È necessario avere un abbonamento a JoVE per visualizzare questo. Accedi o inizia la tua prova gratuita.
Method Article
Misure di applicazione e diretto di forze sui neuroni nel range 2000-1000 Microdyne sono realizzati con la massima precisione utilizzando aghi di vetro calibrato. Questa metodologia può essere utilizzato per controllare e misurare diversi aspetti dello sviluppo assonale, incluso l'avvio assonale, tensione assonale, la velocità di allungamento assonale e vettori di forza.
Manipolazione delle cellule e l'estensione degli assoni neuronali può essere realizzato con vetro calibrato micro-fibre in grado di misurare ed applicare le forze in campo μdyne 1,2 1-10. Misure di forza sono ottenute attraverso l'osservazione del Hookean flessione degli aghi di vetro, che sono tarati con un metodo diretto ed empirica 3. Requisiti attrezzature e le procedure per la fabbricazione, la calibrazione, il trattamento, e utilizzando gli aghi sulle cellule sono descritti. La forza di regimi di tipi di cellule precedentemente utilizzati e diversi a cui queste tecniche sono state applicate dimostrano la flessibilità della metodologia e sono dati come esempi per la ricerca futura 4-6. I vantaggi tecnici sono il continuo 'visualizzazione' delle forze prodotte dalle manipolazioni e la possibilità di intervenire direttamente in una varietà di eventi cellulari. Questi includono la stimolazione diretta e regolazione della crescita assonale e retrazione 7; così come distacco e di misure meccaniche su qualsiasi tipo di cellule in coltura 8.
1. Rendere gli aghi di vetro.
2. Fare e calibrare un ago filo
3. Calibrare gli aghi di vetro intermedio
4. Calibrare l'ago lavorazione del vetro usato per manipolare i neuroni
5. Gli aghi sono pretrattati con fattori di adesione
6. Attrezzatura installata
7. Allineando gli aghi
8. Connessione a cellule
9. Estensione di un processo assone o cella
10. Analisi dei dati
11. Rappresentante dei risultati:
La forza-calibrato aghi di vetro possono essere facilmente applicate a qualsiasi regione del cellulare, di solito il cono di crescita, come visualizzato direttamente al microscopio ottico. Con un appropriato trattamento dell'ago per ottenere l'attaccamento cellulare, la tensione meccanica può essere sperimentalmente applicato alla regione cellulari di interesse, o le forze prodotte da quella regione può essere misurata. Un rappresentante esperimento neuronale di traino è illustrato nella figura 1, dove l'assone trainato è stata raddoppiata in lunghezza in due ore.
Figura 1. Colto dorsale pollo radice cellule gangliari con l'orientamento preferenziale per il traino viene scelto. La distanza di riferimento iniziale pari a zero tra gli aghi viene registrata prima che la manipolazione sperimentale inizia (A). Il 'push up' manovra viene applicata al cono di crescita (B). Traino inizia con carico di forza maggiore, come indicato dalla separazione degli aghi (C). Traino ha esteso l'assone, gli allineamenti 'orizzontale' e perpendicolare dell'assone rimorchiati e aghi di lavoro hanno facilitato le misurazioni buona forza (D). Bar = 40 micron. Calibrazione ago = 6,9 μdyne / micron.
Tecniche da applicare e misurare le forze di cellulari hanno una lunga storia 9. Il nostro metodo è stato originariamente motivato dal lavoro di Dennis Bray, che ha usato gli aghi di vetro simile al nostro a 'trainare' i neuroni a velocità costante utilizzando un dispositivo motorizzato idraulico 10. Ci sono molti mezzi alternativi di applicare forze di cellule che comprendono: motori passo-passo 11, perline magnetico da 12, travi microfabbricazione 13 e f...
Noi riconosciamo con gratitudine gli importanti contributi del Dr. Robert E. Buxbaum nello sviluppo di questa metodologia.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
R-6 cap. Tube | Drummond Scientific | 9-000-3111 | R-6 glass OD 0.9mm, ID 0.6 mm, 8" |
BB-CH puller | Mecanex S.A., Geneva, Switzerland | BB-CH puller | Use Mode 4 Alt by CP=100, PP=10, SP1=1000, SP2=1000 |
0.001" Chromel wire | Omega Engineering, Inc. | SPCH-001-50 | unsheathed, themocouple wire, 50ft spool now called Chromega |
0.003" Constatan wire | Omega Engineering, Inc. | SPCI-003-50 | unsheathed, themocouple wire, 50 ft spool |
fine forceps | Fine Science Tools | 91150-20 | Dumont Inox #5 |
universal microscope boom stand | Nikon Instruments | 76135 or 90430 | most brands or types of boom stand will work for this use |
mechanical micromanipulator | Narishige International | M-152 | three-axis direct-drive coarse micromanipulator |
hydraulic micromanipulator | Narishige International | MO-203 | now available as MMO-203, three movable axis type |
needle holder | Leica Microsystems | 11520145 | set of 3 |
single instrument holder | Leica Microsystems | 11520142 | |
double instrument holder | Leica Microsystems | 11520143 | |
mechanical micromanipulator | Leica Microsystems | 39430001 | post mount,1 prob holder, RH Model 430001 |
joystick mech. micromanipulator | Leica Microsystems | 11520137 | |
Leica DM IRB | Leica Microsystems | inverted microscope | |
Vibraplane isolation table | Kinetic Systems | 1200 series | ours is model 1201-02-12 |
Ringcubator | Home made (see reference 19) | reference 19, requires updated controller listed below | |
programable temperature controller | Instrumart.com | Fuji Electric PXR3 | replaces the retired PXV3 temperature controller |
Nikon Diaphot TMD | Nikon Instruments | inverted microscope, circa 1980 | |
Nikon SMZ-10 binocular dissecting | Nikon Instruments | other dissecting microscopes will work |
Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE
Richiedi AutorizzazioneThis article has been published
Video Coming Soon