Оптимизированный<em&gt; Экс-ово</em&gt; Культивирование куриных эмбрионов в продвинутых стадиях разработки

Резюме

Viewing and accessing the chicken embryo during development can be challenging. We have developed an ex ovo method that is simple, cost effective, and can easily be used in a classroom or research setting. This method provides access to the embryo into late stages of embryonic development (HH 40).

Аннотация

Research in anatomy, embryology, and developmental biology has largely relied on the use of model organisms. In order to study development in live embryos model organisms, such as the chicken, are often used. The chicken is an excellent model organism due to its low cost and minimal maintenance, however they present observational challenges because they are enclosed in an opaque eggshell. In order to properly view the embryo as it develops, the shell must be windowed or removed. Both windowing and ex ovo techniques have been developed to assist researchers in the study of embryonic development. However, each of the methods has limitations and challenges. Here, we present a simple, optimized ex ovo culture technique for chicken embryos that enables the observation of embryonic development from stage HH 19 into late stages of development (HH 40), when many organs have developed. This technique is easy to adopt in both undergraduate classes and more advanced research laboratories where embryo manipulations are conducted.

Введение

Ex ovo culturing has played an important role in the study of development of the chicken^{1, 2}. This culturing method has been used to study neurological diseases, limb development, craniofacial development, and as a model to investigate malformations associated with diabetes ^{3, 4, 5}.

There are many variations to the ex ovo technique. The most common approach is to use a Styrofoam cup^6,7,8 or a glass bowl⁵. In these methods, the cup or bowl is lined with plastic wrap to cradle the embryo, a lid is placed on the cup, and the embryo is then placed in an incubator with appropriate humidity⁶. This set up however, can be technically challenging. The first challenge is the plastic wrap that is used to cradle the embryo. This wrap is difficult to work with and often does not adhere to the cup very well. To solve this problem, an elastic band is placed around the cup to hold the wrap in place. Despite this, the wrap can still slip, which is fatal to the embryo. The plastic wrap has the potential to tear or get punctured by forceps or needles that may be used during embryo manipulations and observations. Finally, this set-up is not very stable and students can easily knock the cups over. The height of the cups also makes it very difficult to place the embryo under a stereomicroscope, which has a limited objective to stage height. These challenges make it difficult for undergraduate students to work with live chick embryos in teaching labs, such as advanced developmental biology courses.

The above challenges in the ex ovo method has meant that researchers turn to the windowing method ^9,10 to view embryonic chick development. In this technique, a hole or “window” is made in the eggshell overlying the embryo. The hole can be re-sealed with tape or wax⁹ to allow for further embryonic development. Although the windowing method has some advantages, such as the ability to view embryonic development and easy maintenance, this method also has several limitations. The first is that the window needs to be fairly large in order to view the entire embryo (especially at late stages). Secondly, large windows are difficult to seal; an improper seal will lead to sterility and survivability problems. Using molten wax as a sealant adds another inconvenient and messy step to the protocol. Therefore, although the windowing method may be ideal for chick embryos at young stages (HH 11 – HH 27), viewing the entire embryo at late stages is not easily accomplished.

Here, we describe an improved and simple ex ovo culturing technique¹¹ that avoids the need for high tech equipment, is easy to handle under a stereomicroscope, gives the embryo enough support to perform microscopic manipulations, and enables researchers to view the growth of the embryo in its entirety well into the later stages of development (up to HH 40-41). With these advances in the ex ovo technique, individuals gain access to a more complete understanding of embryonic development. For instance, growth into later stages allows individuals to observe developmental processes that do not occur until this time point, such as ossification, feather development, and advanced limb and eye development. The entire embryo and extraembryonic membranes and vasculature are clearly visible. More advanced research can also be performed, such as, embryonic manipulations (i.e., implanting beadssoaked in inhibitors or inserting barriers between tissue layers), and researchers are then able to observe the effect of the manipulations in later stage embryos.

протокол

Примечание: Все материалы приведены в таблице 1.

1. Хранение куриных эмбрионах

1. Выдержите куриные яйца штамма Gallus Gallus горизонтально на 37 ^{° С} с примерно 40% влажности и превратить яйца один или два раза в день. Обращаясь яйца важно для предотвращения эмбрион от присоединения к яичной скорлупы.
2. Не превратить яйцо в 24 ч до создания культуры как в противном случае эмбрион будет расположен брюшной массы желтка и будут повреждены при открытии яйцо в шаге 3. Кроме того, держать яйца в 4 ^{° С} градусов не более чем за одну неделю до инкубации «пресекать» развития, но это не является идеальным.

2. Постановка куриных эмбрионах

1. Этап куриные эмбрионы, используя гамбургер и Гамильтон ¹² промежуточной таблицы. Идеальная сцена для создания экс-ово культивирование HH этап 19-20 (около 3 дней инкубации) BECAUSE это вскоре после того, голова поворачивается на 53 часов после оплодотворения.
   Примечание: HH этап 19-20 характеризуется следующими морфологическими признаками: сомиты распространяются в большинстве хвоста, однако самый конец хвоста остается сегментированный, хвостовой почки скручена, Аллантоис мала и ограничена сосудистой, для ног почки крупнее, чем крыло бутонов и глаза непигментированным или иметь сероватый оттенок.

3. Удаление эмбриона из оболочки

1. Перед снятием эмбриона из оболочки, спрей оболочку с 70% этанола и дайте ему высохнуть. Не включайте яйцо быстро, как это может повредить зародыш.
2. Соблюдая осторожность, чтобы не изменить ориентацию яйца, тщательно взломать яйцо на нижней стороне (т.е. сторона, которая была вентральной во время инкубации) и отпустите эмбриона в стерильной весят лодке (88 х 88 х 23 мм). Протрите весят лодки с 70% этанола. Проверьте эмбриона для того, чтобы желток мешок не повреждается. Если желтка чкак осколки, отказаться от эмбриона, так как он не выживет.
3. Соблюдайте эмбриона для того, чтобы он жизнеспособен; Сердце бьется, сосудистая кажется нормальным, и никаких очевидных аномалий нет. Убедитесь, что края взвешивания лодке сухие.
4. С помощью пипетки, падение 40 мкл пенициллина / стрептомицина (5000 единиц пенициллина, стрептомицина 5 мг на мл) на верхней части альбумина, чтобы помочь предотвратить инфекцию.

4. Подготовка влажность палату

1. Поместите небольшую стопку КИМ-салфеток и / или абсорбирующей прокладки, изготовленной из хлопка в нижней части стерильной пластиковой емкости (12 х 12 х 6 см) протирают 70% -ным этанолом.
2. Добавить стерильную дистиллированную воду, чтобы увлажнить КИМ-салфетки и / или хлопка (приблизительно 150 мл воды).

5. Сборка Ex ово Культура

1. Поместите весить лодку, содержащий эмбриона в верхней части влажной прокладки. Затем место половина квадратного стерильную чашку Петри (9,5 х 9,5 см) в верхней части Тон весит лодку, чтобы сформировать свободную крышку.
2. Накройте пластиковый контейнер с крышкой. Надавите на два угла крышкой, обеспечивая частичное уплотнение, которое до сих пор позволяет для хорошего воздушного потока внутри камеры.
3. Осторожно положите установки в 37 ^{° С} инкубатор до нужной стадии.
4. Поместите контейнеры воды в инкубаторе, чтобы контролировать влажность, если контролируемое инкубатор влажности недоступен. Стерилизацию всю воду в камерах влажности и в инкубаторе и при необходимости пополнить в течение инкубационного периода. 40% влажности является идеальным.

Результаты

Это экс ово метода позволяет для наблюдения эмбрионов от ранних стадиях развития (чч 19/20) и поздних стадиях развития (чч 40-41) (рис 1А и 1В). Настройка культуру HH 19-20 увеличивает выживаемость эмбрионов в культуре. До головки поворота (до 53 HPF) живучесть очень низка в кул?...

Обсуждение

Экс ово культивирование и оконной оба имеют свои преимущества и вызовы. Здесь мы сравнить преимущества и вызовы чашки экс пенополистирола ово метода и метода оконной к наш оптимизированный для экс ово способом, показанным здесь. Наш метод позволяет манипуляции и уд?...

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
Penicillin/Streptomycin	Sigma	P4458	Make small aliquots to avoid freeze/thaw events
Square Petri Dish			9.5 cm x 9.5 cm
Weigh Boat	Fischer Scientific	8732113	88 x 88 x 23 mm
Ziplock container	Ziplock	N/A	12 cm x 12 cm x 6 cm