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Resumo

O objectivo geral da técnica de criação de perfil de polysome é análise da actividade translacional de mRNAs individuais ou mRNAs transcriptome durante a síntese de proteína. O método é importante para estudos de regulamento de síntese de proteínas, ativação de tradução e repressão em saúde e várias doenças humanas.

Resumo

Expressão de proteínas adequada na hora certa e na quantidade certa é a base da função celular normal e sobrevivência em um ambiente de rápida mudança. Por um longo tempo, os estudos de expressão do gene foram dominados pela pesquisa sobre o nível transcricional. No entanto, os níveis de estado estacionário de mRNAs não se correlacionam bem com a produção de proteína, e a Traduzibilidade dos mRNAs próprios varia muito dependendo das condições. Em alguns organismos, como o parasita Leishmania, a expressão da proteína é regulada principalmente no nível de translação. Estudos recentes demonstraram que essa proteína tradução hipotalâmica é associada com câncer, metabólica, neurodegenerativas e outras doenças humanas. Polysome de criação de perfil é um poderoso método para estudar o Regulamento de tradução da proteína. Permite medir o status translacional de mRNAs individuais ou examinar tradução na escala do genoma. A base desta técnica é a separação de polissomos, ribossomos, suas subunidades e mRNAs gratuito durante a centrifugação de uma citoplasmática lisados através de um gradiente de sacarose. Aqui, apresentamos um polysome universal de perfil protocolo usado em três modelos diferentes - parasita Leishmania major, culturas de células humanas e tecidos animais. Células de Leishmania crescem livremente em suspensão e culturas de células humanas crescem em monocamada aderente, enquanto o testículo de rato representa uma amostra de tecido animal. Assim, a técnica é adaptada a todas estas fontes. O protocolo para a análise das frações polysomal inclui detecção de níveis de mRNA individuais por RT-qPCR, proteínas por Western blot e análise de RNAs ribossomal por eletroforese. O método pode ser novamente prorrogado por exame de mRNAs associação com o ribossoma num nível transcriptoma por RNA-seq profunda e análise de proteínas associadas Ribossoma por espectroscopia de massa das frações. O método pode ser facilmente ajustado para outros modelos biológicos.

Introdução

Regulação da expressão gênica em células é controlada por mecanismos transcriptional, posttranscriptional e pós-traducional. Avanços no sequenciamento de RNA profundo permitam o estudo dos níveis de mRNA de estado estacionário no genoma escala em um nível sem precedentes. No entanto, descobertas recentes revelaram que nível de mRNA de estado estacionário não sempre se correlaciona com a produção de proteína1,2. O destino de uma transcrição individual é muito complexo e depende de muitos fatores, como estímulos internos/externos, stress, etc. Regulação da expressão gênica durante a síntese de proteína fornece outra camada de controle de expressão necessária para uma resposta rápida na mudança de condições. Polysome (ou "polyribosome") de criação de perfil, a separação e visualização de ativamente traduzir ribossomas, é um poderoso método para estudar a regulação da síntese de proteínas. Embora, suas primeiras aplicações experimentais apareceram na década de 19603, polysome perfil é atualmente uma das técnicas mais importantes na proteína tradução estudos4. MRNAs único pode ser traduzidos por mais de um ribossoma, levando à formação de um polysome. As transcrições podem ser paralisadas em ribossomas com cicloheximida5 e mRNAs contendo números diferentes de polissomos podem ser separados no processo de fracionamento de polysome por ultracentrifugação gradiente de sacarose6,7 , 8 , 9. análise de RNA de frações polysomal então permite a medição de mudanças nos Estados translacionais de mRNAs individuais no genoma-larga escala e durante diferentes condições fisiológicas4,7, 10. o método também tem sido usado para revelar os papéis de 5' UTR e 3' UTR sequências no controle do mRNA Traduzibilidade próprios11, examinar o papel dos miRNAs em repressão traducional12, descobrir defeitos na biogênese Ribossoma13 e compreender o papel das proteínas Ribossoma-associados com doenças humanas14,15. Durante a última década, um crescente papel para regulação da expressão gênica durante a tradução emergiu que ilustra a sua importância em doenças humanas. A evidência para controle de translação em câncer, metabólica e doenças neurodegenerativas é esmagadora15,16,17,18. Por exemplo, a desregulação do controle traducional eIF4E-dependente contribui para autismo relacionados com os défices15 e FMRP está envolvido em empatar de ribossomos na mRNAs ligados ao autismo14. Assim, polysomal de criação de perfil é uma ferramenta muito importante para estudar os defeitos no Regulamento translacional em várias doenças humanas.

Análise de proteínas de frações polysomal sob diferentes condições fisiológicas disseca a função dos fatores associados a ribossomas durante a tradução. A técnica de polysome de perfil tem sido usada em muitas espécies, incluindo leveduras, células de mamíferos, plantas e protozoários10,19,20,21. Protozoários parasitas como o Trypanosoma e Leishmania exibem limitado controle transcricional da expressão do gene. Seus genomas são organizadas em clusters de gene policistrônico que falta a transcrição regulada promotor22. Em vez disso, a expressão gênica no desenvolvimento é predominantemente controlada ao nível da tradução de proteínas e estabilidade do mRNA em Trypanosomatidae espécie23,24. Portanto, a compreensão do controle translacional na ausência de regulamento transcriptional é particularmente importante para estes organismos. Perfil polysomal é uma ferramenta poderosa para estudar posttranscriptional regulação da expressão gênica em Leishmania25,26,,27,28.

Os recentes progressos na detecção de níveis de mRNAs individuais pelo real tempo PCR quantitativo (RT-qPCR) e transcriptoma completa por sequenciamento de próxima geração, bem como tecnologias de proteômica, traz a resolução e as vantagens de polysomal perfil a um novo nível. A utilização desses métodos pode ser estendida ainda mais através da análise das frações de polysomal individuais por sequenciamento de RNA profundo combinado com análise proteômica para monitorar o status de translação de células na escala do genoma. Isto permite a identificação de novos jogadores moleculares regulamenta tradução sob diferentes condições fisiológicas e patológicas. Aqui, apresentamos um polysome universal de perfil protocolo usado em três modelos diferentes: o parasita Leishmania major, culturas de células humanas e tecidos animais. Apresentamos o Conselho sobre a preparação de lisados celulares de organismos diferentes, otimização das condições de gradiente, escolha de inibidores de RNase e aplicação de RT-qPCR, Western blot e eletroforese de RNA para analisar frações de polysome neste estudo.

Protocolo

Todos os tratamentos de animais e manipulação de tecidos obtidos no estudo foram realizadas de acordo com protocolos aprovados pelo institucional Cuidado Animal e uso do Comité da Texas Tech University Health Science Center, em conformidade com os institutos nacionais de Diretrizes de saúde ao bem-estar dos animais, o número de protocolo 96005. Por favor, sacrificar animais vertebrados e preparar os tecidos de acordo com as orientações do Comité de uso e cuidado institucional do Animal. Se falta tal um comitê, por favor consulte as diretrizes de bem-estar animal do National Institutes of Health. Adulto (> 60 dias de idade) foram utilizados camundongos C57BL/6. Todos os animais e os tecidos foram obtidos de acordo com protocolos aprovados pelo Comité de uso no centro de Ciências de Texas Tech University saúde em conformidade com as diretrizes de bem-estar animal do National Institutes of Health e institucional Cuidado Animal. Por eutanásia, um único rato foi colocado em uma pequena câmara, e o ar foi deslocado gradualmente com cerca de 30% de dióxido de carbono para anestesiar e minimizar o sofrimento do animal. Após a cessação da respiração, usamos o deslocamento cervical para confirmar a morte do animal antes da colheita de tecidos.

Atenção: Todo trabalho com vivo Leishmania e culturas de células humanas foi feito no gabinete em BSL-2 certificado de laboratório de biossegurança.

1. preparação de Lysates citoplasmática de Leishmania Major , culturas de células humanas e tecidos de Mouse

Nota: Existem várias diferenças nas preparações lisadas dos materiais de fonte diferente. Outras etapas, incluindo a preparação de gradiente de sacarose e fracionamento polysomal são idênticas e não dependem de fonte de exemplo.

  1. Preparação de lisado citoplasmática de Leishmania major
    1. Inocular a células de Leishmania major (FV1 estirpe) em 30 mL de 1 x M199 médio29 contendo a mistura de 10% de soro Fetal bovino (FBS) e penicilina/estreptomicina (100 unidades e 100 μg/mL correspondentemente)em densidade de 1 x 105 células/mL .
      Nota: Todas as etapas que envolvem as células de Leishmania major devem efectuar-se em uma armário de biossegurança.
    2. Coloque as células na incubadora e cultivá-las a 27 ° C até a fase logarítmica (meados log corresponde a 5 x 106 células/mL). Normalmente demora cerca de dois dias para crescer.
    3. Adicione cicloheximida à cultura da Leishmania major para uma concentração final de 100 μg/mL para prender os ribossomas na mRNAs traduzidos. Colocar as células em incubadora para 10 min a 27 ° C.
    4. Após tratamento de cicloheximida, transferir as células para um tubo cónico de 50 mL e girá-los em 1.800 x g e 4 ° C por 8 min. Discard sobrenadante.
    5. Lavam-se células com 30 mL de solução salina de tampão fosfato de Dulbecco (DPBS). Centrifugue a 1.800 x g e 4 ° C 8 min.
    6. Desprezar o sobrenadante. Ressuspender as células em 1 mL de DPBS.
    7. Tomar uma alíquota de células e misturá-lo com solução de formaldeído de 3,5%.
    8. Contar as células por hemocytometer e determinar a sua concentração. Transferi o número desejado de células no tubo de microcentrífuga. Lisado preparado a partir de 0.5x108-2 x 108 células/mL é suficiente para o carregamento de gradiente de um sacarose.
    9. Girar as células a 1.800 x g e 4 ° C por 8 min. descartar o sobrenadante.
    10. Ressuspender as células no gelo em 1 mL de tampão de Lise contendo inibidores de protease e o inibidor de RNase (20 mM HEPES-KOH, pH 7,4, 100 mM KCl, 10 mM MgCl2, 2mm TDT, 1% NP-40, 1 x inibidor da protease cocktail (EDTA-free), inibidor de RNase 200 unidades/mL).
    11. Passe o lisado através de uma agulha de calibre 23 três vezes. O lisado deve tornar-se transparente após a passagem da agulha.
    12. Centrifugue a 11.200 x g e 4 ° C por 10 min esclarecer lisado. Transferir o esclareceu lisado para um novo tubo e mantê-lo no gelo até ultracentrifugação gradiente de sacarose.
    13. Colete 400-500 μL do lisado como entrada (para analisar mais tarde), congelá-lo imediatamente em nitrogênio líquido para análise futura da proteína ou adicionar o reagente de purificação de RNA antes de congelar para análise de RNA.
  2. Preparação de lisado citoplasmática de culturas de células humanas de HeLa
    1. Dividir células HeLa e semente-los em 20 mL do meio DMEM contendo a mistura de 10% FBS e penicilina/estreptomicina (100 unidades e 100 μg/mL correspondentemente) com célula contar 2 x 105 células/mL em uma placa de 15 cm.
    2. Desenvolvem-se células HeLa a 37 ° C, 5% de CO2 para transfeccao de DNA de plasmídeo de executar de 20-24 h. de acordo com os protocolos do fabricante.
    3. Propaga as células para 24h depois do transfection a 37 ° C, 5% de CO2.
    4. Adicione cicloheximida células de HeLa crescidos para a concentração final de 100 μg/mL para prender os ribossomas na mRNAs traduzidos e incubar as células por 10 min a 37 ° C, 5% de CO2. Aspire médio. Lave as células duas vezes com frio DPBS no gelo.
    5. Adicionar 500 μL de tampão de lise (pH 7,4, 100 mM KCl, 5 mM MgCl2, 1 milímetro DTT, 0,5% NP-40, inibidor de protease 1x cocktail (EDTA-free), 200 unidades/mL de heparina de inibidor ou 1 mg/mL RNase de 20 mM HEPES-KOH) para a placa e raspe as células no gelo.
    6. Transferi as células lisadas para o tubo de microcentrífuga. Ajuste a concentração de NP-40 para 0,5% e MgCl2 a 5 mM de acordo com o aumento do volume da amostra.
    7. Passe o lisado através de uma agulha de calibre 23-3 - 6 vezes.
    8. Gire a 11.200 x g e 4 ° C, durante 8 min esclarecer lisado. Após a centrifugação, transferi o sobrenadante para um tubo novo. Use um espectrofotômetro para avaliar a eficiência de lise celular e para determinar a quantidade de amostra para o carregamento do gradiente. Adicionar 10 μL de amostra de 0,5 mL de 0,1% de sódio Dodecil sulfato de sódio (SDS). Em branco contra 0,1% SDS. Medir a absorvância a 260 nm. Valor de absorvância esperado é em torno de 15-20 unidades/mL.
    9. Dilua as amostras com tampão de Lise para o mesmo valor de absorvância antes de centrifugação gradiente de sacarose. Mantenha as amostras no gelo até centrifugação gradiente de sacarose.
  3. Preparação de lisado citoplasmática de testículo de rato
    1. Disse o testículo de rato. Faça uma pequena incisão na túnica albugínea e coletar os túbulos seminíferos dos testículos e transferi-los em um tubo cônico de 15 mL contendo 5 mL de DPBS suplementado com fluoreto de phenylmethylsulfonyl de 0,1 mM (PMSF).
    2. Misture vigorosamente o tecido várias vezes por inversão. Permitir que o tecido pagar na gravidade da unidade no gelo por 5 min.
    3. Remova e descarte o nublado tampão contendo conjuntivo células e fragmentos de tecido. Repita o procedimento 2-3 vezes mais. A pelota branca restante é enriquecida por túbulos seminíferos e as células germinativas.
    4. Transfira a pelota do tubo seminífero para um tubo de microcentrifuga de 2ml e girar a 500 x g por 1 min. descartar o sobrenadante.
    5. Adicione 500 µ l de tampão de lise (20 mM Tris-HCl, pH 7,4, 100 mM KCl, 5 mM MgCl2, 1 milímetro DTT, 0,5% NP-40, inibidor de protease 1x cocktail (EDTA-livre), 1 mg/mL heparina ou 200 unidades/mL de inibidor de RNase) para os túbulos. Use uma pipeta para triture o tecido.
    6. A suspensão de transferência de um pequeno (0,5-1,0 mL) homogenizacao homogenizador. Perturbar o tecido com sete a oito cursos do pilão de vidro.
    7. Transfira o lisado para um tubo de microcentrifugadora de 1,5 mL.
    8. Centrifugar a amostra a 12.000 x g e 4 ° C, durante 8 min limpar o lisado. Transfira o sobrenadante para um tubo novo e a loja no gelo até o carregamento do gradiente de sacarose.
    9. Coletar 50 μL do lisado como exemplo de entrada, congelá-lo imediatamente a-80 ° C para análise futura da proteína; ou adicionar o reagente de purificação de RNA antes de congelar para análise de RNA.

2. ultracentrifugação e preparação de gradiente de sacarose

  1. Prepare duas gradiente soluções de sacarose (20 mM HEPES-KOH, pH 7,4, 100 mM KCl, 10 mM MgCl2, 1 milímetro DTT, 1 x inibidor da protease cocktail), contendo 10% de sacarose ou 50% de sacarose. (Tris-HCl, pH 7,4, pode ser usado em vez de HEPES). Adicione 200 unidades/mL, heparina de inibidor ou 1 mg/mL RNase de acordo com o projeto experimental. Colocar um tubo de se para SW 41 rotor no bloco de marcador e desenhar a linha ao longo do nível superior do bloco. Transferi o tubo em um rack de estável.
  2. Pegue uma seringa de 10 mL com o dispositivo de estratificação anexado e encha a seringa com solução de sacarose a 10% (preparada como acima). Delicadamente, liberá-lo na parte inferior do tubo se até que ele atinja a marca no tubo.
  3. Encha outra seringa com 50% de solução de sacarose e insira cuidadosamente o seu dispositivo de camadas através da camada de sacarose 10% para o fundo do tubo. Solte suavemente solução de sacarose a partir do fundo, até que ele atinja a marca no tubo. Feche o tubo com a tampa fornecida.
  4. Para preparar o gradiente de sacarose, rode o dispositivo de fabricante gradiente ON. Nivele a placa usando a cima ou para baixo botões e pressione DONE. Nivelamento é importante para a linearidade do gradiente.
  5. Após o nivelamento da placa pressione GRAD para abrir o menu de gradiente. Ir para a lista no menu gradiente e selecione o rotor SW 41 Ti. Em seguida, escolha o gradiente de sacarose desejado da lista de menu usando os botões UP e DOWN . Usode imprensa.
  6. Coloque o suporte de tubo gradiente na placa do fabricante gradiente. Transferi o tubo no suporte. Até 6 gradientes podem ser preparados ao mesmo tempo. Pressione executar. O fazedor de gradiente gira os tubos na velocidade programada e ângulos formando um gradiente linear. Levará apenas alguns minutos para preparar o gradiente.
  7. Quando o processo estiver concluído, coloque os tubos em um rack. Tire as tampas. Retire o topo dos tubos se o mesmo volume que o volume da amostra.
  8. Cuidadosamente carrega 400-500 μL de lisado contendo 15-20260 unidades de polissomos na parte superior. Coloque os tubos em baldes do rotor e equilibrá-los.
  9. Centrifugue a 260.000 x g e 4 ° C por 2 h, usando o rotor SW 41.

3. polysome fracionamento e coleta de amostra

Nota: Enquanto lisadas preparações têm algumas diferenças dependendo da fonte, gradientes protocolos de fracionamento de preparação e polysome são as mesmas para todos os tipos de lisados.

  1. Após a conclusão da ultracentrifugação, coloque os baldes de rotor com os tubos em gelo. Vire o coletor de fração e sintonizei gradiente ON. Clique em SCAN no menu fracionadores. Colocar um rack com 24 tubos de colheita para o coletor de fração.
  2. Encha um reservatório de lavagem do lado o fracionador com água desionizada. Pressione a tecla enxágue durante 10 s para enxaguar a bomba no fracionador. Conecte um adaptador de enxaguar com a seringa cheia de água para o pistão para a calibração.
  3. Abra o software sintonizei no computador. Imprensa de calibrar. Use as configurações padrão e pressione Okey. Prepare-se injetar água da seringa.
  4. Pressione Okey para fazer a calibração. Iniciar imediatamente a injetar água para os próximos 5 s. Durante este tempo, água fluirá através da célula de fluxo do detector de UV e o instrumento pode ser calibrado. O sinal ZERO calibração concluída será exibida. O instrumento está pronto para fracionamento.
  5. Remova o adaptador de enxaguar com a seringa. Coloque uma ponta para o pistão do fracionador.
  6. Abra o ar da válvula e imprensa ar chave de bronze para 10 s para tubulação seca e célula de fluxo. Feche a válvula de ar.
  7. Delicadamente, retire o tubo gradiente do balde do rotor e colocá-lo no cesto. Aplicar a tampa do porta tubo até o topo do tubo e cuidadosamente mover o tubo no suporte do tubo e prenda-a na posição.
  8. Coloque o suporte sob o pistão do fracionador. Muitas vezes, bandas polysomal podem ser vistas a olho nu. Introduzir as configurações desejadas para números de fração e de volume (24 fracções em 500 μL/fração são geralmente suficientes). Nomeie o arquivo adequadamente. Pressione Okeye, em seguida, Vá para o gráfico de botão. Na janela seguinte, pressione Iniciar digitalização. Aparecerão as configurações, pressione Okey. O coletor se moverá da sarjeta para a primeira fração e o pistão se moverá dentro do tubo. Quando o pistão atinge o topo do gradiente reduzirá a velocidade selecionada e as frações serão coletadas. Quando concluído, o pistão move-se fora do tubo gradiente.
  9. Abra o ar da válvula e imprensa ar chave de bronze sobre o fracionador para recuperar a última fração.
  10. Mova os tubos de rack no gelo.
  11. Adicione 2 volumes de reagente de purificação de RNA de cada fração e flash congelam em nitrogênio líquido até a purificação do RNA. Como alternativa, se a proteína precisa ser analisado, adicione ácido tricloroacético para a concentração final de 10% para concentrá-las para a mancha ocidental (ver secção 8).

4. preparação do RNA sintético In Vitro para normalização dos mRNAs níveis durante a análise de dados do RT-qPCR

Nota: A e. coli OmpA mRNA é usada neste protocolo para normalização. Qualquer outro RNA que não tem identidade extensa com os mRNAs do organismo estudado (mamíferos ou Leishmania) pode ser usado.

  1. Prepare o fragmento de DNA OmpA contendo a sequência do promotor SP6 por uma reação de PCR padrão de um plasmídeo contendo o gene de OmpA30.
  2. Prepare-se 100 µ l da mistura: 80 mM HEPES-KOH, pH 7,5, 16 mM MgCl2, 2mm espermidina, 10 mM DTT, 3mm ATP, CTP, de 3 mM 3 mM UTP, 3mm GTP, inibidor de RNase U/μL 0.5, 1 μg do DNA de PCR OmpA, 3 μL SP6 RNA polimerase , Pyrophosphatase de U/μL 0.005.
  3. Incube a 40 ° C por 2 h.
  4. Purifica o RNA através de um kit de purificação de RNA.
  5. Medir a concentração por espectrofotômetro e examinar por eletroforese em gel de agarose.

5. RNA isolado do gradiente frações e cDNA preparação

Nota: Proceda diretamente com este protocolo para a purificação de RNA se um inibidor de RNase foi usado como um inibidor do ribonuclease. No entanto, quando usado como um inibidor do ribonuclease, heparina vai inibir a transcriptase reversa, utilizado na preparação de cDNA. Portanto, será necessário purificação adicional do RNA se heparina foi usada na Lise e gradiente. Consulte a seção 6 para preparar RNA para a síntese do cDNA, se heparina foi usada.

  1. Descongelar as amostras contendo o reagente de purificação de RNA, adicionar 20 ng do RNA sintético como controle interno para a normalização dos resultados de RT-qPCR. Prosseguir com a preparação do RNA de acordo com o protocolo do fabricante exceto uma modificação. Adicione 1 µ l de precipitação de isopropanol prévia do RNA da classe glicogênio (20 µ g). Dissolva pelotas de RNA em 20-25 µ l de água livre de RNase.
    Nota: Glicogênio serve como um portador e ajuda a evitar perdas e visualizar a pelota do RNA durante a purificação. OmpA mRNA é usada para normalização ainda mais nas reações de RT-qPCR.
  2. Medir a concentração de RNA usando espectrofotômetro para garantir o rendimento adequado. Combinam-se volumes iguais de frações de RNA contendo 40, 60 e monosomes como prepolysomes. Frações contendo 2-4 ribossomas combinam como polissomos luz e frações com 5-8 ribossomos combinam como polissomos pesados.
  3. Use 5-10 µ l de RNA das fracções combinadas para preparar os cDNAs usando um kit e seguindo as recomendações do fabricante.
  4. Adicione 80 µ l de água livre de nuclease a 20 µ l de cDNA. Congelar as amostras de cDNA a-20 ° C.

6. RNA purificação da contaminação de heparina

Nota: Heparina inibe enzimas como a transcriptase reversa de processamento do ácido nucleico. Portanto, use este protocolo de purificação adicional quando a heparina é usada a Lise e/ou gradiente.

  1. Adicione o LiCl para uma concentração final de 1 M, para as amostras de RNA purificadas.
  2. Misturar as amostras e incubar no gelo por 1h.
  3. Gire as amostras a 16.000 x g e 4 ° C por 15 min.
  4. Remova o sobrenadante tão completo quanto possível, usando uma pipeta.
  5. Secar ao ar livre as pelotas por cerca de 5 min.
  6. Re-suspenda as pelotas do volume inicial de água livre de RNase.
  7. Executar a medição espectrofotométrica em 260 nm para determinar a concentração do RNA. Geralmente, a perda da amostra é mínima.

7. RT-qPCR e análise de dados de distribuição de mRNA

  1. Combine 10.2 μL de água, 20 μL de SYBR Green, 4.8 μL de primers específicos do gene (conjunto de 2,5 μM cada), 5 μL de cDNA, misture bem e carregar 10 μL por poço no triplica em placa de 384.
  2. Cubra o prato com película adesiva firmemente e centrifugar a placa a 1.800 x g por 5 min.
  3. Usar um instrumento de PCR em tempo real configurar qPCR reação sob condições mostrada na tabela 1.
  4. Usando o limite do ciclo (CT) valores e CT (ΔΔCT) método comparativo31 calcular o percentual (%) de distribuição de mRNA em prepolysomes, luz e polissomos pesados como descrito32 com uma modificação. Use o RNA sintético (OmpA aqui) para a normalização de dados na análise de dados de RT-qPCR. O RNA sintético fornece um controle de normalização que permite calcular os níveis relativos de mRNAs e compará-los em diferentes frações de um gradiente.

8. análise de proteínas em frações Polysomal pela mancha ocidental

  1. De um estoque de 100% (p/v), adicionar o ácido tricloroacético (TCA) para as frações selecionadas (500 µ l) a uma concentração final de 10%, manter no gelo pelo menos 15 min, centrífuga em uma microcentrífuga por 5 min, descartar o sobrenadante, lave duas vezes com acetona gelada e dissolver em 25 μL de S Amortecedor de carregamento da amostra do DS-página para a electroforese.
  2. Carregar sobre o SDS-PAGE e conduta electroforese padrão com transferência seguinte à membrana de PVDF. Proceda à mancha33ocidental.

Resultados

Neste estudo, descrevemos a aplicação da técnica de criação de perfil polysomal de três fontes diferentes: o parasita Leishmania major, culturas de células humanas e testículo de rato. Células de Leishmania crescem livremente nos meios líquidos em suspensão, culturas de células humanas crescem em monocamada a aderente em placas, e o testículo de rato representa uma amostra de tecido. O método pode ser facilmente ajustado para outros tipos de células cultiv...

Discussão

Fracionamento de polysome por gradiente de sacarose combinado com RNA e proteína análise de frações é um poderoso método para analisar o status translacional de mRNAs individuais ou a translatome toda, bem como funções de fatores de proteína regulação traducional máquinas durante o estado fisiológico ou doença normal. Perfil polysomal é uma técnica especial apropriada para estudar Regulamento translacional em organismos como tripanossomatídeos incluindo Leishmania onde controle transcricional é...

Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Os autores agradecer Ching Lee ajuda com gravação de áudio. A pesquisa foi apoiada pelos fundos de start-up da Texas Tech University Centro de Ciências da saúde e pelo centro de excelência de neurociência translacional e terapêutica (Miocardite) concede PN-Miocardite 2017-05 AKHRJDHW a A.L.K.; em parte, pela concessão de NIH R01AI099380 K.Z. James C. Huffman e Kristen R. Baca foram estudiosos CISER (centro para a integração da haste Educação & pesquisa) e foram apoiadas pelo programa.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Instruments:
Gradient masterBiocomp Instruments Inc.108
Piston Gradient FractionatorBiocomp Instruments Inc.152
Fraction collectorGilson, Inc.FC203B
NanoDrop OneThermo ScientificNanoDrop One
Nikon inverted microscopeNikonECLIPSE Ts2-FL/Ts2
2720 Thermal CyclerApplied Biosystems by Life Technologies4359659
CO2 incubatorPanasonic Healthcare Co.MCO-170A1CUV
HERATHERM incubatorThermo Scientific51028063
Biological Safety Cabinet, class II, type A2NuAire Inc.NU-543-400
Revco freezerRevco TechnologiesULT1386-5-D35
Beckman L8-M UltracentifugeBeckman CoulterL8M-70
CentrifugeEppendorf5810R
CentrifugeEppendorf5424
Ultracentrifuge Rotor SW41Beckman Coulter331362
Swing-bucket rotorEppendorfA-4-62
Fixed angle rotorEppendorfF-45-30-11
Quant Studio 12K Flex Real-Time PCR machine 285880228Applied Biosystems by life technologies4470661
TC20 Automated cell counterBio-Rad145-0102
HemacytometerHausser Scientific02-671-51B
Software 
Triax software Biocomp Instruments Inc.
Materials:
Counting slides, dual chamber for cell counterBio-Rad145-0011
1.5 mL microcentrifuge tubeUSA Scientific1615-5500
Open-top polyclear centrifuge tubes, (14 mm x 89 mm)Seton Scientific7030
Syringe, 5 mLBD309646
BD Syringe 3 mL23 Gauge 1 Inch NeedleBD10020439
Nunclon Delta Surface plate, 14 cmThermo Scientific168381
Nunclon Delta Surface plate, 9 cmThermo Scientific172931
Nalgene rapid-flow 90mm filter unit, 500 mL, 0.2 aPESThermo Scientific569-0020
BioLite 75 cm3 flasksThermo Scientific130193
Nunc 50 mL conical centrifuge tubesThermo Scientific339653
Chemicals:
Trizol LSAmbion by Life Technologies10296028
HEPESFisher ScientificBP310-500
Trizma baseSigmaT1378-5KG
Dulbecco's Modified Eagle's Medium-high glucose (DMEM)SigmaD6429-500ML
Fetal Bovine Serum (FBS)SigmaF0926-50ML
Penicillin-Streptomycin (P/S)SigmaP0781-100ML
Lipofectamine 2000Invitrogen11668-019
Dulbecco's phosphate buffered saline (DPBS)SigmaD8537-500ML
Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2x6H2O)Acros OrganicsAC413415000
Potassium Chloride (KCl)SigmaP9541-500G
Nonidet P 40 (NP-40)Fluka (Sigma-Aldrich)74385
Recombinant Rnasin Ribonuclease InhibitorPromegaN2511
Heparin sodium saltSigmaH3993-1MU
cOmplete Mini EDTA-free protease inhibitorsRoche Diagnostics11836170001
GlycogenThermo ScientificR0551
WaterSigmaW4502-1L
CycloheximideSigmaC7698-1G
ChloroformFisher Scientific194002
Dithiotreitol (DTT)Fisher ScientificBP172-5
Ethidium BromideFisher ScientificBP-1302-10
Ethylenediaminetetraacetic acid disodium dehydrate (EDTA)Fisher ScientificS316-212
OptimemLife Technologies22600050
Puromycin dihydrochlorideSigmaP8833-100MG
SucroseFisher ScientificS5-3KG
Trypsin-EDTA solutionSigmaT4049-100ML
Hgh Capacity cDNA Reverse Transcriptase KitApplied Biosystems by life technologies4368814
Power SYBR Green PCR Master MixApplied Biosystems by life technologies4367659
HClFisher ScientificA144SI-212
IsopropanolFisher ScientificBP26324
Potassium Hydroxide (KOH)Sigma221473-500G
Anti-RPL11 antibodyAbcamab79352
Ribosomal protein S6 (C-8) antibodySanta Cruz Biotechnology Inc.sc-74459
1xM199SigmaM0393-10X1L
Lithium clorideSigmaL-9650
Dimethyl sulfoxide (DMSO)Fisher ScientificD128-500
Gel Loading Buffer IIThermo ScientificAM8546G
UltraPure AgaroseThermo Scientific16500-100
Trichloracetic acid (TCA)Fisher ScientificA322-100
SuperSignal West Pico PLUS chemiluminescent substrateThermo Scientific34580
FormaldehydeFisher ScientificBP531-500
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS)SigmaL5750-1KG
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF)SigmaP7626-5G
RNeasy Mini kitQiagen74104
Adenosine 5′-triphosphate disodium salt hydrate (ATP)SigmaA1852-1VL
Cytosine 5'-triphosphate disodium salt hydrate (CTP)SigmaC1506-250MG
Uridine 5'-triphosphate trisodium salt hydrate (UTP)SigmaU6625-100MG
Guanosine 5'-triphosphate sodium salt hydrate (GTP)SigmaG8877-250MG
SP6 RNA PolymeraseNEBM0207S
PyrophoshataseSigmaI1643-500UN
SpermidineSigmaS0266-1G

Referências

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