Истощение рибосомальной РНК для Mosquito метагеномных Gut РНК-сл

Резюме

Рибосомной РНК (рРНК) истощение протокол был разработан для обогащения РНК (мРНК), РНК-след от комаров metatranscriptome кишечника. Примеры специфических зондов рРНК, которые были использованы для удаления рРНК через вычитание, были созданы из комара и его микробами кишечника. Выполнение протокола может привести к удалению примерно 90-99% рРНК.

Аннотация

Кишечнике комара вмещает динамической микробных сообществ на различных этапах жизненного цикла насекомого. Характеристика генетического потенциала и функциональности кишечника сообщество обеспечит понимание последствий кишечник микрофлоры на комаров черты жизни. Метагеномных РНК-Seq стала важным инструментом для анализа transcriptomes от различных микробов, присутствующих в микробного сообщества. РНК обычно содержит всего 1-3% от общего числа РНК, а РНК составляет около 90%. Это является сложной задачей для обогащения РНК из образцов метагеномных микробной РНК, потому что большинство видов мРНК прокариот отсутствует стабильная поли (А) хвост. Это предотвращает олиго D (T) опосредованное мРНК изоляции. Здесь мы описываем протокол, который использует образцы, полученные рРНК захвата зонда для удаления рРНК из метагеномных общей выборке РНК. Для начала, как комар и микробных мелких и крупных фрагментов субъединицы рРНК усиливаются от метагеномных образца ДНК сообщества. Тогда, коммубесконечности конкретных биотинилированного антисмысловых рибосомных РНК-зондов синтезированы в пробирке использованием T7 РНК-полимеразы. Биотинилированные зонды рРНК гибридизуют к общей РНК. Гибридов захвачен покрытых стрептавидином шарики и удалить из общей РНК. Это вычитание протокола на основе эффективно удаляет как комар и микробных рРНК из общей выборки РНК. Образец мРНК обогащенный дальнейшей обработке для усиления РНК и РНК-Seq.

Введение

Следующее поколение технологии секвенирования значительно продвинулись метагеномика исследования, позволяющие оценить таксономического состава и генетической функциональности микробной сборки. РНК-последовательности (РНК-Seq) ¹ может обойти культуры на основе методов для исследования микробных metatranscriptomes в различных контекстах ^2-5. Основным препятствием к микробной РНК-след является трудность в обогащении мРНК, как прокариотических видов мРНК не стабильно полиаденилированных. Таким образом, олиго D (T) опосредованное посланник обогащения не применяется. Удаление обильные рРНК является альтернативным подходом к обогащению мРНК. Коммерческая истощения рРНК комплекты, такие как бактериальный комплект Microexpress обогащению мРНК (Ambion), RiboMinus транскриптома изоляции Kit (бактерии) (Life Technologies), и мРНК-ONLY Прокариотические комплект изоляции мРНК (Эпицентр), которые преимущественно деградирует рРНК с экзонуклеаза, были использованы для удаления рРНК ^6-8. Тем не менее, захват зондов в Microexpressили RiboMinus хорошо для удаления известных рРНК из типичных грамположительных и грамотрицательных бактерий (см. технические характеристики производителей), но меньше, совместимый с рРНК от неизвестных микробов. Следовательно, удаление может быть менее эффективным для метагеномных ^8-10 образцов. Кроме того, верности мРНК изобилие была сомнительной, когда экзонуклеаза лечения был применен ^11. В целом, вычитание на основе рРНК истощения была менее предвзято и более эффективным в мРНК обогащения в метагеномных настройки ^10-13.

Кишечнике комара вмещает динамической микробного сообщества ^14. Мы заинтересованы в том характеризующих функцию комаров микробиомом кишечника с помощью РНК-Seq. В образце РНК изолирован от комаров кишки, как комар и микробной РНК присутствуют. Здесь мы описываем изменения протокола, используемого сообщества специфических зондов рРНК эффективно разрушают комаров и микробных рРНК субтрактивный гибридизации. Полученные мРНКобогащенной образцы подходят для РНК-Seq. В целом рабочий процесс изображен на рисунке 1.

протокол

Процедура

1. Mosquito Выращивание

1. Задняя комара Anopheles gambiae G3 напряжение в insectary на 27,5 ° C при 80% влажности и 12:12 цикле ч свет / темнота.
2. Поток личинки с земли корм для кошек с пивными дрожжами в соотношении 1:1.
3. Поток взрослых комаров на крови мышей на 3-й день после появления всходов для производства яиц.

2. Mosquito Dissection Gut

1. Автоклав инструменты диссекции (слайды и щипцы).
2. Соберите 50 комары использованием аспиратора и разместить их на поток CO ₂ кровати (Ultimate Flypad). Промыть комаров образца последовательно в трех чашках Петри, содержащей 70% этанола для очистки комаров поверхности тела.
3. Поместите образец на предметное стекло под стереомикроскопия. Убрать живот.
4. Соберите 50 кишки в условиях метагеномных для выделения ДНК. Соберите 50 кишки в условия метагеномных выделения РНК.

3. Метагеномных выделения ДНК

Примечание: метагеномных ДНК выделяли с использованием мета-G-Ном выделения ДНК Kit (Эпицентр биотехнологии) с модификацией описанных ниже.

1. Место 50 комара кишки в 300 мкл TE. Однородный их в течение 1 мин с использованием био-Gen PRO200 гомогенизатора (PRO Научно Inc, США) со скоростью 2000 оборотов в минуту на льду.
2. Добавить 2 мкл готового Lyse Лизоцим решение и 1 мкл РНКазы к клеточной суспензии. Смешайте встряхиванием и инкубировать при 37 ° С в течение 30 мин.
3. Добавить 300 мкл Мета-Лизис решение (2X) и 1 мкл протеиназы К в трубке. Смешайте встряхиванием. Коротко импульсные трубки центрифуги обеспечить, чтобы все решения находится в нижней части трубки, и инкубировать при 65 ° С в течение 15 мин, охладить до комнатной температуры, затем место на льду в течение 3-5 мин.
4. Добавить 350 мкл реагента MPC осадков белка в трубку и перемешать встряхиванием энергично в течение 10 сек.
5. Пелле тОн мусора путем центрифугирования в течение 10 мин при 12000 мкг при 4 ° C.
6. Передача супернатант в чистую 2-мл трубки, и отказаться от гранул.
7. Добавить 570 мкл изопропанола в супернатант. Смешать путем обращения трубки в несколько раз.
8. Пелле ДНК центрифугированием в течение 10 мин при 12000 мкг при 4 ° C. Снимите изопропанола без выбивании осадок ДНК.
9. Добавить 500 мкл 75% этанола мыть гранул. Центрифуга в течение 5 мин при 12000 мкг при 4 ° C. Снимите этанола, не нарушая осадок ДНК. Воздушно-сухой осадок при комнатной температуре в течение 2 мин. Примечание: не более сухой осадок ДНК.
10. Ресуспендируют осадок ДНК в 50 мкл буфера ТЕ.
11. Подтвердить размер выделенной ДНК по сравнению с Fosmid ДНК управления (40 кб; 100 нг / мкл), входящий в комплект, с помощью гель-электрофореза в 1% агарозном геле.

4. Всего выделения РНК

Примечание: очистить рабочую областьс RNaseZap чтобы свести к минимуму загрязнение РНКазы. Метагеномных РНК выделяли из образцов кишечнике комара использованием реагентов TriPure изоляции (Roche) с незначительными изменениями.

1. Положите 50 комара кишки в 2-мл пробирку с 500 мкл реагента изоляции TriPure. Однородный течение 1 мин при скорости 2000 оборотов в минуту на льду, используя гомогенизатор. Пусть сидят при комнатной температуре в течение 5 мин, чтобы диссоциации нуклеопротеида комплексов.
2. Добавить 100 мкл хлороформа и вихрь в течение 12 секунд, и оставьте при комнатной температуре в течение 2 мин.
3. Центрифуга при 10000 х г в течение 10 мин. Осторожно вынуть трубку, не нарушая разделенных фаз.
4. Передача водной фазы в новую пробирку, добавляют 250 мкл изопропанола, хорошо перемешать и положить при температуре -20 ° С в течение 20 мин.
5. Центрифуга при 12000 х г в течение 10 мин при 4 ° С для осаждения РНК.
6. Удалите супернатант без выбивании гранул. Вымойте гранул с 750 мкл 75% этанола.
7. Внесите от супернатант, не нарушая гранул.ИК высушить трубку в течение 2 мин.
8. Ресуспендируют РНК с 30 мкл воды нуклеазы бесплатно.
9. Относитесь к общей РНК ДНКазой при 37 ° С в течение 20 мин, а затем инактивации ДНКазы путем инкубации при температуре 75 ° С в течение 15 мин. Осадок РНК этанолом и ресуспендируют РНК в 30 мкл воды нуклеазы бесплатно.
10. Определить количество общей РНК с использованием NanoDrop.

5. Рибосомных РНК истощения

Примечание: Протокол был разработан на основе ранее описанных методов ^12,13,15.

1. ПЦР-амплификации гена рибосомной фрагментов РНК
   Этот шаг создает образец конкретного рРНК бассейна, который будет использоваться в качестве шаблонов в пробирке транскрипции для получения антисмысловой рибосомальной РНК (arRNA) зонды, которые являются бесплатными для рРНК в общей выборке РНК.
   1. Разработка и синтез праймеров наборы для рРНК фрагмент ПЦР (табл. 1).
   2. Запуск ПЦР в 50мкл реакции с использованием Taq ДНК-полимеразы (Qiagen) с 50 нг ДНК-матрицы, 1 х ПЦР-буфера, 1,5 Mg ₂ Cl, 0,2 мкМ праймеров с 35 циклов денатурации при 94 ° С в течение 10 сек, 15 сек отжигу при температуре 40 ° С в течение бактериальных 23S ампликона и 50 ° C для других ампликонов и расширения при 72 ° С в течение 1 мин (окончательное удлинение при 72 ° С в течение 5 мин).
   3. Просмотр продуктов ПЦР на 1% агарозном геле.
   4. Очищают ПЦР продуктов с использованием очистки QIAquick ПЦР комплекте с элюирования в 50 мкл буфера для элюции. Количественно концентрация использованием NanoDrop.
2. В пробирке транскрипции биотин-меченных анти-смысл рРНК зондов (arRNA). Примечание: На данном этапе образцы специфических зондов из различных ампликонов рРНК синтезируются помощью MEGAscript T7 комплект.
   1. Настройка 20 мкл реакции для каждого образца конкретных ампликона рРНК путем смешивания ингредиентов ниже (табл. 2). Выдержите в течение ночи при 37 ° C. Примечание: Обычно реакция дает> 50 мкг РНК.
   2. Добавить 1 мкл ДНКазы I (входит в комплект) к реакционному и инкубировать при 37 ° С в течение 20 мин для удаления ДНК.
   3. Добавить 100 мкл 100% этанола к реакции, центрифуги при 12000 х г в течение 10 мин при 4 ° С для осаждения синтезированы arRNA. Удалите супернатант и мыть гранул с 750 мкл 75% этанола. Ресуспендируют РНК-зондов в 50 мкл воды нуклеазы бесплатно.
   4. Количественная концентрации РНК использованием NanoDrop. Магазин зондов при температуре -80 ° C.
3. рРНК вычитание с биотинилированным arRNA. Примечание: Этот шаг использует биотинилированного arRNA для гибридизации с рРНК в общей выборке РНК. РРНК-arRNA гибриды захвачен покрытых стрептавидином магнитных шариков. Процедура основана на протокол, описанный в ссылке 13 с незначительными изменениями.
   1. Реагенты
      1. Подготовка 0,1 N NaOH, 20X натрий хлорIDE-цитрата (SSC) и 1 х SSC с 20% формамида.
   2. Гибридизация
      1. Смешайте 1 мкг общей РНК с бактериальной 16S и 23S зондов (0,75 мкг каждая), москитные 18S и 28S зондов (0,75 мкг каждая), 1 мкл ингибитора РНКазы, 2,5 мкл 20Х SSC буфера, 10 мкл 100% формамида в 200 мкл ПЦР-пробирку , добавить нуклеазы без воды до 50 мкл.
      2. Поместите реакционную трубку в термоциклер и инкубировать при 70 ° C в течение 5 минут, чтобы открыть вторичной структуры и нарастить до 25 ° C с использованием 5 ° C шагом в течение 1 мин каждый ° C, чтобы гибридизация рРНК и arRNA зондов.
   3. Удаление рРНК
      1. Передача 300 мкл покрытых стрептавидином шарики в 1,7 мл трубки. Положите трубку на магнитной стойке отделение для иммобилизации бисера. Удалить супернатант. Ресуспендируют бисером в 300 мкл 0,1 н NaOH и милих хорошо. Положите трубку обратно на магнитной стойке и пипетировать от супернатанта. Ресуспендируют бисером в 300 мкл 1X SSC, хорошо перемешать, обездвижить бисером и пипетировать от супернатанта. Повторите мыть с 300 мкл 1X SSC еще раз.
      2. Сделайте 3 аликвоты из бисера, 100 мкл, в 1,7 мл пробирок. Положите трубку на магнитной стойке, и удалите супернатант с помощью пипетки. Примечание: аликвоты бусин используются для 3-х раундов захвата биотинилированного рРНК-arRNA гибридов.
      3. Добавить 50 мкл 1X SSC с 20% формамида в 50 мкл реакции гибридизации. Передача реакции в первое борта трубы аликвоты, и хорошо перемешать. Выдержите при комнатной температуре в течение 10 мин, чтобы позволить биотинилированного зонда-рРНК гибриды быть захвачены стрептавидином шарики. Флик трубку каждые 2 минуты, чтобы смешивать во время инкубации.
      4. Положите трубку на магнитной стойке для иммобилизации бисера, передает супернатанта на второй АликUOT из бисера, хорошо перемешать и инкубировать как указано выше. Проведение третьего захвата путем передачи супернатант в третьей трубы из бисера. Смешать и инкубировать.
      5. Передача не-рРНК супернатант в новую пробирку и проведении очистки с использованием RNeasy MinElute комплект для удаления формамида после эксплуатации завода-изготовителя.
      6. Проверьте эффективность рРНК истощения с помощью РНК-6000 Agilent Pico чип набор на Bioanalyzer (рис. 4).

Примечание: рРНК обедненного образцов РНК могут быть мРНК усиления при необходимости ^8.

Результаты

Протокол включает в себя три раздела: (1) подготовка метагеномных шаблонов ДНК для ПЦР-рРНК, (2) создание образцов специфических зондов рРНК захвата; (3) истощение рРНК от общей РНК субтрактивный гибридизации. Выделение высокого качества метагеномных ДНК и РНК имеет важное значение для вс...

Обсуждение

Комплекс микробного сообщества находится в кишечнике комара экосистемы ^14,16,17. Metatranscriptomic секвенирования (RNA-след) может выявить зависит от контекста функциональной информации путем опроса всей микробной транскриптом ^4,18. Технически, олиго-D (T) опосредованное обогащения прок?...

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
			Reagent/Material
Meta-G-Nome DNA isolation kit	Epicentre	MGN0910	Metagenomic DNA isolation
TriPure	Roche	11667165001	Mdetagenomic RNA isolation
MEGAscript T7 kit	Ambion	AM1334	In vitro synthesis of RNA probes
RNaseZap	Ambion	AM9780	RNase free working area
Biotin-16-UTP	Roche	11388908910	In vitro synthesis of RNA
Biotin-11-CTP	Roche	4739205001	In vitro synthesis of RNA
Streptavidin magnetic beads	NEB	S1420S	Capture of rRNA hybrids
Magnetic separation rack	NEB	S1506S	Capture of rRNA hybrids
RNeasy mini kit	QIAGEN	74104	Purification of subtracted RNA
RNase-Free DNase Set	QIAGEN	79254	Removal DNA contamination
Agilent RNA 6000 Pico Kit	Agilent Technologies Inc.	5067-1513	Electropherogram of RNA
			Equipment
Bio-Gen PRO200 Homogenizer	PRO Scientific	01-01200	Mosquito gut tissue homogenization
NanoDrop 1000 Spectrophotometer	Thermo Scientific		DNA & RNA quantitation
2100 Bioanalyzer	Agilent Technologies Inc.	G2940CA	Electropherogram of RNA