JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Используя первичные эпителиальные клетки простаты человека, мы сообщаем о новом методе, свободном от биомаркеров функциональной характеристики стволовых клеток, спомощьив сфероидной этикетке- удержания. Пошаговым протоколом описывается для маркировки 2D, CFSE или Far Red 2D-клеток; трехмерное образование сфероидов; маркировка удерживающей стволовые клетки идентификации иммуноцитохимии; и изоляция от FACS.

Аннотация

Несмотря на достижения в исследованиях стволовых клеток взрослых, выявление и изоляция стволовых клеток от образцов тканей остается серьезной проблемой. В то время как резидентные стволовые клетки относительно тихие с нишевыми удерживающими устройствами во взрослых тканях, они входят в клеточный цикл в трехмерной (3D) культуре и проходят как симметричное, так и асимметричное деление клеток, что приводит как к стеблю, так и к прародителю Клетки. Последние быстро размножаются и являются основной популяцией клеток на различных стадиях линии обязательств, образуя неоднородные сфероиды. С использованием первичных нормальных человеческих эпителиальных клеток простаты (HPrEC), сфероид основе, этикетки удержания асссбыл был разработан, что позволяет идентификации и функциональной изоляции сфероидов инициирующих стволовых клеток в одном разрешении клеток.

HPrEC или клеточные линии двухмерно (2D) культивируются с BrdU в течение 10 дней, чтобы позволить его включение в ДНК всех разделительных клеток, в том числе самообновляющихся стволовых клеток. Вымыть начинается после переноса в 3D-культуру на 5 дней, в течение которых стволовые клетки самообновляются через асимметричное деление и инициируют образование сфероидов. В то время как относительно тихие стволовые клетки дочери сохраняют родительскую ДНК, помеченную BrdU, потомки дочери быстро размножаются, теряя этикетку BrdU. BrdU можно заменить CFSE или Far Red pro-dyes, которые позволяют изоляцию стволовых клеток в реальном маштабе времени FACS. Характеристики стволовых клеток подтверждаются образованием сфероидов in vitro, анализами регенерации тканей in vivo и документированием их симметричных/асимметричных делений клеток. Изолированные этикетки удерживающих стволовых клеток могут быть тщательно допрошены вниз по течению молекулярных и биологических исследований, в том числе РНК-сек, ChIP-seq, одноклеточного захвата, метаболической активности, протеоме профилирования, иммуноцитохимии, органоидного образования, и in vivo ткани регенерации. Важно отметить, что этот подход, свободный от маркеров функциональной изоляции стволовых клеток, определяет стволовые клетки из свежих образцов рака и линии раковых клеток из нескольких органов, что свидетельствует о широкой применимости. Он может быть использован для выявления рака стволовых клеточных биомаркеров, экран фармацевтических препаратов ориентации рака стволовых клеток, и обнаружить новые терапевтические цели в раковых заболеваниях.

Введение

Человеческая предстательная железа содержит светящийся эпителий с секреторной функцией и базальные клетки, лежащие в ее основе вместе с необычным нейроэндокринным компонентом клеток. Эпителиальные клетки, в этом случае, генерируются из редкой популяции стволовых клеток простаты, которые являются относительно затихи в vivo и выступать в качестве системы ремонта для поддержания железистого гомеостаза на протяжении всей жизни1. Несмотря на многие достижения, выявление и функциональная изоляция стволовых клеток простаты остается серьезной проблемой в этой области. Биомаркеры стволовых клеток, в том числе клеточной поверхности маркера на основе методологии в сочетании с цитометрией потока обычно используются для исследования стволовых клеток2,3,4. Тем не менее, результаты для обогащения и изоляции сильно различаются в зависимости от функции маркерных комбинаций и антитела специфичность5,6,поднимая вопросы о личности изолированных клеток. Другой широко используемый подход для стволовых, как обогащение клеток является трехмерной (3D) сфероидной культуры2,3,4. В то время как резидентов стволовых клеток относительно тихие in vivo с нишевыми ограничениями, они проходят деление клеток в 3D матричной культуры (как симметричные и асимметричные), генерации как стволовых и прародителей клеток, которые быстро размножаются к линии обязательств7,8. Сформированные сфероиды представляют собой разнородную смесь, содержащую как стволовые клетки, так и клетки-прародители на различных стадиях обязательств линии, включая клетки-прародители ранней и поздней стадии. Таким образом, анализы с использованием целых сфероидов не являются исключительными стволовыми клетками, что делает идентификацию уникальных свойств стволовых клеток неубедительной. Поэтому, очень важно создать анализы для выявления и отделения стволовых клеток простаты от их дочери-прародителей. С этой целью цель нынешнего протокола заключается в создании системы анализа, которая позволяет эффективно выявлять и изоляцию стволовых клеток из тканей предстательной железы человека с последующим тщательным анализом их биологических функций.

Долгосрочный 5-бромо-2'-deoxyuridine (BrdU) этикетка-удержание широко используется для in vivo и in vitro lineage отслеживания стволовых клеток на основе их длительного удвоения времени9,10. Нынешний подход к идентификации и изоляции стволовых клеток простаты, описанный в настоящем документе, основан на их относительных тихих характеристиках и свойствах удержания этике в смешанной эпителиальной популяции. Кроме того, на основе гипотезы бессмертной нити ДНК, только стволовые клетки могут пройти асимметричное деление клеток. Стволовая клетка представляет собой дочернюю клетку, которая содержит более старую родительскую ДНК, в то время как клетка-прародитель, которая является клеткой-приверженной дочерью, получает недавно синтезированную ДНК. Уникальное свойство стволовых клеток, описанное выше, используется для выполнения маркировки BrdU в родительских стволовых клетках в первичных культурах, а затем отслеживать их этикетку после BrdU-вымывания при переходе к 3D-безякорной культуре сфероидов. В то время как большинство первичных эпителиальных клеток простаты сохраняют базальный и транзитный усиливающий фенотип в 2D-культуре, есть также редкая популяция многопотентных стволовых клеток, пополняя и поддерживая эпителиальный гомеостаз, о чем свидетельствует образование сфероидов или полностью дифференцированных органоидов с соответствующими культурами при передаче в 3D-системы3,12. В нашем текущем протоколе, с помощью HPrEC простаты сфероидов или простасфера основе BrdU, CFSE, или Дальнекрасный удержания анализы следуют флуоресценции активированной сортировки клеток (FACS), мы определяем этикетки удерживающих стволовых клеток в сфероидов на уровне одной клетки13.

Важно отметить, что мы также подтвердили характеристики стволовых клеток клеток, удерживающих этикетку в сфероидах на ранней стадии, по сравнению с клетками-прародителями с родословной. К ним относятся асимметричное деление стволовых клеток, способность образования сфероидов in vitro и способность регенерации тканей in vivo, повышенная аутофагия, увеличенный биогенеза рибосомы и снижение метаболической активности. Впоследствии был проведен анализ РНАЗЕКа. По дифференциально выраженные гены в сфероидных клетках, сохраняющих этикетку, были замечены, которые могут служить новыми биомаркерами для стволовых клеток простаты человека. Этот сфероид на основе этикетки удерживая подход может применяться к образцам рака аналогичным образом определить небольшое количество раковых стволовых клеток, тем самым обеспечивая переводческие возможности для управления терапевтической резистентной популяции13. Ниже представлен prostasphere основе этикетки удержания асссс использованием основных эпителиальных клеток простаты человека (HPrEC) в качестве примера.

протокол

Все обработки клеток и средств массовой информации препараты должны быть выполнены с асептической техникой в классе II биологической безопасности кабинета (BSC).

1. Культура и содержание ячеек HPrEC в 2D

  1. Пальто 100 мм культуры блюда с 2 мл 2,5 мкг /см2 фибронектина раствор на ночь при комнатной температуре (RT). Приготовьте раствор и дайте культуре посуда на сухом воздухе в BSC в течение 45 мин. Фибронектин покрытием культуры блюда могут храниться 2-4 недели при 4 градусах Цельсия.
  2. Добавьте 9 мл среды роста эпителиальной клетки простаты (например, PrEGM) в блюдо культуры с покрытием 100 мм с покрытием фибронектина и сохраняйте блюдо в тепле в инкубаторе CO2 при 37 градусах Цельсия.
  3. Оттепель один флакон замороженных клеток HPrEC (2 х 105/мл) в водяной бане 37 градусов по Цельсию и resuspend клетки в 10 мл теплой среде.
  4. Центрифуга подвески ячейки на 500 х г в течение 5 минут на RT. Аспират и отказаться от супернатанта.
  5. Тщательно resuspend клетки в 1 мл теплой среде культуры. Семенные клетки путем трубоукладки 1 мл клеточной суспензии непосредственно в фибронектин покрытием 100 мм культуры блюдо, содержащее 9 мл предварительно разогретой среды (общий объем среднего и клеток составляет 10 мл). Поместите культурные блюда обратно в инкубатор CO2 при 37 градусах Цельсия.
  6. Пополнять среду каждые 2 дня. Для этого тщательно аспирируйте все носители и добавьте 10 мл свежей теплой среды.
  7. Примерно через 5 дней, убедитесь, что культуры 70-80% слияния. Выполните ферментативное пищеварение путем инкубации клеток с 3 мл 0,05% Трипсин / EDTA при 37 кв кв в течение 5 мин.
  8. Остановите пищеварение, добавив 3 мл теплого PBS, содержащего 10% FBS.
  9. Соберите клетки в 50 мл центрифуги трубки и центрифуги на 500 х г в течение 5 минут на RT. Аспират и отбросить супернатанта.
  10. Отрежь яточные гранулы в 30 мл теплой среды и распределяйте его поровну в три новых фибронектина покрытием 100 мм культуры блюда для следующего прохода.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Первичные клетки HPrEC могут быть проложено 3-5x без изменения их базальных эпителиальных клеточных характеристик. Эпителиальный фенотип тестируется с помощью экспрессий базальных эпителиальных клеточных маркеров цитокератин 5 и р63 с иммуноцитохимией/иммунофлуоресцентными (ICC/IF) анализами.

2. Маркировка HPrEC с BrdU, CFSE, или Дальнекрасный про-красителей

ПРИМЕЧАНИЕ: Клетки могут приступить либо к шагу 2.1 или шаг 2.2 после перехода к 3D prostasphere культуры, как описано в шаге 3.1.

  1. Однократная маркировка клеток с BrdU
    1. Культура 2 х 105 HPrEC клеток в фибронектин покрытием 100 мм культуры блюда с 10 мл теплой среде, содержащей 1 мкм BrdU. Культура клетки в течение 10 дней (более двух проходов), чтобы обеспечить маркировку всех клеток, включая стволовые клетки простаты и клетки-прародители.
    2. После 10 дней, тщательно аспирировать PrEGM среды, содержащей BrdU и мыть клетки с 5 мл теплой PBS. Повторите 1x.
    3. Выполните ферментативное пищеварение с использованием 0,05% трипсина/EDTA, как описано в шагах 1.7-1.8. Центрифуги клетки на 500 х г в течение 5 мин на RT. Аспират и отказаться от супернатанта.
    4. Resuspend BrdU-маркированных гранулированных клеток (5 х 104) в 500 л ледяной (1:1) подвал мембранной матрицы / среднего и передачи на 3D простасферной культуры (описанные в шаге 3.1) в течение 5 дней, чтобы позволить BrdU вымывания во время формирования сфероидов (6 циклов клеток).
  2. Двойная маркировка клеток с BrdU и CFSE или Far Red pro-dyes
    1. Если рекомендуется совместное маркировка живых клеток, возьмите предварительно обозначенные клетки, инкубированные BrdU в течение 10 дней со ступени 2.1 и совместно этикетку с 5 мкм CFSE или Far Red живые клетки флуоресцентные про-красителей в течение 30 мин. Выполните совместное обозначение в день 10.
    2. Тщательно аспирировать среду, содержащую BrdU и CFSE или Far Red про-красителей. Вымойте клетки с 5 мл теплого PBS. Повторите мыть 1x.
    3. Выполните ферментативное пищеварение с использованием 0,05% трипсина/EDTA, как описано в шагах 1.7-1.8. Центрифуги клетки на 500 х г в течение 5 мин на RT. Удалить и отказаться от супернатанта.
    4. Повторное использование комаркированных клеток (5 x 104) в 500 qL ледяной (1:1) подвальной мембранной матрицы/среды и перенос на 3D-культуру простасферы (описанной в разделе 3.1) в течение 5 дней, чтобы позволить БрДУ и CFSE или Far Red washout во время образования сфероидов (6 циклов клеток).
  3. Выполните обнаружение клеток, удерживающих этикетки, в сферах (День 5 простасфер), как описано в шагах 4.1, 4.2, 4.3 или 5.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Carboxyfluorescein диацетат succinimidyl эфир (CFSE) и Дальнекрасный являются длительными флуоресцентные про-красителей и хорошо сохраняются в помеченных клеток. Внутриклеточная эстераза в живых клетках расщепляют ацетатные группы, которые активируют зеленые или красные флуоресцентные молекулы, которые в настоящее время мембраны impermeant.

3. Формирование простасферы в системе культуры 3D-мембраны

  1. Культура простасферы в 3D мембранной матричной системе
    1. Оттепель подвал мембраны матрицы на 4 градуса Цельсия на ночь и держать на льду перед использованием.
    2. Аккуратно добавьте 1 мл ледяной мембранной матрицы в равный объем среды ледяной культуры. Медленно смешивайте, трубачат вверх и вниз, избегая пузырьков.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Предварительно покройдное дно 12 колодцев с культурой скважин ы и 100 зл. Это позволит свести к минимуму количество клеток, которые попадают через матрицу и растут как монослой.
    3. Resuspend 5 х 104 HPrEC клеток в ледяной (1:1) подвал мембранной матрицы / культуры среднего смеси в общей объеме 500 зл.
    4. Пипетка 500 л этого клеточного раствора вокруг нижнего края каждой скважины.
    5. Swirl пластины равномерно распределить смесь вокруг обода скважины. Поместите пластину в инкубатор CO2 при 37 градусах по Цельсию в течение 30 мин, чтобы матрица затвердела.
    6. После того, как матрица затвердеет, накройте 1 мл теплой культуры среды в скважине. Не нарушайте подвал мембраны матричного кольца. Тщательно нацелить наконечник пипетки и распределить культуры среды в центре колодца.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Культурная среда должна быть разогрета до 37 градусов по Цельсию при добавлении в затвердевную мембранную матрицу подвала. Матрица мембраны подвала потеряет свою герметичность и растворится при воздействии холода/холодных носителей.
    7. Пополнить среду каждые 2 дня. Тщательно аспирируйте 500 евро отработанного среднего и добавьте 500 л свежей теплой культуры среды.
    8. Мониторинг формирования и роста простасферы в течение 5-7 дней с помощью перевернутого микроскопа.
  2. Пропуск простасфер
    1. Урожай prostaspheres из матрицы, тщательно aspirating от как можно больше средств массовой информации, как это возможно. Избегайте тревожных или собирание плавающих частей затвердевной матрицы.
    2. Добавьте 1 мл раствора диспаса (подвальная мембранная матрица: распасса при соотношении 1:2). Тщательно перемешайте, повысив вверх и вниз несколько раз.
    3. Инкубировать культурные тарелки в инкубаторе CO2 при 37 градусах по Цельсию в течение 30 мин.
    4. Возьмите изображения простасфер, которые находятся в нижней части культуры блюдо для подсчета числа сферы и измерения размера.
    5. Соберите шаровую смесь в трубку 15 мл. Centrifuge подвески на 500 х г в течение 5 мин на RT, чтобы гранулы сфер. Аспирируй и отбрасывай супернатант.
    6. Разогнать сферы на одиночные клетки, переварив с 500 л тепла 0,05% трипсина /ЭДТА и перенося подвеску в микроцентрифугную трубку 1,5 мл.
    7. Инкубировать микроцентрифуг трубку в инкубатор CO2 при 37 градусах по Цельсию в течение 5 мин.
    8. Остановите действие трипсина с 500 Зл т.л. теплого PBS, содержащего 10% FBS. Передайте переваренный сферный суспензию через шприц 1 мл с иглой 26 G 5x, чтобы разъединить сферы на одиночные клетки.
    9. Центрифуга подвески на 500 х г в течение 5 минут, чтобы гранулы клетки на RT. Аспирировать супернатант и отбросить.
    10. Resuspend клетки гранулы в 1 мл теплой среде культуры и фильтр через 40 мкм пор размер нейлона ячейки ситечко.
    11. Центрифуга суспензии клеток на 500 х г в течение 5 минут, чтобы гранулы клетки на RT. Аспират и отказаться от супернатанта.
    12. Resuspend клеточной гранулы в 1 мл ледяной (1:1) подвал мембранной матрицы / культуры среды и субкультуры в 3D подвалм мембранной матрицы для второго прохождения простасферы.

4. Идентификация стволовых клеток предстательной железы, удерживающих БрДУ, с помощью иммунофлуоресцентного окрашивания

  1. Перерастают прикрепленные простасферы с последующим иммунофлуоресцентным (IF) окрашиванием для 2D-изображения стволовых клеток простаты.
    1. Урожай простасферы путем диспази пищеварения, как описано в шагах 3.2.1-3.2.3. Центрифуги сферы в 1,5 мл микроцентрифуговой трубки на 500 х г в течение 5 мин. Отбросьте супернатант.
    2. Перепристеть сферы в 1 мл теплой культуры среды.
    3. Инкубировать 50 простасфер в скважине в 8 хорошо камерных слайдов в 200 зЛ культуры среды в 37 градусов по Цельсию инкубатор ночь, чтобы для крепления и нарастания сфер.
    4. На второй день, аспирируйте и отбрасывая культуры среды. Вымойте переросшие сферы с 200 Л ПБС в течение 5 мин.
    5. Зафиксировать сферы в 200 л/колодец ледяного метанола при -20 градусах по Цельсию в течение 20 мин.
    6. Вымойте сферы с 200 Л/колодец PBS в течение 5 мин. Повторите 2x.
    7. Кислотные сферы для мытья с 200 Л/колодец 2N HCl в течение 30 минут на RT.
    8. Вымойте сферы с 200 Л/колодец PBS в течение 5 мин. Повторите 3x.
    9. Добавьте 100 зл блокирующего раствора, содержащего 5% нормальной козьей сыворотки в PBST (PBS с 0,25% Triton X-100) и инкубировать в течение 30 мин на РТ.
    10. Аспирировать блокирующий раствор и добавить 100 Л PBST, содержащий 2% нормальной сыворотки козий и первичной мыши анти-человеческого антитела BrdU (1:200) к каждому колодцу и инкубировать в увлажненной коробке при 4 градусах Цельсия в одночасье.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Мышь IgG антитела используется в качестве отрицательного контроля.
    11. Аспирируй и удаляй основной раствор антитела. Вымойте сферы с 200 зл и л PBS в течение 5 мин. Повторите 2x.
    12. Добавьте 100 кЛ PBST, содержащий 2% нормальной козьей сыворотки и вторичной козьей антимышки Alexa Fluor 488 антитела (1: 500) к каждому колодцу и инкубировать на RT в темноте в течение 2 ч.
    13. Аспирируй и удаляй вторичный раствор антитела. Вымойте сферы с 200 зл ИТ PBS в течение 5 мин. Повторите 3x.
    14. Смонтировать горки с 25-40 ql водной монтажной среды, содержащей DAPI.
    15. Получайте изображения окрашенных сфер/клеток с флуоресцентным микроскопом и цветной цифровой камерой.
  2. Целое горе, ЕСЛИ окрашивание простасфер для 3D-изображения стволовых клеток простаты
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для всего крепления IF окрашивания, простасферы обрабатываются с помощью 1,5 мл микроцентрифуговых труб.
    1. Урожай простасфер ы диспазировать пищеварение, как описано в шагах 3.2.1-3.2.3. Центрифуга сферы в 1,5 мл микроцентрифуговой трубки на 500 х г в течение 5 мин. Аспирируйте супернатант и отбрасываете.
    2. Прикрепите и зафиксируйте сферы с 1 мл 4% параформальдегида на RT в течение 20 мин. Центрифуг сферы на 500 х г в течение 5 мин. Аспирировать супернатант и отбросить.
    3. Вымойте сферы, приостановив пеллету в 1 мл PBS. Центрифуги сферы на 500 х г в течение 5 мин. Аспирируйте супернатант и отбрасываете. Повторите 1x.
    4. Кислота мыть сферы, resuspending гранулы в 1 мл 2N HCl в течение 30 минут.
    5. Вымойте сферы с 1 мл PBS в течение 5 мин и центрифуги на 500 х г в течение 5 мин. Аспирируйте супернатант и отбросить. Повторите 3x.
    6. Отреприжить 15-30 сфер в 100 л блокирующего раствора, содержащего 5% нормальную козью сыворотку в PBST (PBS с 0,25% Triton X-100) и инкубировать в течение 30 мин на РТ.
    7. Чтобы удалить блокирующий раствор, центрифугите сферы на 500 х г в течение 5 мин. Аспирируйте и отбросьте супернатант.
    8. Resuspend сферы в 100 ЗЛ PBST, содержащий 2% нормальной сыворотки козы и первичной мыши анти-человеческого антитела BrdU (1:200) и инкубировать при 4 градусах Цельсия в одночасье.
    9. Вымойте сферы, приостановив пеллету в 1 мл PBS. Центрифуги сферы на 500 х г в течение 5 мин. Аспирируйте супернатант и отбрасываете. Повторите 1x.
    10. Resuspend сферы в 100 ЗЛ PBST, содержащий 2% нормальной козьей сыворотки и вторичной козы анти-мышь Alexa Fluor 488 антитела (1:1,000) и инкубировать на RT в течение 2 ч.
    11. Вымойте сферы, приостановив пеллету в 1 мл PBS. Центрифуги сферы на 500 х г в течение 5 мин. Аспирируйте супернатант и отбрасываете. Повторите 1x.
    12. Приостановите действие сфер в 30-50 злику вакусвоенной среды, содержащей DAPI. Чтобы не уплощать сферы, распределите их в хорошо созданное из 35-мм непокрытого культурного блюда с крышкой стеклянного дна. Затем добавьте покрывало в блюдо культуры, покрывающее колодец.
    13. Приобретите изображения всей сферы стеков с помощью передаваемого света перевернутого флуоресцентного конфокального микроскопа. Преобразуйте эти изображения в 3D-изображения с помощью программного обеспечения для визуализации с возможностями свободного рисования.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Мышь IgG антитела используется в качестве отрицательного контроля.
  3. Анализ парных клеток (4-дневный протокол)
    1. Культура BrdU помечены сферы на день 5.
    2. День 1: Урожай сфер из подвальной мембранной матрицы с 1 мл диспази пищеварения. Рассредоточьтесь на одиночные клетки на 500 л теплая 0,05% трипсина/ЭДТА в микроцентрифуговой трубке 1,5 мл, как описано в шагах 3,2,1-3,2,11.
    3. Приготовьте клетки в 1 мл теплой культуры среды.
    4. Плита рассеянных одиночных клеток (300-500 фунтов за скважину) в 8 хорошо камерных слайдов и культуры в 200 Л / хорошо культуры среды в одночасье, чтобы для вложения.
    5. День 2: Изменение среды культуры с 200 qL 2 мкм цитохалазин D в среде культуры и инкубировать ночь на 37 градусов по Цельсию, чтобы один деление клеток, что паузы на поздней метафазы на анафазу.
    6. День 3-4: Аспирируй и отбрасывайте среду. Исправьте клетки в 200 л/колой ледяного метанола при -20 градусах По Цельсию в течение 20 мин. Следуйте протоколу иммуносохранения для BrdU, как описано в шагах 4.1.5-4.1.14.
    7. Возьмите изображения парных клеток с флуоресцентным микроскопом. Убедитесь, что расстояние между двумя ядрами составляет менее 30 мкм. Основываясь на удержании BrdU, определите парные стволовые клетки как проходящие симметричное или асимметричное деление клеток.
      ПРИМЕЧАНИЕ: BrdU этикетки удерживая стволовые клетки простаты проходят симметричное деление, чтобы привести к двум стволовым клеткам дочери сохраняя равное количество BrdU, в то время как стволовые клетки, проходящие асимметричное деление приводят к одной дочери стволовых клеток, сохраняющих все BrdU и другую дочернюю клетку-прародителя, которая потеряла этикетку BrdU.

5. Изоляция cfSE этикетки удерживающих стволовых клеток простаты сортировки FACS

  1. День 5: Урожай CFSE помечены день 5 prostaspheres растет в 6 хорошо культуры пластин в 3D культуры, заменив среду с 2 мл диспазы (подвальная мембранная матрица: dispase на 1:2 соотношение). Пипетка вверх и вниз несколько раз, чтобы тщательно перемешать.
  2. Инкубировать пластины в ИНкубатор CO2 при 37 градусах по Цельсию в течение 30 минут, чтобы переварить матрицу.
  3. Соберите шаровую смесь в центрифугу мощностью 15 мл. Центрифуги сферы на 500 х г в течение 5 минут на RT. Аспирируйте супернатант и отбрасываете.
  4. Приостановите гранулы сферы в 500 л тепла 0,05% трипсина/ЭДТА и перенесите в микроцентрифугную трубку мощностью 1,5 мл.
  5. Инкубировать сферы в инкубаторе CO2 при 37 градусах по Цельсию в течение 5 мин. Добавить 500 л теплого PBS, содержащего 10% FBS.
  6. Передайте сферы через шприц 1 мл с иглой 26 G 5x, чтобы полностью разъединить сферы на одиночные клетки.
  7. Центрифуги клетки на 500 х г в течение 5 мин на RT. Аспират и отказаться от супернатанта.
  8. Resuspend клетки в 1 мл теплой среде культуры, содержащей 1 мкг/мл пропиий йодида (PI) для окрашивания мертвых клеток. Инкубировать в течение 1 мин на RT.
  9. Центрифуги клетки на 500 х г в течение 5 мин на RT. Аспират и отказаться от супернатанта.
  10. Приготовьте клетки в 1 мл теплой культуры среды. Центрифуги клетки на 500 х г в течение 5 мин на RT. Аспират и отказаться от супернатанта.
  11. Resuspend клетки в 500 л теплой среде культуры и собирать клетки в 5 мл полистирола круглые нижние трубки, фильтруя их через 35 мкм пор размер ячейки ситечко оснастки.
  12. Выполните анализ трипсин-рассеянных CFSE-маркированных простасферных клеток с одноканальным анализатором FACS.
  13. Ворота субпопуляции фракционированных CFSEПривет, CFSEMed, и CFSELo клеток. Используйте отрицательные и положительные элементы управления для gating.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Присутствие FACS отсортированных CFSE этикетки удерживающих стволовых клеток простаты (см. Hu et al.13) может быть подтверждено зеленой флуоресценции микроскопии и их больший размер клетки по сравнению с не-сохраняющихся клеток. Этот больший размер клетки является свойством стволовых клеток простаты по отношению к популяциям клеток-прародителей. Это может быть различным с другими типами тканей.

Результаты

Первичные нормальные клетки эпителия простаты человека помещаются в фибронектин покрытием культуры блюда и рост клеток поддерживается в 2D культуры(Рисунок 1a). При переходе в 3D-культуру с мембранной матрицей подвала дифференцированные эпителиальные клетки ме...

Обсуждение

Цитометрия потока с использованием нескольких маркеров поверхности стволовых клеток является широко используемым подходом для исследования стволовых клеток, несмотря на отсутствие как специфичности, так и избирательности1,5,6. В то в?...

Раскрытие информации

Авторы не имеют финансовых отношений раскрывать.

Благодарности

Это исследование было поддержано грантами Национального института рака R01-CA172220 (GSP, WYH), R01-ES02207 (GSP, WYH). Мы благодарим Flow Cytometry Core в Университете Иллинойса в Чикаго за помощь в сортировке клеток.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
0.05% Trypsin-EDTAGibco25300-054
1 mL tuberculin syringesBectin DickinsonBD 309625
1.5 mL microcentrifuge tubes, sterile
100 mm culture dishesCorning/Falcon353003
12-well culture plateCorning/Falcon353043
15 mL centrifuge tubesCorning/Falcon352097
22 x 22 mm coverslips, sqCorning284522For MatTek 35 mm culture dish
24 x 50 mm coverslipsCorning2975245
26G x 1.5 inch hypodermic needleMonoject1188826112
2N HCl
35 mm culture dish with cover glass bottomMatTek CorpP35G-0-10-CGlass bottom No. 0, uncoated, figure-materials-994 irradiated
40 µm pore nylon cell strainerCorning352340
5% CO2 culture incubator, 37 °CForma
50 mL centrifuge tubesCorning/Falcon352098
5mL Polystyrene Round-Bottom Tube with strainer snap capCorning35223535 µm nylon mesh
6-well culture platesCorning353046
8-well chamber slidesMillipore SigmaPEZGS0816
Aqueous mounting medium containing DAPIVector LaboratoriesH-1200A nuclear fluorescent dye
Biological safety cabinet, Level 2 certified
BrdU (5-bromo-2’-deoxyuridine)Sigma-AldrichB50021 mM stock solution in DMSO
Centrifuge for 1.5 mL microcentrifuge tubesEppendorf
Centrifuge for 15 mL tubesBeckman CoulterAllegra 6
CFSE (carboxyfluorescein succinimidyl ester)Thermo Fisher ScientificC345545 mM stock solution in DMSO
cytochalasin DThermo Fisher ScientificPHZ1063
Dispase 1U/mLStemCell Technologies07923
FACS CellSorter MoFlo XDPBeckman Coulters
Far-Red pro-dyeThermo FisherC345645 mM stock solution in DMSO
Fetal Bovine Serum (FBS)
FibronectinSigma-AldrichF0895For coating 100 mm culture dishes
Fluorescent microscope with color digital cameraCarl ZeissAxioskop 20 fluorescent microscope; color digital Axiocamera
Goat anti-Mouse IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488Thermo FisherA-11029
HPrEC (Primary normal human prostate epithelial cells)Lifeline Cell TechnologyFC-0038Pooled from 3 young (19-21yr od) disease-free organ donors; 1 x 105 cells/mL; stored in liquid nitrogen
ice bucket and ice
Inverted microsope with digital camera
Matrigel, low growth factor, phenol-red freeCorning356239
MethanolCorningA452-4
Mouse anti-BrdU antibodyCell Signaling5292S
Mouse IgG antibody (negative control)Santa Cruz Biotechnologysc-2025
Normal goat serumVector LaboratoriesS-1000
Phosphate Buffered Saline (PBS), pH 7.4Sigma-AldrichP5368-10PAK
Pipettors and tips, various sizes
PrEGM (ProstaLife Epithelial Cell Growth Medium)Lifeline Cell TechnologyLL-0041
Propidium Iodide (PI)R & D Systems5135/1010 μg/mL PI in PBS stored at 4 °C in the dark
Serological pipets, various sizes
Software for sphere counting and size measurements
Software: 3D images using Imaris an imageing software with freeform drawing capabilities
Triton X-100Millipore SigmaT8787
Water bath, 37 °C
z-stack images using a transmitted light inverted fluorescent confocal microscope

Ссылки

  1. Leong, K. G., Wang, B. E., Johnson, L., Gao, W. Q. Generation of a prostate from a single cell. Nature. 456, 804-808 (2008).
  2. Xin, L., Lukacs, R. U., Lawson, D. A., Cheng, D., Witte, O. N. Self-renewal and multilineage differentiation in vitro from murine prostate stem cells. Stem Cells. 25, 2760-2769 (2007).
  3. Hu, W. Y., et al. Estrogen-initiated transformation of prostate epithelium derived from normal human prostate stem-progenitor cells. Endocrinology. 152, 2150-2163 (2011).
  4. Hu, W. Y., Shi, G. B., Hu, D. P., Nelles, J. L., Prins, G. S. Actions of endocrine disrupting chemicals on human prostate stem/progenitor cells and prostate cancer risk. Molecular and Cellular Endocrinology. 354, 63-73 (2012).
  5. Collins, A. T., Berry, P. A., Hyde, C., Stower, M. J., Maitland, N. J. Prospective identification of tumorigenic prostate cancer stem cells. Cancer Research. 65, 10946-10951 (2005).
  6. Vander Griend, D. J., et al. The role of CD133 in normal human prostate stem cells and malignant cancer-initiating cells. Cancer Research. 68, 9703-9711 (2008).
  7. Wang, J., et al. Symmetrical and asymmetrical division analysis provides evidence for a hierarchy of prostate epithelial cell lineages. Nature Communications. 5, 4758 (2014).
  8. Neumuller, R. A., Knoblich, J. A. Dividing cellular asymmetry: asymmetric cell division and its implications for stem cells and cancer. Genes and Development. 23, 2675-2699 (2009).
  9. Cicalese, A., et al. The tumor suppressor p53 regulates polarity of self-renewing divisions in mammary stem cells. Cell. 138, 1083-1095 (2009).
  10. Klein, A. M., Simons, B. D. Universal patterns of stem cell fate in cycling adult tissues. Development. 138, 3103-3111 (2011).
  11. Cairns, J. Mutation selection and the natural history of cancer. Nature. 255, 197-200 (1975).
  12. Karthaus, W. R., et al. Identification of multipotent luminal progenitor cells in human prostate organoid cultures. Cell. 159, 163-175 (2014).
  13. Hu, W. Y., et al. Isolation and functional interrogation of adult human prostate epithelial cells at single cell resolution. Stem Cell Research. 23, 1-12 (2017).
  14. Bryant, D. M., Stow, J. L. The ins and outs of E-cadherin trafficking. Trends in Cell Biology. 14, 427-434 (2004).
  15. Clevers, H., Loh, K. M., Nusse, R. Stem cell signaling. An integral program for tissue renewal and regeneration: Wnt signaling and stem cell control. Science. 346, 1248012 (2014).
  16. Madueke, I., et al. The role of WNT10B in normal prostate gland development and prostate cancer. The Prostate. 79 (14), 1692-1704 (2019).
  17. Guan, J. L., et al. Autophagy in stem cells. Autophagy. 9, 830-849 (2013).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

154

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены