JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Мы описываем метод для генерации glmS-на основе условного нокдаун мутантов в Plasmodium falciparum с помощью изменения генома ТРИФОСФАТЫ/Cas9.

Аннотация

Малярия является одной из основных причин заболеваемости и смертности во всем мире. Эта болезнь, которая прежде всего затрагивает людей, живущих в тропических и субтропических районах, вызванного инфекцией с Plasmodium паразитов. Разработка более эффективных лекарственных препаратов для борьбы с малярией может быть ускорен путем улучшения нашего понимания биологии этого комплекса паразита. Генетические манипуляции этих паразитов является ключом к пониманию их биологии; Однако геном P. falciparum исторически трудно манипулировать. Недавно изменения генома ТРИФОСФАТЫ/Cas9 был использован в малярийных паразитов, позволяющие проще белка, пометки, поколение нокдаунов условного белка и удаления генов. Изменения генома ТРИФОСФАТЫ/Cas9 оказался мощным инструментом для продвижения области исследований малярии. Здесь мы описываем ТРИФОСФАТЫ/Cas9 метод для генерации glmS-на основе условного нокдаун мутантов в P. falciparum. Этот метод является весьма адаптированы для других типов генетических манипуляций, включая пометки белка и Джин нокауты.

Введение

Малярия является разрушительное заболевание, вызванное простейших паразитов рода Plasmodium. P. falciparum, наиболее смертоносной человека малярийного паразита, вызывает около 445 000 смертей в год, главным образом детей в возрасте до пяти1. Plasmodium паразиты имеют сложный жизненный цикл, с участием вектора комаров и позвоночных хост. Сначала люди заражаются когда зараженный комар берет крови еды. Затем паразит вторгается в печень, где он растет, развивается и делит приблизительно одну неделю. После этого процесса паразиты попадают в кровь, где они проходят бесполое репликации в красные кровяные клетки (эритроциты). Рост паразитов внутри эритроцитов непосредственно отвечают за клинические симптомы, связанные с малярией2.

До недавнего времени, производство трансгенных P. falciparum был трудоемкий процесс, с участием нескольких раундов выбора препарата, который занимает много месяцев и имел высокий коэффициент отказа. Это длительная процедура relieson генерации случайных ДНК влезает в регионе интереса и эндогенных способность паразита починить его генома хотя гомологичных ремонт3,4,5,6 . Недавно изменения генома кластерного регулярно Interspaced рецидивирующий Repeat/Cas9 (ТРИФОСФАТЫ/Cas9) успешно использовались в P. falciparum7,,8. Введение этой новой технологии в исследований малярии играет решающую роль для углубления понимания биологии этих смертоносных Plasmodium паразитов. ТРИФОСФАТЫ/Cas9 позволяет для конкретного нацеливания генов через руководство РНК (оформления), которые являются гомологичного гена интереса. Комплекс Cas9 gRNA признает гена через gRNA и Cas9 затем вводит двухручьевой перерыв, заставляя начала ремонт механизмов в организме9,10. Потому что P. falciparum не хватает техники для ремонта разрывы ДНК путем присоединения к не гомологичных конец, он использует механизмы гомологичная рекомбинация и интегрирует transfected гомологичных ДНК шаблоны для ремонта Cas9/gRNA индуцированной двухручьевой перерыв11,12.

Здесь мы представляем протокол для генерации условных нокдаун мутантов в P. falciparum с помощью изменения генома ТРИФОСФАТЫ/Cas9. Протокол демонстрирует использование glmS рибозима условно нокдаун белка уровни PfHsp70x (PF3D7_0831700), сопровождающий экспортируемые P. falciparum в принимающей RBCs13,14. GlmS рибозима активируется путем обращения с глюкозамином, (который преобразуется в глюкозамин-6-фосфат в клетках) для расщеплять связанные мРНК, приводит к уменьшению белков14. Этот протокол может быть легко адаптирована для использования других условных нокдаун инструменты, такие как дестабилизации доменов или РНК аптамеры4,5,15. Наши детали протокола поколения ремонта плазмида, состоящий из гемагглютинина (HA) тег и glmS рибозима кодирования последовательности параллельной последовательности, гомологичных PfHsp70x рамка чтения открытая (ORF) и 3'-УТР. Мы также описывают поколения второй плазмида диск выражение gRNA. Эти два плазмиды, вместе с третьим, что диски, проявление Cas9, transfected в эритроциты и используется для изменения генома P. falciparum паразитов. Наконец, мы описываем полимеразной цепной реакции (ПЦР)-на основе технику для проверки интеграции тег и glmS рибозима. Этот протокол является весьма гибкой для модификации или полный нокаут любой P. falciparum генов, повышение нашей способности генерировать новые идеи в биологии малярийного паразита.

протокол

Непрерывное культуры P. falciparum требует использования человека эритроциты, и мы использовали коммерчески приобретенных единиц крови, которые были лишены всех идентификаторов и анонимными. Обзор наших протоколов и утверждены все протоколы, используемые в нашей лаборатории институциональных Наблюдательный Совет и управление биобезопасности в Университете Джорджии.

1. Выбор gRNA последовательности

  1. Перейдите к CHOPCHOP (http://chopchop.cbu.uib.no/) и выберите «Fasta Target». Под «Целевой»вставьте 200 пар от 3' конца открытого чтение фрейма (ORF) гена и 200 пар от начала ген 3'-УТР. В разделе «В», выберите «P. falciparum» (3D 7 v3.0) и выберите «ТРИФОСФАТЫ/Cas9» в «Using». Затем нажмите кнопку «найти целевых сайтов».
  2. Выберите последовательность gRNA из вариантов, представленных, отдавая предпочтение наиболее эффективным gRNA, ближайший на сайт изменения и что имеет наименьшее количество сайтов пробить.
    Примечание: Потенциальные gRNA последовательности определяются потому что они сразу вверх по течению прилегающих мотив Protospacer (PAM), который необходим для вербовки Cas9 ДНК. Последовательность, которая копируется в ПМК U6, вектор, что диски gRNA выражение, является 20 баз сразу вверх по течению от PAM. PAM для Cas9 S. pyogenes нуклеотидная последовательность NGG и не должны быть включены в последовательности, клонирован в ПМК U6.
    Примечание: CHOPCHOP визуально занимает gRNA последовательностей, показ лучших вариантов в зеленый, менее идеальным вариантов в янтаре и худших вариантов в красном. CHOPCHOP дает каждой последовательности gRNA Оценка эффективности, которая рассчитывается, используя самые современные параметры, имеющиеся в литературе, и они предсказывают пробить сайты, которые могут быть признаны gRNA. Два или три gRNA последовательности может потребоваться быть пытались найти gRNA наиболее подходят для конкретной ген.
  3. Покупка gRNA последовательность и ее реверс дополнения как электрофорез геля полиакриламида-очищенная oligos. GRNA последовательность, используемая для целевого PfHSP70x можно найти на рисунке 1B.
    Примечание: Этот oligo должна включать 15 пар гомологичных gRNA выражая плазмиды, которые необходимы для последовательности и перевязка независимые клонирования (SLIC) в ПМК U6 вектор16.

2. клонирование gRNA последовательности в ПМК U6

  1. Дайджест ПМК U6 с BtgZI.
    1. Дайджест 10 мкг ПМК U6 с 5 мкл BtgZI фермента (5000 единиц/мл) 3 часа при температуре 60 ° C. Следуйте фермента производителя протокол для условий реакции.
    2. После инкубационного периода 3 h добавьте дополнительные 3 мкл BtgZI реакции для обеспечения полного переваривания плазмиды. Дайджест за дополнительные 3 h, еще следующие инструкции производителя для обеспечения условий правильного реакции.
    3. Для того чтобы очистить переваривается ПМК U6 от реакции, используйте комплект очистки ПЦР, на основе столбцов, согласно инструкциям производителя.
    4. Отдельные переваривается ДНК с помощью геля агарозы 0,7% и извлекать группы пара 4200 base.
  2. Отжиг oligos, содержащие gRNA последовательности.
    1. Воссоздания страницы очищенная oligos к концентрации 100 мкм с использованием воды, свободной от нуклеиназы.
    2. Объединить 10 мкл каждого oligo с 2.2 мкл буфера 10 x 2 (см. Таблицу материалы). Убедитесь, что общая реакция объем 22.2 мкл.
    3. Запустите gRNA отжига программы в Термоциклер: шаг 1: 95 ° C, 10 мин; Шаг 2: 95 ° C, 1 сек, с уменьшением температуры 0,6 ° C/цикл; Шаг 3: перейдите к шагу 2, 16 раз; Шаг 4: 85 ° C, 1 мин; Шаг 5: 85 ° C, 1 сек, с уменьшением температуры 0,6 ° C/цикла; Шаг 6: перейдите к шагу 5, 16 раз; Шаг 7: 75 ° C, 1 мин; Шаг 8: 75 ° C, 1 сек, с уменьшением температуры 0,6 ° C/цикл; Шаг 9: перейдите к шагу 8, 16 раз. Шаги 10-21: повторить процедуру, используемую в шаги 4 – 9 до тех пор, пока температура достигает 25 ° C; Шаг 22:25 ° C, 1 мин.
  3. Вставьте отожженная gRNA oligos плазмида BtgZI усваивается и гель очищенная ПМК U6.
    1. Комбинат 100 нг переваривается ПМК U6 с 1 мкл 10 x буфер 2.1 и 3 мкл отожженная gRNA oligos. Повышайте громкость до 9,5 мкл с нуклеиназы свободной воды.
    2. Добавить 0,5 мкл T4 полимеразы и инкубировать реакции при комнатной температуре в течение 2,5 мин.
    3. Переместите реакция на лед и проинкубируйте втечение 10 мин.
    4. Сразу преобразование 5 мкл реакции в E. coli компетентным согласно инструкциям поставщика бактерий. Пластина бактерии на плиты агара Lysogeny бульон (LB), содержащие 100 мкг/мл ампициллина.
    5. Разрешить преобразованные бактерий расти при 37 ° C на ночь, а затем выберите колоний и извлечь ДНК с комплектом алкалический коммерчески доступных плазмиды.

3. Проектирование гомологии регионов ремонт шаблона

  1. Дизайн щит мутации в шаблоне ремонт гомологии для предотвращения повторного резки ДНК, которая интегрирована в геноме.
    Примечание: Щит мутации обычно состоит из представляя молчание мутации изменить PAM, так, что Cas9 не вызовет разрыв в шаблоне ремонт. Диспетчер PAM требуется для Cas9, используемые в настоящем Протоколе нуклеотидной последовательности «Нг», где «N» — любой нуклеотидов. Если возможно измените один из нуклеотидов G A, C, или т.
    1. Если диспетчер PAM не мутировал молча, ввести по крайней мере 2 немого мутации в 6 пар оснований, непосредственно прилегающих к PAM,78.
      Примечание: Эти мутации предотвратить признание ремонт шаблона, gRNA и предотвратить повторно резки отремонтированы локуса, Cas9 gRNA комплекс. Щит мутации могут быть введены в регионе гомологии усилительных ДНК с праймерами, которые содержат мутации.
  2. Усилить ORF гомологии региона для ремонта шаблона.
    1. С помощью ПЦР, усиливают 800 пар от 3' конца целевого гена ORF. Дизайн грунты, которые будут использоваться для исключения из этой ампликон стоп-кодон.
    2. Дизайн праймеров для вставки этой ампликон в ФГА -glmS , который был переваривается с SacII и АФМП посредством реакции перешнуровки дна или ломтик16.
  3. Усилить регионе гомологической 3'-UTR для ремонта шаблона.
    1. С помощью ПЦР, усиливают 800 пар сразу же после стоп-кодон целевого гена. Праймеры дизайн для вставки этой ампликон в ФГА -glmS , который был переваривается с HindIII и NheI посредством реакции перешнуровки дна или ломтик16.
      Примечание: Высокое содержание P. falciparum генома может затруднить амплификации регионов таких необычных. Альтернативный подход к с помощью ПЦР синтезирующим гомологии регионов.

4. клонирование гомологии регионов в плазмиду ремонт

  1. Вставьте ORF гомологии региона в ФГА -glmS.
    1. Дайджест pHA -glmS с SacII и АФМП, следуя инструкциям изготовителя фермента. Вставьте переваривается плазмида с использованием SLIC16продукт PCR региона гомологии ORF.
    2. Преобразуйте в сведущее Escherichia coli , выполнена в шагах 2.3.4 и 2.3.5.
  2. Вставьте 3'-UTR гомологии региона в ФГА glmS плазмиды, уже содержащий ORF гомологии региона (см. шаг 4.1).
    1. Дайджест плазмида с HindIII и NheI согласно инструкциям производителя фермента. Ампликон региона гомологической 3'-UTR вставьте переваривается плазмида с использованием SLIC16.
    2. Превратить в сведущее Escherichia coli и извлечь плазмидной ДНК (шаги 2.3.4 и 2.3.5).

5. осаждения ДНК для Transfection

  1. Добавьте 40 мкг каждая ПМК U6, pUF1-Cas9 и pHA -glmS ДНК (для в общей сложности 120 мкг ДНК) в трубку microcentrifuge стерильные 1,5 мл.
  2. Добавить 1/10 объема ДНК 3 M ацетата натрия в воде (рН 5.2) на трубу и перемешать хорошо с помощью вихря (например, если объем в шаге 5.1 было 100 мкл, добавить 10 мкл ацетат натрия).
  3. Добавить в 2,5 раза объем 100% этанола в трубку и размешать хорошо используя вихревой для по крайней мере 30 s (например, если объем в 5.1 100 мкл, добавить 250 мкл, 100% этанола).
  4. Место труб на льду или в-20 ° C за 30 мин.
  5. Центрифуга трубку 18300 x г за 30 мин при 4 ° C.
  6. Осторожно удалите супернатант из трубки. Не беспокоить гранулы.
  7. Добавить 3 раза объем 70% этанола в трубку и перемешать кратко с помощью вихря (например., если объем в 5.1 100 мкл, добавьте 300 мкл на 70% спирте).
  8. Центрифуга трубку 18300 x г за 30 мин при 4 ° C.
    Примечание: Этот шаг должен выполняться в стерильных условиях в биологической безопасности кабинета.
  9. Осторожно удалите супернатант из трубки. Не беспокоить гранулы. Оставьте открытым трубки и позволяют Пелле высохнуть в течение 15 мин.
  10. Храните осажденный ДНК при-20 ° C до тех пор, пока это необходимо для transfection.

6. изоляция человека эритроциты из цельной крови в рамках подготовки к Transfection

  1. Аликвота свежей крови в стерильных 50 мл конические трубы (примерно 25 мл на трубу).
  2. Центрифуга трубы в 1088 x g для 12 мин, с тормозами центрифуги, равным 4.
  3. Аспирационная вне Баффи и супернатанта пальто. Ресуспензируйте РБК лепешка с равным объемом неполной RPMI.
    Примечание: Неполные RPMI готовится путем дополнения RPMI 1640 с 10.32 тимидина мкм, 110.2 мкм гипоксантина, пируват натрия 1 мм, бикарбонат натрия 30 мм, 5 мм HEPES, 11,1 мм глюкозы и гентамицин 0,02% (v/v).
  4. Повторите шаги 6.2-6.3 дважды. После последнего мыть Ресуспензируйте эритроцитов в равным объемом неполной RPMI и хранить трубы при 4 ° C.

7. transfecting эритроцитов с ТРИФОСФАТЫ/Cas9 плазмид (предстоит асептически)

Примечание: P. falciparum культур поддерживаются как описано в других докладах17. Поддержание всех культур при 37 ° C под 3% O2, 3% CO2и 94% N2 , если не указано иное. Всякий раз, когда кровь используется в настоящем Протоколе, он имеет в виду чисто красных кровяных клеток, подготовленный на шаге 6. Крови, используемые должны быть не старше 6 недель, как в старых крови обычно снижение распространения паразита. Следующие шаги описывают предварительной загрузки эритроцитов с ДНК и добавление паразита культуры transfected клеток. Другие протоколы, установленные трансфекции совместимы с transfecting18,эти конструкции19.

  1. Подготовьте 1 x cytomix буфер в воде (120 мм KCl, 0,15 мм CaCl2, 2 мм EGTA, 5 мм MgCl2, 10 мм K2HPO4, 25 мм HEPES, рН 7,6). Фильтр стерилизуйте буфер с помощью фильтра 0.22 мкм.
  2. Добавьте что 380 мкл cytomix 1 x ДНК осажденного в шаге 5 и вихрь распустить. Разрешить ДНК, чтобы растворить в 1 x cytomix за 10 минут, vortexing каждые 3 мин 10 s.
  3. В стерильные 15 мл Конические трубки, объединить 300 мкл эритроцитов (50% гематокрита, начиная с шага 6) в неполной RPMI с 4 мл 1 x cytomix.
  4. Центрифуга эритроцитов из шага 7.3 на 870 x g на 3 мин, а затем удалить супернатант от РБК Пелле.
  5. Ресуспензируйте РБК лепешка с ДНК/cytomix смесь из шага 6.2 и передачи в кювет электропорации 0,2 см.
  6. Electroporate эритроцитов, с использованием следующих условий: 0,32 кв, 925 μФ, емкость, равным «Высокая шапка» и сопротивление присвоено значение «Бесконечность».
  7. После электропорация передавать содержимое из кювета в 15 мл конические содержащие 5 мл полной RPMI (cRPMI). Центрифуга трубки на 870 x g 3 мин при 20 ° C, а затем декантируют супернатант.
    Примечание: cRPMI готовится через тот же метод как неполные RPMI с добавлением 0,25% (w/v) липидов богатых бычьим сывороточным альбумином.
  8. Ресуспензируйте гранулы в 4 мл cRPMI и передачи одной скважины в пластине 6-ну тканевые культуры. Добавить 400 мкл Шизонт высокой культуры (7-10% Шизонт паразитемии идеально) для transfected эритроцитов.
    Примечание: Паразитемия определяется как процент паразит инфицированных эритроцитов.
  9. Следующий день, мыть культуры с 4 мл cRPMI. Центрифуга культуры на 870 g x 3 мин и удалить супернатант. Ресуспензируйте культуры в 4 мл cRPMI.
  10. 48 ч после завершения шага 7.6, мыть культуры с 4 мл cRPMI. Затем Ресуспензируйте культуры в cRPMI, содержащие 1 мкм DSM1 выбрать для Cas9 плазмиды.
  11. Далее, мытье культур каждый день с cRPMI до паразитов больше не видны мазок крови. После этого, заменить питательной среды с свежим cRPMI плюс 1 мкм DSM1 каждые 48 ч.
    1. Чтобы сделать мазок крови, Пипетка 150 мкл культуры в 0,6 мл пластиковых пробирок. Пелле клетки центрифугированием в 1700 x g 30 s.
    2. Аспирационная покинуть супернатант. Использование пипетки передать гранулированных клетки на стеклянное скольжение. С помощью второй слайд стекла, состоявшейся под углом 45° к первому слайду, мазок капелька крови. Пятно слайда с помощью коммерчески доступных окрашивание комплекта согласно протоколу производителя.
    3. Просмотр паразитов, с использованием 100 X цель погружения нефти.
  12. Начиная с 5 дней после трансфекции (шаг 7.6), удалите 2 мл культуры с RBCs высокомобильна в среде культуры. Добавить задней 2 мл свежих средних (cRPMI плюс 1 мкм DSM1) и крови на гематокрит 2%. Добавьте свежей крови таким образом после недели до паразитов снова, как определяется мазок тонкие крови (шаг 7.11).
    Примечание: Если интеграция является успешной, паразиты обычно появляются в культуре на один месяц после transfection.
  13. После того, как паразиты возродиться, удалите DSM1 наркотиков давление. В качестве альтернативы удалите наркотиков давления после того, как паразиты клонировали вне.

8. Проверка паразитов для интеграции ремонт шаблона

  1. Когда паразиты являются видимыми снова по мазку тонкие крови, изолируйте дна от культуры, с использованием соответствующего набора.
  2. Использование ПЦР для того чтобы усилить регионе изменение генома для определения если целевые Локус успешно изменен и обнаружению неизмененном одичал тип локус (индикативный одичал тип паразитов).
    1. Для обнаружения паразитов, которые интегрировали ремонт шаблон, используйте вперед грунт, который сидит в начале ORF, за пределами региона клонированных гомологии. Используйте обратный грунт, который сидит в 3'-УТР.
      Примечание: Как это усиление включает в себя последовательности HA Теги и glmS рибозима, ампликонов от комплексных паразитов будет больше, чем того же региона усиливается в одичал тип паразитов.

9. клонирование паразитов, ограничивая разрежения

  1. Выполните серийных разведений культуры паразита из шага 7.13 для достижения конечной концентрации 0,5 паразитов/200 мкл. Добавьте 200 мкл разбавленного культуры к добрам плиты 96-луночных культуры ткани.
    Примечание: Поскольку паразитемии определяется как процент инфицированных эритроцитов и гематокрита является также определенное число (2%), количество паразитов на единицу объема легко получается.
    1. Подготовка 1 мл культуры в cRPMI на 5% паразитемии и 2% гематокрит (на этих уровнях паразитемии и гематокрита, культура содержит 1 x 10-7 паразитов/мл).
    2. Разбавьте 1: 100 этой культуры с cRPMI. Разбавьте снова масштаба 1: 100 с cRPMI.
    3. Разбавьте 1: 400. Выполните этот разрежения, добавив 62,5 мкл культуры 25 мл cRPMI и 1 мл крови. Этот разбавления приводит к желаемой концентрации 0,5 паразитов/200 мкл.
  2. Поддерживать клонирования пластины до тех пор, пока паразиты обнаруживаются в скважинах.
    1. Каждые 48 ч, замените средний в пластину 96-луночных свежие среднего.
    2. Раз в неделю, начиная с 5 дней после начала пластину клонирования (шаг 9.1), удалите 100 мкл из каждой скважины и добавьте обратно 100 мкл свежие среднего + крови (2% гематокрита).
  3. Выявление любых скважин, содержащие паразитов.
    1. Место пластину 96-луночных под углом 45° для примерно 20 мин, позволяя крови поселиться на угол в пределах пластину.
    2. Место пластину 96-луночных на световой короб. Обратите внимание, что Уэллс, содержащие паразитов содержат СМИ это желтого цвета, по сравнению с розовым СМИ бесплатно Паразит скважин, из-за подкисление среды паразитов.
    3. С помощью Серологические Пипетки, переместите содержимое паразита содержащих скважин к пластине 24-ну тканевые культуры разрешить расширение паразитемии.
    4. С помощью ПЦР-анализа, как описано в шаге 8, проверьте эти клоновых паразита линии для правильной интеграции.

10. нокдаун белка, рассматривая паразитов с глюкозамином и подтверждение через Западный анализ помаркой

  1. Приготовляют раствор запасов ГСПРП (глюкозамин) 0.5 M, который может храниться при температуре-20 ° C.
  2. Добавить ГСПРП в glmS паразит культур и дать им возможность расти в присутствии ГСПРП.
    Примечание: Конечная концентрация и сроки лечения ГСПРП зависит от линии эксперимент и паразитов. ГСПРП может повлиять паразита роста, поэтому родительский паразита штамм должны подвергаться диапазон ГСПРП концентрации для определения ее чувствительность к комплексу. Часто концентрация 2.0-7,5 мм ГСПРП — используется13,14,20.
  3. Изолируйте образцы протеина от ГСПРП лечение паразитов13.
  4. Используйте образцы протеина для Западный анализ помаркой для выявления сокращений в белка13.
    1. Для определения белка HA-glmS меткой используйте антитела анти Ха согласно инструкциям производителя. Сравните HA группа управления загрузки, например PfEF1α.

Результаты

На рисунке 1показаны схема плазмид, используемые в этот метод, а также пример щит мутации. В качестве примера как идентифицировать мутант паразитов после трансфекции результаты от PCRs для проверки интеграции ха -glmS конструкции показано на

Обсуждение

Осуществление ТРИФОСФАТЫ/Cas9 в P. falciparum как повысить эффективность работы и уменьшилось количество времени, необходимое для изменения генома паразита, по сравнению с предыдущим методами генетической манипуляции. Этот всеобъемлющий протокол описаны шаги, необходимые для генерации...

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Мы благодарим Muthugapatti Кандасами сердцевиной биомедицинских микроскопии университета Джорджии (UGA) для оказания технической помощи и Хуан Хосе Лопес-Рубио для совместного pUF1-Cas9 и pL6 плазмид. Эта работа была поддержана дуги Фонд награды для D.W.C. и H.M.K., предоставляет средства запуска UGA в.м., гранты от марта Dimes фонда (Basil о ' Коннор стартера ученый исследования Award) в.м., и нас национальных институтов здравоохранения (R00AI099156 и R01AI130139) к в.м. и (T32AI060546) для H.M.K.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Gene Pulser Xcell ElectroporatorBio-Rad1652660
Gene Pulser Xcell ElectroporatorBio-Rad165-2086We buy the ones that are individually wrapped
Sodium AcetateSigma-AldrichS2889-250g
DSM1Gift from Akhil Vaidya labGanesan et al. Mol. Biochem. Parasitol. 2011 177:29-34
TPP Tissue Culture 6 Well PlatesMIDSCITP92006
TPP 100 mm Tissue Culture Dishes (12 mL Plate)MIDSCITP93100
TPP Tissue Culture 96 Well PlatesMIDSCITP92096
TPP Tissue Culture 24 Well PlatesMIDSCITP92024
NEBuffer 2New England Biolabs#B7002S
NEBuffer 2.1New England Biolabs#B7202S
BtgZINew England Biolabs#R0703L
SacIINew England Biolabs#R0157L
HindIII-HFNew England Biolabs#R3104S
Afe1New England Biolabs#R0652S
Nhe1-HFNew England Biolabs#R3131L
T4 DNA PolymeraseNew England Biolabs#M0203S
500 mL Steritop bottle top filter unitMilliporeSCGPU10REYou can use any size that fits your needs
EGTASigmaE4378-100G
KClSigma-AldrichP9333-500g
CaCl2Sigma-AldrichC7902-500g
MgCl2Sigma-AldrichM8266-100g
K2HPO4FisherP288-500
HEPESSigma-AldrichH4034-500g
pMK-U6Generated by the Muralidharan Labn/a
pHA-glmSGenerated by the Muralidharan Labn/a
pUF1-Cas9Gift from the Jose-Juan Lopez-Rubio LabGhorbal et al. Nature Biotech 2014
GlucoseSigma-AldrichG7021-1KG
Sodium bicarbonateSigma-AldrichS5761-500G
Sodium pyruvateSigma-AldrichP5280-100G
HypoxanthineSigma-AldrichH9636-25g
Gentamicin ReagentGibco15710-064
ThymidineSigma-AldrichT1895-1G
PL6-eGFP BSDGenerated by the Muralidharan Lab
Puf1-cas9 eGFP gRNAGenerated by the Muralidharan Lab
NucleoSpin Gel and PCR Clean-upMacherey-Nagel740609.250
Albumax ILife TechnologiesN/AYou will want to try a few batches to find out what the parasites will grow in best
Human Red Blood CellsInterstate Blood Bank, IncEmail or call them directly for orderingWe typically use O+ blood
3D7 parasite lineAvailable upon requestN/A
Lysogeny Broth (LB)FisherBP1426-2You can make your own, it is not necessary to use exactly this
AmpicilinFisherBP1760-25We make a 1000X stock at 100mg/ml in water and store in the -20C
AmpicilinClonetechR050A
Anti-EF1alphaDr. Daniel Goldberg's LabWashington University in St. LouisYou can use your preferred loading control for western blots. This is just the one we use in our laboratory
Rat Anti-HA Clone 3F10, monoclonalMade by Roche, sold by Sigma11867423001You can use your preferred anti-HA antibody
0.6 mL tubesFisherAB0350
Fisher HealthCare* PROTOCOL* Hema 3* Manual Staining System (Fixative+Solution I and II)Fisher22-122-911You can also use giemsa stain
Fisherfines Premium Frosted Microscope Slides - Size: 3 x 1 in.Fisher12-544-3

Ссылки

  1. World Health Organization. . World Malaria Report. , (2017).
  2. Miller, L. H., Baruch, D. I., Marsh, K., Doumbo, O. K. The pathogenic basis of malaria. Nature. 415 (6872), 673-679 (2002).
  3. Florentin, A., et al. PfClpC Is an Essential Clp Chaperone Required for Plastid Integrity and Clp Protease Stability in Plasmodium falciparum. Cell Reports. 21 (7), 1746-1756 (2017).
  4. Muralidharan, V., Oksman, A., Pal, P., Lindquist, S., Goldberg, D. E. Plasmodium falciparum heat shock protein 110 stabilizes the asparagine repeat-rich parasite proteome during malarial fevers. Nature Communications. 3, 1310 (2012).
  5. Muralidharan, V., Oksman, A., Iwamoto, M., Wandless, T. J., Goldberg, D. E. Asparagine repeat function in a Plasmodium falciparum protein assessed via a regulatable fluorescent affinity tag. Proceedings of the National Academy of Sciences the USA. 108 (11), 4411-4416 (2011).
  6. Beck, J. R., Muralidharan, V., Oksman, A., Goldberg, D. E. PTEX component HSP101 mediates export of diverse malaria effectors into host erythrocytes. Nature. 511 (7511), 592-595 (2014).
  7. Ghorbal, M., et al. Genome editing in the human malaria parasite Plasmodium falciparum using the CRISPR-Cas9 system. Nature Biotechnology. 32 (8), 819-821 (2014).
  8. Wagner, J. C., Platt, R. J., Goldfless, S. J., Zhang, F., Niles, J. C. Efficient CRISPR-Cas9-mediated genome editing in Plasmodium falciparum. Nature Methods. 11 (9), 915-918 (2014).
  9. Doudna, J. A., Charpentier, E. Genome editing. The new frontier of genome engineering with CRISPR-Cas9. Science. 346 (6213), 1258096 (2014).
  10. Wang, H., La Russa, M., Qi, L. S. CRISPR/Cas9 in Genome Editing and Beyond. Annual Review of Biochemistry. 85, 227-264 (2016).
  11. Kirkman, L. A., Deitsch, K. W. Antigenic variation and the generation of diversity in malaria parasites. Current Opinion in Microbiology. 15 (4), 456-462 (2012).
  12. Lee, A. H., Symington, L. S., Fidock, D. A. DNA Repair Mechanisms and Their Biological Roles in the Malaria Parasite Plasmodium falciparum. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 78 (3), 469-486 (2014).
  13. Cobb, D. W., et al. The Exported Chaperone PfHsp70x Is Dispensable for the Plasmodium falciparum Intraerythrocytic Life Cycle. mSphere. 2 (5), (2017).
  14. Prommana, P., et al. Inducible knockdown of Plasmodium gene expression using the glmS ribozyme. Public Library of Science One. 8 (8), e73783 (2013).
  15. Ganesan, S. M., Falla, A., Goldfless, S. J., Nasamu, A. S., Niles, J. C. Synthetic RNA-protein modules integrated with native translation mechanisms to control gene expression in malaria parasites. Nature Communications. 7, 10727 (2016).
  16. Li, M. Z., Elledge, S. J. Harnessing homologous recombination in vitro to generate recombinant DNA via SLIC. Nature Methods. 4 (3), 251-256 (2007).
  17. Drew, M. E., et al. Plasmodium food vacuole plasmepsins are activated by falcipains. Journal of Biological Chemistry. 283 (19), 12870-12876 (2008).
  18. Wu, Y., Sifri, C. D., Lei, H. -. H., Su, X. -. Z., Wellems, T. E. Transfection of Plasmodium falciparum within human red blood cells. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 92, 973-977 (1995).
  19. Janse, C. J., et al. High efficiency transfection of Plasmodium berghei facilitates novel selection procedures. Molecular and Biochemical Parasitology. 145 (1), 60-70 (2006).
  20. Counihan, N. A., et al. Plasmodium falciparum parasites deploy RhopH2 into the host erythrocyte to obtain nutrients, grow and replicate. eLife. 6, (2017).
  21. Klemba, M., Beatty, W., Gluzman, I., Goldberg, D. E. Trafficking of plasmepsin II to the food vacuole of the malaria parasite Plasmodium falciparum. Journal of Cell Biology. 164 (1), 47-56 (2004).
  22. Labun, K., Montague, T. G., Gagnon, J. A., Thyme, S. B., Valen, E. CHOPCHOP v2: a web tool for the next generation of CRISPR genome engineering. Nucleic Acids Resesarch. 44 (W1), W272-W276 (2016).
  23. Peng, D., Tarleton, R. EuPaGDT: a web tool tailored to design CRISPR guide RNAs for eukaryotic pathogens. Microbial Genomes. 1 (4), e000033 (2015).
  24. Shen, B., Brown, K. M., Lee, T. D., Sibley, L. D. Efficient Gene Disruption in Diverse Strains of Toxoplasma gondii Using CRISPR/CAS9. mBio. 5 (3), (2014).
  25. Janssen, B. D., et al. CRISPR/Cas9-mediated gene modification and gene knock out in the human-infective parasite Trichomonas vaginalis. Scientific Reports. 8 (1), 270 (2018).
  26. Spillman, N. J., Beck, J. R., Ganesan, S. M., Niles, J. C., Goldberg, D. E. The chaperonin TRiC forms an oligomeric complex in the malaria parasite cytosol. Cellular Microbiology. 19 (6), (2017).
  27. Brancucci, N. M. B., et al. Lysophosphatidylcholine Regulates Sexual Stage Differentiation in the Human Malaria Parasite Plasmodium falciparum. Cell. , (2017).
  28. Ng, C. L., et al. CRISPR-Cas9-modified pfmdr1 protects Plasmodium falciparum asexual blood stages and gametocytes against a class of piperazine-containing compounds but potentiates artemisinin-based combination therapy partner drugs. Molecular Microbiology. 101 (3), 381-393 (2016).
  29. Lim, M. Y., et al. UDP-galactose and acetyl-CoA transporters as Plasmodium multidrug resistance genes. Nature Microbiology. , (2016).
  30. Adjalley, S. H., et al. Quantitative assessment of Plasmodium falciparum sexual development reveals potent transmission blocking activity by methylene blue. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 108 (47), E1214-E1223 (2011).
  31. Sidik, S. M., et al. A Genome-wide CRISPR Screen in Toxoplasma Identifies Essential Apicomplexan Genes. Cell. 166 (6), 1423-1435 (2016).
  32. Amberg-Johnson, K., et al. Small molecule inhibition of apicomplexan FtsH1 disrupts plastid biogenesis in human pathogens. elife. 6, (2017).
  33. Crawford, E. D., et al. Plasmid-free CRISPR/Cas9 genome editing in Plasmodium falciparum confirms mutations conferring resistance to the dihydroisoquinolone clinical candidate SJ733. Public Library of Science One. 12 (5), e0178163 (2017).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

139PlasmodiumglmS

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены