Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Method Article
В настоящей работе описана модифицированная методика гетеротопической васкуляризированной трансплантации сердца с обновленной асептической техникой, анальгезией и анестезией.
Разработка экспериментальных моделей трансплантации сердца у животных способствовала многим достижениям в области иммунологии и трансплантации солидных органов. В то время как гетеротопическая васкуляризированная модель трансплантации сердца мышей первоначально использовалась в исследованиях отторжения трансплантата с использованием комбинаций несоответствующих инбредных линий мышей, доступ к генетически модифицированным штаммам и терапевтическим методам может обеспечить новые мощные доклинические идеи. По сути, хирургическая методология этого метода не изменилась с момента его разработки, особенно в отношении таких важных факторов, как асептическая техника, анестезия и анальгезия, которые оказывают существенное влияние на послеоперационную заболеваемость и смертность. Кроме того, ожидается, что улучшения в периоперационном ведении обеспечат улучшение как благополучия животных, так и результатов экспериментов. В этой статье сообщается о протоколе, разработанном в сотрудничестве с экспертом в области ветеринарной анестезии, и описывается хирургическая техника с акцентом на периоперационное ведение. Кроме того, мы обсудим последствия этих уточнений и предоставим подробную информацию об устранении неполадок, связанных с критическими хирургическими шагами для этой процедуры.
Мы во многом обязаны нашим пониманием иммунологии и трансплантации исследованиям, основанным на экспериментальных моделях трансплантации солидных органов с использованием животных. С момента первого описания васкуляризированной трансплантации сердца у млекопитающих1 такие модели внесли свой вклад в знания в самых разных областях, включая терапевтическое применение гипотермии2, преимущества использования специализированных швов3 и методы тотальной гомотрансплантации легких и сердца4. Разработка моделей трансплантации сердца на крысах 5,6 предоставила более широкий простор для иммунологических экспериментов из-за наличия различных линий разведения. Значительно более широкий диапазон доступных инбредных и мутантных линий мышей привел Corry et al.7 к разработке метода мышиной гетеротопической трансплантации сердца из-за значительных преимуществ, которые этот диапазон дает исследованиям в области трансплантации. Эта модель широко использовалась и способствовала лучшему пониманию отторжения трансплантата8 и терапии9. Однако с момента своего первого описания методика осталась в основном неизменной, за исключением некоторых незначительных технических деталей, таких как корректировка положения анастомотических участков10,11.
С момента интеграции техники Corry et al.7 в наши эксперименты мы определили перспективные области для улучшения протокола, а именно асептическую технику, анестезию и анальгезию. Ожидалось, что улучшения в этих областях окажут положительное влияние на результаты экспериментов и улучшат благополучие животных. Ранее это было показано, когда асептическая техника используется в операциях на мелких животных, поскольку она помогает снизить послеоперационные инфекции12, что не только влияет на заболеваемость и смертность, но также может поставить под угрозу эксперименты, предназначенные для оценки иммунного ответа после операции по трансплантации. С точки зрения анестезии и обезболивания, использование усовершенствованного режима помогает снизить затраты для животных и сбалансировать этические аргументы этой хирургической модели, смягчая боль и страдания подопытных. Кроме того, соответствующая анестезия и анальгезия ограничивают реакцию на стресс, связанную с болью, улучшая качество послеоперационного восстановления и, в конечном итоге, повышая вероятность успеха хирургического вмешательства13.
С целью улучшения как благополучия животных, так и результатов экспериментов был разработан протокол с корректировками для устранения этих пробелов. Этот протокол был адаптирован из протокола, первоначально описанного Corry et al.7 , с консультацией ветеринарного анестезиолога и с должным учетом как эффектов, так и продолжительности эффектов фармакологических вмешательств, используемых в режиме анестезии и анальгетика. Подход был основан на принципах сбалансированной анестезии и мультимодальной анальгезии для обеспечения надлежащего периоперационного ухода14. В дополнение к применению асептической техники упреждающе вводили опиоидный бупренорфин и местный анестетик бупивакаин. Общий наркоз проводили с использованием ингаляционного анестетика изофлурана.
Это исследование было проведено в соответствии с Кодексом практики по уходу за животными и их использованию в научных целях15 и одобрено в соответствии с Протоколами этики животных RA/3/100/1568 и AE173 (Комитет по этике животных Университета Западной Австралии и Комитет по этике животных Института медицинских исследований Гарри Перкинса соответственно). Подробную информацию обо всех материалах, инструментах и животных, используемых в этом протоколе, см. в Таблице материалов .
1. Подготовка животного к операции
ПРИМЕЧАНИЕ: Персонал занимается либо выполнением операции, либо наблюдением за анестезией на протяжении всей процедуры.
2. Донорская хирургия
ПРИМЕЧАНИЕ: См. Дополнительный рисунок S1 для ключевых аспектов донорской хирургии.
3. Операция реципиента
4. Послеоперационный уход
Чтобы определить эффективность хирургической техники в обеспечении хороших результатов заживления ран и выздоровления мышей, ранние эксперименты в лаборатории определили характеристики выживания ряда сердечных трансплантатов с различной иммуногенностью для реципиента. К ним отно?...
Мышиная ортотопическая модель трансплантации сердца представляет собой надежную доклиническую модель, используемую в основном для исследования влияния несоответствия MHC на уровень и характер иммунологического отторжения и, в последнее время, влияния трансплантации на сохранение им...
У авторов нет конфликтов интересов, которые необходимо раскрывать.
Авторы хотели бы отметить превосходные усилия персонала по уходу за животными Университета Западной Австралии и Института медицинских исследований Гарри Перкинса, чья самоотверженность и опыт способствовали осуществимости и успеху этих операций.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
2030 Rycroft irrigating cannula 30 G | McFarlane | 56005HU | |
Braided surgical silk 7-0 | |||
Bulldog clamp curved - 35 mm | Roboz | RS-7441-5 | |
Bupivacaine 0.25% | |||
Buprenorphine | |||
Castroviejo needle holder catch curved - 145 mm | Haag-Streit | 11.62.15 | |
Chlorhexidine 5% solution | Ebos | JJ61371 | |
Cotton-tipped applicator - 7.5 cm | Dove | SN109510 | |
Ethanol 70% solution | Ebos | WH130192EE | |
Gauze 5 x 5 cm white | Aero | AGS50 | |
Gelfoam 80 mm x 125 mm | Pfizer | 7481D | |
Hair clipper | Wahl | 9860L | |
Heparin 1,000 IU in 1 mL | |||
Iris SuperCut scissors straight - 11.5 cm | Inka Surgical | 11550.11 | |
Isoflurane vaporiser | Darvall | 9176 | |
Micro bulldog clamp - 3.7 cm | Greman | 14119-G | |
Micro scissors curved 105 mm | |||
Micropore plain paper surgical tape - 2.5 cm wide | Ebos | 7810L | |
Microsurgical scissors - curved tip | |||
Monofilament polyprolene suture - 5/0 | Surgipro | P-205-X | |
Myweigh i101 Precision Scale 100 g x 0.005 g | Myweigh | Kit00053 | |
Needle - 30 G x 0.5 inch | BD | BD304000 | |
Needleholder 15 cm curved "super fine" | Surgical Specialists | ST-B-15-8.2 | |
Nylene 10/0 x 15 cm on 3.8 mm 3/8 circle round bodied taper (diam 0.07mm) CV300 | |||
Round body suture forceps curved 0.3 mm 120 mm | B. Braun | FD281R | |
Round body suture forceps straight 0.3 mm 120 mm | B. Braun | FD280R | |
Round handled vannas spring scissors-str/12.5 cm | 15400-12 | ||
Spring scissors-Cvd Sm blades | 15001-08 | ||
Stevens scissors blunt straight 110 mm | |||
Surgical backboard | Rigid laminated cardboard. 15 x 15 cm | ||
Surgical drapes | Cut into two sizes. 25 cm x 25 cm, and 25 cm x 40 cm | ||
Surgical microscope | |||
Syringe - 1 mL | BD | 592696 | |
Syringe - 3 mL | Leica | M651 | |
Toothed forceps | BD | 309657 | |
University of Wisconsin Solution | |||
Warming pad | Far infrared warming pad 20 x 25 cm | ||
Westcott spring scissors | |||
Yasargil clip applier bayonet | Aesculap | FE582K | |
Yasargil titanium clip perm 6.6 mm | Aesculap | A19FT222T | |
Mouse usage | |||
Strain/SEX/Weight | Donor | Recipent | |
BALB/c, female, 19-23 g | 7 | 21 | |
C57BL/6, female, 17-20 g | 7 | ||
CD45.1 BALB/c, female, 17-21 g | 5 |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены