Name: building double-decker traps for early detection of emerald ash borer
Uploaded: 2017-10-04T11:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 7 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer at JoVE.com

Diversi tecnici e studenti laureati presso la Michigan State University hanno contribuito a sviluppare, perfezionare e valutare la progettazione di trappola DD nel corso degli anni, tra cui Andrea Anulewicz, Robert McDonald e Nathan Siegert. Ringraziamo James Wieferich e Jeremy Lowell (MSU) per la loro assistenza nello sviluppo di istruzioni per l'installazione di DD. Recensione di James Wieferich e Molly Robinett (MSU) una prima stesura di questo manoscritto e apprezziamo i loro suggerimenti. Joseph Francese e Damon Crook (USDA APHIS) generosamente condiviso le loro osservazioni sulla risposta EAB di sostanze volatili di colore e host. Finanziamenti per la valutazione e lo sviluppo di trappola DD è stato fornito da sovvenzioni dalla tutela della salute di foresta di USDA Forest Service, Area nord-orientale.

1. preparare il verde e il viola pannelli <ol><li>Acquire verde e viola ondulato pannelli di plastica (120 × 60 cm) per il trapping EAB da un distributore commerciale di pest gestione forniture. Usare un taglierino o coltello per segnare due linee di piega in ogni pannello tagliando parzialmente attraverso la plastica lungo le ondulazioni verticali, 40 cm dai due bordi corti del pannello. In questo modo il pannello per essere piegato in un prisma su 3 lati (ogni faccia sarà 40 x 60 cm). Pannelli sono solitamente segnati dal distributore per facilitare la piegatura, quindi questo passaggio potrebbe non essere necessario.</li>
	<li>Due coppie di trapano dei fori in ogni gruppo utilizzando un ½ pollice (1,3 cm) bit come indicato nella Figura 1. I fori 4 pollici (10 cm) dalla parte superiore del pannello e 4 pollici su entrambi i lati della piega sinistra. Forare la seconda coppia di fori 19 pollici (48 cm) dalla parte superiore del pannello e direttamente sotto i fori superiori (cioè, 4 pollici su entrambi i lati della piega sinistra).</li>
</ol> 2. Preparare il tubo in PVC <ol><li>ottenere una sezione di tubo di programma 40 cloruro di polivinile (PVC), 3 m di lunghezza e 10 cm di diametro, da un negozio di ferramenta commerciale o altro fornitore per ogni trappola. Quattro fori nel tubo in PVC, come mostrato nella Figura 2. Eseguire utilizzando un trapano di ½ pollice (1,3 cm), una coppia di fori 4 pollici (10 cm) dalla parte superiore del tubo del PVC e 3½ pollici (8,9 cm) a parte. Allineare i fori orizzontalmente.</li>
	<li>Trapano un secondo paio di fori, 3½ pollici a parte e 52 pollici (1,3 m) sotto la parte superiore del tubo, direttamente sotto la prima serie di fori.</li>
</ol> 3. Installare un T-post <ol><li>uso un post libbre per installare un t-post nella posizione desiderata. Guidare il post abbastanza profondo in modo che la flangia è appena sotto la superficie del terreno, ma non c'è nessun bisogno di andare più in profondità. Il t-post fornirà un sacco di supporto per la trappola DD, anche in venti forti. Ragazzo fili o supporti supplementari non sono necessari. Anche se il t-post non deve necessariamente essere impostata profondamente nel terreno, è una buona idea per cercare di sottoservizi o tubi interrati prima mettendo il post terra.</li>
</ol> 4. Assemblare la trappola di DD <ol><li>Fold un pannello viola in un prisma. Se i pannelli sono pre-incollati, assicurarsi che la parte adesiva è all'esterno. I due piccoli lembi attraverso le feritoie di alimentazione e utilizzare due fascette di 8 pollici (20 cm) per fissare le estremità del pannello insieme. Ripetere con un pannello verde.</li>
	<li>Sostenere il tubo in PVC orizzontalmente sopra la terra. Far scorrere il prisma viola sui tratti di tubo di PVC e giù per la serie più bassa di fori nel tubo in PVC.</li>
	<li>Feed un grande, fascetta ferma-cavo lungo 2 piedi (60 cm) orizzontalmente attraverso la parte superiore a sinistra buco nel prisma, poi attraverso la coppia di fori nel tubo in PVC e infine attraverso il foro adiacente sul lato destro del prisma. Assicurarsi che il prisma è allineato contro la parte solida del tubo di PVC che si trova tra i due fori. Chiudere e serrare la fascetta ferma-cavo, assicurandosi che la fascetta non sia attorcigliata.</li>
	<li>Alimentare una seconda fascetta grande attraverso il foro inferiore nel prisma, intorno al tubo e attraverso il foro corrispondente sul lato adiacente del prisma. Chiudere la fascetta e serrare, nuovamente avendo cura di assicurare la fascetta non attorciglia prima serrato.</li>
	<li>Far scorrere il prisma verde sui tratti di tubo di PVC e allegarlo alla serie superiore di fori nel tubo in PVC con due fascette ferma-cavo di 60 cm, seguendo la stessa procedura descritta in precedenza. Ci sarà un gap di 21 pollici (54cm) tra i prismi superiori e inferiori.</li>
</ol> 5. Applicare la colla di insetto e Set Up the Trap <ol><li>applica chiaro colla di insetto intrappolamento ai pannelli che non sono pre-incollati. Anche pre-incollate spesso richiedono ulteriore colla per catturare EAB coleotteri. Per applicare colla cattura insetti, impostare la base del tubo del PVC sul terreno e prop la faccia interna del prisma superiore sul post-t.</li>
	<li>Guanti utilizzando lattice (o simili), raccogliere due o tre manciate di colla e striscio su tutta la superficie di un pannello, facendo attenzione che la superficie del pannello sia adeguatamente coperto. Ruotare il tubo in PVC per accedere a tutte le superfici in tre su due prismi. Colla non deve necessariamente essere applicato al tubo di PVC.</li>
	<li>Prendere il tubo in PVC, tenerlo verticalmente e far scorrere l'estremità inferiore sopra il post di t. Evitare di toccare i pannelli appiccicosi.</li>
</ol> 6. Esca la trappola di DD <ol><li>come pre-incollati prismi di solito arrivano con un piccolo foro (4 mm) vicino al bordo inferiore di un pannello del prisma, utilizzare una fascetta per cavi da 4 pollici (10 cm) per collegare una bustina di cis -3-hexenol al bordo inferiore del prisma superiore (verde). Se non c'è un buco, utilizzare un punzone buco palmare o un coltellino per tagliare un piccolo buco o fessura nella plastica, quindi utilizzare la piccola fascetta per attaccare l'esca. 
	Nota: Il cis -3-hexenol composto nelle esche viene rilasciato lentamente per circa un periodo di 10 settimane. Se trappole devono rimanere efficace per più di 10 settimane, sostituire le esche come necessario.</li>
</ol> 7. Controllo trappole per EAB coleotteri <ol><li>Check trappole a intervalli di 2-4 settimane, se possibile, per evitare di perdere i coleotteri catturati, che occasionalmente scendono le trappole, soprattutto in caso di pioggia. Esaminare tutti i tre lati del prisma inferiore per coleotteri EAB. Quindi, utilizzando guanti in lattice monouso, sollevare il tubo in PVC, verso l'alto e fuori il t-post e prop la faccia interna del prisma superiore sul t-post, esponendo un pannello di due prismi.</li>
	<li>Uso forcipe di rimuovere qualsiasi sospetto EAB coleotteri e metterli in un sacchetto di plastica richiudibile esemplare.</li>
	<li>Ruotare il tubo in PVC per esaminare tutti i tre pannelli su entrambi prismi per sospetto EAB coleotteri, quindi far scorrere il tubo indietro sopra il post-t. 
	Nota: Mosche, fare clic su scarafaggi e altri insetti vari saranno inevitabilmente catturati sulle trappole. Ci vuole un occhio attento per individuare uno scarabeo di EAB. Portando una foto tessera di riferimento può essere utile quando il controllo di trappole per la prima volta.</li>
	<li>Per confermare l'identificazione di specie, restituire coleotteri sospetti al laboratorio e metterli a bagno in un agente di compensazione istologico non tossico per un giorno o due per rimuovere la colla dell'intrappolamento dell'insetto. Coleotteri possono quindi essere esaminati sotto un microscopio per dissezione.</li>
</ol>

Gli autori dichiarano di non avere nessun concorrenti interessi finanziari.

La progettazione e la collocazione di trappole DD sfruttare l'attrazione di coleotteri adulti EAB alle specifiche tonalità di colore e alla luce. Il prisma verde sulla parte superiore del tubo del PVC è più attraente per gli scarabei maschii, che spendono la loro durata di vita nutrendosi di foglie della cenere, come pure di accoppiamento32,36,38,39. Il prisma inferiore viola assicura trappo...

Il dispositivo di prelievo cenere verde smeraldo (EAB) (dato planipennis Fairmaire) (Coleoptera: Buprestidae) ha ucciso centinaia di milioni di alberi di frassino (Fraxinus spp.), poiché esso è stato identificato nel 2002 nell'area metropolitana di Detroit, Michigan e in vicino Windsor, Ontario, Canada. Diffusione involontaria di frassini infestati, tronchi e legna da ardere, insieme a dispersione naturale di coleotteri, hanno provocato di EAB istituzione in almeno 27 Stati e due province canadesi alla data1. I rapporti recenti indicano che la EAB ha invaso anche Mosca, in Russia, dove sta uccidendo paesaggio cenere alberi2,3, generando ulteriore preoccupazione sul suo potenziale di diffusione in Europa. Variazione interspecifica in preferenza host EAB e resistenza tra cenere nordamericano specie è stato documentato4,5,6,7,8,9, ma praticamente tutte le specie di cenere in Nord America sono suscettibili di essere padroni di casa adatte. Livelli catastrofici della mortalità di cenere sono stati registrati nelle aree del Michigan e Ohio10,11,12, con impatti ecologici ed economici associati13,14, 15,16.
Metodi efficaci per rilevare nuove infestazioni di EAB e monitorare le popolazioni di bassa densità sono aspetti critici della gestione di questo parassita invasivo nelle impostazioni urbane, residenziale e boscose. Diagnosi precoce fornisce tempo di sviluppare una strategia, garantire finanziamenti e realizzare attività per ridurre gli impatti della EAB. Ad esempio, i proprietari di abitazione e i funzionari comunali può iniziare il trattamento ceneri preziose in paesaggi con insetticidi sistemici prima di danni causati dall'aumento densità larvale limiti efficacia di questi prodotti17,18. Allo stesso modo, identificazione di una nuova infestazione e informazioni attendibili sulla distribuzione locale di EAB dà silvicoltori e proprietari di immobili la possibilità di implementare le vendite di legname, conversione di specie o altre attività per ridurre i costi economici o ecologico effetti della mortalità di cenere.
La diagnosi precoce, delimitazione ed efficace monitoraggio delle popolazioni di EAB a bassa densità, tuttavia, rimangono difficili. Indagini visive per identificare frassini recentemente infestate non sono affidabili perché ash raramente presentano segni esterni o sintomi di infestazione di EAB fino a densità larvale costruire a livelli moderati o anche alta4,19. Il mezzo più efficace di rilevazione molto basse densità di EAB richiedono l'uso di cenere cinto rilevamento alberi19,20,21,22. Frassini sono cinto in primavera o inizio estate rimuovendo una banda di corteccia esterna e floema intorno alla circonferenza del tronco, che sottolinea gli alberi, aumentando la loro attrazione per adulti EAB coleotteri. Cinto di alberi possono essere scortecciati in autunno o in inverno per identificare la densità e presenza larvale EAB. Anche se girdled cenere alberi sono stati utilizzati operativamente per EAB rilevamento19,23,24,25, sono problematici. Scortecciatura cinto alberi possono essere laborioso e individuazione di alberi adatti per anulazione può essere difficile, soprattutto nelle aree urbane o residenziale o quando indagini devono essere condotte per più anni19.
Artificiale trappole innescate con attrattivi EAB eliminano molte preoccupazioni associate all'utilizzo di frassini cinto di rilevamento. A differenza di altri parassiti forestali importanti come il bombice dispari (Lymantria dispar L) e alcuni scarabei di corteccia Scolytinae che producono sesso lunga distanza o feromoni di aggregazione, ad oggi, non efficace interurbani feromoni sono stati trovati per EAB. Un feromone sessuale a corto raggio, cis-lattone, può facilitare l'accoppiamento26,27, ma nelle prove sul campo, cis-lattone esche non hanno costantemente accresciuto attrazione EAB a trappole artificiali28. Coleotteri adulti si basano sui composti volatili emessi dal frassino foglie, corteccia e legno per identificare il loro ospite alberi29,30,31 e incontrare potenziali compagni. Diversi composti volatili sono stati valutati per l'utilizzo in esche per attirare EABs adulto a trappole artificiali27,32. Attualmente, trappole utilizzate operativamente per indagini di rilevazione di EAB negli Stati Uniti sono innescate con esche contenenti cis-3-hexenol, una volatile di foglia verde comune prodotta da cenere fogliame30,33. Negli anni precedenti, trappole EAB utilizzate per US indagini hanno anche stato innescate con l'olio di Manuka, che viene estratta dall'albero del tè di Nuova Zelanda (Leptospermum scoparium Forst e Forst) o olio di Phoebe, un Estratto di noce brasiliana (Phoebe porosa Mez.); entrambi contengono diversi sesquiterpeni presenti anche in cenere corteccia29. Problemi con i rifornimenti incoerente di questi oli naturali, tuttavia, hanno limitato il loro uso.
Oltre alle sostanze volatili prodotte da host, coleotteri adulti EAB rispondono agli stimoli visivi, tra cui colore e luce20,32,34,35. Gli studi iniziali hanno mostrato gli adulti EAB, che sono le alette di filatoio relativamente agile, raramente sono stati catturati da imbuto nero trappole innescate con varie sostanze volatili cenere (DGM e TMP, dati non pubblicati). Sono stati valutati altri disegni di trappola, come Croce-a palette trappole, ma l'avversione di EAB scarabei a spazi scuri e ombre limitato l'efficacia di queste trappole.
Sviluppo di un prisma a tre lati, che possa essere rivestito con chiaro intrappolamento insetto colla35 per catturare gli scarabei, era un miglioramento sostanza nella progettazione di trappola. Attrazione di EABs adulto di colore inoltre è stata valutata estesamente nelle prove sul campo e in studi di laboratorio con un retinograph34. Risultati mostrano EAB coleotteri sono sempre attratti da specifiche tonalità di verde e viola32,36. Trappole di prisma fabbricati dalla plastica ondulata colorata ora sono ampiamente usati nelle attività di indagine EAB negli Stati Uniti e Canada.
Perché gli adulti EAB sono fortemente attratti alla luce, i coleotteri sono molto più propensi a colonizzare albero aperto-cresciutos rispetto all'ombra degli alberi20,21. Linee guida per le indagini di rilevamento EAB negli Stati Uniti richieste individuali Prisma trappole per essere sospeso da un ramo di Mid-baldacchino in un albero di cenere che crescono lungo una strada o il bordo di una zona boscosa37. In teoria, questo dovrebbe garantire che almeno un pannello del prisma è esposto alla luce solare. Operativamente, tuttavia, Prisma trappole possono essere parzialmente ombreggiati da rami spioventi adiacenti o nelle vicinanze di alberi. Delle superfici del pannello appiccicoso sono frequentemente soffiate nel fogliame, conseguente foglie aderendo al e oscurando almeno una parte di uno o più pannelli.
Trappole del Double-Decker (DD) sono stati sviluppati per integrare più segnali visivi ed olfattivi per aumentare l'attrazione di EAB coleotteri. Ogni trappola DD è composto da uno verde e uno prisma plastica ondulato viola attaccato ad un tubo di 40 cloruro di polivinile (PVC) di pianificazione di 3 m di altezza (10 cm di diametro), che è supportato facendo scorrere il tubo in PVC un t-post. Utilizzando prismi sia verdi e viola è progettato per ottenere entrambi i sessi di EAB coleotteri32,36,38,39. Inoltre, piuttosto che essere sospesa da un ramo sotto la tettoia di un frassino, le trappole DD sono posizionate in pieno sole, 5-10 m lontano da frassini lungo il bordo di una zona boscosa o in mezzo a dei dispersi, Apri-grown frassini.

<table><tbody><tr><td>Light green corrugated plastic panel: 120 cm x 60 cm</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EAB GR</td><td>All three surfaces of each prism need to be covered with clear insect trapping glue, even if the panels are pre-glued. Pre-glued panels are often not sticky enough to consistently capture or retain EAB beetles.&amp;nbsp; Other clear insect trapping glue products are available but are considerably more difficult to apply.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Light purple corrugated plastic panel: 120 cm x 60 cm</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EAB&amp;nbsp; LP</td><td></td></tr><tr><td>Large cable tie (4): 60 cm with a 79 kg capacity</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT-24-NU-100PK</td><td></td></tr><tr><td>Medium cable ties (4): 20 cm with a 22.7 kg capacity</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT261</td><td></td></tr><tr><td>Small cable tie: 10 cm with a 8.2 kg capacity</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT204</td><td></td></tr><tr><td>cis-3-hexanol pouch</td><td>Synergy Semiochemicals; http://www.semiochemical.com/html/buprestids.html)</td><td>3136</td><td>Lures used to bait DD traps consist of pouches containing cis-3-hexenol, a non-toxic compound present in ash leaves.&amp;nbsp; One pouch is attached to the lower edge of the top prism using a small cable tie.&amp;nbsp; Each pouch of cis-3-hexenol has a release rate of approximately 50 mg/day. Note that cis-3-hexenol is sometimes written as Z-3-hexenol.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Aphinity Hexenol</td><td>Sylvar Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lure GLV4 emerald ash borer</td><td>Chemtica, Heredia, Costa Rica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cis-3-hexanol pouch</td><td>WestGreen Global Technologies; http://www.westgreenglobaltechnologies.com/</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Clear insect trapping glue&amp;nbsp;</td><td>Hummert International; http://www.hummert.com/product-details/8196/pestick</td><td>01-3522-1&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Histoclear II histological clearing agent</td><td>National Diagnostics; www.nationaldiagnostics.com</td><td>HS-202</td><td>Histoclear II will be needed to remove the sticky insect glue from suspect beetles.&amp;nbsp; Other histological clearing agents are available but may not remove the glue and some products dissolve plastic, an important consideration if plastic containers are used for soaking the beetles.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Histoclear II histological clearing agent</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>10011</td><td>Histoclear II will be needed to remove the sticky insect glue from suspect beetles.&amp;nbsp; Other histological clearing agents are available but may not remove the glue and some products dissolve plastic, an important consideration if plastic containers are used for soaking the beetles.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>t-post: 1.5 m</td><td>multiple sources</td><td></td><td>A t-post (5 feet tall) (1.5 m) is used to support the PVC pipe.&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>post pounder</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Use a post pounder to set t-posts into the ground. No additional support is necessary.</td></tr><tr><td>HDPE (high density polyethylene) PVC pipe : 3 m x 10 cm diameter</td><td>multiple sources</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forceps (rigid)</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Forceps (tweezers) will be needed to remove suspect beetles from the traps. Rigid forceps work better than flexible forceps.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Latex gloves</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Latex gloves are needed for applying the insect trapping glue to the prisms and for checking the traps to collect EAB beetles.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Baby oil or baby wipes&amp;nbsp;</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Baby oil or baby wipes are helpful for removing the trapping glue from hands and equipment.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Re-sealable plastic specimen bags: 5 cm x 8 cm&amp;nbsp;</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Small re-sealable plastic specimen bags are useful for collecting beetles from traps.&amp;nbsp; Each bag should be labelled, either with pre-made, adhesive labels or with soft felt pens.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Guides to help with distinguishing EAB from beetles native to North America are available on the national EAB website at www.emeraldashborer.info. &amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

building double-decker traps for early detection of emerald ash borer

Trivellatore di cenere verde smeraldo (EAB) (dato planipennis Fairmaire), l'insetto più distruttivo di foresta a hanno invaso il Nord America, ha ucciso centinaia di milioni di alberi di frassino (Fraxinus spp.) di foresta e paesaggio. Parecchi disegni artificiale trappola per attirare e catturare EAB coleotteri sono stati sviluppati per rilevare, delineare e monitorare le infestazioni. Trappole del Double-Decker (DD) costituiti da due ondulato plastica prismi, uno verde e uno viola, collegato ad un tubo di cloruro di polivinile (PVC) di 3 m di altezza supportato da un t-post. Il prisma verde nella parte superiore del tubo del PVC è innescato con cis-3-hexenol, un composto prodotto da fogliame di cenere. Le superfici di due prismi sono ricoperte di colla appiccicosa dell'insetto per catturare coleotteri adulti EAB. Double-Decker trappole devono essere collocati vicino agli alberi di frassino ma in aree aperte, esposti al sole. Posizionamento e costruzione trappola a due piani sono presentati qui, insieme a un riepilogo degli esperimenti di campo che dimostrano l'efficacia delle trappole DD a catturare EAB coleotteri. In uno studio recente in siti con relativamente basse densità di EAB, trappole del Double-Decker catturato EAB significativamente più di trappole Prisma verde o viola o verde imbuto trappole, che sono progettati per essere sospeso da un ramo nel baldacchino di alberi di frassino. Una percentuale maggiore di doppio decker trappole erano positivi, vale a dire, catturato almeno un EAB, rispetto al prisma trappole o trappole di imbuto che sono stati appesi in baldacchini di albero di frassino.

In una grande scala studio, tre disegni trappola artificiale anche come cinto frassini sono stati distribuiti sistematicamente, 10-20 m di distanza, attraverso un recente infestate 16 ettari boschiva con una densità molto bassa di EAB25. Disegni di trappola artificiale testato inclusi prismi viola innescate con l'olio di Manuka e sospeso &#62; 3 m di altezza da un ramo nel baldacchino di cenere alberi, trappole DD 3 m di altezza con due pannelli verdi, e DD intrap...

Watch this Scientific Journal Video about Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer at JoVE.com

Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer

Trappole efficaci per attirare e catturare il trivellatore di cenere verde smeraldo (EAB) sono un elemento chiave della rilevazione e la gestione di questo parassita invasivo. Trappole a due piani, posizionate in pieno sole nei pressi di frassini, incorporano spunti visivi ed olfattivi ed erano più probabili catturare EAB rispetto agli altri modelli di trappola nelle prove sul campo.

Edificio a due piani trappole per individuazione tempestiva di smeraldo cenere Borer

Emerald ash borer (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), the most destructive forest insect to have invaded North America, has killed hundreds of millions ...

building-double-decker-traps-for-early-detection-of-emerald-ash-borer

Research

JoVE Journal

Environment

7.8K Views.  Michigan State University. Trappole efficaci per attirare e catturare il trivellatore di cenere verde smeraldo (EAB) sono un elemento chiave della rilevazione e la gestione di questo parassita invasivo. Trappole a due piani, posizionate in pieno sole nei pressi di frassini, incorporano spunti visivi ed olfattivi ed erano più probabili catturare EAB rispetto agli altri modelli di trappola nelle prove sul campo.

Video: Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer

Technique for Studying Arthropod and Microbial Communities within Tree Tissues

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms. Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear young, feed, or hide from natural enemies or harsh environmental conditions outside of the tree. Organisms that persist within the phloem habitat are difficult to observe given their location under bark. We provide a technique to preserve intact phloem and prepare it for experimentation with invertebrates and microorganisms. The apparatus is called a &#8216;phloem sandwich&#8217; and allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms. This technique has resulted in a better understanding of the feeding behaviors, life-history traits, reproduction, development, and interactions of organisms within tree phloem. The strengths of this technique include the use of inexpensive materials, variability in sandwich size, flexibility to re-open the sandwich or introduce multiple organisms through drilled holes, and the preservation and maintenance of phloem integrity. The phloem sandwich is an excellent educational tool for scientific discovery in both K-12 science courses and university research laboratories.

We provide a technique to preserve intact tree phloem and prepare it for observation. We create an apparatus called a phloem sandwich that allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms that inhabit phloem tissues.

Tecnica per lo Studio artropodi e comunità microbiche all&#39;interno Albero tessuti

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms.  Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear ...

Ricerca

Ambiente

A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect (Cryptococcus fagisuga Lind.)

Beech bark disease (BBD) results in high levels of initial mortality, leaving behind survivor trees that are greatly weakened and deformed.&#160;The disease is initiated by feeding activities of the invasive beech scale insect, Cryptococcus fagisuga, which creates entry points for infection by one of the Neonectria species of fungus.&#160;Without scale infestation, there is little opportunity for fungal infection. Using scale eggs to artificially infest healthy trees in heavily BBD impacted stands demonstrated that these trees were resistant to the scale insect portion of the disease complex1.&#160;Here we present a protocol that we have developed, based on the artificial infestation technique by Houston2, which can be used to screen for scale-resistant trees in the field and in smaller potted seedlings and grafts.&#160;The identification of scale-resistant trees is an important component of management of BBD through tree improvement programs and silvicultural manipulation.

A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect Cryptococcus fagisuga Lind.

Beech bark disease is initiated by feeding activities of the beech scale insect that create fungal entry points in the bark.&#160;Trees that are resistant to the scale insect are also disease resistant.&#160;Here we present the protocol we have developed to screen individual beech trees for beech scale resistance.

Una tecnica a Screen Faggio americano per la Resistenza al Beech cocciniglia (<em&gt; Cryptococcus fagisuga</em&gt; Lind.)

Beech bark disease (BBD) results in high levels of initial mortality, leaving behind survivor trees that are greatly weakened and deformed.&#160;The ...

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to two families: Steinernematidae and Heterorhabditidae. Until now, more than 70 species have been described in the Steinernematidae and there are about 20 species in the Heterorhabditidae. The nematodes have a mutualistic partnership with Enterobacteriaceae bacteria and together they act as a potent insecticidal complex that kills a wide range of insect species.
Herein, we focus on the most common techniques considered for collecting EPN from soil. The second part of this presentation focuses on the insect-baiting technique, a widely used approach for the isolation of EPN from soil samples, and the modified White trap technique which is used for the recovery of these nematodes from infected insects. These methods and techniques are key steps for the successful establishment of EPN cultures in the laboratory and also form the basis for other bioassays that consider these nematodes as model organisms for research in other biological disciplines. The techniques shown in this presentation correspond to those performed and/or designed by members of S. P. Stock laboratory as well as those described by various authors.

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes Steinernematidae, Heterorhabditidae

Entomopathogenic nematodes are soil-inhabiting roundworms that parasitize a wide range of insects. We demonstrate sampling methods used for the isolation of these nematodes from the soil using two techniques: the insect baiting and the modified White trap, for the recovery of nematodes from soil samples and infected insect cadavers, respectively.

Campionamento e Isolamento di Nematodi entomopatogeni Suolo (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to ...

A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. These bees select cavities that are suitable nest sites for birds, resulting in competition. The difficulty of removing bees and their defensive behavior makes a prevention protocol necessary. Here, we describe a push-pull integrated pest management protocol to deter bees from inhabiting bird boxes by applying a bird safe insecticide, permethrin, to repel bees from nest boxes, while simultaneously attracting them to pheromone-baited swarm traps. Shown here is an example experiment using Barn Owl nest boxes. This protocol successfully reduced colonization of Barn Owl nest boxes by Africanized honey bees. This protocol is flexible, allowing adjustments to accommodate a wide range of bird species and habitats. This protocol could benefit conservation efforts where AHB are located.

Preventing colonization of bird nest boxes by invasive Africanized honey bees is important for conservation efforts of nest-site limited birds. We provide an integrated pest management approach to &#34;push&#34; bees away from nest boxes with a repellant insecticide, permethrin, and &#34;pull&#34; them toward pheromone baited swarm traps.

Un protocollo push-pull per ridurre la colonizzazione di Bird nidi dalle api

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. ...

The Hawaii Protocol for Scientific Monitoring of Coffee Berry Borer: a Model for Coffee Agroecosystems Worldwide

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at capturing and quantifying the dynamics and impact of this invasive insect pest as well as the development of its host plant across a heterogeneous landscape. The cornerstone of this comprehensive monitoring system is timely georeferenced data collection on CBB movement, coffee berry infestation, mortality by the fungus Beauveria bassiana, and coffee plant phenology via a mobile electronic data recording application. This electronic data collection system allows field records to be georeferenced through built-in global positioning systems, and is backed by a network of weather stations and records of farm management practices. Comprehensive monitoring of CBB and host plant dynamics is an essential part of an area-wide project in Hawaii to aggregate landscape-level data for research to improve management practices. Coffee agroecosystems in other parts of the world that experience highly variable environmental and socioeconomic factors will also benefit from implementing this protocol, in that it will drive the development of customized integrated pest management (IPM) to manage CBB populations.

Comprehensive monitoring of coffee berry borer and host plant dynamics is essential for aggregating landscape-level data to improve management of this invasive pest. Here, we present a protocol for scientific monitoring of coffee berry borer movement, infestation, mortality, coffee plant phenology, weather, and farm management via a mobile electronic data recording application.

Il protocollo di Hawaii per monitoraggio scientifico di Coffee Berry Borer: un modello per caffè agroecosistemi in tutto il mondo

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at ...

A Precise and Autonomous System for the Detection of Insect Emergence Patterns

Existing systems to measure insect emergence patterns have limitations; they are only partially automated and are limited in the maximum number of emerging insects they can detect. In order to obtain precise measurement of insect emergence, it is necessary for systems to be semi-automated and able to measure large numbers of emerging insects. We addressed these issues by designing and building a system that is automated and can measure emergence of up to 1200 insects. We modified the existing &#34;falling-ball&#34; system using Arduino microcontrollers to automate data collection and expand the sample size through multiple data channels. Multiple data channels enable the user to not only increase their sample size, but also allows for multiple treatments to be run simultaneously in a single experiment. Furthermore, we created an R script to automatically visualize the data as a bubble plot, while also calculating the median day and time of emergence. The current system was designed using 3D printing so the user can modify the system to be adjusted for different species of insects. The goal of this protocol is to investigate important questions in chronobiology and stress physiology, using this precise and automated system to measure insect emergence patterns.

Measurement of insect emergence patterns requires precision. Existing systems are only semi-automated and sample size is limited. We addressed these issues by designing a system using microcontrollers to precisely measure the time of emergence of large numbers of emerging insects.

Un sistema preciso ed autonomo per l'individuazione di modelli di emersione degli insetti

Existing systems to measure insect emergence patterns have limitations; they are only partially automated and are limited in the maximum number of ...

A Method for Quantifying Foliage-Dwelling Arthropods

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density requires a method with high detection probability and a known sampling area. While most described methods provide a qualitative or semi-quantitative estimate adequate for describing species presence, richness, and diversity, few provide an adequately consistent detection probability and known or consistent sampling areas to provide an index or estimate with adequate precision to detect differences in abundance across environmental, spatial, or temporal variables. We describe how to quantify leaf-dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate and quantify them. As we demonstrate, this method can be used at a landscape scale to quantify leaf-dwelling arthropods with adequate precision to test for and describe how spatial, temporal, environmental, and ecological variables influence arthropod richness and abundance. This method allowed us to detect differences in density, richness, and diversity of leaf-dwelling arthropods among 5 genera of trees commonly found in southeastern deciduous forests.

We describe how to quantify leaf dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate for quantification.

Un metodo per quantificare gli artropodi Foliage-Dwelling

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density ...

Quantifying Corticolous Arthropods Using Sticky Traps

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density requires a method with high detection probability and a consistent sampling area. We used manufactured sticky traps to compare abundance, total length (a surrogate for biomass), richness, and Shannon diversity of corticolous arthropods among the boles of 5 tree species. Efficacy of this method was adequate to detect variation in corticolous arthropods among tree species and provide a standard error of the mean that was &#60;20% of the mean for all estimates with sample sizes from 7 to 15 individual trees of each species. Our results indicate, even with these moderate sample sizes, the level of precision of arthropod community metrics produced with this approach is adequate to address most ecological questions regarding temporal and spatial variation in corticolous arthropods. Results from this method differ from other quantitative approaches such as chemical knockdown, visual inspection, and funnel traps in that they provide an indication of corticolous arthropod activity over a relatively long-term, better including temporary bole residents, flying arthropods that temporarily land on the tree bole and crawling arthropods that use the tree bole as a travel route from the ground to higher forest foliage. Furthermore, we believe that commercially manufactured sticky traps provide more precise estimates and are logistically simpler than the previously described method of directly applying a sticky material to tree bark or applying a sticky material to tape or other type of backing and applying that to the tree bark.

We describe a semi-quantitative approach of measuring characteristics of corticolous (bark-dwelling) arthropod communities. We placed commercially manufactured sticky traps on tree boles to estimate abundance, total length (a surrogate to biomass), richness, and Shannon diversity for comparison among tree species.

Quantificare gli artropodi di Corticolous usando trappole appiccicose

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density ...

Low-Cost Automated Flight Intercept Trap for the Temporal Sub-Sampling of Flying Insects Attracted to Artificial Light at Night

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive sampling of flying insects have a poor temporal resolution because it is time-consuming, costly and/or logistically difficult to perform. Effective sampling of flying insects attracted to artificial light at night (ALAN) requires sampling at user-defined time points (nighttime only) across well-replicated sites resulting in major time and labor-intensive survey effort or expensive automated technologies. Described here is a low-cost automated intercept trap that requires no specialist equipment or skills to construct and operate, making it a viable option for studies that require temporal sub-sampling across multiple sites. The trap can be used to address a wide range of other ecological questions that require a greater temporal and spatial scale than is feasible with previous trap technology.

To study the impacts of artificial light at night (ALAN) on nocturnal flying insects, sampling needs to be confined to nighttime. The protocol describes a low-cost automated flight intercept trap that allows researchers to sample at user-defined periods with increased replication.

Trappola di intercettazione di volo automatizzata a basso costo per il sottocampionamento temporale di insetti volanti attratti dalla luce artificiale di notte

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive ...

Analysis of Gene Expression in Emerald Ash Borer (Agrilus planipennis) Using Quantitative Real Time-PCR

Emerald ash borer (EAB, Agrilus planipennis) is an exotic invasive pest, which has killed millions of ash trees (Fraxinus spp) in North America. EAB continues to spread rapidly and attacks ash trees of different ages, from saplings to mature trees. However, to date very little or no molecular knowledge exists for EAB. We are interested in deciphering the molecular-based physiological processes at the tissue level that aid EAB in successful colonization of ash trees. In this report we show the effective use of quantitative real-time PCR (qRT-PCR) to ascertain mRNA levels in different larval tissues (including midgut, fat bodies and cuticle) and different developmental stages (including 1st-, 2nd-, 3rd-, 4th-instars, prepupae and adults) of EAB. As an example, a peritrophin gene (herein named, AP-PERI1) is exemplified as the gene of interest and a ribosomal protein (AP-RP1) as the internal control. Peritrophins are important components of the peritrophic membrane/matrix (PM), which is the lining of the insect gut. The PM has diverse functions including digestion and mechanical protection to the midgut epithelium.

Analysis of Gene Expression in Emerald Ash Borer Agrilus planipennis Using Quantitative Real Time-PCR

Quantitative real-time PCR (qRT-PCR) is an effective tool to diagnose mRNA levels in different insect tissues and developmental stages. In this report we show the use of qRT-PCR to ascertain mRNA levels in different larval tissues and developmental stages of the invasive insect species, emerald ash borer.

Analisi dell&#39;espressione genica in Borer Emerald Ash ( Agrilus planipennis) Utilizzando quantitativa Real Time-PCR

Emerald ash borer (EAB, Agrilus planipennis) is an exotic invasive pest, which has killed millions of ash trees (Fraxinus spp) in North America. EAB ...

Edificio a due piani trappole per individuazione tempestiva di smeraldo cenere Borer

Riepilogo

Esplora Altri Video

Capitoli in questo video

Tecnica per lo Studio artropodi e comunità microbiche all'interno Albero tessuti

Una tecnica a Screen Faggio americano per la Resistenza al Beech cocciniglia (