Vários técnicos e estudantes de pós-graduação na Universidade Estadual de Michigan têm ajudado a desenvolver, refinar e avaliar o projeto de armadilha do DD ao longo dos anos, incluindo Andrea Anulewicz, Robert McDonald e Nathan Siegert. Agradecemos a James Wieferich e Jeremy Lowell (MSU) para sua assistência no desenvolvimento as instruções para instalação do DD. James Wieferich e Molly Robinett (MSU) revisaram um rascunho anterior do projeto deste manuscrito e agradecemos as suas sugestões. Joseph Francese e Damon Crook (USDA-APHIS) generosamente compartilhou suas observações em resposta EAB para cor e host voláteis. Financiamento para avaliação e desenvolvimento de armadilha DD foi fornecido por subsídios de protecção da saúde o USDA Forest Service, área do nordeste, floresta.

1. preparar o verde e roxo painéis <ol><li>adquirir verde e roxo ondulado painéis de plástico (120 cm x 60 cm) para a captura de EAB através de um distribuidor comercial de pragas de gestão de suprimentos. Use um estilete ou faca de serviço público para marcar dois Dobre as linhas em cada painel cortando parcialmente através do plástico ao longo as corrugações verticais, 40cm dois curtas bordas do painel. Isso permite que o painel a ser dobrada em um prisma de 3 lados (cada face será 40 x 60 cm). Painéis geralmente são marcados pelo distribuidor para facilitar a dobradura, assim este passo pode não ser necessário.</li>
	<li>Broca dois pares de furos em cada painel usando uma ½ polegada (1,3 cm) pouco conforme indicado na Figura 1. Faça furos de 4 polegadas (10 cm) da parte superior do painel e 4 polegadas em ambos os lados da dobra à esquerda. O segundo par de furos de broca de 19 polegadas (48 cm) da parte superior do painel e logo abaixo os furos superiores (ou seja, 4 polegadas em ambos os lados da dobra à esquerda).</li>
</ol> 2. Preparar o tubo de PVC <ol><li>obter uma secção de tubo de cloreto de polivinila (PVC) agenda 40, 3 m de comprimento e 10 cm de diâmetro, de uma loja comercial ou outro fornecedor para cada armadilha. Furos 4 na tubulação de PVC, conforme mostrado na Figura 2. Usando uma broca de ½ polegada (1,3 cm), fazer um par de buracos 4 polegadas (10 cm) da parte superior do tubo de PVC e 3½ polegadas (8,9 cm) distante. Alinhe os orifícios horizontalmente.</li>
	<li>Um segundo par de furos, 3½ polegadas distante e 52 polegadas (1.3 m) abaixo do topo do tubo, diretamente abaixo do primeiro conjunto de furos de broca.</li>
</ol> 3. Instalar um T-post libras <ol><li>uso um post para instalar um t-post no local desejado. Dirigir o post profundo o suficiente para que a flange está logo abaixo da superfície do solo, mas não há nenhuma necessidade de ir mais fundo. T-post irá fornecer todo apoio para a armadilha DD, mesmo em ventos fortes. Tipo de fios ou suportes adicionais não são necessários. Embora o t-post não precisa ser definido profundamente no solo, é uma boa ideia para verificar se há utilidades subterrâneas ou tubulações enterradas antes de dirigir o post no chão.</li>
</ol> 4. Montar a armadilha de DD <ol><li>dobra um painel roxo em um prisma. Se os painéis estão pre-glued, certifique-se de que lado pegajoso é do lado de fora. Alimentar as duas pequenas abas através de fendas e usar dois laços de cabo de 8 polegadas (20 cm) para fixar as extremidades do painel juntos. Repetir com um painel verde.</li>
	<li>Suporte do tubo de PVC horizontalmente acima do solo. Deslize o prisma roxo para o tubo de PVC e até o menor conjunto de furos no tubo de PVC.</li>
	<li>Alimentar um grande, gravata de cabo longo 2 pés (60 cm) horizontalmente através do topo deixou o buraco no prisma, então através do par de buracos no tubo de PVC e finalmente através do furo adjacente no lado direito do prisma. Certifique-se de que o prisma é bem encostado a parte sólida do tubo de PVC que se encontra entre os dois furos. Feche e aperte a abraçadeira, certificando-se a braçadeira não está torcida.</li>
	<li>Alimentar uma segunda grande abraçadeira através do orifício inferior do prisma, ao redor do tubo e no orifício correspondente no lado adjacente do prisma. Feche o laço do cabo e aperte, novamente tendo o cuidado de assegurar o empate de cabo não torça antes que esteja apertada.</li>
	<li>Deslize o prisma verde do tubo de PVC e anexá-lo ao conjunto superior de buracos no tubo de PVC com dois laços de cabo de 60 cm, seguindo os mesmos passos como antes. Vai haver uma lacuna de 21 polegadas (54 cm) entre os prismas superiores e inferiores.</li>
</ol> 5. Aplicar a cola de inseto e Set Up the Trap <ol><li>clara aplicar cola de captura insetos para painéis que não são pre-glued. Nem pré-colada painéis geralmente exigem cola adicional para capturar besouros EAB. Para aplicar cola de captura de insetos, definir a base do tubo de PVC no chão e coloque a face interna do prisma superior-posto de t.</li>
	Luvas de <li>usando o latex (ou similar), colher-se dois a três punhados de cola e esfregaço através da superfície de um painel, certificar-se de que a superfície do painel é completamente revestido. Gire o tubo de PVC para acessar todas as superfícies de três sobre dois prismas. Cola não precisa ser aplicado para o tubo de PVC.</li>
	<li>Pegue o cano de PVC, segurá-lo na vertical e deslize a extremidade inferior sobre o post de t. Evite tocar os painéis pegajosos.</li>
</ol> 6. Isca na armadilha de DD <ol><li>como prismas pré-colada geralmente chegam com um pequeno furo (4 mm) perto da borda inferior de um painel do prisma, usar uma gravata de cabo de 4 polegadas (10 cm) para anexar um malote de cis -3-hexenol à borda inferior do prisma top (verde). Se não houver um buraco, use um furador portátil ou um canivete para cortar um pequeno buraco ou fenda no plástico e, em seguida, usar a gravata pequeno cabo para anexar a atração. 
	Nota: O cis -3-hexenol composto nas iscas é liberado lentamente durante aproximadamente 10 semanas. Se precisam de armadilhas manter a sua eficácia por mais de 10 semanas, substituir as iscas, conforme necessário.</li>
</ol> 7. Verificação de armadilhas para besouros EAB <ol><li>verificação de armadilhas em intervalos de 2-4 semanas se possível, para evitar a perda de besouros capturados, que ocasionalmente cair fora das armadilhas, especialmente se ocorre chuva pesada. Examine os três lados do prisma inferior para EAB besouros. Em seguida, usando luvas descartáveis de látex, levantar o tubo de PVC para cima e fora o t-post e coloque-a face interna do prisma superior a t-post, expondo um painel de ambos os prismas.</li>
	<li>Uso de fórceps para remover qualquer suspeito EAB besouros e colocá-los em um saco de amostra de plástico re-selável.</li>
	<li>Girar o tubo de PVC para examinar todos os três painéis em ambos os prismas para suspeito EAB besouros e, em seguida, empurra o tubo de volta sobre a post-t. 
	Nota: Moscas, besouros clique e vários outros insetos serão inevitavelmente capturados em armadilhas. É preciso um olho afiado para manchar um besouro EAB. Carregar um cartão de referência de foto pode ser útil ao verificar armadilhas pela primeira vez.</li>
	<li>Para confirmar a identificação das espécies, retornar besouros suspeitos para o laboratório e mergulhe-os em um tóxicos histológica despachante para um ou dois dias para remover a cola de captura de insetos. Besouros em seguida podem ser examinados sob um microscópio dissecação.</li>
</ol>

Os autores declaram que eles têm não tem interesses financeiro concorrente.

A concepção e a colocação de armadilhas DD exploram a atração de besouros adultos da EAB às máscaras específicas de cor e de luz. O prisma verde na parte superior do tubo de PVC é mais atraente para besouros masculinos, que gastam sua expectativa de vida, alimentando-se de folhas de freixo, bem como32,36,38,39de acasalamento. O prisma inferior roxo garante armadilhas também são atra...

A broca do Esmeralda cinza (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire) (Coleoptera: Buprestidae) matou centenas de milhões de freixos (Fraxinus spp.), desde que foi identificado em 2002 na área metropolitana de Detroit, Michigan e em nas proximidades Windsor, Ontário, Canadá. Propagação inadvertida de freixos infestadas, logs e lenha, juntamente com a dispersão natural de besouros, resultaram na criação da EAB pelo menos 27 Estados e duas províncias canadenses a data1. Relatórios recentes indicam que a EAB também invadiu Moscou, na Rússia, onde está matando paisagem cinza árvores2,3, gerando uma preocupação adicional sobre seu potencial se espalhou para a Europa. Variação interespecífica em preferência de anfitrião EAB e resistência entre norte-americanos cinza espécie tem sido documentada4,5,6,7,8,9, Mas praticamente todas as espécies de cinzas na América do Norte são susceptíveis de ser anfitriões adequados. Catastróficos níveis de mortalidade de cinzas foram registrados nas áreas de Michigan e Ohio10,11,12, com impactos ecológicos e económicos associados13,14, 15,16.
Métodos eficazes para detectar novas infestações EAB e monitorar as populações de baixa densidade são aspectos críticos da gestão desta praga invasora em ambientes urbanos, residenciais e arborizadas. Deteção adiantada fornece tempo para desenvolver uma estratégia, garantir o financiamento e implementar atividades para reduzir os impactos da EAB. Por exemplo, os proprietários e funcionários municipais podem começar a tratar cinzas valiosa em paisagens com inseticidas sistêmicas antes de danos causados pelo aumento da eficácia de limites de densidades larvares destes produtos17,18. Da mesma forma, identificação de uma nova infestação e informações confiáveis sobre distribuição local EAB dá silvicultores e proprietários a oportunidade de implementar as vendas de madeira, conversão de espécies ou outras atividades para reduzir os custos económicos ou ecológica efeitos da mortalidade de cinzas.
Detecção precoce, delimitação e um controlo eficaz das populações de EAB baixa densidade, no entanto, permanecem difíceis. Pesquisas visuais para identificar freixos recém infestadas não são confiáveis porque cinza raramente apresentam sinais externos ou sintomas de infestação EAB até densidades larvares construir a moderada ou mesmo altos níveis4,19. O meio mais eficaz de detecção muito baixas densidades de EAB envolve o uso de cinzas cintadas deteção árvores19,20,21,22. Freixos são anelados na primavera ou início do verão, removendo uma faixa de casca exterior e floema em torno da circunferência do tronco, o que sublinha a árvores, aumentando a atração de adulto EAB besouros. Árvores cintadas podem ser descascadas no outono ou no inverno para identificar a densidade e a presença de larvas de EAB. Embora cintado cinza árvores têm sido utilizadas operacionalmente para EAB deteção19,23,24,25, eles são problemáticos. Árvores cintadas descascamento podem ser trabalhoso e localizar árvores adequadas para cintar pode ser difícil, especialmente em áreas urbanas ou residenciais ou quando pesquisas devem efectuar-se por vários anos19.
Artificiais armadilhas iscadas com atrativos EAB eliminam muitas preocupações associadas ao uso de deteção de freixos cintadas. Em contraste com outras pragas florestais importantes tais como gypsy moth (mariposa dispar L) e alguns besouros de bark Scolytinae que produzem sexo de longa distância ou feromônios de agregação, até à data, não eficaz longa distância feromônios foram encontrados para EAB. Um feromônio sexual de curto alcance, cis-lactona, podem facilitar o acasalamento26,27, mas em ensaios de campo, cis-lactona iscas não aumentaram consistentemente atração EAB a armadilhas artificiais28. Besouros adultos dependem de compostos voláteis emitidos pelas cinzas de folhas, casca e madeira para identificar seu anfitrião árvores29,30,31 e encontrar parceiros potenciais. Vários compostos voláteis foram avaliados para uso em iscas para atrair adultos EABs para armadilhas artificiais27,32. Atualmente, as armadilhas utilizadas operacionalmente para pesquisas de deteção EAB nos EUA são iscadas com iscas contendo cis-3-hexenol, um volátil de folha verde comum produzido por cinzas folhagem30,33. Em anos anteriores, armadilhas EAB usadas para pesquisas dos EUA também têm sido iscadas com Manuka óleo, que é extraído da árvore do chá de Nova Zelândia (Leptospermum scoparium Forst e Forst) ou óleo de Phoebe, um extrato da árvore de noz brasileira (Phoebe porosa Mez.); Ambos contêm vários sesquiterpenos que também estão presentes na casca de freixo29. Problemas com entregas inconsistentes destes óleos naturais, no entanto, restringiu seu uso.
Além de compostos voláteis produzidos anfitrião, besouros adultos EAB respondem a estímulos visuais, incluindo cor e luz20,32,34,35. Estudos iniciais mostraram que adultos EAB, que são relativamente ágil panfletos, raramente foram capturados pelo funil preto armadilhas iscadas com vários compostos voláteis de cinzas (DGM e TMP, dados não publicados). Outros projetos de armadilha, tais como armadilhas de Cruz de palhetas, foram avaliados, mas a aversão do EAB besouros para espaços escuros e sombras limitada a eficácia dessas armadilhas.
Desenvolvimento de um prisma de três faces, que pode ser revestido com clear captura insetos cola35 para capturar besouros, foi uma melhoria substancial no design de armadilha. Atração de adultos EABs a cor também foi extensivamente avaliada em ensaios de campo e em estudos de laboratório com um retinograph34. Resultados mostram EAB besouros são consistentemente atraídos específicos tons de verde e roxo32,36. Armadilhas de prisma, fabricadas em plástico corrugado colorido agora são amplamente utilizadas em atividades de pesquisa EAB nos EUA e Canadá.
Porque os adultos EAB são fortemente atraídos pela luz, besouros são muito mais propensos a colonizar aberto-grown árvores do sombreado árvores de20,21. Orientações para os exames de deteção EAB em os E.U. necessário armadilhas prisma individual para ser suspenso em um galho de meados de dossel em um freixo crescendo ao longo de uma estrada ou a borda de uma área arborizada de37. Em teoria, isto deve assegurar-se que pelo menos um painel do prisma é exposta à luz solar. Operacionalmente, no entanto, prisma armadilhas podem ser parcialmente sombreadas por ramos aéreos adjacentes ou nas proximidades de árvores. Superfícies pegajosas painel frequentemente são sopradas em folhagem, resultando em folhas aderindo ao e obscurecendo, pelo menos uma parte de um ou mais painéis.
Armadilhas de dois andares (DD) foram desenvolvidas para integrar múltiplos sinais visuais e olfativos para aumentar a atração de besouros EAB. Cada armadilha DD é composta por um verde e um roxa ondulada plástica prisma anexado a um cano de 40 cloreto de polivinila (PVC) de programação do 3 m de altura (10 cm de diâmetro), que é apoiado pelo deslizar o tubo de PVC sobre um t-post. Usar o verdes e roxas prismas é projetado para atrair ambos os sexos da EAB besouros32,36,38,39. Além disso, ao invés de ser suspenso em um galho na Copa de uma árvore de cinzas, as armadilhas do DD são colocadas em pleno sol, 5-10 metros freixos ao longo da borda de uma área arborizada ou no meio de dispersos, freixos aberto-crescido.

<table><tbody><tr><td>Light green corrugated plastic panel: 120 cm x 60 cm</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EAB GR</td><td>All three surfaces of each prism need to be covered with clear insect trapping glue, even if the panels are pre-glued. Pre-glued panels are often not sticky enough to consistently capture or retain EAB beetles.&amp;nbsp; Other clear insect trapping glue products are available but are considerably more difficult to apply.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Light purple corrugated plastic panel: 120 cm x 60 cm</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EAB&amp;nbsp; LP</td><td></td></tr><tr><td>Large cable tie (4): 60 cm with a 79 kg capacity</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT-24-NU-100PK</td><td></td></tr><tr><td>Medium cable ties (4): 20 cm with a 22.7 kg capacity</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT261</td><td></td></tr><tr><td>Small cable tie: 10 cm with a 8.2 kg capacity</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT204</td><td></td></tr><tr><td>cis-3-hexanol pouch</td><td>Synergy Semiochemicals; http://www.semiochemical.com/html/buprestids.html)</td><td>3136</td><td>Lures used to bait DD traps consist of pouches containing cis-3-hexenol, a non-toxic compound present in ash leaves.&amp;nbsp; One pouch is attached to the lower edge of the top prism using a small cable tie.&amp;nbsp; Each pouch of cis-3-hexenol has a release rate of approximately 50 mg/day. Note that cis-3-hexenol is sometimes written as Z-3-hexenol.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Aphinity Hexenol</td><td>Sylvar Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lure GLV4 emerald ash borer</td><td>Chemtica, Heredia, Costa Rica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cis-3-hexanol pouch</td><td>WestGreen Global Technologies; http://www.westgreenglobaltechnologies.com/</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Clear insect trapping glue&amp;nbsp;</td><td>Hummert International; http://www.hummert.com/product-details/8196/pestick</td><td>01-3522-1&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Histoclear II histological clearing agent</td><td>National Diagnostics; www.nationaldiagnostics.com</td><td>HS-202</td><td>Histoclear II will be needed to remove the sticky insect glue from suspect beetles.&amp;nbsp; Other histological clearing agents are available but may not remove the glue and some products dissolve plastic, an important consideration if plastic containers are used for soaking the beetles.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Histoclear II histological clearing agent</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>10011</td><td>Histoclear II will be needed to remove the sticky insect glue from suspect beetles.&amp;nbsp; Other histological clearing agents are available but may not remove the glue and some products dissolve plastic, an important consideration if plastic containers are used for soaking the beetles.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>t-post: 1.5 m</td><td>multiple sources</td><td></td><td>A t-post (5 feet tall) (1.5 m) is used to support the PVC pipe.&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>post pounder</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Use a post pounder to set t-posts into the ground. No additional support is necessary.</td></tr><tr><td>HDPE (high density polyethylene) PVC pipe : 3 m x 10 cm diameter</td><td>multiple sources</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forceps (rigid)</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Forceps (tweezers) will be needed to remove suspect beetles from the traps. Rigid forceps work better than flexible forceps.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Latex gloves</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Latex gloves are needed for applying the insect trapping glue to the prisms and for checking the traps to collect EAB beetles.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Baby oil or baby wipes&amp;nbsp;</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Baby oil or baby wipes are helpful for removing the trapping glue from hands and equipment.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Re-sealable plastic specimen bags: 5 cm x 8 cm&amp;nbsp;</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Small re-sealable plastic specimen bags are useful for collecting beetles from traps.&amp;nbsp; Each bag should be labelled, either with pre-made, adhesive labels or with soft felt pens.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Guides to help with distinguishing EAB from beetles native to North America are available on the national EAB website at www.emeraldashborer.info. &amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

building double-decker traps for early detection of emerald ash borer

Broca de cinzas Esmeralda (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), o inseto de floresta mais destrutivo que invadiram a América do Norte, matou centenas de milhões de árvores de floresta e a paisagem cinza (Fraxinus spp.). Diversos projetos de armadilha artificial para atrair e capturar besouros EAB foram desenvolvidos para detectar, delinear e monitorar as infestações. Double-Decker (DD) armadilhas consistem em dois ondulado plásticas prismas, um verde e um roxo, ligado a um tubo de cloreto de polivinila (PVC) de 3 m de altura apoiado por um t-post. O prisma verde na parte superior do tubo de PVC é iscado com cis-3-hexenol, um composto produzido por folhagem cinza. As superfícies de ambos os prismas são revestidas com cola inseto pegajosa para capturar besouros adultos EAB. Armadilhas de dois andares devem ser colocadas perto de freixos, mas em áreas abertas, expostas ao sol. Colocação e construção de armadilha de dois andares são apresentados aqui, juntamente com um resumo dos experimentos de campo, demonstrando a eficácia do DD armadilhas na captura de besouros EAB. Em um estudo recente em sites com relativamente baixas densidades EAB, armadilhas de dois andares capturaram EAB significativamente mais do que o prisma verde ou roxo armadilhas ou armadilhas de funil verde, todos os quais são projetados para ser suspenso em um galho no dossel de freixos. Uma porcentagem maior de double decker armadilhas foram positivas, ou seja, capturado EAB pelo menos um, que o prisma armadilhas ou armadilhas de funil que foram penduradas em copas de árvore de cinzas.

Em uma grande escala de estudo, três projetos de armadilha artificial, bem como cintados freixos foram implantados sistematicamente, 10-20 m de distância, do outro lado um recém infestadas 16 ha arborizada área com uma densidade muito baixa de EAB25. Projetos de armadilha artificial testaram incluídas prismas roxas iscadas com óleo de Manuka e suspenso &#62; árvores de 3 m de altura em um galho no dossel de cinzas, armadilhas DD 3 m de altura com dois painé...

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Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer

Armadilhas eficazes para atrair e capturar a broca cinzas Esmeralda (EAB) são um elemento-chave da detecção e gestão desta praga invasora. Armadilhas de dois andares, colocadas em pleno sol perto de freixos, incorporam as pistas visuais e olfativas e eram mais propensos a capturar EAB do que outros projetos de armadilha em ensaios de campo.

Construção de dois andares armadilhas para detecção precoce de cinzas Esmeralda Borer

Emerald ash borer (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), the most destructive forest insect to have invaded North America, has killed hundreds of millions ...

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7.8K visualizações.  Michigan State University. Armadilhas eficazes para atrair e capturar a broca cinzas Esmeralda (EAB) são um elemento-chave da detecção e gestão desta praga invasora. Armadilhas de dois andares, colocadas em pleno sol perto de freixos, incorporam as pistas visuais e olfativas e eram mais propensos a capturar EAB do que outros projetos de armadilha em ensaios de campo.

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Technique for Studying Arthropod and Microbial Communities within Tree Tissues

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms. Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear young, feed, or hide from natural enemies or harsh environmental conditions outside of the tree. Organisms that persist within the phloem habitat are difficult to observe given their location under bark. We provide a technique to preserve intact phloem and prepare it for experimentation with invertebrates and microorganisms. The apparatus is called a &#8216;phloem sandwich&#8217; and allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms. This technique has resulted in a better understanding of the feeding behaviors, life-history traits, reproduction, development, and interactions of organisms within tree phloem. The strengths of this technique include the use of inexpensive materials, variability in sandwich size, flexibility to re-open the sandwich or introduce multiple organisms through drilled holes, and the preservation and maintenance of phloem integrity. The phloem sandwich is an excellent educational tool for scientific discovery in both K-12 science courses and university research laboratories.

We provide a technique to preserve intact tree phloem and prepare it for observation. We create an apparatus called a phloem sandwich that allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms that inhabit phloem tissues.

Técnica de Estudos de Artrópodes e comunidades microbianas dentro Árvore Tecidos

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms.  Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear ...

Ambiente

A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect (Cryptococcus fagisuga Lind.)

Beech bark disease (BBD) results in high levels of initial mortality, leaving behind survivor trees that are greatly weakened and deformed.&#160;The disease is initiated by feeding activities of the invasive beech scale insect, Cryptococcus fagisuga, which creates entry points for infection by one of the Neonectria species of fungus.&#160;Without scale infestation, there is little opportunity for fungal infection. Using scale eggs to artificially infest healthy trees in heavily BBD impacted stands demonstrated that these trees were resistant to the scale insect portion of the disease complex1.&#160;Here we present a protocol that we have developed, based on the artificial infestation technique by Houston2, which can be used to screen for scale-resistant trees in the field and in smaller potted seedlings and grafts.&#160;The identification of scale-resistant trees is an important component of management of BBD through tree improvement programs and silvicultural manipulation.

A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect Cryptococcus fagisuga Lind.

Beech bark disease is initiated by feeding activities of the beech scale insect that create fungal entry points in the bark.&#160;Trees that are resistant to the scale insect are also disease resistant.&#160;Here we present the protocol we have developed to screen individual beech trees for beech scale resistance.

Uma técnica para Screen americana Beech para Resistência ao Beech Scale Insect (<em&gt; Cryptococcus fagisuga</em&gt; Lind.)

Beech bark disease (BBD) results in high levels of initial mortality, leaving behind survivor trees that are greatly weakened and deformed.&#160;The ...

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to two families: Steinernematidae and Heterorhabditidae. Until now, more than 70 species have been described in the Steinernematidae and there are about 20 species in the Heterorhabditidae. The nematodes have a mutualistic partnership with Enterobacteriaceae bacteria and together they act as a potent insecticidal complex that kills a wide range of insect species.
Herein, we focus on the most common techniques considered for collecting EPN from soil. The second part of this presentation focuses on the insect-baiting technique, a widely used approach for the isolation of EPN from soil samples, and the modified White trap technique which is used for the recovery of these nematodes from infected insects. These methods and techniques are key steps for the successful establishment of EPN cultures in the laboratory and also form the basis for other bioassays that consider these nematodes as model organisms for research in other biological disciplines. The techniques shown in this presentation correspond to those performed and/or designed by members of S. P. Stock laboratory as well as those described by various authors.

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes Steinernematidae, Heterorhabditidae

Entomopathogenic nematodes are soil-inhabiting roundworms that parasitize a wide range of insects. We demonstrate sampling methods used for the isolation of these nematodes from the soil using two techniques: the insect baiting and the modified White trap, for the recovery of nematodes from soil samples and infected insect cadavers, respectively.

Amostragem do solo e isolamento de nematóides entomopatogênicos (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to ...

A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. These bees select cavities that are suitable nest sites for birds, resulting in competition. The difficulty of removing bees and their defensive behavior makes a prevention protocol necessary. Here, we describe a push-pull integrated pest management protocol to deter bees from inhabiting bird boxes by applying a bird safe insecticide, permethrin, to repel bees from nest boxes, while simultaneously attracting them to pheromone-baited swarm traps. Shown here is an example experiment using Barn Owl nest boxes. This protocol successfully reduced colonization of Barn Owl nest boxes by Africanized honey bees. This protocol is flexible, allowing adjustments to accommodate a wide range of bird species and habitats. This protocol could benefit conservation efforts where AHB are located.

Preventing colonization of bird nest boxes by invasive Africanized honey bees is important for conservation efforts of nest-site limited birds. We provide an integrated pest management approach to &#34;push&#34; bees away from nest boxes with a repellant insecticide, permethrin, and &#34;pull&#34; them toward pheromone baited swarm traps.

Um Protocolo de push-pull de reduzir a colonização de Bird caixas-ninho por abelhas

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. ...

The Hawaii Protocol for Scientific Monitoring of Coffee Berry Borer: a Model for Coffee Agroecosystems Worldwide

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at capturing and quantifying the dynamics and impact of this invasive insect pest as well as the development of its host plant across a heterogeneous landscape. The cornerstone of this comprehensive monitoring system is timely georeferenced data collection on CBB movement, coffee berry infestation, mortality by the fungus Beauveria bassiana, and coffee plant phenology via a mobile electronic data recording application. This electronic data collection system allows field records to be georeferenced through built-in global positioning systems, and is backed by a network of weather stations and records of farm management practices. Comprehensive monitoring of CBB and host plant dynamics is an essential part of an area-wide project in Hawaii to aggregate landscape-level data for research to improve management practices. Coffee agroecosystems in other parts of the world that experience highly variable environmental and socioeconomic factors will also benefit from implementing this protocol, in that it will drive the development of customized integrated pest management (IPM) to manage CBB populations.

Comprehensive monitoring of coffee berry borer and host plant dynamics is essential for aggregating landscape-level data to improve management of this invasive pest. Here, we present a protocol for scientific monitoring of coffee berry borer movement, infestation, mortality, coffee plant phenology, weather, and farm management via a mobile electronic data recording application.

O protocolo de Havaí para acompanhamento científico da broca do café: um modelo para agroecossistemas de café no mundo

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at ...

A Precise and Autonomous System for the Detection of Insect Emergence Patterns

Existing systems to measure insect emergence patterns have limitations; they are only partially automated and are limited in the maximum number of emerging insects they can detect. In order to obtain precise measurement of insect emergence, it is necessary for systems to be semi-automated and able to measure large numbers of emerging insects. We addressed these issues by designing and building a system that is automated and can measure emergence of up to 1200 insects. We modified the existing &#34;falling-ball&#34; system using Arduino microcontrollers to automate data collection and expand the sample size through multiple data channels. Multiple data channels enable the user to not only increase their sample size, but also allows for multiple treatments to be run simultaneously in a single experiment. Furthermore, we created an R script to automatically visualize the data as a bubble plot, while also calculating the median day and time of emergence. The current system was designed using 3D printing so the user can modify the system to be adjusted for different species of insects. The goal of this protocol is to investigate important questions in chronobiology and stress physiology, using this precise and automated system to measure insect emergence patterns.

Measurement of insect emergence patterns requires precision. Existing systems are only semi-automated and sample size is limited. We addressed these issues by designing a system using microcontrollers to precisely measure the time of emergence of large numbers of emerging insects.

Um sistema autónomo e preciso para a detecção de padrões de emergência de insetos

Existing systems to measure insect emergence patterns have limitations; they are only partially automated and are limited in the maximum number of ...

A Method for Quantifying Foliage-Dwelling Arthropods

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density requires a method with high detection probability and a known sampling area. While most described methods provide a qualitative or semi-quantitative estimate adequate for describing species presence, richness, and diversity, few provide an adequately consistent detection probability and known or consistent sampling areas to provide an index or estimate with adequate precision to detect differences in abundance across environmental, spatial, or temporal variables. We describe how to quantify leaf-dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate and quantify them. As we demonstrate, this method can be used at a landscape scale to quantify leaf-dwelling arthropods with adequate precision to test for and describe how spatial, temporal, environmental, and ecological variables influence arthropod richness and abundance. This method allowed us to detect differences in density, richness, and diversity of leaf-dwelling arthropods among 5 genera of trees commonly found in southeastern deciduous forests.

We describe how to quantify leaf dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate for quantification.

Um método para quantificar artrópodes da folhagem-habitação

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density ...

Quantifying Corticolous Arthropods Using Sticky Traps

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density requires a method with high detection probability and a consistent sampling area. We used manufactured sticky traps to compare abundance, total length (a surrogate for biomass), richness, and Shannon diversity of corticolous arthropods among the boles of 5 tree species. Efficacy of this method was adequate to detect variation in corticolous arthropods among tree species and provide a standard error of the mean that was &#60;20% of the mean for all estimates with sample sizes from 7 to 15 individual trees of each species. Our results indicate, even with these moderate sample sizes, the level of precision of arthropod community metrics produced with this approach is adequate to address most ecological questions regarding temporal and spatial variation in corticolous arthropods. Results from this method differ from other quantitative approaches such as chemical knockdown, visual inspection, and funnel traps in that they provide an indication of corticolous arthropod activity over a relatively long-term, better including temporary bole residents, flying arthropods that temporarily land on the tree bole and crawling arthropods that use the tree bole as a travel route from the ground to higher forest foliage. Furthermore, we believe that commercially manufactured sticky traps provide more precise estimates and are logistically simpler than the previously described method of directly applying a sticky material to tree bark or applying a sticky material to tape or other type of backing and applying that to the tree bark.

We describe a semi-quantitative approach of measuring characteristics of corticolous (bark-dwelling) arthropod communities. We placed commercially manufactured sticky traps on tree boles to estimate abundance, total length (a surrogate to biomass), richness, and Shannon diversity for comparison among tree species.

Quantificando corticolous artrópodes usando armadilhas pegajosas

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density ...

Low-Cost Automated Flight Intercept Trap for the Temporal Sub-Sampling of Flying Insects Attracted to Artificial Light at Night

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive sampling of flying insects have a poor temporal resolution because it is time-consuming, costly and/or logistically difficult to perform. Effective sampling of flying insects attracted to artificial light at night (ALAN) requires sampling at user-defined time points (nighttime only) across well-replicated sites resulting in major time and labor-intensive survey effort or expensive automated technologies. Described here is a low-cost automated intercept trap that requires no specialist equipment or skills to construct and operate, making it a viable option for studies that require temporal sub-sampling across multiple sites. The trap can be used to address a wide range of other ecological questions that require a greater temporal and spatial scale than is feasible with previous trap technology.

To study the impacts of artificial light at night (ALAN) on nocturnal flying insects, sampling needs to be confined to nighttime. The protocol describes a low-cost automated flight intercept trap that allows researchers to sample at user-defined periods with increased replication.

Armadilha de interceptação de voo automatizada de baixo custo para a sub-amostragem temporal de insetos voadores atraídos pela luz artificial à noite

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive ...

Analysis of Gene Expression in Emerald Ash Borer (Agrilus planipennis) Using Quantitative Real Time-PCR

Emerald ash borer (EAB, Agrilus planipennis) is an exotic invasive pest, which has killed millions of ash trees (Fraxinus spp) in North America. EAB continues to spread rapidly and attacks ash trees of different ages, from saplings to mature trees. However, to date very little or no molecular knowledge exists for EAB. We are interested in deciphering the molecular-based physiological processes at the tissue level that aid EAB in successful colonization of ash trees. In this report we show the effective use of quantitative real-time PCR (qRT-PCR) to ascertain mRNA levels in different larval tissues (including midgut, fat bodies and cuticle) and different developmental stages (including 1st-, 2nd-, 3rd-, 4th-instars, prepupae and adults) of EAB. As an example, a peritrophin gene (herein named, AP-PERI1) is exemplified as the gene of interest and a ribosomal protein (AP-RP1) as the internal control. Peritrophins are important components of the peritrophic membrane/matrix (PM), which is the lining of the insect gut. The PM has diverse functions including digestion and mechanical protection to the midgut epithelium.

Analysis of Gene Expression in Emerald Ash Borer Agrilus planipennis Using Quantitative Real Time-PCR

Quantitative real-time PCR (qRT-PCR) is an effective tool to diagnose mRNA levels in different insect tissues and developmental stages. In this report we show the use of qRT-PCR to ascertain mRNA levels in different larval tissues and developmental stages of the invasive insect species, emerald ash borer.

Análise de Expressão Gênica em Emerald Borer Ash ( Agrilus planipennis) Usando Quantitativa em Tempo Real-PCR

Emerald ash borer (EAB, Agrilus planipennis) is an exotic invasive pest, which has killed millions of ash trees (Fraxinus spp) in North America. EAB ...