JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Разработан метод установления клеточных линий афатиниб-сопротивления из клеток легких Аденокарциномы ПК-9, и были охарактеризованы устойчивые клетки. Устойчивые клетки могут быть использованы для исследования эпидермального фактора роста рецептора тирозина киназы ингибитор-резистентность механизмов, применимых для пациентов с немелкоклеточным раком легких.

Аннотация

Приобретенная устойчивость к молекулярным ингибиторам целей является серьезной проблемой в терапии рака. Рак легких остается основной причиной смерти, связанной с раком, в большинстве стран. Открытие "онкогенных мутаций драйвера", таких как рецепторэпидермального фактора роста (EGFR)-активирующие мутации, и последующее развитие молекулярных целевых агентов ингибиторов тирозина киназы EGFR (TKIs) (гефитиниб, эрлотиниб, afatinib, dacomitinib, и osimertinib) резко изменили лечение рака легких в последние десятилетия. Тем не менее, эти препараты по-прежнему не эффективны у пациентов с немелкоклеточным раком легких (NSCLC), несущими EGFR-активирующие мутации. После приобретенной резистентности, системное прогрессирование NSCLC остается значительным препятствием в лечении пациентов с мутацией-положительным И ЕНФР NSCLC. Здесь мы представляем пошаговый метод эскалации дозы для создания трех независимых приобретенных афатиниб-устойчивых клеточных линий из NSCLC PC-9 клеток укрывательство EGFR-активирующих мутаций 15-базовых удаляний пары в EGFR exon 19. Кратко представлены методы характеристики трех независимых линий клеток сопротивления афатиниба. Приобретенные механизмы сопротивления ЭГФР ТКИ неоднородны. Поэтому необходимо изучить несколько клеточных линий с приобретенным сопротивлением EGFR-TKIs. Десять-двенадцать месяцев, необходимых для получения клеточных линий с приобретенным сопротивлением, используя этот шаг подход эскалации дозы. Открытие новых механизмов приобретенного сопротивления будет способствовать разработке более эффективных и безопасных терапевтических стратегий.

Введение

Пять ингибиторов тирозина киназы, ориентированные на рецептор эпидермального фактора роста (EGFR), в том числе гефитиниб, эрлотиниб, афатиниб, дакомитиниб и осимертиниб в настоящее время доступны для лечения пациентов с EGFR мутацией-положительной немелкоклеточной легкой рака (NSCLC). За последнее десятилетие, терапии для таких пациентов претерпели драматические разработки с открытием новых потенциальных EGFR-TKIs. Среди пациентов с аденокарциномой легких соматические мутации в ЭГФР выявлены примерно у50% азиатских и 15% кавказских пациентов 1. Наиболее распространенными мутациями в EGFR являются мутация точки L858R в EGFR exon 21 и 15 базовых парах (bp) удаления в EGFR exon 192. В EGFR мутационно-положительных пациентов с NSCLC, EGFR-TKIs улучшить скорость ответа и клинические исходы по сравнению с предыдущим стандартом платиновой химиотерапии дублет3.

Gefitinib и эрлотиниб были первыми утвержденными ингибиторами малых молекул и, как правило, называются EGFR TKIs первого поколения. Эти EGFR ТКИ блокируют активность тирозина киназы, конкурируя с АТФ и обратимо связывая с ат-плехаумом4. Afatinib является второе поколение EGFR TKI, что необратимо и ковалентно связывается с тиразин киназы области EGFR и характеризуется как пан-человеческого ингибитора семьи EGFR5.

Несмотря на драматическую пользу этих методов лечения у пациентов с NSCLC, приобретенная резистентность неизбежна. Наиболее распространенным механизмом сопротивления против первого и второго поколения EGFR TKIs является появление мутации T790M в EGFRexon 20, которая присутствует в 50-70% образцов опухоли 6,7,8. Другие механизмы сопротивления включают сигналы шунтирования (к MET, IGF1R, и HER2), преобразование в мелкоклеточный рак легких, и индукции эпителиального к мезенхимальному переходу, который происходит до клинически и клинически9. Механизмы сопротивления ЭГФР ТКИ неоднородны. Путем определять новые механизмы сопротивления в доклинических изучениях, может быть по возможности начать новые терапии для того чтобы отжать сопротивление. Оптимальная последовательность терапии, которые максимизируют клиническую пользу для пациентов должны рассмотреть механизмы сопротивления и терапевтической цели.

Крайне важно выбрать правильную родительскую клеточную линию, так как она является основой всех последующих экспериментов. Стратегии отбора начинаются с клинической значимости; необходимо выбрать химиотерапию и лучевую наивную клеточную линию. Предыдущая химиотерапевтическая и/или радиационная обработка может вызвать изменение путей сопротивления и изменения выражения маркеров лекарственной резистентности. В этом исследовании, PC-9 клетки, несущие 15 bp удаления в EGFR exon 19, используются для создания приобретенных устойчивость к afatinib. Эта клеточная линия была получена от японского пациента NSCLC, который не получил предварительной химиотерапии и радиации.

Потому что afatinib вводится устно на ежедневной основе, непрерывное лечение в пробирке, где клетки культивируются постоянно в присутствии afatinib будет клинически актуальным. Доза препаратов, используемых в различных этапах эксперимента, должна быть оптимизирована для родительской клеточной линии выбранной. Для определения подходящего лекарственного диапазона можно использовать цитотоксический асссс, который должен быть сопоставим с фармакокинетической информацией препарата.

На протяжении всего процесса отбора вся популяция клеток поддерживается как единая группа; клонирование или другие методы разделения не используются. Клетки сначала постоянно подвергаются воздействию низкого уровня препарата. Впоследствии, после того, как клетки адаптируются к росту в присутствии препарата, дозу препарата медленно увеличивается до конечной оптимальной дозы препарата10,11. Кроме того, пульс препарата-администрации или мутагенеза могут быть использованы для выбора клеток резистентности, которые также выполняются до медикаментозного лечения 12,13. К сожалению, случаи, когда лекарственная устойчивость не развивается, как правило, не сообщаются. Стратегии отбора разрабатываются с целью имитации условий онкологических больных для восстановления клинически релевантной резистентности. Иногда для выявления молекулярных изменений, связанных с механизмами лекарственной устойчивости, используется высокая концентрация препарата. Эта модель становится менее клинически актуальной.

Здесь мы описываем метод создания трех независимых афатиниб-устойчивых клеточных линий из клеток PC-9, укрывающих 15 bp удаления в EGFR exon 19, а также первоначальную характеристику устойчивых к афатинибным клеточным линиям.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

протокол

1. Создание трех независимых Afatinib устойчивых PC-9 сотовых линий

  1. Определение первоначальной концентрации воздействия афатиниба для клеток ПК-9 с использованием 3-(4,5-диметилтиазол-2-yl)-2,5- дифениллеттразолий бромид (МТТ)
    1. Культура PC-9 клеток в среде роста, содержащей сыворотки крупного рогатого скота плода (10%), пенициллин (100 U/mL), и стрептомицин (100 мкг/мл) в клеточной культуре лечение 10-см блюдо в 5% CO2 инкубатора при 37 градусов по Цельсию.
    2. Resuspend PC-9 клеток на 4 х 104 клетки / мл в среде роста, а затем семена на 50 л / хорошо в 96-хорошо микроплиты. Окончательная концентрация клеток составляет 2,0 х 103 клетки/50 л/ну. Инкубировать на ночь в 5% CO2 инкубатор при 37 градусах Цельсия.
    3. Добавьте 50 зЛ раствора афатиниба в различных концентрациях: 0, 0,002, 0,006, 0,02, 0,06, 0,2, 0,6, 2, 6 и 20 мкм к скважинам, содержащим среду роста (50 л). Окончательный объем и концентрации афатиниба составляют 100 кл/ и 0, 0,001, 0,003, 0,01, 0,03, 0,1, 0,3, 1, 3 и 10 мкм соответственно.
    4. Инкубировать 96-хорошую пластину на 96 ч в 5% CO2 инкубаторпри при 37 градусах Цельсия.
    5. Добавьте 15 qL раствора красителя (см. Таблицаматериалов) к каждому колодцу и инкубировать по 4 ч в 5% CO2 инкубатор при 37 градусах По Цельсия, а затем добавьте 100 л растворения/стоп-решения (см. Таблица Материалов)к каждому колодцу и инкубировать на ночь в 5% CO» c10-2 инкубатор при 37 градусах По Цельсию.
    6. Измерьте оптическую плотность на уровне 570 нм (OD570)с помощью микроплитного считывателя (см. Таблицаматериалов). Подготовьте 6-12 реплики и повторите эксперименты по крайней мере три раза.
    7. Используйте статистическое программное обеспечение (см. Таблица материалов), чтобы графически участок этих данных в качестве полу-журнальный график и вычислить значение IC50, которое является концентрацией препарата, что снижает реакцию до 50% от его максимального (см. Таблица материалов ).
  2. Непрерывное воздействие клеток ПК-9 на необратимые EGFR-TKI, afatinib, пошаговая эскалация дозы в трех независимых 10 см блюд
    1. Культура PC-9 клеток в p100 блюда, содержащие 10 мл среды роста. Когда клетки PC-9 достигнут суб-слияния стадии, перенесите 1 мл клеточной подвески в три новых блюда p100 с 9 мл среды роста. 1:10 разбавленных pc-9 клетки становятся суб-слияние в 3-4 дней, с числом клеток примерно 4-5 х 105 клеток / мл.
    2. На следующий день добавьте 1/10 значения IC50 афатиниба в каждую из трех блюд p100.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Афатиниб воссоздан в ДМСО при концентрациях запасов 1 мкм, 10 мкм, 100 мкм, 1 мМ и 5 мМ. От 1 до 10 л афатиниб-раствора добавляется в 10 мл среды роста в культуре, в соответствии с требуемой конечной концентрацией.
    3. Когда клетки в afatinib-содержащих p100 блюда становятся суб-конфлюент, хорошо перемешать стремление с 1 мл пипетки и добавить 1 мл клеточной подвески до 9 мл свежей среды роста в новом блюде p100. Далее, добавить 10-20% более высокие концентрации afatinib к новой культуре.
    4. Увеличьте концентрацию афатиниба от 0,1 нМ до 1 мкм в среде путем эскалации дозы с концентрацией афатиниба, увеличенной на 10-20% на каждом шагу в течение 10-12 месяцев.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Когда концентрация афатиниба приближается к значению IC50, рост клеток становится довольно медленным. Если клетки разделены 1:9, они не могут расти, так как эти клетки погибают от более высоких концентраций афатиниба. Поэтому при более высоких концентрациях афанитиба клетки могут быть разделены в соотношении 1:2. Наиболее устойчивые клетки выращивались в афатиниб-содержащих средах в течение 3-14 дней, и среда не была изменена до тех пор, пока устойчивые клетки должны быть проложены.
    5. Культура афатиниб-устойчивых клеток в течение 2-3 месяцев в 1 ММ афатиниб-содержащих среды роста. При концентрации афатиниба в размере 1 мкм, 10-12 месяцев, необходимых для развития устойчивости к афатиниб в этой модели. Выполните MTT асссее, чтобы подтвердить, что клетки устойчивы к афатинибу. Три независимо установленные линии клеток сопротивления афатинаби были названы AFR1, AFR2 и AFR3.

2. Характеристика трех независимых афатиниб-устойчивых клеток

  1. Определение кривой роста родительских клеток PC-9 и создание устойчивых к афатинибным клеткам
    1. Культура PC-9, AFR1, AFR2, и AFR3 клетки в среде роста в 5% CO2 инкубатор при 37 градусов по Цельсию.
    2. Приостановите работу клеток на уровне 5 х 103 клеток/мл со средой роста, а семена 100 л/хорошо в микроплиту 96 колодцей, так что конечная концентрация клеток составляет 500 клеток/100 л/ну.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Асссес MTT выполняется для измерения значений OD570 в 0, 1, 2, 3, 5 и 7 дней. На каждый день требуется шесть 96-колотых микроплит.
    3. Выполните MTT ассссекаждый 24 ч, а затем в дни 0, 1, 2, 3, 5 и 7. Измерьте значения OD570 и подготовьте 6-12 репликаток; повторить эксперименты по крайней мере три раза, и графически график результатов с помощью статистического программного обеспечения (см. Таблица материалов).
  2. Идентификация изменений геномной ДНК в EGFR по ПЦР в реальном времени
    ПРИМЕЧАНИЕ: Afatinib является небольшой ингибитор молекулы, которая направлена egFR тирозина киназы. Состояние экспрессии EGFR определяется на уровне ДНК и белка.
    1. Геномная ДНК изолирована с помощью комплекта для очистки ДНК (см. ТаблицаМатериалов) в соответствии с инструкциями производителя. Измерьте концентрацию изолированной геномной ДНК с помощью спектрофотометра (см. ТаблицаМатериалов) и отрегулируйте все образцы геномной ДНК до 25 нг/ Л.
    2. Усиль 50 нг геномной ДНК, что эквивалентно 2 л из 25 нг / Л запасов, используя SYBR Зеленый мастер смеси (см. Таблица материалов) и анализировать результаты с помощью флуоресценции на основе RT-PCR-системы обнаружения (см. Таблица материалов).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Условия пЦР-велосипедного движения начались с первоначального шага денатурации при 95 градусах по Цельсию в течение 20 с, за которым последовали 40 циклов денатурации 95 градусов по Цельсию в течение 3 с, 60 градусов по Цельсию в течение 30 с. Конкретные наборы грунтовки таковы: EGFR F: 5 "-CAAGGCCATGGAATCTCA-3", R: 5 "-CTGGAATGAGGGAA-3". Нормализация гена LINE-1 F: 5 "-AAAGCCGCTCAACTACATGG-3", R: 5 "-TGCTTGAATGCGCGTCAGAG-3".
  3. Оценка влияния изменений белка на уровень EGFR по западному анализу поблу
    1. Лечить клетки с afatinib непрерывно до экспериментов для 24 h. Мыть PC-9, AFR1, AFR2, и AFR3 клетки дважды с PBS, а затем семян их в среде роста без afatinib. Вымойте pc-9, AFR1, AFR2 и AFR3 клетки дважды с 5 мл ледяной PBS.
    2. Лысы клетки в буфере RIPA, содержащий 1% коктейль-ингибитор протеазы (см. Таблица материалов) и лизинируемый хилизатор фосфатазы коктейль II и III (см. Таблица материалов)и инкубировать этот раствор при 4 кв. м в течение 30 мин. Центрифуга лисаты в течение 10 мин при 100 х г и 4 градусах по Цельсию и соберите очищенные лисаты.
    3. Определить концентрацию белка с помощью анализа двинчониновой кислоты (см. Таблицаматериалов), настроить все образцы белка до 0,5 или 1 мкг /Л с помощью 4x образец буфера (500 мм Tris (PH 6.8), 40% глицерол, 8% SDS, 20% H2O, 0,02% бромофенол синий) и варить при температуре 96 градусов по Цельсию в течение 5 мин. Храните эти образцы белка при -80 градусов по Цельсию до тех пор, пока не будет проведен анализ западной побелки.
    4. Разделите равное количество образцов белка, желательно 20-30 Л, на 8% SDS-страницы и перенесите белки на мембрану фтора поливилидена (PVDF).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Натрий dodecyl сульфат-полиакриламид гель электрофоресис (SDS-PAGE) широко используется в лаборатории для разделения белков на основе их молекулярного веса.
      1. Очистите стеклянные пластины с этанолом и собрать стеклянную пластину и прокладки. Приготовьте 8% полиакриламидных гелей, содержащих 1,5 М Tris-HCl, рН 8,8, 40% Бис-акриламид, 10% SDS, 10% APS и TEMED. Полимеризуется в течение 30 мин при комнатной температуре.
      2. Впоследствии подготовьте укладка геля, содержащего 0,5 М Tris-HCl, рН 6,8, 40% бис-акриламида, 10% SDS, 10% APS и TEMED. Добавьте раствор укладки геля, вставьте гребень и полимеризуйте гель в течение 20-30 минут при комнатной температуре.
      3. Поместите гели в аппарат электрофореза и заполните бак бегущим буфером (0,25 М, глицин 1,92 М и 1% SDS). Загрузите равное количество образцов белка (20-30 л) и запустите гель при 180 В. Остановить электрофорус, как только краситель фронт вытекает из геля, примерно через 60 минут.
      4. Вымойте гель в течение 1-2 мин с TBST, а затем передать белки на мембрану PVDF полусухой промотирования (см. Таблица материалов) для 1,5 ч при постоянном токе 300 мА.
    5. Блокируйте мембраны 5% обезжиренного сухого молока (см. Таблица Материалов),разбавленного раствором TBST (см. ТаблицаМатериалов) на 1 ч при комнатной температуре, а затем исследуйте мембраны с помощью анти-EGFR, антифосфо-EGFR (Y1068), anti-HER2, анти-HER3, анти-MET, и анти-актин антител (разбавленных 1:3,000 в TBST) (см. Таблица материалов) на 4 кв.м.
    6. Вымойте мембраны с TBST три раза в течение 10 минут, а затем подвергать мембраны вторичного антитела (разбавленные 1:200 в TBST) для 1-1,5 ч при комнатной температуре. Вымойте мембраны пять раз с TBST в течение 10 минут при комнатной температуре, подвергать их eCL решение (см. Таблица материалов), и визуализировать сигналы с помощью пленок.
  4. Анализ мутаций EGFR путем секвенирования
    1. Усиль геномную ДНК с помощью специальных грунтовок для экзонов EGFR 19-21. Условия велосипедного ПЦР начинаются с первоначального шага денатурации при 94 градусах по Цельсию в течение 1 мин, за которым следуют 30 циклов денатурации при 98 градусах по Цельсию на 10 с, аннулирование при 55 градусах по Цельсию на 30 с и расширение на 72 градуса х 1 мин.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Конкретные грунтовки для EGFR Exon 19: F: 5 "-GCAATCAGCCTTAGGTGCGGCTC-3" R: 5 "-CATAGAAGTGAATTATGTG-3", Exon 20: F: 5 "-CCATGAGTACTATTTTGAAACTC-3", R: 5 "-CATATCCCCATGGCAACTCTTGC-3" и exon 21: F: 5 "-ATGAACATGAATTCGG-3", R: 5- GCTCACCCAGAATGTGTGGAGA-3 ".
    2. Очистите усиленные продукты ПЦР с помощью комплекта очистки ПЦР (см. Таблицаматериалов) и последовательность ампликонов.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Результаты

Схема для создания трех афатиниб-резистентных клеточных линий из клеток PC-9 с помощью поэтапной процедуры эскалации дозы показана на рисунке 1. На рисунке 2 показано снижение пролиферации клеток родительских клеток PC-9 по мере увеличени?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Здесь мы описали метод создания трех независимых афатиниб-устойчивых клеточных линий и охарактеризовали эти клетки по сравнению с родительскими клетками PC-9. Пошагово облучение дозы, родительские клетки PC-9 приобрели устойчивость к afatinib в течение 10-12 месяцев. Клинически, механизмы сопр...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Мы благодарим члена Института передовых исследований рака за их вдумчивые комментарии и Editage за их помощь в редактировании английского языка. Эта работа была поддержана JSPS KAKENHI (грант номер: 16K09590 до T.Y.).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
afatinibSelleckS1011
anti-EGFR monoclonal antibodycell signaling technology4267S
bicinchoninc acid assaysigmaB9643
cell-culture treated 10 cm dishViolamo2-8590-03
CELL BANKER1 TakaRaCB011cryopreservation media
CellTiter 96Promega G4100 Non-Radioactive Cell Proliferation Assay; Dye solution and Solubilization/Stop solution
DMSOWako043-07216
ECL solutionPerkin ElmerNEL105001EA
FBSgibco26140-079
GeneAmp 5700Applied Biosystemsfluorescence-based RT-PCR-detection system 
GraphPad Prism v.7 software GraphPad, Inc.a statistical software
NanoDrop Lite spectrophotometerThermospectrophotometer
Nonfat dry milkcell signaling technology9999S
Pen Strepgibco15140-163
phosphatase inhibitor cocktail 2sigmaP5726
phosphatase inhibitor cocktail 3sigmaP0044
Powerscan HT microplate readerBioTek
 Power SYBR Green master mix Applied BiosystemsSYBR Green master mix
protease inhibitor cocktailsigmaP8340
QIAamp DNA Mini kitQiagen51306DNA purification kit
QIAquick PCR Purification KitQIAGENPCR purification kit
RPMI-1640 Wako189-02025with L-Glutamine and Phenol Red
TBST powdersigmaT9039
Trans-Blot SD Semi-Dry Electrophoretic Transfer cellBio-Radsemi-dry t4ransfer apparatus
96 well microplateThermo130188

Ссылки

  1. Chan, B. A., Hughes, B. G. Targeted therapy for non-small cell lung cancer: current standards and the promise of the future. Translational Lung Cancer Research. 4 (1), 36-54 (2015).
  2. Mitsudomi, T., Yatabe, Y. Mutations of the epidermal growth factor receptor gene and related genes as determinants of epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitors sensitivity in lung cancer. Cancer Science. 98 (12), 1817-1824 (2007).
  3. Yamaoka, T., Kusumoto, S., Ando, K., Ohba, M., Ohmori, T. Receptor tyrosine kinase-targeted cancer therapy. International Journal of Molecular Science. 19 (11), (2018).
  4. Marshall, J. Clinical implications of the mechanism of epidermal growth factor receptor inhibitors. Cancer. 107 (6), 1207-1218 (2006).
  5. Hirsh, V. Managing treatment-related adverse events associated with egfr tyrosine kinase inhibitors in advanced non-small-cell lung cancer. Current Oncology. 18 (3), 126-138 (2011).
  6. Arcila, M. E., et al. Rebiopsy of lung cancer patients with acquired resistance to EGFR inhibitors and enhanced detection of the T790M mutation using a locked nucleic acid-based assay. Clinical Cancer Research. 17 (5), 1169-1180 (2011).
  7. Sequist, L. V., et al. Genotypic and histological evolution of lung cancers acquiring resistance to EGFR inhibitors. Science Translational Medicine. 3 (75), 75ra26(2011).
  8. Yang, J. C., et al. Osimertinib in pretreated T790M-positive advanced non-small-cell lung cancer: AURA study phase II extension component. Journal of Clinical Oncology. 35 (12), 1288-1296 (2017).
  9. Chong, C. R., Janne, P. A. The quest to overcome resistance to EGFR-targeted therapies in cancer. Nature Medicine. 19 (11), 1389-1400 (2013).
  10. Clynes, M., Redmond, A., Moran, E., Gilvarry, U. Multiple drug-resistance in variant of a human non-small cell lung carcinoma cell line, DLKP-A. Cytotechnology. 10 (1), 75-89 (1992).
  11. Yamaoka, T., et al. Distinct afatinib resistance mechanisms identified in lung adenocarcinoma harboring an EGFR mutation. Molecular Cancer Research. 15 (7), 915-928 (2017).
  12. Liang, X. J., Shen, D. W., Garfield, S., Gottesman, M. M. Mislocalization of membrane proteins associated with multidrug resistance in cisplatin-resistant cancer cell lines. Cancer Research. 63 (18), 5909-5916 (2003).
  13. Shen, D. W., Akiyama, S., Schoenlein, P., Pastan, I., Gottesman, M. M. Characterisation of high-level cisplatin-resistant cell lines established from a human hepatoma cell line and human KB adenocarcinoma cells: cross-resistance and protein changes. British Journal of Cancer. 71 (4), 676-683 (1995).
  14. Murakami, H., et al. Phase I study of continuous afatinib (BIBW 2992) in patients with advanced non-small cell lung cancer after prior chemotherapy/erlotinib/gefitinib (LUX-Lung 4). Cancer Chemotherapy and Pharmacology. 69 (4), 891-899 (2012).
  15. Nukaga, S., et al. Amplification of EGFR wild-type alleles in non-small cell lung cancer cells confers acquired resistance to mutation-selective EGFR tyrosine kinase inhibitors. Cancer Research. 77 (8), 2078-2089 (2017).
  16. Nakatani, K., et al. EGFR amplifications mediate resistance to rociletinib and osimertinib in acquired afatinib-resistant NSCLC harboring exon 19 deletion/T790M in EGFR. Molecualr Cancer Therapy. 18 (1), 112-126 (2019).
  17. Piotrowska, Z., et al. Heterogeneity underlies the emergence of EGFRT790 wild-type clones following treatment of T790M-positive cancers with a third-generation EGFR inhibitor. Cancer Discovery. 5 (7), 713-722 (2015).
  18. Ortiz-Cuaran, S., et al. Heterogeneous mechanisms of primary and acquired resistance to third-generation EGFR inhibitors. Clinical Cancer Research. 22 (19), 4837-4847 (2016).
  19. Kobayashi, Y., et al. Characterization of EGFR T790M, L792F, and C797S mutations as mechanisms of acquired resistance to afatinib in lung cancer. Molecular Cancer Therapy. 16 (2), 357-364 (2017).
  20. Uchibori, K., Inase, N., Nishio, M., Fujita, N., Katayama, R. Identification of mutation accumulation as resistance mechanism emerging in first-line osimertinib treatment. Journal of Thoracic Oncology. 13 (7), 915-925 (2018).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

148EGFREGFR TKIafatinib

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены