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O presente protocolo descreve um método que utiliza o amarelo lúcifer em um modelo enteróide apical-out para determinar a permeabilidade intestinal. Este método pode ser usado para determinar a permeabilidade paracelular em enteróides que modelam doenças inflamatórias intestinais, como enterocolite necrosante.
Os enteróides são uma ferramenta de pesquisa emergente no estudo de doenças inflamatórias intestinais, como a enterocolite necrosante (NEC). Eles são tradicionalmente cultivados na conformação basolateral-out (BO), onde a superfície apical da célula epitelial está voltada para o lúmen interno. Nesse modelo, o acesso à superfície luminal dos enteroides para tratamento e experimentação é desafiador, o que limita a capacidade de estudar as interações hospedeiro-patógeno. Para contornar isso, foi criado um modelo apical-out neonatal (AO) para enterocolite necrosante. Uma vez que as alterações da permeabilidade das células epiteliais intestinais são patognomônicas para a NEC, este protocolo descreve o uso do amarelo lucifer (LY) como marcador de permeabilidade paracelular. O LY atravessa a barreira epitelial intestinal através de todas as três principais vias paracelulares: poros, vazamento e irrestrito. O uso de LY em um modelo AO permite um estudo mais amplo da permeabilidade em NEC. Após a aprovação do IRB e o consentimento dos pais, amostras cirúrgicas de tecido intestinal foram coletadas de recém-nascidos prematuros humanos. As células-tronco intestinais foram colhidas via isolamento de criptas e usadas para cultivar enteróides. Os enteróides foram cultivados até a maturidade e, em seguida, transformados AO ou deixados em conformação BO. Estes não foram tratados (controle) ou foram tratados com lipopolissacarídeo (LPS) e submetidos a condições hipóxicas para a indução de NEC in vitro . O LY foi utilizado para avaliar a permeabilidade. A coloração imunofluorescente da proteína apical zonula occludens-1 e da proteína basolateral β-catenina confirmou a conformação da AO. Os enteróides AO e BO tratados com LPS e hipóxia demonstraram um aumento significativo da permeabilidade paracelular em comparação com os controles. Ambos os enteróides AO e BO mostraram aumento da absorção de LY no lúmen dos enteróides tratados em comparação com os controles. A utilização de LY em um modelo enteróide AO permite a investigação de todas as três principais vias de permeabilidade paracelular. Além disso, permite a investigação das interações hospedeiro-patógeno e como isso pode afetar a permeabilidade em comparação com o modelo enteróide BO.
Os enteroides são estruturas tridimensionais (3D) derivadas de células-tronco intestinais humanas com restrição de órgãos 1,2. Eles são compostos inteiramente de linhagem epitelial e contêm todos os tipos diferenciados de células epiteliais intestinais2. Os enteróides também mantêm a polaridade celular composta por uma superfície luminal apical formando um compartimento interno e uma superfície basolateral voltada para o meio circundante. Os enteróides são um modelo único na medida em que preservam as características do hospedeiro a partir do qual foram gerados3.....
A presente pesquisa foi realizada em conformidade com a aprovação do Conselho de Revisão Institucional (IRB, #11610, 11611) na Universidade de Oklahoma. O consentimento dos pais foi necessário antes da coleta de espécimes cirúrgicos humanos de acordo com as especificações do IRB. Após a aprovação do IRB e o consentimento dos pais, o tecido intestinal delgado humano foi obtido de lactentes (idade gestacional (IG) corrigida variando de 36-41 semanas no momento da coleta da amostra, todos com história de parto prematuro em um GA estimado de 25-34 semanas, 2:1 M:F) submetidos a cirurgia para NEC ou outra ressecção intestinal, como retirada de ostomia ou reparo de atresia.....
Conformação AO
Enteroides suspensos em meios LWRN a 50% por 72 h assumem uma conformação AO (Figura 1). Isso foi confirmado por meio de coloração imunofluorescente utilizando montagens inteiras enteroides da proteína apical, zonula occludens-1 (ZO-1), e proteína basolateral, β-catenina (Figura 1). Os enteroides AO mostram ZO-1 (verde) na superfície externa apical do enteróide, enquanto a β-catenina (vermelha) está na sup.......
A permeabilidade intestinal é complexa e reflexiva da função de barreira epitelial. A barreira intestinal compreende uma única camada de células epiteliais que medeia o transporte transcelular e paracelular14. A permeabilidade paracelular depende de proteínas de junção apertada que selam o espaço entre as células epiteliais14. Dentro desse transporte paracelular, existem três vias distintas pelas quais as moléculas podem se cruzar: poros, vazamento e irrestrito<.......
Os autores não relatam nenhum interesse proprietário ou comercial em qualquer produto mencionado ou conceito discutido neste artigo.
Gostaríamos de agradecer a Ashley Nelson, do Centro Médico da Universidade de Rochester, por sua ajuda instrumental com nosso modelo enteróide. Também gostaríamos de agradecer à Divisão de Cirurgia Pediátrica da Universidade de Oklahoma por seu apoio a este projeto. Este trabalho foi apoiado pelo Instituto Nacional de Saúde [NIH Grant R03 DK117216-01A1], o Oklahoma Center for Adult Stem Cell Research e o Presbyterian Health Foundation Grant #20180587 concedido ao Departamento de Cirurgia do Centro de Ciências da Saúde da Universidade de Oklahoma.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
[leu] 15-gastrin 1 | Millipore Sigma | G9145-.1MG | |
100 µm sterile cell strainer | Corning | 431752 | |
100% LWRN conditioned media | Made in-house following Miyoshi et al.12 | ||
24-well tissue culture plate | Corning | 3526 | |
96-well black, clear bottom plate | Greiner Bio-One | 655090 | |
A-83-01 | R&D Systems | 2939/10 | |
Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit secondary ab, 1:1000 | Invitrogen | A-11034 | |
Alexa Fluor 594 goat anti-mouse secondary ab, 1:1000 | Invitrogen | A-11032 | |
Amphotericin B | Thermo Fisher Scientific | 15290026 | |
Anti-zonula occludens-1 rabbit primary ab, 1:200 | Cell Signaling | #D6L1E | |
Anti-β-catenin mouse primary ab, 1:100 | Cell Signaling | #14-2567-82 | |
B-27 supplement minus Vitamin A | Thermo Fisher Scientific | 17504-044 | |
Barrier PAP pen | Scientific Device Laboratory | 9804-02 | |
BMM (Matrigel) | Corning | CB-40230C | |
Cell Recovery Solution | Corning | 354270 | |
Dissecting scissors | |||
DMEM | Thermo Fisher Scientific | 11-965-118 | |
DMEM/F-12 | Thermo Fisher Scientific | 11320-082 | |
DPBS | Thermo Fisher Scientific | 14-190-144 | |
Epidermal Growth Factor (EGF) | Millipore Sigma | GF144 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Millipore Sigma | EDS-500G | |
EVOS m7000 Imaging system | Invitrogen | AMF7000 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Gemini Bio-Products | 100-525 | |
Fluoroshield with DAPI | Millipore Sigma | F6057-20mL | |
Forceps | |||
Gentamicin | Thermo Fisher Scientific | 15-750-060 | |
Glass coverslips | |||
GlutaMAX | Thermo Fisher Scientific | 35050-061 | |
GraphPad Prism 9 | Dotmatics | ||
Insulin | Thermo Fisher Scientific | 12585014 | |
Lipopolysaccharide (LPS) | Millipore Sigma | L2630-25MG | |
Lucifer Yellow CH, Lithium Salt | Invitrogen | L453 | |
Modular incubator chamber | Billups Rothenberg Inc. | MIC101 | |
N-2 supplement | Thermo Fisher Scientific | 17502-048 | |
N-2-hydroxyethylpiperazine-N-2-ethane sulfonic acid (HEPES) | Thermo Fisher Scientific | 15630-080 | |
N-Acetylcysteine | Millipore Sigma | A9165-5G | |
Nicotinamide | Millipore Sigma | N0636-100G | |
Penicillin-Streptomycin | Thermo Fisher Scientific | 15140-148 | |
Refrigerated swinging bucket centrifuge | |||
Refrigerated tabletop microcentrifuge | |||
RPMI 1640 Medium | Thermo Fisher Scientific | 11875093 | |
SB202190 | Millipore Sigma | S7067-5MG | |
SpectraMax iD3 microplate reader | Molecular devices | ||
Tube Revolver Rotator | ThermoFisher Scientific | 88881001 | |
Ultra-low attachment 24-well tissue culture plate | Corning | 3473 | |
Y-27632, ROCK inhibitor (RI) | Tocris | 1254 |
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