Fácil e precisa Mecano-profiling em micropost Arrays

Resumo

Described are protocols for quantifying mechanical interactions between adherent cells and microstructured substrates. These interactions are closely linked to essential cell behaviors including migration, proliferation, differentiation, and apoptosis. The protocols present an open-source image analysis software called MechProfiler, which enables determination of involved forces for each micropost.

Resumo

Cell culture substrates with integrated flexible microposts enable a user to study the mechanical interactions between cells and their immediate surroundings. Particularly, cell-substrate interactions are the main interest. Today micropost arrays are a well-characterized and established method with a broad range of applications that have been published over the last decade. However, there seems to be a reservation among biologists to adapt the technique due to the lengthy and challenging process of micropost manufacture along with the lack of easily approachable software for analyzing images of cells interacting with microposts.

The force read-out from microposts is surprisingly easy. A micropost acts like a spring with the cell ideally attached at its tip. Depending on size a cell applies force from its cytoskeleton through one or multiple focal adhesion points to the micropost, thus deflecting the micropost. The amount of deflection correlates directly to the applied force in direction and in magnitude. The number of microposts covered by a cell and the post deflection patterns are characteristic and allow determination of values like force per post and many biologically relevant parameters that allow “mechano-profiling” of cell phenotypes.

A convenient method for mechano-profiling is described here combining the first generation of ready-to-use commercially available microposts with an in-house developed software package that is now accessible to all researchers. As a demonstration of typical application, single images of bone cancer cells were taken in bright-field microscopy for mechano-profiling of cell line models of metastasis. This combination of commercial traction force sensors and open source software for analysis allows for the first time a rapid implementation of the micropost array technique into routine lab work done by non-expert users. Furthermore, a robust and streamlined analysis process enables a user to analyze a large number of micropost images in a highly time-efficient manner.

Introdução

Ensaios baseados em células sensíveis de Mecano-permitir que células aderentes para investigar, com uma ampla gama de aplicações, que reflectem o papel central que a mecânica pode desempenhar na biologia celular. Estas aplicações costumam se concentrar sobre os mecanismos subjacentes que impulsionam processos subcelulares ou comportamento de células inteiras. Por um lado, os factores ambientais externos tais como a composição da matriz extracelular ou a rigidez da matriz pode afectar dramaticamente a resposta mecânica e biológica de uma célula. ¹ O mesmo pode ser observada após a utilização de diversas classes de compostos farmaceuticamente activos, os efeitos dos quais são muitas vezes caracterizados utilizando modelos de cultura de células. ² sobre as outras propriedades genotípicas de mão, tais como aquelas causadas por mutações genéticas espontâneas ou induzidas experimentalmente, pode induzir alterações acentuadas no fenótipo da célula que estão associadas a alterações na estrutura e na função do citoesqueleto. ³ Estes exemplos têm apenas algumas das muitas possíveistópicos para os quais fenotipagem mecânica de células é relevante, e todos eles foram útil investigado com matrizes micropost.

No momento da redação deste artigo, aproximadamente 200 artigos foram publicados descrevendo a interação célula-micropost. Estas obras discutir aspectos teóricos da micropost princípios de deflexão bem como instruções práticas sobre o seu fabrico. O primeiro artigo descrevendo a interação das células e matrizes micropost flexíveis foi publicada por Tan e seus colegas em 2003. ⁴ Em contraste com a microscopia de força de tração clássica (TFM), onde os substratos macios contínuas são usadas para estimar a contratilidade de células nanonewton escala, Tan et al. descrito um método utilizando múltiplos feixes verticais espaçados feitas de elastómero de silicone. As principais vantagens desta técnica emergem duas características principais. Em primeiro lugar, a fim de alterar a rigidez célula-substrato resulta uma só precisa de mudar as dimensões, mantendo micropostcaso contrário, a composição do substrato constante e evitando-se assim diferenças de topologia de superfície e química. Segundo microposts atuar como molas individuais que podem ser analisados ​​de forma discreta com força e resolução espacial da ordem de adesões focais individuais e pode reduzir os desafios analíticos que são inerentes à análise análoga por padrão TFM.

Hoje, a gama de aplicações para matrizes micropost excede em muito apenas o mapeamento de forças por algumas células individuais. Por exemplo, Akiyama relata o uso de um tecido isolado a partir de um vaso dorsal lagarta da traça como um actuador para uma matriz micropost, a fim de desenvolver uma potência muscular autónoma micro-robô inseto. ⁵

No entanto, a maioria das aplicações publicadas de microposts concentraram-se em estudos de condições médicas, como infecção ou câncer. Por exemplo, matrizes micropost têm sido utilizados para estudar a geração de forças de empacotado pili de tipo IV de Neisseria gonorrhcolónias OEA que está associado com cascatas de sinalização reforço infecção. ⁶ Outros usaram microposts para estudar as células de câncer de mama tratados com compostos farmacêuticos visando o citoesqueleto. ⁷

Deflexão de um micropost é muitas vezes descrita usando a teoria clássica do feixe para um cantilever com uma carga final assumindo que a célula atribui apenas à ponta da micropost. Aqui, a força F aplicada que provoca uma deflexão δ depende do micropost "rigidez de flexão" e K é calculado por:

(1)

com E, I, e L sendo o módulo de Young, a área de momento de inércia e do feixe de comprimento, respectivamente. No entanto, os resultados de esta equação só dar uma aproximação geral das forças no trabalho desde feixe de corte e dobra, bem como a deformação de substrato não são levados em accontagem. Considerando que microposts são normalmente feitos de material macio, como polidimetilsiloxano (PDMS) à base de borracha de silicone esses fatores precisam ser incluídos. . Schoen et ai demonstraram a existência de um tal factor de correcção com base na relação do micropost (L / D) e do polímero correspondente coeficiente de Poisson v aspecto ⁸ É dada a.:

(2)

Com o t _inclinação (v) ser um coeficiente de inclinação que inclui um parâmetro de ajuste = 1,3 como pode ser encontrado no mesmo artigo:

(3)

Isso significa que a rigidez corrigido de um micropost _corr k é o produto da rigidez à flexão pura = k k _curvatura e o factor de correcção corrdado por:

(4)

Portanto, os cálculos de força da célula deve ser realizada utilizando a variação mais refinada da equação (1) lendo agora:

(5)

O impacto da correcção torna-se mais evidente, logo que os valores típicos para dimensões micropost são utilizados. Por exemplo, a 15 mícron de comprimento micropost com uma secção transversal circular e um diâmetro de 5 mm feito de borracha de silicone à base de PDMS leva a um factor de correcção de 0,77 e, por conseguinte, um cálculo não corrigido superestimariam as forças exercidas pelas células 23%. Isso se torna ainda mais grave para microposts com proporções menores.

Tradicionalmente, micropost análise de imagem também tem sido baseada na teoria de flexão feixe idealizada. Em 2005, o grupo que foi pioneira no uso de micrmatrizes OPOST publicou um software de análise de imagem adequada para a análise micropost ⁹ O software exige uma licença de software eo usuário deve tomar três imagens para cada posição.; cada um dos planos superiores e inferiores do micropost em modo de transmissão e outro em modo de fluorescência com a célula corada. Depois de comparar as posições superior e inferior para cada micropost o software determina um campo de força do vetor e calcula os parâmetros relacionados como força por post. Existem outros pacotes de software e os seus princípios de análise são brevemente mencionadas nos artigos correspondentes que os descrevem, mas estes pacotes de software de análise geralmente não estão disponíveis publicamente. ^10,11

As matrizes micropost concebidos para forças de células de mapeamento pode ser classificada como sendo uma disposição em micropost ortogonal ou um sextavado, o último dos quais têm a vantagem de todas as aberturas equidistantes entre microposts vizinho. Microposts típicos have uma secção transversal circular e as suas dimensões variam de 1,0 um a 10 um de diâmetro e 2 a 50 um de comprimento. ⁴ Contudo, microposts com secção transversal elíptica ou quadrado também têm sido relatados. ^12,13

O uso de misturas à base de silicone PDMS como material de micropost permite a adição de nanopartículas na mistura. Por exemplo a adição de cobalto nano-hastes permite uma ativação magnética do micropost e, assim, dá um outro grau de liberdade para potenciais projetos experimentais. ¹⁴ A maioria dos grupos produzir suas matrizes micropost em substratos rígidos planas como tampa de vidro ou dentro de uma placa de Petri. No entanto, Mann e colaboradores relataram recentemente uma matriz micropost formada sobre uma membrana elástica. ¹⁵ Esta permite a aplicação de células alongamento forças para células aderentes ao estudar ao vivo de células subcelular respostas dinâmicas em termos de contratilidade celular.

O estab e mais amplamente empregadocido processo para fazer matrizes micropost é baseado em litografia macia, tal como descrito nos protocolos de perspicaz Sniadecki e colegas. ^16-18 em processos de salas brancas curtas normalizados são utilizados para gerar as microstruturas no topo de uma pastilha de silício utilizando fotorresistente SU8. Isto é seguido por um processo de cópia, em que a borracha de silicone é lançada sobre as estruturas transferindo-se em moldes. Num segundo passo, estes moldes são utilizados para replicar a microestrutura inicial utilizando borracha de silicone sobre um substrato escolhido. No entanto, apesar da grande e crescente número de publicações relacionadas com a sua aplicação, estabelecendo um processo de fabricação para microposts leva tempo considerável, mesmo para especialistas micro-engenharia; há muitas etapas do processo que exigem otimização e adaptação ao ambiente de laboratório específico e layout micropost para se obter um nível de qualidade aceitável.

Micropost matrizes comerciais estão agora disponíveis em um pronto-to-uso ("off-the-shelf") formato com uma qualidade consistentemente alta. Como tal, são uma alternativa ao processo de fabrico complexo e moroso necessário para a produção no local. Neste trabalho uma matriz micropost comercialmente disponível foi utilizado para o mapeamento forças celulares usando uma imagem de microscopia de campo brilhante único. Mais importante este artigo descreve e documenta um software open-source totalmente funcional chamado MechProfiler, que está disponível para download como material suplementar a este manuscrito. Uma versão mantida activamente do software podem também ser encontradas em http://www.orthobiomech.ethz.ch.

A combinação de um ensaio de "off-the-shelf" e um software de análise de código aberto compatível reduz significativamente a barreira de entrada para alcançar experimentos precisos TFM. Os pesquisadores não têm acesso a qualquer instalações de sala limpa ou experiência em desenvolvimento de software pode analisar forças celulares com sucesso. Ele permite que um usuário para se concentrar nas mechanosensitivity saída ensaio ao invés de a tecnologia em si, e faz medições de força de tração disponíveis a uma comunidade mais ampla. Além disso, este é um passo importante para preparar o caminho para triagem automática de matrizes micropost.

O software de análise de MechProfiler processa imagens no formato de arquivo TIFF, PNG, BMP e JPG. As imagens podem ser tomadas através de fluorescência, contraste de fase, luz ou microscopia de campo brilhante. O programa autônomo é executado em conjunto com o livre Matlab Compiler Runtime (disponível em: Figura 12) e algoritmos subjacentes permitir o processamento de imagem simplificada, que permite ao usuário processar imagens com células únicas ou múltiplas em cerca de 1 min. Além disso, estas células podem ou ser vivo ou "Fixo".

O software MechProfiler é capaz de aumentar significativamente a análise dos dados de transferência por depender de reprodutibilidade das matrizes qualidade micropost comercial, mais especificamente, o padrão & #8220; não desvia "posição de cada post na matriz pode ser presumido contra uma grade ideal (desvios de fabrico para a grade nas matrizes utilizadas para este estudo foram inferiores a 100 nm).

Num curto abre uma selecção de ficheiros de imagem para análise, as culturas-los para a região de interesse, define as mensagens abrangidos pelas células ou que necessita de ser descartado, determina as posições de pós, calcula as deflexões / forças contra a grade ideal, e finalmente salva todos os dados específicos de celulares com a possibilidade de exportação, incluindo a uma planilha de escritório padrão.

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Protocolo

1. As células de cultura em micropost matrizes

Nota: Todas as etapas devem ser executadas em um gabinete de biossegurança para garantir a esterilidade. Os volumes dadas aqui são para T25 frascos de cultura celular. A cultura de células meio de receita e semeadura de células densidade são otimizados para linhas celulares de cancro do osso HuO9 e M132.

1. Preparar uma cultura de células para a semeadura em uma matriz micropost.
   1. Inspeccionar a qualidade de cultura de células, colocando o frasco de cultura sobre um microscópio de luz padrão. Certifique-se de que as células mostram um crescimento e morfologia típicas por estimar quanto do fundo garrafa de cultura é coberto. Uma cobertura de 70% -80% reflecte uma taxa de crescimento saudável. Preste atenção à quantidade de células flutuante uma vez que representam as células mortas e / ou uma cultura mato.
   2. Tripsinizar as células e por remover o meio de lavagem com 4 ml de solução salina tamponada com fosfato 1x tampão (PBS). Adicionar 0,8 ml de 1x tripsina / ácido etilenodiaminotetracético (EDTA) e incubar a temperatura ambiente até que a células desalojar, que leva cerca de 2-4 min. Verificar o processo com o microscópio e ocasionalmente bater suavemente o frasco para suportar o desalojamento.
   3. Adicionar 5 ml de meio de cultura celular (meio de Eagle modificado por Dulbecco (DMEM) / F12 com soro a 10% de bovino fetal (FBS), 1% de penicilina / estreptavidina (Pen / Strep)) para parar a reacção e para lavar as células residuais que ainda se sente na parte inferior do frasco. Em seguida, pipetar esta suspensão cima e para baixo várias vezes, para obter uma mistura homogénea. Certifique-se de pipeta todas as soluções em toda a área de crescimento original do frasco para ganhar uma desalojar eficaz.
   4. Transferir a suspensão de células para um tubo de 15 ml e centrifugar-lo usando uma centrífuga de bancada a 0,5 xg durante 3 min.
   5. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento de células em 5 ml de meio por pipetagem para cima e para baixo 5 vezes. Certifique-se evitar a criação de bolhas ao fazê-lo.
   6. Determinar a densidade celular utilizando uma câmara de contagem de células e um microsco luzpe. Verifique a suspensão de células na câmara de contagem celular para agregados de células e assegurar a ter apenas as células individuais para a experiência subsequente. Pipeta novamente para cima e para baixo várias vezes se as células tendem a formar agregados para separá-los.
   7. Dilui-se a suspensão de células com meio suficiente para obter uma solução de células de 25.000 células / ml. Misture bem invertendo o tubo fechado várias vezes.
2. Prepare uma matriz micropost para semeadura de células.
   Nota Crítica: Não pipete para a matriz micropost diretamente, pois isso poderia prejudicar os microposts, especialmente quando as bolhas indesejados são introduzidos. Além disso, certifique-se que a matriz micropost não resseca como ocorrendo forças capilares levar a colapso dos microposts.
   1. Colocar o substrato de vidro com a matriz micropost viradas para cima em um poço de uma placa de 12 poços, utilizando um par de pinças e molhá-lo por adição de 1 ml de etanol (99%). Incubar à temperatura ambiente durante 20-30 seg.
   2. Dilui-se o etanolpasso a passo através da adição de cerca de 1 ml estéril água desionizada (água Dl) do lado da aspiração e bem cerca de 1 ml, utilizando uma pipeta de transferência ou o dispositivo de aspiração. Repetir esta etapa, pelo menos, 3 vezes.
   3. Substituir o-água Dl com tampão PBS, do mesmo modo por adição de aspiração e aproximadamente 1 ml. Repita este passo 3 vezes.
   4. Substituir o-tampão de PBS com meio por aspiração e a adição de aproximadamente 1 ml de meio. Repita este passo 3 vezes.
3. Pipete 1 mL de solução de células (25.000 células) na parte superior de cada matriz micropost preparado. Fechar placa multi-poços e transferi-lo para uma incubadora _(CO2 5%, 37 ° C). Deixe as células aderir e crescer em cima de microposts para 6 -7 horas.
4. Inspecione o processo de adesão, ocasionalmente usando uma luz de um microscópio. Verifique se a maioria das células estão distribuídas em vários microposts.

2. Fixação e coloração de células

Nota: Todos os passos evolumes dadas aqui são para um único poço de uma placa de 12 poços. Recomenda-se a processar não mais do que quatro dos doze poços de cada vez para evitar a secagem dos poços após a aspiração de qualquer líquido, o que resultará num colapso das microposts.

1. Aspirar o meio do poço e lavar as células 2x com 1 ml de tampão PBS. Certifique-se a aplicar uma força suave durante a lavagem com PBS para remover os restos celulares que se acumulou na matriz micropost durante a incubação e de separar as células mortas.
2. Fixar as células com uma solução de formaldeído tamponada a 0,5 ml de 3,7% durante 5 min.
3. Substitua a solução de formaldeído por lavagem das 2x matriz micropost com 1 ml de água DI estéril.
4. Corar as células com corante (de 0,05% Azul Brilhante de Coomassie em 50% de água, etanol a 40% e ácido acético a 10%) durante cerca de 90 seg. Lavar o excesso de solução de coloração off 2x com 1 ml de água DI estéril. Adicionar 1 ml de água DI para micropost matriz.
5. Verifique resultado coloração utilizando um microscópio de luz. Repita tele coloração passo, se o corpo da célula for muito fraca para ser visualizado.
6. Matrizes micropost loja com as células marcadas na parte superior em uma geladeira a 4 ° C. Certifique-se de mantê-los sob a água em todos os momentos.

Imagem 3. celular

Nota: Passo 4 só se aplica aos microscópios sem infinidade corrigido óptica.

1. Adicionar 2 ml DI-água para uma placa de Petri com um fundo de vidro fino em alta resolução de imagem.
2. Transferir matriz micropost usando um par de pinças para o prato de imagens com as microposts voltado para cima.
3. Coloque a imagiologia de Petri sobre uma fase móvel de um microscópio de luz.
4. Rodar o anel de compensação da lente utilizada para geração de imagens até que o número na escala representa a espessura total de todos os materiais ao longo do percurso óptico para compensar o desfasamento em índices de refracção do substrato de vidro, o elastómero de silicone e o líquido em cima. Isso deve levar a uma aparência brilhante dos micropostsnúcleos.
5. Fechar o diafragma do lado da iluminação até 50% e remover quaisquer anéis de contraste de fase a partir do caminho óptico de comutação para um modo de campo brilhante comum.
6. Alinhe a matriz micropost que os microposts formar uma linha horizontal através do campo de observação. Definir um ponto de partida (por exemplo, superior esquerdo) e mova a placa de Petri gradual em toda a fase de varredura da matriz micropost enquanto tomar várias imagens.
7. Tire todas as imagens com a configuração de resolução mais alta para a câmera usando uma objetiva de 20X ou 40X. Destinam-se a ter uma única célula no centro da imagem.
8. Varrer ao longo do eixo Z através do substrato até que as pontas micropost estão no foco. Use a roda de foco fino ajuste do microscópio e transformá-lo no sentido de centrando-se na parte inferior micropost para cerca de 2-3 mm.
9. Estabelecer um procedimento de imagem padrão, tomando série de imagens de teste de uma seção matriz varrendo os parâmetros de imagem uma de cada vez (por exemplo, tempo de exposição,configuração de íris, as configurações de lâmpadas etc.). Analisar imagens com MechProfiler e determinar um conjunto de parâmetros adequados para uma análise rápida e confiável.

4. Análise de Imagem com Open Source Software "MechProfiler"

Nota: Todas as funções do software pode ser ativado com um dispositivo apontador com o botão esquerdo do mouse. No entanto, um operador treinado irá utilizar as teclas de atalho documentados projetado para ser na metade esquerda do teclado para permitir um processamento de imagem de duas mãos eficiente.

1. Comece análise de imagem software MechProfiler e abrir uma série de imagens que precisam ser analisados, clicando em "Abrir".
2. Introduza todos os parâmetros para a seção "Configurações" dada pelo desenvolvedor de software. Determinar os parâmetros que devem ser personalizada configurada (isto é, limite de contorno e à distância mínima) de acordo com os procedimentos descritos em detalhe no manual de software.
3. Analisar imagems um-por-um, cortando-os para a área de interesse, usando "Cortar" (clique e arraste com o botão do mouse pressionado). Clique duas vezes dentro do retângulo desenhado para concluir esta ação.
4. Marcação cada contorno celular visível um por um, clicando em "desenhar os contornos de células" e use o cursor de cruz para o desenho, incluindo todos os microposts a célula está ligado a.
5. Descarte qualquer microposts indesejados, clicando em "desfazer Mensagens" e usar o cursor de cruz para desenhar. Coloque todos os microposts que pertencem a uma célula do lado de fora da secção de imagem ou que são desviados por qualquer outro motivo, mas não pela célula de interesse.
6. Comece a sub-rotina software "Encontre Centróides" pelo clique do mouse. Ajuste a definição direita ao lado do botão "Find Centróides" até que todos os microposts são registradas, o que é visível por uma cruz vermelha em seu centro de filtro. Se a definição de filtro é muito baixa microposts irá ser ignorado, se ele for muito elevado de muposições ltiple será marcada para uma única micropost. Mantenha o filtro definição constante durante uma sessão de análise.
7. Use a função de edição manual "Editar Manual" para centroids com múltiplas posições perdidas ou micropost. Use o cabelo do mouse cruz para seleccionar a micropost em questão clicando e arrastando-o do outro lado. Clique duas vezes dentro do retângulo e coloque o marcador vermelho ausente na seção imagem ampliada, que fecha automaticamente. Descarte um tal micropost se ele está fora do contorno celular desenhado (ver passo 4.5) antes de prosseguir.
8. Encontre a grade micropost ideal ativando a função "Gerar Grid" com um clique do mouse. Garantir a posição corresponde com a cabeça micropost verdade, mostrado por um anel azul, dentro do contorno celular desenhado.
9. Corrija qualquer fabricante grade deslocada dentro da área da célula onde for necessário utilizar a função "Manuel Editar" correspondente com um clique do mouse. Use a mira para selecionar o micropost em question clicando e arrastando-o do outro lado. Clique duas vezes dentro do retângulo que aparece e coloque o marcador azul ausente na seção imagem ampliada, que fecha automaticamente.
10. Use o botão "Calcular" deflexões pelo clique do mouse para obter um histograma dos valores de deflexão calculados com base na diferença entre a posição de um micropost dentro da seção de imagem e da grelha ideal gerado.
11. Salve a análise completa, incluindo as tabelas de valores por um clique do mouse em "Salvar".
12. Continuar a análise de imagem clicando em "Reset View" e analisar outra seção imagem ou clique do mouse em "Next Imagem", que convenientemente pode ser feito usando a tecla cursor do teclado direito.

5. Análise de Dados - Mechanoprofiling

1. Abra o arquivo "Results.xls" com um programa de escritório planilha da pasta com as imagens analisadas. Ele contém os dados com all valores calculados, incluindo todos os desvios micropost e medidas de derivados convencionais, tais como o trabalho (isto é, a energia de deformação do substrato) pela célula analisado.

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Resultados

A principal vantagem da técnica descrita reside na sua simplicidade e potencial para integração rápida e eficaz para o trabalho de laboratório de rotina. A combinação de alta qualidade conjuntos de sensores comerciais combinados com software de código aberto fornece informações sobre mecano-sensibilidade que seria de outra forma exige o acesso a instalações de salas limpas e conhecimento em profundidade de análise de imagem e desenvolvimento de software. A figura 1 ilustra o fluxo de trabal...

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Discussão

Este trabalho visa avançar no campo da microscopia de força de tração, diminuindo substancialmente os obstáculos técnicos e práticos à entrada. Estas barreiras vêm de dois lados. Primeiro e mais importante são os inúmeros desafios técnicos não triviais que devem ser superados para a fabricação reprodutível e comissionar uma matriz micropost experimentalmente. Em segundo lugar, é a necessidade de forma semelhante não trivial para uma análise semi-automatizado de confiança de forças de células única...

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Materiais

Name	Company	Catalog Number	Comments
T25 cell culture flasks	Nunc	156367
1x PBS-buffer	Sigma	D8537
0.5% Trypsin-EDTA	Life Technologies	15400054
Medium DMEM/F12	Sigma	D8437
FBS South America	Life Technologies	10270106
Penicillin-Streptomycin 100x	Sigma	P4333
15 ml centrifuge vials	Sarstedt	62.554.502
Micropost array pre-coated with Collagen I/Fibronectin	MicroDuits	MPA-col1/FN	Micropost dimensions: Ø=6.4 µm, l=18.2 µm; grid=13 µm, kcorr=2.87 nN/µm
Ethanol abs p.A.	Merck	100.983
12-well plate	Nunc	150628
Formalin solution, neutral buffered 10%	Sigma	HT5011
Brilliant Blue G-250	Sigma	27815	Coomassie blue
Methanol ACS p.A.	Merck	1.06009
Acetic acid	Sigma	695092
Glass bottom dish	WillCo Wells BV	GWSb-3522	35 mm diameter, aperture 22 mm
T-100 Eclipse	Nikon	n/a	Inverted microscope
D3-L3	Nikon	n/a	Camera controler
DS Fi2	Nikon		Camera