1. Hipóxia induzida por solução de 2 CoCl Cloreto de cobalto hexa-hidratado (II) (CoCl 2 • 6H 2 O, MW = 237,9) é um indutor químico da hipóxia induzida por fator de 1,3 8. Este produto é solúvel em água (100 mg / ml), produzindo uma solução clara e vermelho. <ol><li> Prepare uma solução estoque 25 mM em água dd estéril, (preparar imediatamente antes do uso) </li><li> Use CoCl 2 na concentração final de 100μM em seus meios de cultura de células regulares para induzir hipóxia. </li><li> Adicione o CoCl 2 mídia contendo as suas células e incubar as culturas de 24 horas em uma incubadora convencional (37 ° C, 5% C0 2). </li></ol> A concentração acima funciona para as linhas de células que temos testado, mas cada linha celular deve ser testado em várias concentrações (para estabelecer uma curva dose-dependente), bem como em vários tempos de incubação, a fim de limitar a toxicidade relacionada com a droga e otimizar o ensaio. 2. Hipóxia induzida em Modular Incubadora Câmara <ol><li> Preparar pelo menos duas culturas de células idênticas (cultura twin). Culturas de células pode ser em barris, pratos ou travessas cultura. Para abrir a câmara, abre pela primeira vez as duas braçadeiras de plástico branco localizado na tubos ligados à câmara (tubos utilizados para a injeção / purga do gás hipóxico) e abra cuidadosamente o grampo anel de aço. </li><li> Solte o grampo. A tampa e bandejas podem agora ser removido. </li><li> Coloque a cultura de células na câmara hipóxica. Também colocar uma placa de Petri contendo água estéril na câmara para fornecer umidificação adequada das culturas. </li><li> Coloque a cultura de células &quot;gêmeo&quot; em normóxia como controle. </li><li> Verifique se o seu bandejas são garantidos e não em movimento, e depois fechar a câmara com a tampa. Posicionar corretamente a braçadeira anel de aço para garantir o fechamento hermético da câmara e fechá-lo. </li><li> Para criar hipóxia, conectar o tubo a um &quot;tanque de hipóxia&quot;, contendo a 1% da mistura de gases O 2. Se você tiver um medidor de fluxo conectado ao seu tanque de sua câmara estará diretamente conectado a ele (gás tanque de fluxo metros-câmara). Usamos um medidor de fluxo incorporadas em nosso regulador. </li><li> É importante remover a maior parte se não estiver presente todo o oxigênio na câmara e em seus meios, para fazê-lo lavar a câmara através da abertura do tanque de gás a uma vazão de 20 litros por minuto por 7-10 minutos, em seguida, desligar rapidamente o fluxo de gás e fechar completamente a câmara, fechando ambos os grampos branco. </li><li> Retorno da câmara para uma incubadora convencional para o período de tempo desejado. Se você usar grandes culturas, permitem mídia em culturas de-gás para 1-2 horas e depois repetir flush. As etapas acima são baseados nas recomendações do construtor &quot;(Billups-Rothenberg, Inc). Certifique-se de tanque de gás são devidamente protegidas em todos os tempos. </li></ol> Notas: <ul><li> , A fim de eliminar o O 2 contidas na mídia, é aconselhável a re-gás na câmara de uma vez depois de 1-3 horas. </li><li> Por tempo de incubação mais longo do que 48 horas também é aconselhado a re-câmara do gás. </li><li> Sensores de oxigênio (eletrodos / manômetro) que permitem medições do O 2 contidos em células / câmara irá proporcionar uma medição mais precisa do O intracelular / câmara de 2 contêm). </li><li> A cultura de células em intervalos de tempo diferentes para fazer uma curva de tempo-seria ajudar a determinar a expressão de tempo ideal de HIF-1α em suas células particular. </li></ul> 3. Avaliação de hipóxia <ol><li> HIF-1 de detecção de α por western blot. <ol><li> Reabrir a sua câmara como descrito na seção 2.2 e colocar imediatamente suas culturas no gelo. </li><li> Lyse hipóxia células tratadas e não-tratados com 5% de solução SDS nas placas, em seguida, transferir o lyzate célula para tubos, sonicate, spindown os restos celulares e recolher o sobrenadante. </li><li> Concentração medida de proteína usando kit BCA, prepare amostra pela adição de tampão de carregamento e aquecimento a 95 ° C por 5 min. </li><li> Electroforese de proteínas em um gel SDS 8% de poliacrilamida e transferência para membranas de nitrocelulose. </li><li> Bloquear a membrana em PBS contendo 5% de leite sem gordura seco e 0,1% Tween 20 à temperatura ambiente por 1 hora ou a 4 ° C durante a noite em shaker. </li><li> Immunoblot durante a noite com anti-HIF-1α anticorpo primário monoclonal (1 / 600) no mesmo tampão a 4 ° C. </li><li> Lavar 3 vezes em PBS contendo 0,1% Tween 20 à temperatura ambiente, 5min de cada vez e incube com HRP-anticorpo secundário (1 / 2000) em PBS + 0,1% Tween 20 por 45 min. </li><li> Lavar 3 vezes em PBS contendo 0,1% Tween 20 à temperatura ambiente, 5min / hora. </li><li> Use Pierce kit ECL e X-ray filme para mostrar a banda de proteína </li></ol></li><li> Elemento Responsive hipóxia (HRE). HIF-1α regula numerosos genes (ou seja, VEGF, EPO) por ligação a uma seqüência chamada elemento regulador hipóxia (HRE). Usando HRE associado a um gene marcador it é possível detectar atividade de HIF 9. Para utilizar este método, primeiro você precisa transfectar suas células com um plasmídeo HRE-luciferase usando um método de transfecção adaptado às suas células. Por exemplo usamos Lipofectamine 2000. Células precisam ser transfectadas pelo menos 4 horas antes de ser incubadas em hipóxia e normóxia. Desta vez, permite que o DNA para entrar nas células, para que este primeiro passo não é afetada pela hipóxia. O sinal de luciferase é detectada através de um kit de ensaio de luciferase. <ol><li> Incubar a sua HRE-transfectadas células em hipóxia na câmara modular ou usar HRE-transfectadas células incubadas com CoCl 2, incluem um controle normóxia. </li><li> Após o período de incubação desejado, remova o meio de crescimento das células. </li><li> Enxágüe células em PBS, remova o PBS. </li><li> Dispense 400μl do reagente de lise 1X em placa de cultura e raspar as células em anexo, depois transferi-los para um tubo de micro. </li><li> Pellet detritos por centrifugação breve. </li><li> 20μl mistura de células lisados ​​sobrenadante com 100μl de reagente de ensaio de luciferase e medir a luminescência com um luminômetro. </li></ol></li></ol> 4. Resultados representativos: Em células K562 (linha de células humanas de leucemia) cultivados dois dias em baixa de oxigênio, comparado à normóxia, hipóxia induz um aumento do HIF-1α proteína que foi detectada por western blot (Figura 1). Usando HRE-luciferase modificado 293 células (linhagem de células embrionárias de rins) cultivados em hipóxia, um aumento significativo de HIF-1α atividade foi detectada em células hipóxicas (Figura 2). <img src="/files/ftp_upload/2899/2899fig1.jpg" alt="Figura 1"/> Figura 1: Aumente o HIF-1α em células hipóxicas. K562 células foram cultura em normóxia e hipóxia (câmara hipóxica) por 48 horas e analisadas por western blot usando um anticorpo específico para o HIF-1α. Um anticorpo específico para actina foi usado para o controle de carga. <img src="/files/ftp_upload/2899/2899fig2.jpg" alt="Figura 2"/> Figura 2: HIF-1α atividade. HRE-luciferase modificado 293 células foram cultivadas em hipóxia e normóxia durante 48 horas e, em seguida, lisados ​​para detectar o sinal luciferase usando um kit de ensaio de luciferase e um luminómetro. Os resultados são expressos como a unidade de luminescência relativa (RLU).

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	<li>Swinson, D. E., O'Byrne, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interactions+between+hypoxia+and+epidermal+growth+factor+receptor+in+non-small-cell+lung+cancer.">Interactions between hypoxia and epidermal growth factor receptor in non-small-cell lung cancer.</a> Clin Lung Cancer. 7, 250-256 (2006).</li><li>van Laarhoven, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypoxia+in+relation+to+vasculature+and+proliferation+in+liver+metastases+in+patients+with+colorectal+cancer.">Hypoxia in relation to vasculature and proliferation in liver metastases in patients with colorectal cancer.</a> Int J Radiat Oncol Biol Phys. 64, 473-482 (2006).</li><li>Hockel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intratumoral+pO2+predicts+survival+in+advanced+cancer+of+the+uterine+cervix.">Intratumoral pO2 predicts survival in advanced cancer of the uterine cervix.</a> Radiother Oncol. 26, 45-50 (1993).</li><li>Semenza, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HIF-1+and+human+disease:+one+highly+involved+factor.">HIF-1 and human disease: one highly involved factor.</a> Genes Dev. 14, 1983-1991 (2000).</li><li>Semenza, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypoxia-inducible+factor+1:+master+regulator+of+O2+homeostasis.">Hypoxia-inducible factor 1: master regulator of O2 homeostasis.</a> Curr Opin Genet Dev. 8, 588-594 (1998).</li><li>Tatum, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypoxia:+importance+in+tumor+biology,+noninvasive+measurement+by+imaging,+and+value+of+its+measurement+in+the+management+of+cancer+therapy.">Hypoxia: importance in tumor biology, noninvasive measurement by imaging, and value of its measurement in the management of cancer therapy.</a> Int J Radiat Biol. 82, 699-757 (2006).</li><li>Brahimi-Horn, M. C., Pouyssegur, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HIF+at+a+glance.">HIF at a glance.</a> J Cell Sci. 122, 1055-1057 (2009).</li><li>Piret, J. P., Mottet, D., Raes, M., Michiels, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CoCl2,+a+chemical+inducer+of+hypoxia-inducible+factor-1,+and+hypoxia+reduce+apoptotic+cell+death+in+hepatoma+cell+line+HepG2.">CoCl2, a chemical inducer of hypoxia-inducible factor-1, and hypoxia reduce apoptotic cell death in hepatoma cell line HepG2.</a> Ann N Y Acad Sci. 973, 443-447 (2002).</li><li>Emerling, B. M., Weinberg, F., Liu, J. L., Mak, T. W., Chandel, N. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PTEN+regulates+p300-dependent+hypoxia-inducible+factor+1+transcriptional+activity+through+Forkhead+transcription+factor+3a+(FOXO3a).">PTEN regulates p300-dependent hypoxia-inducible factor 1 transcriptional activity through Forkhead transcription factor 3a (FOXO3a).</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 2622-2627 (2008).</li></ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Proliferação celular e viabilidade em condições de hipóxia variar muito, dependendo dos tipos de células. Portanto, você deve ajustar o número de células ou o número de culturas placas você começa com a certeza que terá número suficiente de células / proteínas para suas experiências. O método de cloreto de cobalto tem a vantagem de ser barato e rápido. Este produto imita hipóxia induzindo HIF-1/3α mas pode também regulam outros genes, certifique-se este produto está adaptado ao seu projeto, verificando o que outros efeitos pode ter sobre a função e fenótipo de suas células em particular, independentemente da &quot;imitam- efeito &quot;hipóxia. Outro medicamento também usado para imitar a hipóxia é o mesilato de desferroxamina (DFO, utilizado numa concentração de 100 mM final). O uso dessas drogas permite que o experimentador para abrir a placa de cultura / prato / frasco muitas vezes sem afetar a &quot;condição de hipóxia&quot;. O nível de oxigênio contido na mistura de gás pode variar de acordo com suas experiências e tipos de células como os valores variam de acordo com hipóxia dos tecidos e tipos celulares. De fato, algumas células são hipóxica em 5% O 2 outros precisam menos de 1% O 2 a ser hipóxica. 5% de CO 2 é adicionado à mistura de gás para estabilizar o pH das culturas, o resto do gás é geralmente nitrogênio. Câmaras hipóxicas têm a vantagem de não usar drogas que pode alternar o comportamento das células, independentemente da tensão de oxigênio. No entanto, nem todos os tipos de experimentação pode ser feito como o oxigênio re-entra na câmara em cada abertura e, assim, diminui a hipóxia. Você deve considerar este fator em seus experimentos; hipóxia / reoxigenação é uma condição específica que podem afetar alguns tipos de células. Uma alternativa é a utilização de estações de trabalho hipóxia (ligado a tanques de pré-mistura de gás ou de sistemas de gás de mistura) ou maior incubadora hipóxia (câmara de processamento de hipóxia com porta-luvas), que permite a experimentação de mudar de mídia e manipular as células em ambiente hipóxico contínua. Várias câmaras hipóxicas foram comercializados nos últimos dez anos e deve ser escolhido de acordo com o seu laboratório utilizado, projetos, espaço, tamanho, orçamento e. Sempre garantir o bom uso e condição da sua câmara para garantir condições de cultivo correto. Em geral quando se usa uma câmara, o nível de hipóxia pode ser modulada, selecionando as misturas de gases diversos (ou seja, 1%, 5% a 10% de oxigênio). Em relação à detecção de HIF-1α, é importante saber que algumas linhas de células cancerígenas HIF-1α expressar em normóxia. Portanto, é fundamental usar um normoxia-controle para determinar o nível basal de HIF nestas linhas celulares. HIF-1α também pode estar presente em normóxia não-malignas em células após estimulação celular ou stress. Isso também poderia ocorrer se essas células estão famintos, certifique-se culturas de células são o alimentar adequadamente e mantido.

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome do reagente </th><th> Companhia </th><th> Número de catálogo </th></tr><tr><td> Anti-HIF-1α </td><td> Invitrogen </td><td> 458400 </td></tr><tr><td> Cloreto de cobalto (II) </td><td> Sigma </td><td> C8661-25G </td></tr><tr><td> Câmara incubadora </td><td> Billups-Rothenberg </td><td> MIC-101 </td></tr><tr><td> HRE-luciferase plasmídeo </td><td> Adgene </td><td> Plasmídeo 26731 </td></tr></tbody></table>

induction and testing of hypoxia in cell culture

Hipóxia é definida como a redução ou falta de oxigênio nos órgãos, tecidos ou células. Esta diminuição da tensão de oxigênio pode ser devido a uma oferta reduzida de oxigênio (causas incluem rede de vasos sanguíneos insuficientes, defeito dos vasos sangüíneos e anemia) ou a um aumento do consumo de oxigênio relativo ao fornecimento (causada por uma maior taxa de proliferação celular súbita) . Hipóxia pode ser fisiológica ou patológica como em tumores sólidos 1-3 reumatóide etc artrite, aterosclerose, ... Cada tecidos e células têm uma capacidade diferente para se adaptar a esta nova condição. Durante a hipóxia, hipóxia induzida fator alfa (HIF) é estabilizado e regula vários genes como aqueles envolvidos na angiogênese ou transporte de oxigênio 4. A estabilização desta proteína é a marca registrada de hipóxia, portanto, a detecção de HIF é rotineiramente usado para triagem de 07/05 hipóxia. Neste artigo, propomos dois métodos simples para induzir hipóxia em culturas de células de mamíferos e testes simples para avaliar o estado hipóxico dessas células.

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Induction and Testing of Hypoxia in Cell Culture

Aqui propomos métodos simples para induzir hipóxia em culturas de células e testes simples para avaliar o estado hipóxico das culturas.

Indução de hipóxia e Testes em Cultura de Células

Hypoxia is defined as the reduction or lack of oxygen in organs, tissues, or cells.  This decrease of oxygen tension can be due to a reduced supply in ...

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