Basicamente, todos os fungos são simbiontes alimentares vegetais antigos e essenciais, aumentam a absorção de nutrientes do hospedeiro e também são atores-chave na saúde celular. Embora os microrganismos celulares sejam difíceis de estudar, nosso protocolo permite monitoramento em tempo real, observação digital e estabelecimento eficiente de culturas de raios únicos. Atualmente, os fungos de micorrizas arbusculares são propagados em cultura em vasos, em casa de vegetação ou in vitro usando raiz transformada de Ri T-DNA.
Ambas as tecnologias contribuíram significativamente para o conhecimento desses fungos de micorrizas arbusculares na última década, mas apresentam limitações específicas. A avaliação do estabelecimento bem-sucedido do parceiro fúngico depende da presença de arbuscular nas raízes ou esporos no solo. A propagação in vitro permite vidas, mais monitoramento, mas requer rotas de transformação e condição estéril limitando sua aplicabilidade a muitas espécies de fungos de micorrizas arbusculares.
As técnicas de cultura em vaso ou cultura in vitro usadas para estudar os FMAs têm limitações em termos de observação ao vivo e propagação bem-sucedida. Para superar essas limitações, desenvolvemos este sistema autótrofo superabsorvente à base de polímeros, SAP-AS, que é uma técnica simples e barata que combina as vantagens da cultura in vitro e da cultura em vaso. Nosso laboratório se concentrará em melhorar o estabelecimento de novas espécies de fungos de micorrizas arbusculares em culturas de esporos únicos e também estudar a interação que supervisionamos em microrganismos.
Esta técnica nos permitirá estudar a dinâmica competitiva entre diferentes espécies de fungos de micorrizas arbusculares, mecanismo de propagação de falhas altas e processos de absorção de nutrientes.
