Сегментирование роста эндотелиальных клеток в 6-луночных пластинах на орбитальном шейкере для механобиологических исследований

Резюме

Этот протокол описывает метод покрытия для ограничения роста эндотелиальных клеток определенной областью 6-луночной пластины для применения напряжения сдвига с использованием модели орбитального шейкера.

Аннотация

Напряжение сдвига, накладывало на артериальную стенку потоком крови, влияет на морфологию и функцию эндотелиальных клеток. Низкая величина, колебательные и разнонаправленные сдвиговые напряжения были постулированы для стимуляции проатеросклеротического фенотипа в эндотелиальных клетках, тогда как считается, что высокая величина и однонаправленный или одноосный сдвиг способствуют эндотелиальному гомеостазу. Эти гипотезы требуют дальнейшего изучения, но традиционные методы in vitro имеют ограничения и особенно плохо налагают разнонаправленные сдвиговые нагрузки на клетки.

Одним из методов, который получает все большее применение, является культивирования эндотелиальных клеток в стандартных многоскваженных пластинах на платформе орбитального шейкера; в этом простом, недорогом, высокопроизводительном и хроническом методе закручивающаяся среда производит различные узоры и величины сдвига, включая разнонаправленный сдвиг, в разных частях скважины. Однако он имеет существенное ограничение: клетки в одной области, подвергаясь воздействию одного типа потока, могут высвобождать медиаторы в среду, которые влияют на клетки в других частях скважины, подвергаясь воздействию различных потоков, тем самым искажая кажущуюся связь между потоком и фенотипом.

Здесь мы представляем простую и доступную модификацию метода, которая позволяет клеткам подвергаться воздействию только определенных характеристик напряжения сдвига. Посев клеток ограничивается определенной областью скважины путем покрытия интересующей области фибронектином с последующей пассивацией с использованием пассивационного раствора. Впоследствии пластины могут закручиваться на шейкере, что приводит к воздействию на клетки четко определенных профилей сдвига, таких как многонаправленный сдвиг низкой величины или одноосный сдвиг высокой величины, в зависимости от их местоположения. Как и прежде, использование стандартной пластиковой посуды для клеточных культур позволяет легко продолжить анализ клеток. Модификация уже позволила продемонстрировать растворимые медиаторы, высвобождаемые из эндотелия при определенных характеристиках сдвигового напряжения, которые влияют на клетки, расположенные в другом месте скважины.

Введение

Реакции сосудистых клеток на их механическую среду важны в нормальной функции кровеносных сосудов и в развитии заболевания^1. Механобиология эндотелиальных клеток (ЭК), которые выстилают внутреннюю поверхность всех кровеносных сосудов, была в центре внимания механобиологических исследований, потому что ЭК непосредственно испытывают напряжение сдвига, создаваемое кровотоком над ними. Различные фенотипические изменения, такие как воспалительные реакции, измененная жесткость и морфология, высвобождение вазоактивных веществ, а также локализация и экспрессия соединительных белков зависят от воздействия EC на сдвиговое напряжение^2,3,4. Сдвигозависимые эндотелиальные свойства могут также объяснять неоднородное развитие таких заболеваний, как атеросклероз^5,6,7.

Полезно изучать влияние сдвига на ЭК в культуре, где стрессы можно контролировать, а ЭК можно выделить из других типов клеток. Обычно используемые устройства in vitro для применения напряжения сдвига к ЭК включают параллельно пластинчатую проточную камеру и конусно-пластинчатый вискозиметр, но может быть применен только одноосный устойчивый, колебательный и пульсирующий поток^8,9. Хотя были разработаны модифицированные проточные камеры с конической или ветвящейся геометрией и микрофлюидные чипы, имитирующие стенотическую геометрию, их низкая пропускная способность и относительно короткая продолжительность культивирования, которая возможна, представляют собой проблему^{10, 11.}

Орбитальный шейкер (или закручивающийся колодец) метод исследования эндотелиальной механотрансдукции, при котором клетки выращиваются в стандартной пластичной посуде для клеточных культур, помещенной на платформу орбитального шейкера, привлекает все большее внимание, поскольку он способен хронически накладывать сложные, пространственно изменяющиеся паттерны напряжения сдвига на ЭК с высокой пропускной способностью (см. обзор Warboys et al.^12). Моделирование вычислительной гидродинамики (CFD) было использовано для характеристики пространственного и временного изменения напряжения сдвига в закрученной скважине. Закручивающееся движение культуральной среды, вызванное орбитальным движением шейкеровой платформы, на которой размещена плита, приводит к низкоразмерному многонаправленному потоку (LMMF, или мнимно проатерогенному потоку) в центре и одноосному потоку высокой величины (HMUF, или мнимому атеропротекторному потоку) на краю скважин 6-луночной пластины. Например, усредненное по времени напряжение сдвига стенки (TAWSS) составляет примерно 0,3 Па в центре и 0,7 Па на краю 6-луночной пластины, закрученной со скоростью 150 об/мин с радиусом орбиты 5 мм^13. Метод требует только коммерчески доступной пластиковой посуды и самого орбитального шейкера.

Существует, однако, недостаток метода (и других методов наложения потоков in vitro): ЭК высвобождают растворимые медиаторы и микрочастицы в зависимости отсдвига^{14, 15,16,} и этот секретом может влиять на ЭК в областях скважины, отличных от той, в которой они были высвобождаются, из-за перемешивания в закручивающейся среде. Это может маскировать фактическое влияние сдвигового стресса на фенотип EC. Например, Ghim et al. предположили, что это объясняет, по-видимому, идентичное влияние различных профилей сдвига на трансклеточный транспорт крупных частиц^17.

Здесь мы описываем метод содействия адгезии эндотелиальных клеток пупочных вен человека (HUVEC) в определенных областях 6-скважинной пластины с использованием фибронектинового покрытия при использовании Pluronic F-127 для пассивации поверхности и предотвращения роста в других местах. Метод устраняет ограничение, описанное выше, поскольку, сегментируя рост клеток, ЭК испытывают только один вид профиля сдвига и не подвержены влиянию секретомов из ЭК, подвергающихся воздействию других профилей в других местах скважины.

протокол

1. Изготовление приборов и подготовка реагентов

1. Изготовление модуля из нержавеющей стали
   1. Изготовить модуль из нержавеющей стали марки 316 с использованием фрезерного станка с ЧПУ в соответствии с предоставленным инженерным чертежом(рисунок 1).
2. 3D-печать полидиметилсилоксановой (PDMS) формы
   1. Подготовьте 3D-модель автоматизированного проектирования (CAD) пресс-формы PDMS с помощью SolidWorks в соответствии с предоставленным инженерным чертежом(рисунок 2).
   2. Экспортируйте модель CAD в STL-файл и импортируйте STL-файл в Cura 2.6.2.
   3. Нарежьте модель на слои со скоростью печати 50 мм/с и плотностью заполнения 60%.
   4. Экспортируйте файл в виде G-кода и загрузите его на 3D-принтер Ultimaker² для печати. Используйте полимолочную кислоту (PLA) в качестве печатного материала.
3. Литье ПДМС кольца
   1. Смешайте основание PDMS и отверждающий агент (оба из набора силиконовых эластомера) с соотношением 90,9% основания и 9,1% отверждающего агента.
   2. Вылейте примерно 2,6 мл хорошо смешанного раствора в 3D-печатную форму.
   3. Удалите пузырьки в вакуумной дегазировке.
   4. Отверждать его в течение 1 ч в печи с 80 °C.
   5. Дайте кольцу PDMS остыть до комнатной температуры, затем осторожно извлеките отвержденное кольцо PDMS из формы. Инженерный чертеж кольца PDMS показан на рисунке 3.
4. Подготовка 1% Pluronic F-127
   1. Взвесьте 5 г Pluronic F-127, налейте его в стеклянную бутылку, затем добавьте в стеклянную бутылку 100 мл стерильной воды. Это дает 5% раствор Pluronic F-127.
   2. Убедитесь, что весь порошок Pluronic F-127 погружен в воду, закройте крышку и автоклав, используя программу цикла жидкой стерилизации.
   3. После автоклава дайте раствору остыть до комнатной температуры перед использованием.
   4. Добавьте 10 мл 5% раствора Pluronic F-127 в 40 мл автоклавной стерильной воды, чтобы получить 1% раствор Pluronic F-127. Выполните разбавление в шкафу биобезопасности (BSC).
   5. Храните 1% и 5% Pluronic F-127 при комнатной температуре.
5. Приготовление 4% параформальдегида (PFA)
   1. Добавьте 800 мл фосфатно-буферного физиологического раствора (PBS) в стеклянный стакан и нагрейте его до 60 °C во время перемешивания (продолжайте перемешивать со ступени 1.5.1 до 1.5.5).
   2. Взвесьте 40 г порошка PFA и добавьте его в теплый раствор PBS.
      ВНИМАНИЕ: PFA опасен, выполните шаги 1.5.2 - 1.5.6 в вытяжном капоте.
   3. Добавьте 1 М гидроксида натрия (NaOH) медленно по каплям в раствор PFA до тех пор, пока растворы не очистятся.
   4. Отрегулируйте рН раствора PFA примерно до 7,4 с 1 M соляной кислоты (HCl).
   5. Дополнить раствор до 1 л с 1X PBS. Это дает 1 л 4% PFA.
   6. Фильтруйте раствор PFA с помощью фильтров 0,2 мкм для удаления любых частиц, аликвоты и замораживания в морозильной камере с -20 °C.
6. Приготовление 0,1% Тритон-Х
   1. Добавьте 50 мкл чистого Тритона-Х в 50 мл PBS, чтобы получить 0,1% раствор Тритон-Х.
7. Препарат 1% бытового сывороточного альбумина (BSA)
   1. Взвесьте 0,5 г BSA, налейте его в 50 мл центрифужную трубку, а затем добавьте 50 мл PBS в трубку.
   2. Дайте ему свернуться в течение 1 ч при комнатной температуре на валике раствориться.
   3. Хранить 1% BSA при 4 °C в течение двух недель.

2. Покрытие 6-скважинной плиты

1. Автоклавный модуль из нержавеющей стали, кольцо PDMS и пинцет перед использованием. Выполняйте все последующие процедуры в капюшоне BSC и соблюдайте асептические методы для обеспечения стерильности.
2. Поместите кольцо PDMS в 6-ти ямку с помощью пинцетка. Используйте внешний край кольца PDMS, чтобы выровнять кольцо PDMS концентрически с колодезкой.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Следует использовать только хорошо обработанные пластины, не являющиеся тканевыми культурами.
3. Поместите модуль из нержавеющей стали поверх кольца PDMS с помощью пинцета.
4. Вставьте кончики плоскогубцев внутреннего стопорного кольца в захватные отверстия стопорного кольца, сожмите держатель, чтобы уменьшить диаметр стопорного кольца. Вместите его в 6-лоток, плотно прижмите его к модулю из нержавеющей стали и отпустите плоскогубцы, чтобы закрепить кольцо PDMS в колодец.
5. Добавьте 1 мл фибронектина 5 мкг/мл в центр или край скважины (в зависимости от интересующей области) через открытие кольца PDMS и модуля из нержавеющей стали.
6. Закрутите пластину, чтобы убедиться, что раствор фибронектина покрывает всю интересуемую область.
7. Инкубировать в течение 30 мин при 37 °C в увлажненный инкубатор под 95% воздуха /5% CO_2.
8. Достаньте раствор фибронектина из колодца и дважды промыть ПБС. Полностью удалите PBS из колодца.
9. Извлеките из колодца стопорное кольцо, модуль из нержавеющей стали и кольцо PDMS.
10. Добавьте 1,5 мл 1% Pluronic F-127 в центр или край скважины (поверхность без покрытия) и инкубируют в течение 1 ч при комнатной температуре, чтобы пассивировать поверхность без покрытия.
11. Извлеките раствор Pluronic F-127 из колодца и трижды промойте PBS.
12. Используйте хорошо покрытый сразу или храните его при 4 °C в течение двух недель со слоем PBS в покрытом колодце.

3. Посев HUVEC

1. Используйте HUVECs ниже отрывка 5 в эксперименте.
2. Удалите всю культурную среду и промыть клетки один раз PBS.
3. Добавьте 3 мл 0,05% трипсина и инкубировать в течение 3 мин при 37 °C в увлажненный инкубатор под 95% воздуха / 5% CO_2. Осторожно постучите по колбе, чтобы выбить клетки.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Этот протокол был протестирован с использованием HUVECs, и концентрация трипсина и время его инкубации могут отличаться для других типов ЭК.
4. Переложите раствор в центрифужную трубку 15 мл и нейтрализуйте трипсин, используя 6 мл питательной среды (например, Lonza EGM-2) предварительно разогрешенной до 37 °C.
5. Центрифуга при 200 х г в течение 5 мин. Удалить нейтрализованный раствор трипсина и повторно суспендовать клетки 1 мл предварительной питательной среды.
6. Подсчитайте клетки с помощью гемоцитометра и посейте 180k клеток в покрытую 6-скважинную пластину в 1,5 мл предварительной питательной среды.
7. Встряхните пластину колодца сбоку, чтобы ячейки равномерно распределяли в колодец.
8. Оставьте его в увлажненный инкубатор при 37 °C под 95% воздуха / 5% CO₂ на ночь.
9. Удалите неприкрепленные клетки и питательную среду и замените 2 мл предварительной питательной среды.
   ПРИМЕЧАНИЕ: ожидается много неприсоединенных ячеек, плавающих в среде.

4. Применение напряжения сдвига с помощью орбитального шейкера

1. HUVECs должны достичь слияния после 3 дней роста. Заменить среду 1,9 мл предварительной питательной среды (для достижения высоты 2 мм).
2. Поместите пластину на платформу орбитального шейкера в увлажненный инкубатор под 95% воздуха/5% CO₂ и вращайте ее при 150 об/мин в течение 3 дней.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Протрите внешнюю поверхность орбитального шейкера, используя 70% этанола, прежде чем поместить его в инкубатор.
3. (Необязательно) После 2 дней сдвига цитокины могут быть добавлены в культуральная среда для исследования взаимодействия между цитокинами и стрессом сдвига. После лечения срежют клетки еще на один день. В этом исследовании для активации клеток использовался α TNF..
4. Выполняйте анализы после 3 дней применения напряжения сдвига.

5. Окрашивание и визуализация клеток

1. После 3 дней сдвига снимите пластину из инкубатора и дважды промыть клетки PBS.
2. Зафиксируйте клетки, добавив в колодец 1,5 мл 4% PFA и инкубируйте в течение 10 минут при комнатной температуре.
3. Извлеките 4% PFA из колодца и дважды промыть PBS.
4. Пермеабилизируют клетки, добавляя 0,1% Тритона-Х в скважину и инкубируют в течение 5 мин при комнатной температуре.
5. Извлекают из скважины 0,1% раствор Тритона-Х и добавляют в скважину 1,5 мл 1% BSA для блокировки. Инкубируют клетки с 1% BSA в течение 1 ч при комнатной температуре.
6. Разбавляют античеловеческое антитело к ZO-1 кролика в разведении 1:200 в 1% BSA. Добавьте 1,5 мл разбавленного антитела в колодец и инкубируют его с клетками в течение ночи при 4 °C.
7. После ночной инкубации удалите разбавленные антитела и трижды промыть клетки PBS.
8. Разбавлять alexa Fluor 488-меченое козье анти-кроликово-IgG вторичное антитело в разведении 1:300 в PBS. Добавьте в колодец 1,5 мл разбавленного вторичного антитела и инкубируют его с клетками в течение 1 ч при комнатной температуре.
9. Удалите разбавленные вторичные антитела и дважды промыть клетки PBS.
10. Разбавить DRAQ5 в разведении 1:1000 в PBS. Добавьте в колодец 1,5 мл разбавленного DRAQ5 и инкубируют его с клетками в течение 15 мин при комнатной температуре, чтобы окрасить ядра клеток.
11. Удалите разбавленный DRAQ5 и трижды промойте PBS.
12. Выполните сканирование плитки от края до центра колодца с помощью конфокального микроскопа.

6. Количественная оценка индекса формы и количества ячеек

1. Пост-обработка изображений с помощью MATLAB R2016a.
2. Прочитайте файл LIF с конфокального микроскопа в MATLAB и преобразуйте объединенное сканирование плитки в двоичное изображение, а затем порог изображения по площади и интенсивности, чтобы отличить ядра от фона.
3. Подразделяют сканирование двоичной плитки на радиальные сегменты размером 1 мм.
4. Подогнать эллипс к каждому отдельному ядру.
5. Подсчитайте количество эллипсов в каждом радиальном сегменте, чтобы получить номер ячейки.
6. Определите индекс формы = как SI = 4π x Площадь / Периметр². Вычисление индекса фигуры для каждого эллипса¹⁸.

Результаты

Адгезия HUVEC к областям плиты скважины, не покрытым фибронектином, была отменена пассивацией Pluronic F-127; рост был ограничен областью, покрытой фибронектином, даже после 72 ч культуры, с применением и без применения сдвигового напряжения(Рисунок 4А,

Обсуждение

Метод закрученной скважины способен генерировать сложные профили потока в одной скважине - низкоразмерный разнонаправленный поток (LMMF) в центре и одноосный поток высокой величины (HMUF) на краю скважины. Однако сдвиговые стресс-опосредованные выделения растворимого медиатора будут сме?...

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
Cell and Media
Endothelial Growth Medium (EGM-2)	Lonza	cc-3162
Human Umbilical Vein Endothelial Cells	NA	NA	Isolated from cords obtained from donors with uncomplicated labour at the Hammersmith Hospital
Reagents and Materials
Alexa Fuor 488-labelled goat anti-rabbit IgG	Thermofisher Scientific	A11008
Bovine Serum Albumin	Sigma-Aldrich	A9418-50G
Falcon 6 Well Clear Flat Bottom Not Treated	Scientific Laboratory Supplies Ltd	351146
Fibronectin from Bovine Plasma	Sigma-Aldrich	F1141-5MG
Paraformaldehyde	Sigma-Aldrich	158127-500G
Phosphate-Buffered Saline	Sigma-Aldrich	D8537-6X500ML
Pluronic F-127	Sigma-Aldrich	P2443
Recombinant Human TNF-a	Peprotech	300-01A
RS PRO 2.85 mm Black PLA 3D Printer Filament, 1 kg	RS	832-0264
Stainless Steel 316	Metal Supermarket	NA
Sylgard184 Silicone Elastomer kit	Farnell	101697
Triton X-100	Sigma-Aldrich	X100-100ML
Trypsin-EDTA solution	Sigma-Aldrich	T4049-100ML
Zonula Occludens-1 (ZO-1) antibody	Cell Signaling Technology	13663
DRAQ5 (5mM)	Bio Status	DR50200
Equipments
Grant Orbital Shaker PSU-10i	Scientific Laboratory Supplies Ltd	SHA7930
Leica TCS SP5 Confocal Microscope	Leica	NA
Retaining Ring Pliers	Misumi	RTWP32-58
Retaining Rings/Internal/C-Type	Misumi	RTWS35
Ultimaker 2+3-D printer	Ultimaker	NA
Softwares
Cura 2.6.2	Ultimaker	NA
MATLAB	The MathWorks	NA
Solidworks 2016	Dassault Systemes	NA