JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

В этом исследовании мы описываем задняя полукружных канала подход как надежный метод доставки генов внутреннего уха у новорожденных мышей. Мы показывают, что ген доставки через задний полукружных канала возможность perfuse всего внутреннего уха.

Аннотация

Внутреннее ухо генной терапии предлагает большие перспективы для потенциального лечения потеря слуха и головокружение. Одним из решающих факторов успеха внутреннего уха генной терапии является найти метод доставки, который приводит к постоянной трансдукции эффективности типов целевых клеток при сведении к минимуму потери слуха. В этом исследовании мы описываем задняя полукружных канала подход как действенного метода доставки генов внутреннего уха у новорожденных мышей. Мы показывают, что ген доставки через задний полукружных канала возможность perfuse всего внутреннего уха. Легко анатомические идентификации задняя полукружных канала, а также минимальная манипуляция височной кости требуется, сделать это хирургический подход привлекательным вариантом для доставки генов внутреннего уха.

Введение

Внутреннее ухо генная терапия является быстро развивающейся области расследования. Она применялась в различных моделях животных к борьбе с ототоксичность, шум травмы и наследственный слуха потери1. Несколько недавних исследований показали функциональное восстановление слуха и равновесия функций мутантных мышей после внутреннего уха генной терапии доставки2,3,4,5,6, 7. одним из ключевых факторов в определении успеха внутреннего уха генной терапии является хирургический метод, используемый для доступа к внутреннему уху. Идеально хирургический подход будет легко выполнять, анатомические ориентиры будут последовательно и легко идентифицировать, и результирующая трансдукции типов целевых клеток будет высоким.

В недавнем исследовании мы показали, что при вирусных генной терапии было впрыснуто через задний полукружных канала черная мутант мыши (модель потери слуха и вестибулярной дисфункции), эффективный трансдукции Сензорные клетки волос был замечен в вестибулярного органы, а также как и улитки5. Высокая эффективность сенсорные клетки волос трансдукции привело к улучшению слуховые и вестибулярные функции в этих мутантных мышей.

В этой статье мы подробно описать подход задняя полукружных канала для доступа к неонатальной мыши внутреннего уха.

протокол

Все животные процедуры были утверждены животное уход и использование Комитета при Национальном институте по глухота и других расстройств коммуникации (NIDCD ASP1378-15).

1. Процедура установки и подготовки

  1. Простерилизуйте все инструменты, окись этилена в начале эксперимента. Между животными чистые инструменты с использованием бисера стерилизации.
  2. Загрузите решение, содержащее вирусный генной терапии в микропипеткой на микро инжектор. Вирусный вектор, используемый в данном исследовании был AAV2/8-whirlin (копии генома13 1 x 10 на миллилитр, таблица материалов).
    Примечание: Как правило, 1.1 мкл общий объем загружается в микропипеткой.

2. анестезия

Примечание: Штамм мыши, используемые в данном исследовании является черная мышь. Гомозиготная мутантов (wi/wiWhrn) и гетерозиготных однопометники (Whrn+/ wi) были использованы.

  1. Место матери в отдельной клетке (отдельно от помета).
  2. Место дома клетки, содержащие помет (P0 - P5 щенков) на площадку рециркуляции тепла (комплект на 37,5 ° C) чтобы согреться мышей.
  3. Вырезать часть пальца латексных перчаток и место щенка в нем.
  4. Поместите щенка в латексных перчаток пальца в ведро льда для ~ 2 мин.
  5. Место наркотизированных щенка на большой площади коммерческих пластиковые замораживание пакет с 4 "x 4" марлю между щенком и пакет поверхности.
  6. Заполните тяжелых латексные перчатки с колотым льдом и поместите лед перчаткой вокруг щенка.
  7. Проверьте, чтобы увидеть, если щенок адекватно наркоз, полное отсутствие любого ответа на различные стимулы (в том числе щепотку фирмы мыс). Оставьте щенка на лед в течение операции (приблизительно 5-10 мин).
    Примечание: Мы рекомендуем, оставляя щенят на лед не более 15 минут во время операции.

3. хирургический подход (рис. 1)

  1. Очистите кожу за ухом с йода очистки и очистки спирта после наркоза животного.
  2. Сделать заушной разрез ~ 2 мм позади уха, с помощью микро ножницы и разделить ключично мышцы с микро ножницы.
  3. Идентифицировать лицевого нерва и буллы. Буллы хрящевой и полупрозрачные в этом возрасте, и он находится медиальнее лицевого нерва. Stapedial артерии можно увидеть через буллы в этом возрасте, который является полезным ориентиром.
  4. Следуйте лицевого нерва, главно и кзади найти задней полукружных канала (PSCC). Удаление мышечных волокон и мягких тканей, обволакивающие задняя полукружных канала с помощью микро ножницы.
    Примечание: PSCC хрящевой в этом возрасте.
  5. Проникать PSCC с использованием стекла микропипеткой (~ 10 мкм в диаметре) на микро инжектор.
  6. Inject вирусный генной терапии в внутреннего уха.
    Примечание: Как правило, в общей сложности 20 инъекций 49 nL генной терапии поставляются в задней полукружных канала более ~ 40 s (общий объем ~ 1 мкл). Вирусная титр используется был 1 x 1013 генома копий / мл.
  7. Закройте разрез кожи с помощью швов полиглактин 5-0.

4. послеоперационный уход

  1. Место щенка на потепление площадку, чтобы восстановить нормальную температуру тела при восстановлении от анестезии с постоянной ручной стимуляции/rolling с перчатке человеческие пальцы.
  2. Как только щенок проснулся, поместите его обратно в свои дома клетке.
  3. Ласкать каждого щенка с ватным тампоном, который подвергается постельные принадлежности дома Кейдж.
    Примечание: Цель этого является иметь запах, как они это делали до операции, который увеличивает вероятность матери, вновь принимая ее помета послеоперационный мышей. Если возможно мочи от матери может собраны и потер на щенков, используя ватный тампон для дальнейшего снижения вероятности отказа.
  4. Применять минеральные масла к матери нос Десенсибилизировать ее8и вновь мать в дома клетку.

Результаты

Инъекции AAV8-whirlin генной терапии в неонатальной черная мышей через задний полукружных канала привело к whirlin выражение (зеленый) в утрикулярной волосковых клеток (рис. 2), с общей эффективности инфекции 53,1% (SD 38.1, n = 28)5 . Transduced клетки волос удлине...

Обсуждение

Для доступа к грызунов внутренний уши были описаны несколько хирургических вмешательств. Cochleostomy и круглое окно подходов наиболее часто используются для доступа к улитки, тогда как задняя полукружных канала и endolymphatic мешок подходы обычно используются для доступа к вестибулярных орган?...

Раскрытие информации

Авторы имеют без соответствующих раскрытия сделать.

Благодарности

Эта работа была поддержана средств из NIDCD Отдела по очной исследования /NIH (DC000082-02 W.W.C.), а также DC000081 в передовых тепловизионных ядро. Мы благодарны за NIDCD животных фонда персонала для заботить для наших животных.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Operating microscopeZeissOPMI Pico ENT microscope. Other dissection microscopes would also work.
Micro-forceptsFine Science Tools11251-10, 11295-51#5 and #55 Dumont
Micro-scissorsFine Science Tools15002-08
Nanoliter2000 microinjectorWorld Precision Instruments
Heating padMastexModel 500/600
5-0 vicryl suturesEthicon
AAV8-whirlinVector Biolabs
Glass pipetteSutter InstrumentsB100-75-10Borosilicate glass

Ссылки

  1. Chien, W. W., Monzack, E. L., McDougald, D. S., Cunningham, L. L. Gene therapy for sensorineural hearing loss. Ear Hear. 36, 1-7 (2015).
  2. Askew, C., et al. Tmc gene therapy restores auditory function in deaf mice. Sci Transl Med. 7, 295 (2015).
  3. Akil, O., et al. Restoration of hearing in the VGLUT3 knockout mouse using virally mediated gene therapy. Neuron. 75, 283-293 (2012).
  4. Pan, B., et al. Gene therapy restores auditory and vestibular function in a mouse model of Usher syndrome type 1c. Nat Biotechnol. 35, 264-272 (2017).
  5. Isgrig, K., et al. Gene Therapy Restores Balance and Auditory Functions in a Mouse Model of Usher Syndrome. Mol Ther. 25, 780-791 (2017).
  6. Lentz, J. J., et al. Rescue of hearing and vestibular function by antisense oligonucleotides in a mouse model of human deafness. Nat Med. 19, 345-350 (2013).
  7. Shibata, S. B., et al. RNA Interference Prevents Autosomal-Dominant Hearing Loss. Am J Hum Genet. 98, 1101-1113 (2016).
  8. Van Sluyters, R. C., Obernier, J. A. Guidelines for the care and use of mammals in neuroscience and behavioral research. Contemp Top Lab Anim. 43, 48 (2004).
  9. Chien, W. W., et al. Gene Therapy Restores Hair Cell Stereocilia Morphology in Inner Ears of Deaf Whirler Mice. Mol Ther. 24, 17-25 (2016).
  10. Hirose, K., Hartsock, J. J., Johnson, S., Santi, P., Salt, A. N. Systemic lipopolysaccharide compromises the blood-labyrinth barrier and increases entry of serum fluorescein into the perilymph. J Assoc Res Otolaryngol. 15, 707-719 (2014).
  11. Okada, H., et al. Gene transfer targeting mouse vestibule using adenovirus and adeno-associated virus vectors. Otol Neurotol. 33, 655-659 (2012).
  12. Suzuki, J., Hashimoto, K., Xiao, R., Vandenberghe, L. H., Liberman, M. C. Cochlear gene therapy with ancestral AAV in adult mice: complete transduction of inner hair cells without cochlear dysfunction. Sci Rep. 7, 45524 (2017).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

133

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены