АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Здесь представлен протокол для лазерного захвата микродиссекции (LCM) тканей растений. LCM является микроскопическим методом для изоляции областей ткани в без загрязнения образом. Процедура включает фиксацию тканей, встраивание парафина, секциоирование, LCM и экстракцию РНК. РНК используется в ниже по течению ткани конкретных, временно решенный анализ транскриптомов.

Аннотация

Развитие сложного многоклеточного организма регулируется отдельными типами клеток, которые имеют различные транскрипционные профили. Для выявления транскрипционных регуляторных сетей, регулирующих процессы развития, необходимо измерить пространственные и временные профили экспрессии генов этих отдельных типов клеток. Таким образом, понимание пространственно-временного контроля экспрессии генов имеет важное значение для получения понимания того, как регулируются биологические процессы и процессы развития. Здесь мы описываем метод микродиссекции лазерного захвата (LCM), чтобы изолировать небольшое количество клеток из трех органов эмбриона ячменя в течение времени во время прорастания с последующим профилированием стенограммы. Метод состоит из фиксации тканей, обработки тканей, встраивания парафина, секций, LCM и извлечения РНК с последующим ПЦР или РНК-сек в режиме реального времени. Этот метод позволил нам получить пространственные и временные профили транскрипций органов семян из различных количеств клеток (десятки и сотни), обеспечивая гораздо большую специфичность тканей, чем типичные анализы навалочных тканей. На основе этих данных мы смогли определить и сравнить транскрипционные регуляторные сети, а также предсказать факторы транскрипции кандидатов для отдельных тканей. Метод должен применяться к другим тканям растений с минимальной оптимизацией.

Введение

Развитие и рост растений связаны с скоординированным действием транскрипционных регуляторных сетей в различных клетках, которые существуют в сложной клеточной среде. Чтобы понять активность этих регулятивных сетей, нам необходимы знания пространственной и временной экспрессии генов в различных типах клеток на разных стадиях развития. Однако анализ экспрессии генов чаще проводится в образцах целых органов или навалочных тканей из-за технической проблемы изоляции и анализа небольшого количества клеток. Метод, который мы описываем здесь, позволил получить анализ транскриптома пространственной и височной ткани путем соединения LCM с РНК-сек.

LCM был разработан два десятилетия назад Эммерт-Бак и его коллеги1. Техника позволила исследователям точно изолировать однокамеры или кластеры клеток из окружающей среды с помощью прямой микроскопической визуализации и манипуляции с помощью узкого лучалазера 1. С тех пор метод широко используется в биологии рака и патологии2,3. Многие исследовательские группы растений также адаптировали LCM для использования с различными видамирастений и различными типами тканей 4,,5,,6,,7,,8,,9,,10,,11. В последнее время несколько работ также использовали LCM на eudicot и семена монокота для изучения эмбрионов, эндоспермов и других структур семян во время развития семяни прорастания 10,12,13. Большинство других широко используемых одноклеточных методов изоляции, таких как микро-пипеттинг, сортировка клеток, магнитное разделение и микрофлюидные платформы, зависят от энзиматического пищеварения или механической гомогенизации для диссоциации клеток. Это может возмутить экспрессию генов, вводя технические артефакты, которые путаютинтерпретацию данных 14,,15. Эти методы также требуют, чтобы предыдущие знания маркерных генов для каждого типа клеток соотносить диссоциированные клетки с их пространственным расположением и истинным типом клеток. Дальнейшая группа методов зависит от сродства на основе изоляции подклеточных структур, а не целые клетки, например INTACT (Изоляция ядер, отмеченных в типах клеток) и TRAP (Перевод Рибосома Аффинити Очистка)16,17. Тем не менее, сродство маркировки и очистки ядер или рибосом являются технически сложными в видов растений, которые не имеют устоявшихся протоколов трансформации. LCM использует быструю фиксацию тканей для сохранения уровней транскрипции и обычной гистологической идентификации путем прямой визуализации клеток в пределах их нормальной ткани / органа контексте, что позволяет дискретных клеток, которые будут изолированы в течение короткогопериода времени 18,19.

Протокол, представленный здесь, представляет 100-й метод изоляции конкретных клеток или типов клеток от тканевых секций семян зерновых, которые могут быть применены к большинству клеток, которые могут быть гисто логически идентифицированы. LCM предоставляет бесконтактный метод изоляции клеток, значительно снижая загрязнение и повышая целостность восстановленной РНК. Кроме того, метод иллюстрирует силу LCM на крупномасштабных исследованиях генома, начиная с небольших количеств биологических материалов. Мы также описываем линейное усиление РНК для генерации достаточного входного материала для анализа стенограммы/транскриптома ниже по течению.

Есть десять основных шагов в этом LCM РНК-сек протокол для пространственной и височной ткани конкретных транскриптомов, в том числе фиксации образцов тканей, обезвоживание, парафин инфильтрации, встраивания, секционирования, LCM, РНК экстракции, РНК усиления, РНК количественной оценки и qRT-PCR и / или РНК-сек (Рисунок 1).

figure-introduction-4386
Рисунок 1: Flowchart LCM следуют РНК-сек или qRT-PCR. LCM является пространственно точным и бесконтактной техникой для сбора клеток из фиксированных секций тканей с помощью лазерного луча под микроскопической визуализацией. Процесс начинается с фиксации образцов тканей, а затем обезвоживания с использованием градиента серии этанола и ксилена, и закончил с парафином инфильтрации. Процесс может быть полностью автоматизирован с помощью процессора ткани. После того, как ткань проникли с парафином, он встроен в форму с расплавленным парафином с помощью встраивания станции. Раздел осуществляется с использованием микротома, установленного до нужной толщины. Слайды готовятся и LCM проводится непосредственно перед РНК должна быть извлечена из захваченных клеток. Добыча РНК сопровождается непосредственно двумя раундами усиления РНК до qRT-PCR и/или РНК-сек. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

протокол

Поскольку конечный продукт РНК, заботиться, чтобы избежать загрязнения работы с RNases. Ношение перчаток является обязательным. Используйте дитил пирокарбонат (DEPC) - обработанную воду, буферы и т.д. Буферы автоклава и выпекать стеклянную посуду перед использованием.

1. Фиксация тканей

  1. Подготовка фиксации выбора в зависимости от видов и типов тканей; для семян ячменя используйте фиксатор фермера (75% этанола, 25% ледниковой уксусной кислоты (v/v)).
  2. Охладите фиксатор на льду до сбора тканей.
  3. Соберите растительный материал, представляющий интерес, и при необходимости рассектете его на кусочки соответствующего размера, чтобы вписаться в выбранную встраиваемую форму. Для семян ячменя, разрезать семена на половину продольно, чтобы помочь проникновению фиксаторного раствора и вписаться в встраивание формы.
  4. Погрузим ткань по крайней мере в 10-х объем ледяной фиксатор. Для семян ячменя, погрузить семена разрезать на половину в фиксатор.
  5. Используйте вакуумную инфильтрацию для ускорения проникновения фиксатора. Ткани должны тонуть после вакуумной инфильтрации фиксатора. Для семян ячменя используйте 30 мин вакуумного инфильтрации.
  6. Замените фиксатор и инкубировать при 4 градусов по Цельсию, чтобы позволить фиксатору полностью проникнуть в ткань. Для семян ячменя инкубировать образцы на ночь (12-16 ч).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Тоньше или малых тканей потребуется меньше времени фиксации из-за более высокой скорости диффузии фиксации в ткани.
  7. Удалить ткани из фиксатора и передачи ткани в кассеты, а затем начать обработку тканей.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Малые или хрупкие ткани, такие как лист ткани, могут быть помещены в кассеты для фиксации, чтобы убедиться, что он не поврежден во время фиксации. Биопсия мешки, прокладки или обертывания могут быть использованы для проведения ткани надежно внутри кассеты во время фиксации тканей и ткани обработки шагов.

2. Обработка тканей

  1. Используйте автоматизированный процессор ткани в шаге 2 с минимум 10 камерами раствора и 2 нагретыми парафин-камерами (см. таблицу материалов).
  2. Убедитесь, что в каждой камере имеется достаточное количество растворов; заменить решения после каждых нескольких применений процессора тканей.
  3. Поместите кассеты с тканью в металлическую корзину. Прикрепите металлическую корзину к держателю над камерой 1. Держатель будет вращаться и "замочить и окунуть" кассеты в камеры, следуя назначенной программе.
  4. Установите программу, выполняя кнопку нажатия на панели управления процессора ткани, которые включают в себя установление продолжительности времени для каждой камеры.
  5. Нажмите кнопку«Старт»,чтобы начать программу обработки. Следующая программа предназначена для семян ячменя и работает на ночь (18 ч)
    1. Выполните обезвоживание, окунув кассету в течение 1 ч 30 мин каждый в градиентной серии этанола (75%, 85%, 100%, 100%, и 100% (v/v) этанола).
    2. Выполните очистку с использованием этанола: ксиленый градиент по 1 ч 30 мин каждый в 75:25, 50:50, 25:75 (этанол: ксилен%, в/в). Затем опустите кассету на 1 ч 30 мин каждый из 100% ксилена, то 100% ксилена.
    3. Выполните фильтрацию парафина при 55-60 градусов по Цельсию в течение 1 ч 30 мин дважды в расплавленном парафине.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Температура камер парафинового нагревателя может быть установлена в задней части процессора ткани.
  6. На следующее утро снимите кассеты с процессора тканей и приступайте к встраиванию парафина.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Время программы может варьироваться между различными типами тканей. Вакуум и/или агитация могут быть использованы во время обработки тканей для ускорения проникновения выбранных растворов, нажавкнопки «V»и/или«агитация»на панели управления процессора ткани.

3. Парафин встраивание

  1. Используйте встраивающий машину на этом этапе (см. таблицу материалов).
  2. Предустановка встраивания машины, чтобы включить по крайней мере за несколько часов до встраивания, чтобы время для парафина в резервуарах, чтобы расплавиться полностью.
  3. Включите холодную тарелку перед началом.
  4. Вставлять образцы в формы, удерживая образцы в положении, используя тонкие типсы и дозирования расплавленного парафина в форму. Обеспечить надлежащую ориентацию образцов для каждого экспериментального назначения. Для семян ячменя, сориентировать семена продольные к направлению резки для получения продольных секций.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Встраивание формы бывают разных размеров. Выберите соответствующий размер, чтобы позволить правильно расположенную и встроенную выборку. Ориентация образцов должна быть рассмотрена в зависимости от экспериментальных потребностей. При необходимости продольных секций образец должен быть ориентирован продольно в направлении резки, в то время как для поперечных секций образец следует ориентировать параллельно направлению резки.
  5. Поместите чистую кассету на форму и убедитесь, что достаточный парафин полностью покроет всю кассету, чтобы держать образец на кассете.
  6. Поместите форму на холодную тарелку и дайте парафину установить полностью (10-20 мин), прежде чем освободить блок от плесени.
  7. Приступайте к разделу или передаче блоков на 4 градуса Цельсия для хранения.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Протокол можно приостановить здесь. Встроенные блоки могут храниться при 4 градусах Цельсия в течение трех месяцев.

4. Подготовка полиэтиленовых нафтхалат (ПЕН) мембранных слайдов

  1. Погружение ПЕН мембраны слайды в RNase деактивации раствора для 3 с следуют две краткие моет в DEPC-обработанной воды для удаления RNases на слайдах. Высушите слайды в инкубаторе 37 градусов по Цельсию, чтобы удалить оставшийся раствор.
  2. УФ-обработать слайды с помощью УФ-лампы в шкафу ламинарного потока в течение 30 минут для повышения гидрофильных свойств для улучшения парафина адгезии.

5. Секция

  1. Используйте микротом в секционные шаг (см. Таблицу материалов).
  2. Поместите новое лезвие в держатель ножа, и всегда держать нож охранник, когда не активно секции
    ВНИМАНИЕ: Лезвия микротомы чрезвычайно острые и могут причинить значительный вред при ненадлежащем использовании.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Есть два механизма блокировки на микротоме, один находится на стороне машины, а другой на ручке колеса. Оба должны быть вовлечены, когда не активно секций.
  3. Отрегулируйте блок ножа, чтобы быть как можно ближе к образцу, насколько это возможно, не касаясь. Убедитесь, что микротома рука никогда не вступает в полный контакт с ножом блок, как это приведет к катастрофическим структурным повреждением микротомы.
  4. Включите холодную тарелку перед началом. Держите парафиновые блоки на холодной пластине перед секцией и переохлаждать блоки, когда это необходимо во время секции, чтобы предотвратить размягчение блоков.
  5. Заполните водяную баню водой, обработанной DEPC, и нагрейте до 42 градусов по Цельсию до начала.
  6. Обрезка блоков до нужной глубины (где секция вас интересует) и секционные парафиновые блоки при желаемой толщине (6-10 мкм) с использованием микротомы; хорошо срезаемый блок сформирует 'риббон' на краю лезвия. Для семян ячменя, раздел с толщиной 8 мкм.
  7. Аккуратно перенесите ленты из микротома на водяную баню с помощью тонкой кисти краски или тонкой типса, гарантируя, что лента плоская на поверхности воды.
  8. Держите слайд под углом 45 градусов, используя восходящее движение, поднимите ленту из воды на горку и аккуратно удалите излишки воды с помощью ткани, свободной от ворса.
  9. Сухие горки в течение 30 мин при 37 градусов по Цельсию, чтобы устранить оставшиеся воды под парафином.
  10. Приступить к удалению парафина или хранить при 4 градусов по Цельсию в закрытой коробке в условиях обезвоживания (для использования в течение нескольких дней).
  11. Удалить парафин путем мытья слайдов 3x для 20 с каждый в ксилен, а затем 2x моет 30 с в 100% (V / V) этанола и 2x моет 30 с в 70% (V / V) этанола.
  12. Немедленно приступайте к микроразливу захвата лазера после удаления парафина.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Cryosectioning является альтернативным методом, который был успешно в сочетании с LCM. Пример подготовки к криозеции будет отличаться.

6. Лазерная захвата микродиссекции

  1. Используйте микроскоп микродиссекции с лазерным захватом (см. таблицу материалов)для микродиссекции клеток из депаафинизированных и высушенных секций тканей.
  2. Загрузите слайды на трех доступных слотах.
  3. Используйте специальные клеевые колпачки коллекционные трубки для сбора взятых образцов. Захват без жидкости ("сухой" сбор) сводит к минимуму активность RNase. Загрузите трубки коллекции в доступные слоты.
  4. Переместите этап, чтобы найти область выборки, которая должна быть сокращена. Это можно сделать с помощью мыши или джойстика машины LCM, или клавиши стрелки на клавиатуре.
  5. Для оптимизации скорости резки, резки энергии и фокусировки, лазерного давления катапультирования (LPC) энергии и фокуса, сначала вырезать на пустой сегмент, свободный от ткани на мембране слайда. Для семян ячменя, скорость резки No 18, CutEnergy No 52 CutFocus 63, LPCEnergy 78, LPC фокус No 61 при 10x увеличении.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Резка фокус и энергии должны быть скорректированы для различных слайдов, различных тканей, и захватили области, но общие правила катапультирования власти выше, чем режущей мощности и лазер должен быть дефокусирован для катапультирования. Чем выше увеличение объектива цели, тем меньше фокус лазера и тем выше энергия.
  6. Используйте инструменты рисования для выбора ячеек, описывая область интереса.
  7. Выберите функцию RoboLPC от панели инструментов функции до катапультных ячеек в клеевые колпачки на основе оптимизированных параметров, полученных путем резки на черном сегменте выше.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Параметры LCM различаются между типами тканей, а также толщиной сечения, твердостью тканей и объективными линзами. Таким образом, лучше всего оптимизировать каждый слайд на простой мембранной области без образца ткани, прежде чем резки фактического образца.
  8. Используйте инструменты Флага, чтобы отметить области, представляющие интерес, чтобы найти их немедленно, выбрав этот флаг из списка элементов.
  9. Проверьтекнопку "CapCheck",чтобы проверить клеевую крышку, чтобы подтвердить, что образцы были захвачены. Как правило, LCM из 10-15 секций (200 клеток) на крышку требуется для извлечения РНК.
  10. Храните взятые образцы на льду. Немедленно приступайте к экстракции РНК, чтобы избежать деградации РНК.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Некоторые LCM микроскопии оснащены флуоресцентным светом, который позволяет захвата клеток помечены флуоресцентными маркерами.

7. Добыча РНК

  1. Используйте комплект для извлечения РНК с низким входом (см.таблицу материалов) для извлечения РНК после LCM. Такие наборы предназначены для восстановления высококачественной общей РНК последовательно из менее чем десяти клеток.
  2. Изолировать общую РНК от захваченных типов клеток в соответствии с инструкциями производителя, включая на колонке DNase лечения.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Первый шаг извлечения РНК, где трубка инвертирована и щелкнул имеет решающее значение для обеспечения захваченных образцов на крышке находятся в контакте с буфером извлечения добавил.

8. Усиление РНК

  1. Используйте набор усиления антисенсейной РНК (аРНК) (см. таблицу материалов) для усиления РНК из РНК, извлеченной с помощью транскрипции in vitro, для получения достаточного количества аРНК для синтеза библиотеки РНК-сек.
  2. Выполните два раунда усиления с помощью комплекта усиления аРНК в соответствии с инструкциями производителя.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Важно разогреть термо-циклер и крышку до температуры, проинструктированные производителем комплекта (см. Таблицуматериалов). Альтернативный подход вместо усиления РНК заключается в использовании комплекта подготовки библиотек с низким вводом для синтеза библиотеки непосредственно из извлеченной РНК.

9. Количественная оценка РНК

  1. Количественная оценка и квалификация аРН С помощью автоматизированной системы электрофореза (см. таблицу материалов).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Автоматизированная система электрофореза является предпочтительной, поскольку она требует меньше образцов (1-2 йл) и обеспечивает гель-как изображение и электроферограмма для каждого отдельного образца.

10. qRT-PCR и/или РНК-сек

  1. Синтезировать cDNA из аРН для qRT-PCR или сделать РНК-сек библиотеки с использованием стандартных наборов библиотеки РНК-сек.

Результаты

Мы создали пространственные и временные ткани конкретных транскриптомов из семян ячменя во время прорастания с помощью нашего LCM РНК-сек протокол10. Исследование было проведено путем применения LCM РНК-сек на небольшое количество клеток из трех органов эмбриона (слив, кончи?...

Обсуждение

Многие исследования экспрессии генов, специфичные для тканей, были ограничены вскрытием образцов вручную, что является трудоемким, трудоемким, имеет высокий риск заражения и может использовать только образцы, которые оперативник человека достаточно ловкий, чтобы собрать урожай. LCM яв?...

Раскрытие информации

Авторов нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана Австралийский научно-исследовательский совет Центр передового опыта в области биологии энергии растений (CE140100008) в JW. M.G.L была поддержана стартовым грантом Университета Ла Троб. Мы благодарим платформу La Trobe Genomics platform за поддержку в последовательности с высокой пропускной способностью и анализе данных. Мы благодарим доцента Мэтью Такера за экспертные советы по созданию LCM в нашей лаборатории.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Acetic acid 100 % ACS/R.AnalaR NORMAPUR (BioStrategies)VWRC20104.323
AdhesiveCap 200 opaqueZeiss415190-9181-000
Clear base moulds 8 X 10Leica3803015
Diethyl pyrocarbonateSigma-Aldrich40718-25ML
High Sensitivity RNA ScreenTapeAgilent5067-5579
Low­profile disp.blades DB80LSLeica14035843489
MembraneSlide 1.0 PENZeiss415190-9041-000
MessageAmp II aRNA Amplification KitAmbion (ThermoFisher)AMB17515
On-Column DNase I Digestion SetSigma-AldrichDNASE70
Ovation RNA-Seq System V2NuGen (Integrated Science)7102-08
Paraffin (Surgipath Paraplast)Leica39601006
PicoPure RNA Isolation KitABI (ThermoFisher)KIT0214
RNaseZap RNase Decontamination SolutionAmbion (ThermoFisher)AM9780
XyleneAnalaR NORMAPUR (BioStrategies)VWRC28975.360
Leica Benchtop Tissue ProcessorLeica BiosystemsTP1020
Leica Heated Paraffin Embedding ModuleLeica BiosystemsEG1150H
Leica Cold PlateLeica BiosystemsEG1150C
Safemate Class 2 Biological Safety CabinetsLAF Technologies Pty LtdSafemate 1.5
Leica Fully Automated Rotary MicrotomeLeica BiosystemsRM2265with PALMRobo v 4.6 software
Zeiss PALM MicroBeam LCM systemZeiss miscroscopy
TapeStationAgilentTapeStation 2200

Ссылки

  1. Emmert-Buck, M. R., et al. Laser capture microdissection. Science. 274 (5289), 998-1001 (1996).
  2. Alevizos, I., et al. Oral cancer in vivo gene expression profiling assisted by laser capture microdissection and microarray analysis. Oncogene. 20 (43), 6196-6204 (2001).
  3. Cong, P., et al. In situ localization of follicular lymphoma: description and analysis by laser capture microdissection. Blood, The Journal of the American Society of Hematology. 99 (9), 3376-3382 (2002).
  4. Blokhina, O., et al. Laser capture microdissection protocol for xylem tissues of woody plants. Frontiers in Plant Science. 7, 1965 (2017).
  5. Casson, S., Spencer, M., Walker, K., Lindsey, K. Laser capture microdissection for the analysis of gene expression during embryogenesis of Arabidopsis. The Plant Journal. 42 (1), 111-123 (2005).
  6. Chen, Z., et al. LCM-seq reveals the crucial role of LsSOC1 in heat-promoted bolting of lettuce (Lactuca sativa L.). The Plant Journal. 95 (3), 516-528 (2018).
  7. Jiao, Y., et al. A transcriptome atlas of rice cell types uncovers cellular, functional and developmental hierarchies. Nature Genetics. 41 (2), 258-263 (2009).
  8. Kivivirta, K., et al. A protocol for laser microdissection (LMD) followed by transcriptome analysis of plant reproductive tissue in phylogenetically distant angiosperms. Plant Methods. 15 (1), 1-11 (2019).
  9. Li, P., et al. The developmental dynamics of the maize leaf transcriptome. Nature Genetics. 42 (12), 1060-1067 (2010).
  10. Liew, L. C., et al. Temporal tissue-specific regulation of transcriptomes during barley (Hordeum vulgare) seed germination. The Plant Journal. 101 (3), 700-715 (2020).
  11. Matas, A. J., et al. Tissue-and cell-type specific transcriptome profiling of expanding tomato fruit provides insights into metabolic and regulatory specialization and cuticle formation. The Plant Cell. 23 (11), 3893-3910 (2011).
  12. Sakai, K., et al. Combining laser-assisted microdissection (LAM) and RNA-seq allows to perform a comprehensive transcriptomic analysis of epidermal cells of Arabidopsis embryo. Plant Methods. 14 (1), 10 (2018).
  13. Zhan, J., et al. RNA Sequencing of Laser-Capture Microdissected compartments of the maize kernel identifies regulatory modules associated with endosperm cell differentiation. The Plant Cell. 27 (3), 513-531 (2015).
  14. Hwang, B., Lee, J. H., Bang, D. Single-cell RNA sequencing technologies and bioinformatics pipelines. Experimental & Molecular Medicine. 50 (8), 1-14 (2018).
  15. Zeb, Q., Wang, C., Shafiq, S., Liu, L. . Single-Cell Omics. , 101-135 (2019).
  16. Deal, R. B., Henikoff, S. The INTACT method for cell type-specific gene expression and chromatin profiling in Arabidopsis thaliana. Nature Protocols. 6 (1), 56 (2011).
  17. Heiman, M., Kulicke, R., Fenster, R. J., Greengard, P., Heintz, N. Cell type-specific mRNA purification by translating ribosome affinity purification (TRAP). Nature Protocols. 9 (6), 1282 (2014).
  18. Bevilacqua, C., Ducos, B. Laser microdissection: A powerful tool for genomics at cell level. Molecular Aspects of Medicine. 59, 5-27 (2018).
  19. Nelson, T., Tausta, S. L., Gandotra, N., Liu, T. Laser microdissection of plant tissue: what you see is what you get. Annual Reviews in Plant Biology. 57, 181-201 (2006).
  20. Day, R. C., Grossniklaus, U., Macknight, R. C. Be more specific! Laser-assisted microdissection of plant cells. Trends in Plant Science. 10 (8), 397-406 (2005).
  21. Takahashi, H., et al. A method for obtaining high quality RNA from paraffin sections of plant tissues by laser microdissection. Journal of Plant Research. 123 (6), 807-813 (2010).
  22. Schroeder, A., et al. The RIN: an RNA integrity number for assigning integrity values to RNA measurements. BMC Molecular Biology. 7 (1), 3 (2006).
  23. Ferreira, E. N., et al. Linear mRNA amplification approach for RNAseq from limited amount of RNA. Gene. 564 (2), 220-227 (2015).
  24. Schneider, J., et al. Systematic analysis of T7 RNA polymerase based in vitro linear RNA amplification for use in microarray experiments. BMC Genomics. 5 (1), 29 (2004).
  25. Shanker, S., et al. Evaluation of commercially available RNA amplification kits for RNA sequencing using very low input amounts of total RNA. Journal of Biomolecular Techniques. 26 (1), 4 (2015).
  26. Bhattacherjee, V., et al. Laser capture microdissection of fluorescently labeled embryonic cranial neural crest cells. Genesis. 39 (1), 58-64 (2004).
  27. Clément-Ziza, M., Munnich, A., Lyonnet, S., Jaubert, F., Besmond, C. Stabilization of RNA during laser capture microdissection by performing experiments under argon atmosphere or using ethanol as a solvent in staining solutions. RNA. 14 (12), 2698-2704 (2008).
  28. Blokhina, O., et al. Parenchymal Cells Contribute to Lignification of Tracheids in Developing Xylem of Norway Spruce. Plant Physiology. 181 (4), 1552-1572 (2019).
  29. Schad, M., Lipton, M. S., Giavalisco, P., Smith, R. D., Kehr, J. Evaluation of two-dimensional electrophoresis and liquid chromatography-tandem mass spectrometry for tissue-specific protein profiling of laser-microdissected plant samples. Electrophoresis. 26 (14), 2729-2738 (2005).
  30. Schad, M., Mungur, R., Fiehn, O., Kehr, J. Metabolic profiling of laser microdissected vascular bundles of Arabidopsis thaliana. Plant Methods. 1 (1), 2 (2005).
  31. Latrasse, D., et al. The quest for epigenetic regulation underlying unisexual flower development in Cucumis melo. Epigenetics & Chromatin. 10 (1), 22 (2017).
  32. Turco, G. M., et al. DNA methylation and gene expression regulation associated with vascularization in Sorghum bicolor. The New Phytologist. 214 (3), 1213-1229 (2017).
  33. Gomez, S. K., Harrison, M. J. Laser microdissection and its application to analyze gene expression in arbuscular mycorrhizal symbiosis. Pest Management Science: Formerly Pesticide Science. 65 (5), 504-511 (2009).
  34. Roux, B., et al. An integrated analysis of plant and bacterial gene expression in symbiotic root nodules using laser-capture microdissection coupled to RNA sequencing. The Plant Journal. 77 (6), 817-837 (2014).
  35. Tang, W., Coughlan, S., Crane, E., Beatty, M., Duvick, J. The application of laser microdissection to in planta gene expression profiling of the maize anthracnose stalk rot fungus Colletotrichum graminicola. Molecular Plant-Microbe Interactions. 19 (11), 1240-1250 (2006).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

162LCM

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены