אפיון תכונות מכניות של דופן התא הראשוני באיברים חיים בצמחים באמצעות מיקרוסקופיה של כוח אטומי

Summary

מחקרים על ביומכניקה של דופן התא חיוניים להבנת גדילת צמחים ומורפוגנזה. הפרוטוקול הבא מוצע לחקור דפנות תאים ראשוניות דקות ברקמות הפנימיות של איברים צמחיים צעירים באמצעות מיקרוסקופיה של כוח אטומי.

Abstract

התכונות המכניות של דפנות התא הראשוניות קובעות את הכיוון והקצב של צמיחת תאי הצמח, ולכן את גודלו וצורתו העתידיים של הצמח. טכניקות מתוחכמות רבות פותחו למדידת תכונות אלה; עם זאת, מיקרוסקופיה של כוח אטומי (AFM) נותרה הנוחה ביותר לחקר גמישות דופן התא ברמה התאית. אחת המגבלות החשובות ביותר של טכניקה זו הייתה שניתן לחקור רק תאים חיים שטחיים או מבודדים. כאן מוצג השימוש במיקרוסקופיה של כוח אטומי כדי לחקור את התכונות המכניות של דפנות התאים הראשוניות השייכות לרקמות הפנימיות של גוף הצמח. פרוטוקול זה מתאר מדידות של מודולוס דפנות התאים של יאנג לכאורה בשורשים, אך ניתן ליישם את השיטה גם על איברים צמחיים אחרים. המדידות מבוצעות על מקטעים שמקורם ברטט של חומר צמחי בתא נוזלי, מה שמאפשר (1) להימנע משימוש בתמיסות פלסמוליזה או הספגת דגימה בשעווה או בשרף, (2) להפוך את הניסויים למהירים, ו-(3) למנוע התייבשות של הדגימה. ניתן לחקור הן את דפנות התאים האנטי-קלינליים והן את דפנות התאים הפריקלינליים, בהתאם לאופן שבו נותחה הדגימה. הבדלים בתכונות המכניות של רקמות שונות ניתן לחקור בסעיף אחד. הפרוטוקול מתאר את עקרונות תכנון המחקר, בעיות בהכנת דגימות ומדידות, וכן את השיטה לבחירת עקומות דפורמציה של כוח כדי למנוע את השפעת הטופוגרפיה על הערכים המתקבלים של מודולוס אלסטי. השיטה אינה מוגבלת על ידי גודל המדגם אלא רגישה לגודל התא (כלומר, תאים עם לומן גדול קשים לבדיקה).

Introduction

התכונות המכניות של דופן התא הצמחי קובעות את צורת התא ואת יכולתו לגדול. לדוגמה, הקצה הגדל של צינור האבקה רך יותר מהחלקים שאינם גדלים של אותו צינור¹. להיווצרות הפרימורדיה ב-Arabidopsis meristem קדמה ירידה מקומית בנוקשות דופן התא באתר של הפרימורדיום ^2,3 העתידי. דפנות התאים של ערבידופסיס היפוקוטיל, המקבילות לציר הצמיחה העיקרי וצומחות מהר יותר, רכות יותר מאלו הניצבות לציר זה וצומחות לאט יותר ^4,5. בשורש התירס, מעבר התאים מחלוקה להתארכות לווה בירידה במודולי האלסטי בכל רקמות השורש. המודולי נשאר נמוך באזור ההתארכות ועלה באזור ההתארכות המאוחרת⁶.

למרות הזמינות של שיטות שונות, המערכים הגדולים של מידע ביוכימי וגנטי על ביולוגיה של דופן התא המתקבלים מדי שנה מושווים לעתים רחוקות עם התכונות המכניות של קירות התא. לדוגמה, מוטציות בגנים הקשורים לדופן התא שינו לעתים קרובות את הגדילה וההתפתחות ^4,7,8, אך הן מתוארות רק לעתים רחוקות במונחים של ביומכניקה. אחת הסיבות לכך היא הקושי לבצע מדידות ברמה התאית והתת-תאית. מיקרוסקופיית כוח אטומי (AFM) היא כיום הגישה העיקרית לניתוחים כאלה⁹.

בשנים האחרונות בוצעו מחקרים רבים מבוססי AFM על ביומכניקה של דופן התא הצמחי. התכונות המכניות של דפנות התאים של הרקמות החיצוניות של Arabidopsis 2,3,4,5,10,11 ובצל 12, כמו גם של תאים בתרבית^13,14,15, נחקרו. עם זאת, לתאים השטחיים של צמח עשויים להיות דפנות תאים שתכונותיהם המכניות שונות מאלו של הרקמות הפנימיות⁶. בנוסף, תאי הצמח מופעלים בלחץ על ידי טורגור, מה שהופך אותם לנוקשים יותר. כדי להיפטר מהשפעת לחץ הטורגור, החוקרים צריכים להשתמש בתמיסות פלסמוליזינג 2,3,4,5,10,11 או לפרק את הערכים המתקבלים לתרומות טורגור ודופן התא ¹². הגישה הראשונה מובילה להתייבשות דגימה ומשנה את עובי ותכונות דופן התא¹⁶, ואילו הגישה השנייה דורשת מדידות נוספות ומתמטיקה מורכבת, וחלה רק על תאים בעלי צורה פשוטה יחסית¹². ניתן להעריך את תכונות דופן התא של רקמות פנימיות על cryosections¹⁷ או חלקים של חומר צמחי ספוג שרף⁸. עם זאת, שתי השיטות כרוכות בהתייבשות ו/או הספגה של דגימות, מה שמוביל בהכרח לשינויים במאפיינים. קשה להתייחס לתכונות של תאים מבודדים או מתורבתים לפיזיולוגיה של הצמח כולו. גם טיפוח וגם בידוד של תאי צמחים יכולים להשפיע על התכונות המכניות של דפנות התאים שלהם.

השיטה המוצגת כאן משלימה את הגישות הנ"ל. באמצעותו ניתן לבחון את דפנות התאים הראשוניים של כל רקמה ובכל שלב של התפתחות הצמח. תצפיות חתך ו-AFM בוצעו בנוזל המונע התייבשות דגימה. בעיית הטורגור נפתרה כאשר התאים נחתכים. הפרוטוקול מתאר עבודה עם שורשי תירס ושיפון, אך ניתן לבחון כל דגימה אחרת אם היא מתאימה לחיתוך ויברטום.

מחקרי ה-AFM המתוארים כאן בוצעו בטכניקת כוח-נפח. מכשירים שונים משתמשים בשמות שונים לשיטה זו. עם זאת, העיקרון הבסיסי זהה; מפת נפח כוח של הדגימה מתקבלת על ידי תנועה סינוסואידלית או משולשת של הקנטילבר (או הדגימה) כדי להשיג כוח טעינה מסוים בכל נקודה מנותחת, תוך רישום סטיית הקנטילבר¹⁸. התוצאה משלבת תמונה טופוגרפית של פני השטח ומערך עקומות מרחק הכוח. כל עקומה משמשת לחישוב העיוות, הנוקשות, המודולוס, ההידבקות ופיזור האנרגיה של יאנג בנקודה מסוימת. נתונים דומים ניתן לקבל על ידי ספקטרוסקופיית כוח נקודה אחר נקודה לאחר סריקה במצב מגע¹⁹, אם כי זה יותר זמן רב.

Protocol

1. הכנת דגימות למדידות AFM

1. חומר צמחי: לעקר את זרעי התירס (Zea mays L.) והשיפון (Secale cereale L.) עם תמיסת NaOCl של 0.35% למשך 10 דקות, לשטוף פי 3 במים מזוקקים, ולאחר מכן לגדול באופן הידרופוני בחושך בטמפרטורה של 27 מעלות צלזיוס למשך 4 ימים ויומיים, בהתאמה. שורשים ראשוניים שימשו לניסוי.
2. הכנת תמיסות ודוגמאות לחיתוך ויברטום
   1. הכינו תמיסת אגרוז להטמעת שורשים על ידי המסת 3% (w/w) נקודת התכה נמוכה של אגרוז במים באמצעות תנור מיקרוגל.
      הערה: כל הניסויים בוצעו במים. אם נדרש חיץ או כל סוג אחר של מדיום למחקר, עדיף להשתמש באותו מדיום להכנת אגרוז, במהלך החתך, ובתא הנוזלי של ה- AFM כדי למנוע פגיעה בדגימה.
   2. יוצקים שכבה של 4 מ"מ של אגרוז 3% מומס בתחתית צלחת פטרי (קוטר = 35 מ"מ), ומניחים לה להתקרר מעט כדי למנוע נזק תרמי לדגימה.
   3. מניחים שלוש או ארבע חתיכות קטנות (באורך של כ-5 מ"מ) של איבר הצמח הנחקר אופקית על האגרוז.
      הערה: הדוגמאות צריכות להיות שקועות למחצה אך לא שקועות בשכבת האגרוז. אם הדגימה אינה שקועה, היא עלולה לפרוץ מתוך האגרוז במהלך חיתוך הוויברטום. אם הדגימה שוקעת לתחתית, היא תהיה קרובה מדי לקצה הקטע ותהפוך ללא נוחה לצעדים נוספים.
   4. כאשר סרט דק ומוצק למחצה מופיע על גבי השכבה הראשונה של אגרוז (30-60 שניות), יוצקים בזהירות שכבה שנייה על גבי.
      הערה: השכבה התחתונה של אגרוז לא אמורה להתמצק לחלוטין. אחרת, שתי השכבות עשויות להיפרד זו מזו במהלך עבודה נוספת.
   5. לאחר שהאגרוז מתמצק לחלוטין, חותכים את הבלוק המכיל את הדגימה. עצבו את הבלוק לפירמידה חתוכה משושה כדי להבטיח את יציבותו במהלך חתכים נוספים (איור 1A).
      הערה: ניתן לכוון את הדגימה אנכית או אופקית בתוך בלוק זה, בהתאם לסוג המקטע הנדרש. בעת הכנת הבלוק, להשאיר 2-3 מ"מ של agarose סביב הדגימה. במקרה זה, מקטע המדגם יישמר על ידי שכבה של 3% אגרוז, מה שיקל על אימוביליזציה נוספת שלו (איור 1B).
3. חיתוך הדגימה עם הוויברטום
   1. הדביקו את הבלוק לשלב הוויברטום עם דבק ציאנואקרילט. מניחים את הבמה בוויברטום כך שאחת מפינות הפירמידה פונה ללהב הוויברטום. יוצקים מים לאמבטיית הוויברטום.
   2. הגדר את פרמטרי החתך (עובי מקטע, מהירות להב ותדירות רטט), וחתוך את הדגימה.
      הערה: השתמש בעובי המקטע שבין 200 ל- 400 מיקרומטר. קטע דק מדי יכול להציג טעויות בהערכת תכונות מכניות, בעוד שקטע עבה מדי מועד לשבירה. מהירות להב של 1.3 מ"מ·^s-1 ותדר תנודה של 90 הרץ שימשו לשורשי שיפון ותירס.
   3. בעזרת מברשת עדינה, הזיזו את החלק מאמבט המים על מגלשת זכוכית, והניחו טיפת מים על החלק כדי למנוע את התייבשותו. בדוק את איכות הקטע תחת מיקרוסקופ אור.
      הערה: לא ניתן להשתמש במקטעים אלכסוניים למדידת מודולוס האלסטיות. דפנות התא חייבות להיות בניצב למישור הקטע, אחרת הן עלולות להתכופף או להתכופף מתחת לקצה ה-AFM.
4. שיתוק המקטע למדידות AFM (איור 1B)
   1. יוצקים שכבה של אגרוז מותך 1% (w/w) (~1 מ"ל) על תחתית מכסה צלחת פטרי באמצעות פיפטה.
      הערה: ודא שדפנות מכסה צלחת פטרי אינן מונעות מהקצה להתקרב לדגימה. שכבת agarose צריך להיות 1 מ"מ עובי צריך לכסות את כל החלק התחתון של הכובע.
   2. לאחר שהתמצקות ה-1% אגרוז, הסירו עודפי מים מהחלק על ידי הבאת נייר סינון לקצהו.
      הערה: אין לגעת בחלק הצמח עם הנייר כדי למנוע נזק וייבוש מלא של הדגימה.
   3. העבירו בזהירות את החלק מהשקופית למרכז מכסה צלחת פטרי באמצעות מברשת. באמצעות פיפטה של 20 μL, הוסיפו בזהירות 1% אגרוז מסביב למקטע (איור 1B).
      הערה: האגרוז של 1% לא אמור לעלות על הדגימה עצמה. זה צריך רק לכסות את הקצוות של שכבת 3% agarose ששומרת על דגימת הצמח. האגרוז 1% צריך ליצור קנולים קטנים בשולי שכבת אגרוז זו של 3%. קנולים גדולים עשויים למנוע מהקנטילבר להתקרב לדגימה.
   4. שפכו את המים או תמיסה אחרת שתשמש ל- AFM לתוך מכסה צלחת פטרי עם החלק המשותק.

2. הכנה וכיול AFM

הערה: שיטת כוח-נפח של AFM יוצרת מערך פתור מרחבית של עקומות כוח-מרחק המתקבלות בכל נקודה באזור שנחקר. השג את כל הפרמטרים עבור מצב כוח-נפח (קשיחות, IOS וכו ') במצב מגע. נהלים דומים עבור מכשירים מיצרנים אחרים תוארו בעבר^10,20.

1. בחר את סוג הקנטילבר המתאים.
   הערה: הנוקשות הקנטילית חייבת להיות דומה לנוקשות הדגימה²¹. קנטילבר שהוא הרבה יותר נוקשה מהדגימה לא יסיט הרבה, בעוד שקנטילבר שהוא רך מדי לא יעוות את הדגימה מספיק. תדר תהודה טיפוסי אמור להספיק כדי להניף את התדר בנוזל (כלומר, להיות לפחות כמה עשרות קילוהרץ). שטח המגע צריך להיות קטן בהשוואה לגודל דופן התא, שכן הדגימה הנחקרת בחישובי המודולוס של יאנג מניחה שהיא חצי שטח אינסופי. הקנטילברים הבאים שימשו לשורשי שיפון ותירס: קנטילברים חדים עם תדר תהודה אופייני של 60 קילוהרץ, קבוע קפיץ ממוצע של 1.5 N·^m-1, ורדיוס שיא של 10 ננומטר, או קנטילים כדוריים עם תדר תהודה טיפוסי של 75 קילוהרץ, קבוע קפיץ ממוצע של 2.8 N·^m-1, ורדיוס שיא של 150 ננומטר.
2. הפעל את התקן ה-AFM ואת התוכנה המשויכת אליו (Table of Materials). הרכיבו את המכל על מחזיק הקצה של התא הנוזלי. הניחו טיפת נוזל על הקצה כדי למנוע היווצרות בועות אוויר על הקצה בזמן טבילתו בנוזל.
   הערה: במקרה של היווצרות בועות, ניתן להסיר את הנוזל עם מגבון מדויק, ולאחר מכן ניתן להניח טיפה חדשה.
3. הרכב את מחזיק הקצה על ראש הסריקה.
4. הכניסו דגימה קשה (מגלשת זכוכית טרייה) לתוך פקק צלחת פטרי. יוצקים לתוכו את הנוזל, ומוודאים שהוא מכסה את השקופית. מניחים את ראש הסריקה על הבמה ומרימים את הדגימה כך שהנוזל יכסה את הקנטילבר.
5. בחר בכרטיסיה ראשים בתפריט הנפתח כלים . ודא שראש הסריקה של תא הנוזל נבחר.
6. לחץ על כפתור הכוונה כדי לפתוח את חלון מכוון לייזר . לחץ על מצלמה כפתור כדי לפתוח את חלון מיקרוסקופ אופטי . מקם את הלייזר בקצה התלת-מנוף, באמצעות הברגים בראש ה-AFM ובחלון המיקרוסקופ האופטי להתמצאות.
7. בחר את מצב SemiContact מהתפריט הנפתח בחלון הראשי של התוכנית.
8. פתחו את הכרטיסייה ' תהודה ' ובחרו את סוג התהודה שבו נעשה שימוש בתפריט ' בדיקות' . לחץ על כפתור אוטומטי כדי לקבוע את תדירות התהודה.
   הערה: אם המתקן שבו נעשה שימוש אינו מופיע ברשימה, פתח את Tools > Probe Passport. צור קובץ חדש, הזן את הפרמטרים cantilever ושמור אותו. לאחר מכן בחר אותו בתפריט הנפתח Probes .
9. בחר את מצב איש קשר מהתפריט הנפתח בחלון הראשי של התוכנית.
10. לחץ על כפתור N_Force Cal כדי לפתוח את חלון כיול הקנטילבר. בחר את הקנטילבר שבו נעשה שימוש ולחץ על לחצן ניקוי , ולאחר מכן את הלחצן Spect Meas כדי לקבוע את קבוע הקפיץ של הקנטילבר באמצעות הליך הכוונון התרמי. סגור את החלון.
11. הגדר את SetPoint ל- 1 nA. פתח את הכרטיסייה גישה ולחץ על הנחיתה כפתור כדי לגשת לדוגמה.
12. פתח את הכרטיסיה סריקה . הגדר את קצב הסריקה ל- 0.5 הרץ. לחץ על לחצן שטח והגדר את גודל הסריקה ל- 10 μm x 10 μm ואת נקודת הסריקה ל- 256 x 256. לחץ על כפתור ההפעלה וסרוק כ -20 שורות כדי לבדוק שאין זיהום על הזכוכית. לחץ על תפסיק כפתור לסיום הסריקה מבלי לאבד נתונים.
13. פתחו את הכרטיסיה ' עקומות' . הגדר פרמטרים לנסיגה וגישה ל -500 ננומטר ו -100 ננומטר, בהתאמה.
14. בחר את הסריקה האחרונה בתפריט הנפתח בחר מסגרת כדי לצפות במשטח.
15. מצא אזור נקי על הזכוכית וציין את הנקודה שבה יש לקחת את עקומת עיוות הכוח, ולחץ על כפתור ההפעלה כדי לקבל את העקומה. הקלט שלוש עד חמש עקומות כוח במקומות שונים בסריקה.
16. לחץ על הלחצן נתונים כדי לפתוח את חלון הניתוח ולבחור את המסגרת עם עקומת עיוות הכוח.
17. לחץ על הלחצן Pair Markers וציין את החלק הליניארי של עקומת הנסיגה כדי לחשב את היחס בין אות ה- DFL לתזוזה, שהוא רגישות אופטית הפוכה (IOS, nA ^nm-1) או רגישות סטייה.
18. חזור על שלב 2.17 עבור כל העקומות שנרשמו ורשום את כל הערכים המחושבים של יחס אות DFL לתזוזה. הם צריכים להיות זהים.
19. סגור את חלון הניתוח, לחץ על הכרטיסייה גישה ולאחר מכן על הלחצן הסר כדי לסגת את הבדיקה מהמדגם.

3. איסוף נתונים

1. הדרך את הדגימה מתחת לתעלת AFM באמצעות המיקרוסקופ האופטי. לחץ על הכרטיסייה גישה ולאחר מכן על הנחיתה כפתור כדי לגשת לדוגמה במצב איש קשר עם SetPoint של 1 nA.
2. לחץ על הכרטיסייה סריקה ולאחר מכן על הלחצן אזור . בחר את גודל השטח של 70 מיקרומטר x 70 מיקרומטר לסריקה.
3. לחץ על ה- Move Probe כפתור ובדוק את כל אזור הסריקה על ידי הזזת הסורק מעליו. בהתבסס על מידת הבליטה של הסורק, מצא את הנקודה הגבוהה ביותר.
4. פתח את הכרטיסייה גישה ולאחר מכן לחץ על הלחצן הסר כדי לסגת מהמדגם. באמצעות הנקודה הגבוהה ביותר כמטרה, לחץ על כפתור הנחיתה כדי להתקרב שוב לדגימה. לאחר מכן, בדוק שוב את המשטח על ידי לחיצה על ה- Move Probe כפתור והזזת הסורק מעליו. אף אחת מהנקודות באזור לא צריכה לדרוש הגבהה מלאה של הסורק.
   הערה: באופן אידיאלי, טווח z של הסורק אמור לחרוג מהפרש הגובה של הדגימה. עם זאת, מקובל אם נקודות מסוימות באזור הסריקה נמוכות מקיבולת הסורק. יחד עם זאת, לא צריך להיות הרבה נקודות כאלה. אזורים גדולים אליהם לא ניתן להגיע באמצעות הסורק עלולים לגרום להפלת הסריקה.
5. הגדר את קצב הסריקה ל- 0.5 הרץ. הגדר את גודל הסריקה ל- 70 μm x 70 μm ואת נקודת הסריקה ל- 64 x 64. לחץ על כפתור ההפעלה וסרוק כדי לבדוק את פני השטח של המדגם ואת הזיהום האפשרי שלה עם agarose.
   הערה: אם הדגימה כוללת תאים עם לומן גדול, ניתן להקטין את גודל אזור הסריקה, או להזיז אותה כך שיהיו יותר דפנות תאים בסריקה.
6. לחץ על הלחצן On בחלק העליון של החלון הראשי כדי לכבות את לולאת המשוב.
7. בחר את מצב HDPlus (שיטת עוצמת הקול) בתפריט הנפתח בחלון הראשי של התוכנית. יופיע חלון נוסף (חלון HD).
8. הגדר את SetPoint ל- 0.1 nA בחלון התוכנית הראשי.
9. בכרטיסייה הראשית של חלון HD, הגדר את פרמטרי הסריקה (משרעת ותדירות של תנועת קנטילבר סינוסואידלי) המתאימים למדגם הנלמד.
   הערה: כל סוג של דגימה ומכל דורש בחירה של פרמטרי סריקה. יש צורך בכמה ניסויים מקדימים. עבור שורשי תירס או שיפון, נעשה שימוש בקנטילים חדים וכדוריים באמפליטודה של 400 ננומטר ובתדר של 300 הרץ.
10. פתח את הכרטיסייה רעשים בחלון HD והזן את תדר התהודה של cantilever.
11. פתח את הכרטיסייה Quant של חלון HD והזן את IOS, קשיחות קנטילבר, רדיוס קצה וזווית. בחר את מודל איש הקשר שישמש לחישובים בהתאם לגיאומטריית העצה.
    הערה: מודל DMT לוקח בחשבון את כוח ההידבקות הקיים בין הגשושית לדגימה, והוא נפוץ ביותר במכנוביולוגיה²¹.
12. פתח את הכרטיסייה סריקה של חלון HD ובחר את האותות להקלטה. בחר את הכיוון שבו נרשם האות. סמן את התיבה כוח עוצמת קול כדי לקבל תיעוד של כל עקומות הכוח.
    הערה: רשום את אות מודולוס האלסטיות הן בכיוון קדימה והן בכיוון אחורה. זה יספק יותר נקודות לחישוב.
13. לחץ על לחצן כבוי בחלק העליון של חלון התוכנית הראשי כדי להפעיל את לולאת המשוב.
14. לחץ על כפתור PhaseCorr בחלון HD הראשי כדי לתקן את הרגישות של המערכת האופטית.
15. הכרטיסייה vs Time של חלון ה- HD הראשי מציגה את הפונקציה של אות DFL לעומת זמן בזמן אמת; בחר את החלקים של פונקציה זו שישמשו לקביעת רמת הבסיס ולהתאמת מודל איש הקשר לחישובים נוספים.
16. הגדר את ערך נקודת הסריקה ל- 256 x 256 בחלון הראשי של התוכנית. הגדר את קצב הסריקה ל - 0.2 הרץ ולחץ על הלחצן הפעל כדי לסרוק את הדגימה.
17. לאחר הפסקת הסריקה, לחץ על על כפתור ההפעלה בחלק העליון של החלון הראשי כדי לכבות את לולאת המשוב.
18. בחר מצב איש קשר בתפריט הנפתח, פתח את הכרטיסייה גישה ולחץ על הלחצן הסר כדי לסגת מהמדגם.
19. לחץ על נתונים כפתור כדי לפתוח את תוכנת הניתוח ולשמור את הפלט.
20. בסוף יום המדידה, הסירו את מחזיק קצה הכנף מהראש ושטפו אותו בזהירות במים אולטרה-פוריים מספר פעמים. בכל פעם, הסר את המים עם מגבון מדויק.

4. הערכת נתונים ולאחר עיבוד

הערה: אל תסתמך על ערכי מודולוס אלסטיים המחושבים באופן אוטומטי. מכיוון שהמשטח משתנה מאוד בגובהו, יש לגרש עקומות חפץ רבות.

1. פתח את הקובץ שנשמר בתוכנת הניתוח.
2. בחר במסגרת HDForceVolume .
3. החזק את מקש Ctrl לחוץ ובחר מסגרת חזותית אחת המתקבלת באותו כיוון סריקה. לחץ על הלחצן טען מפה חיצונית כדי לראות היכן ממוקמים קירות התא.
   הערה: כל מפת אות יכולה לשמש כמסגרת חזותית, אך שימוש במפת האותות של DFL (מכשירים שונים עשויים להתייחס אליה כאל אות סטייה או אות שגיאה) עשוי להיות הדרך הקלה ביותר.
4. בדוק את ערכי הנוקשות של InvOptSens (IOS) ו- cantilever בכרטיסייה הראשית.
5. פתח את הכרטיסיה נוסף ובדוק את הפרמטרים של העצה ואת מודל איש הקשר.
6. לחץ על נקודות שונות על קירות התא על המסגרת החזותית ובחר רק את העקומות המתוארות היטב על ידי המודל. ראה תוצאות נציג לקבלת פרטים.
7. רשום את הערכים המתקבלים.

תוצאות

מפות אופייניות של מודולוס אלסטי ו-DFL, כמו גם עקומות כוח המתקבלות על שורשי שיפון ותירס בשיטה המתוארת, מוצגות באיור 2. איור 2A מראה מפות מודולוס אלסטיות ומפות DFL המתקבלות על החלק הרוחבי של השורש הראשוני של שיפון. האזורים הלבנים במפת המודולוס (איור 2A

Discussion

התכונות המכניות של דפנות התא הראשוניות קובעות את הכיוון והקצב של צמיחת תאי הצמח, ולכן את גודלו וצורתו העתידיים של הצמח. השיטה מבוססת ה-AFM המוצגת כאן משלימה את הטכניקות הקיימות המשמשות לחקר התכונות של דפנות תאי צמחים. הוא מאפשר לחקור את גמישות דפנות התא, השייכות לרקמות הפנימיות של הצמח. בשיט...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Agarose, low melting point	Helicon	B-5000-0.1	for sample fixation
Brush	-	-	for section moving
Cantilevers	NanoTools, Germany	NT_B150_v0020-5	Model: Biosphere B150-FM
Cantilevers	NT-MDT, Russia	FMG01/50	Model: FMG01
Cyanoacrylate adhesive	-	-	for vibratomy
Glass slides	Heinz Herenz	1042000	for vibratomy and AFM calibration
ImageAnalysis P9 Software	NT-MDT, Russia	-	for data analysis
Leica DM1000 epifluorescence microscope	Leica Biosystems, Germany	11591301	for section check
NaOCl	-	-	for seed sterilization
Nova PX 3.4.1 Software	NT-MDT, Russia	-	for experiments conducting
NTEGRA Prima microscope with HD controller	NT-MDT, Russia	-	for AFM and data acquisition
Petri dish 35 mm	Thermo Fisher Scientific	153066	for sample fixation
Tip pipette 1000 µL	Thermo Fisher Scientific	4642092	-
Tip pipette 2-20 µL	Thermo Fisher Scientific	4642062	-
Ultrapure water	-	-	-
Vibratome Leica VT 1000S	Leica Biosystems, Germany	1404723512	for sample sectioning