	Nome
5'-ggccgc ... Local binging DBD ... t-3 '	Top oligo
5'-ctaga ... sítio de ligação do DNA reverter ... gc-3 '	Oligo inferior
5'-gcc gcGTGGGCG T GCGTGGGCG G G CGTGGGCG T GCGTGGGCG G GCGTG GGCG T GCGTGGGCG t-3 '	Top oligo + 6x Zif268 Sites Encadernação
5'-ctagaCGCCCACGCACGCCCACGCC CGCCCACGCACGCCCACGCCCGCC CACGCACGCCCACgc-3 '	Oligo inferior + 6x Zif268 Sites Encadernação

Tabela 2. STRUTURA de primers para a criação de dsDNA contendo sítios de ligação de interesse. Para criar a Z ₃ EV-responsive promotor, os oligonucleotídeos Top oligo + 6x Zif268 sítios de ligação e oligo inferior + 6x Zif268 foram usados ​​Binding.Seqüências para criar as saliências de DNA corretas estão em minúsculas. O sítio de ligação consenso Zif268, GCGTGGGCG, é sublinhado no top oligo.

Reagente	Quantidade
Tampão de quinase de polinucleótido T4	5 ul
Polinucleotídeo cinase de T4 (@ 10.000 unidades / ml)	1 ul
Topo de oligo (100 uM)	1,5 mL
Oligo inferior (100 uM)	1,5 mL
Água	41 mL

Tabela 3. Fosforilar e iniciadores de recozimento em um termociclador utilizando 50 ul de reacção descrito acima. Existem duas etapas termociclador. Passo 1: 37 ° C, 30 min (fosforilar), e Passo 2: 95 ° C 30 seg (descer 1 ° C em cada 30 segundos até a 4 ° C; hibridação).

Reagente	Quantidade
XbaI	1 ul
Notl-HF	1 ul
O DNA de plasmídeo	5 ul (1-2 ug)
10x Cut inteligente de buffer	5 ul
Água	38 mL

Tabela 4. Digestão de restrição do plasmídeo pMN8 com Xbal e Notl.

Reagente	Quantidade
T4 ligase Buffer	2 ul
T4 ligase	0,2 mL
Backbone @ 10 ng / mL	1 ul
Encadernação Seqüências @ 5x molar concentração / mL	1 ul
Água	15,8 mL

Tabela 5. Ligadura sítios de ligação para o DNA de plasmídeo.

Cartilha	Descrição
~ 40 pb a montante do ATG + CGCACTTAACTTCGCATCTG-3 '	Cartilha para a frente para amplificar KanMX-Promoter
5'-inversa do complemento (ATG + ~ 37BP) + TATAGTTTTTTCTCCTTGACG-3 '	Reverter primer para amplificar KanMX-Promoter
5'-caatttgtctgctcaagaaaataaa ttaaatacaaataaaCGCAC TTAACTTCGCATCTG-3 '	Cartilha para a frente para fazer troca GCN4 promotor.
5'-tggatttaaagcaaataaacttgg ctgatattcggacatTATAGTT TTTTCTCCTTGACG-3 '	Reverter cartilha para fazer troca GCN4 promotor.

Tabela 6. Amplificar por PCR KanMX-Promotor para fazer alelo titratible.

Discussão

Os interruptores com base de hormonas aqui descritas ter múltiplas aplicações, a partir do estudo da biologia celular nativo para testar a capacidade de um domínio de ligação ao ADN de interesse para alvejar uma sequência de ADN in vivo. O sistema tem muitas características desejáveis, incluindo uma resposta graduada para indutor, ação rápida, e regulação apertada (ie. Leakiness não mensurável, ver Figura 7). No entanto, ainda há espaço para melhorias e expansão.

Trabalhos recentes em biologia sintética tem enfatizado sistemas sintéticos de multiplexação e ampliando o repertório de bem caracterizados, peças de DNA programáveis ^​​16. Independente expressão condicional de genes-alvo distintos requer ambos os vários indutores e domínios de ligação ao DNA que não têm sobreposição de especificidade. A disponibilidade de receptores de engenharia e naturais fornece um grande conjunto de peças com as quais a desenvolver novos fatores de transcrição artificial. Expansão darepertório de interruptores ortogonais entre si, foi muito facilitada pela evolução dirigida aproxima ^17,18. Os esforços actuais para reprogramar a especificidade de ligação ao ligando dos nossos factores de transcrição artificiais serão apresentados no futuro.

Anteriormente, as conseqüências fenotípicas de gene exclusão / superexpressão têm sido extensivamente estudadas em leveduras ^19,20. No entanto, isso não tem sido fácil para estudar o efeito da expressão em diferentes fenótipos longo de uma gama de níveis de expressão. Uma característica principal do sistema aqui apresentado é a sua natureza graduada (Figura 8). Embora muitas vezes assumida, a relação entre a expressão dos genes e fenótipos de interesse pode não ser necessariamente monótona. Fatores de transcrição artificiais, como Z e Z ₃ EV ₄ EV vai tornar a tarefa de ensaiar as respostas fenotípicas para mudanças na expressão gênica direta.

Finalmente, os protocolos de discutired no texto são em engenharia e caracterizar factores de transcrição artificiais que respondem a β-estradiol, no entanto, uma importante alternativa para domínios quimicamente sensíveis é a utilização de domínios de luz que respondem a (tais como o PhyB/Pif3, LOV e BLUF), cujas atividades são reversíveis sem ter que perturbar o meio de crescimento da cultura ^21-23. Sistemas baseados em Luz facilitar o controle espaço-temporal da expressão gênica, interações proteína-proteína, transporte de íons, e atividade enzimática, que já provaram poderoso ^21-26.

Em conclusão, nós apresentamos os métodos para a rápida construção de factores de transcrição indutíveis, artificiais em levedura. Este protocolo fornece um modelo para a construção em conjunto com os repórteres GFP cognato, bem como métodos para a análise dos dados repórter usando citometria de fluxo e ensaio do efeito de activação de ATF em crescimento.

Materiais

Name	Company	Catalog Number	Comments
Name of the Reagent	Company	Catalogue Number	Comments
Expand High Fidelity PCR System	Roche	11 732 650 001
T4 DNA Ligase	NEB	M0202S
Competent E. coli	Life Technologies	18258-012
Estradiol	Tocris Biosciences	2824
Ampicillin	Fisher Scientific	BP1760-5
T4 Polynucleotide Kinase	NEB	M0201
PBS	Life Technologies	10010-23
Tween-20	Sigma-Aldrich	9005-64-5
clonNAT	Jena Bioscience	AB-102L
XbaI	NEB	R0145S
NotI-HF	NEB	R3189S
CutSmart Buffer	NEB	B7204S
Glucose	Fisher Scientific	D15-500
Bacto-Peptone	BD Biosciences	211677
Yeast Extract	BD Biosciences	210929
Agarose	BD Biosciences	214010
100% Ethanol	Decon Laboratories	04-355-222
G418	Life Technologies	11811-031
QIAprep Spin Miniprep Kit	QIAGEN	27104
Lithium acetate dihydrate	Sigma-Aldrich	L-6883
Salmon sperm DNA	Sigma-Aldrich	93283
PEG 3350	Sigma-Aldrich	P-3640
Plasmids pMN8 and pMN10; yeast strain yMN15	Noyes or Botstein labs
Luria Broth	Sigma-Aldrich	L3397
EQUIPMENT:
LSRII Flow Cyometer	BD Biosciences	Various Models
MATLAB or FlowJo	MATLAB or FlowJo		Software for analyzing .FCS files from flow cytometry experiments
R	Open Source		For analyzing growth-rate data from plate reader.
Falcon Tubes	BD Biosciences	352052
1.7 ml Eppendorf  Tubes	GeneMate	C3262-1
250 ml Shake Flasks	Corning	4446-250
96-well, flat-bottom plates	Costar	3635
Plate Reader (Synergy H1 Multi-Mode Plate Reader)	BioTek	H1MG
Breathe-Easy Membranes	Sigma-Aldrich	Z380059-1PAK
Thermocycler	various companies	Various models
SC-Ura powder	MP Biomedicals	114410622
5-FOA	Zymo Research	F9001-1