Mikroglia ve nöronlar için örnek Boyama: Cryosectioned Rat Beyin Dokusu Üzerine İmmünohistokimya için Astar

Özet

This introductory level protocol describes the reagents, equipment, and techniques required to complete immunohistochemical staining of rodent brains, using markers for microglia and neuronal elements as an example.

Özet

İmmünohistokimya yerinde antijenlerin varlığı, konumu ve göreceli bolluk tespiti için yaygın olarak kullanılan bir tekniktir. Bu giriş seviyesi protokol mikroglia ve bir örnek olarak nöronal elemanlar için işaretlerini kullanarak, reaktifler, ekipman, ve kemirgen beyin dokusunun immünohistokimyasal boyama tamamlamak için gerekli teknikler anlatılmaktadır. Özellikle, bu kağıt sırasıyla Iba1 ve Pan-nöronal için immünohistokimya yoluyla mikroglia ve nöronların floresan görselleştirme için bir adım-adım protokoldür. Floresans çift etiketleme doğru hücre tipleri, reseptörler, ligand arasındaki etkileşimi gözlemlemek için bir fırsat sağlamaktadır, aynı numune içinde birden fazla protein lokalizasyonu için özellikle yararlı olduğu ve / veya bir başka yanı sıra protein ko- göre hücre dışı matris Tek bir hücrenin içinde yerelleştirme. Diğer görselleştirme teknikleri aksine, floresan immünohistokimyası boyama yoğunluğu azalabilirUygun önlemler alınmazsa, lekelenmeye önümüzdeki aylarda hafta. Floresan kez daha etkilidir ve iki ya da daha fazlası arasında daha kesin bir ayrım yapmaya imkan tanımaktadır Bu sınırlama rağmen, pek çok uygulamada floresans çift etiketleme, örneğin 3,3'-diaminobenzidin tetrahidroklorid (DAB) veya alkalin fosfataz (AP) gibi alternatifler tercih edilir belirteçler. Tartışma sorun giderme ipuçları ve başarıyı teşvik etmek için tavsiyeler içerir.

Giriş

İmmünohistokimya ilgi antijenlere spesifik olarak bağlanan primer antikorlar kullanılarak, doku kesitlerinde antijenleri (örneğin, proteinler) tespit edilmesi için bir işlemdir. O antikorlar Büyük özgüllük ¹ antijenleri lokalize olabilir tespit zaman İmmünohistokimya 1934 yılında JR Marrack öncülük ettiler. 1942 yılında başlayarak, immunohistokimyasal görselleştirmek için floresan antikorlar kullanılarak çalışmalar in vitro ilk bazı in vivo histokimyasal çalışmada ilk ⁴ basıldı sonra ^2,3, yayınlandı. 1960 'li yıllarda, üç yıl immünohistokimyasal yöntemleri süre sonra, bir enzim-konjüge edilmiş antikor, ikincil reaktifler olarak kullanılmaya başlanmıştır. Bu yöntemler aynı anda ve birbirinden bağımsız Fransa ve ABD'de ^5,6 geliştirilmiştir. Bugün, antikorların geniş bir dizi immunohistokimya çalışmaları ⁷ için sonsuz olanaklar sağlar.

"> Bu yazışmaların genel amacı immünohistokimyasal içine kısa bir tanıtım sağlamak, bu tekniğin kapsamlı ve ayrıntılı bir yorum olması anlamına gelmez özetlenen yöntemde, iki antijen için immünohistokimyasal teknikler mikroglia için (işaretçileri sunulmuş ve. perfüze paraformaldehit boyama nöronlar), sukroz cryoprotected cryosectioned sıçan beyni. immünohistokimyasal boyama, arka plan boyama azaltmak için spesifik olmayan antijen bloke ile başlar. Daha sonra, birincil antikor ile inkübasyon dokusunda özel bir antijene bağlanma sağlar. birincil antikor izlenerek, başka bir antikor, ikincil antikor olarak adlandırılan, bir konjüge görselleştirme sinyali ⁸ birincil antikor bağlantı uygulanır. ikincil antikor birincil antikora yükseltilmiş olan türlere özgü immünoglobulin G (IgG) alanı hedef alır. sekonder antikor sinyali güçlendirir Primer antikor t Fab bölgelerinde beriPrimer antikor IgG etki alanında birden fazla site için elinden ikincil antikor bağlama. Her iki durumda da, ikincil antikorun _Fc bölgelerine konjüge enzimler ya da floresan moleküller görselleştirme sağlar. Örneğin, bir tavşan anti-Iba1 birincil antikor Iba1 için spesifik bir tavşan IgG molekülüdür. Eşek anti-tavşan IgG ikincil antikor olarak tatbik edildiği zaman, bu tanıma ve tavşan anti-Iba1 IgG birden fazla bölgeye (bakınız Şekil 1) bağlanacaktır. eşek antikor çeşitli yöntemlerle görülebilir. Bu yazışmalar floresan mikroskobu ile görselleştirme, primer antikor tanıyan sekonder antikor, konjuge bir floroforun tespiti üzerinde duruluyor. Floresan immünohistokimya, bu tür ajanlar Hoechst veya DAPI gibi bir nükleer boya bütün çekirdeklerinde görselleştirmek için kullanılabilmektedir.

Şekil 1: SchDoğrudan ve dolaylı antikor etiketleme tekniklerinin ematic temsili. Antikorlar, ilgi alanındaki antijene bağlanan ve birincil antikor türleri karşı artan sekonder antikor ile amplifiye edilebilir. Bu teknik, görselleştirme (A) için amplifikasyon ve DAB için avidin-biyotin kompleksi (ABC) kullanılarak gerçekleştirilmiştir, ya da doğrudan konjüge edilmiş floresan ikincil antikor (B). Alternatif olarak, birincil antikorlar doğrudan biyotin veya bir fluorofor (C) dahil olmak üzere birçok farklı etiketler, konjuge edilebilir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

(DAB; Şekiller 1 ve 2), immünohistokimyasal görselleştirilmesi için alternatif bir yöntem, 3,3'-diaminobenzidin tetrahidroklorür kullanır. Bu, bir biyotinile kullanılarak fluoresans farklıdır veyaparlak alan mikroskopisi altında algılanabilen bir çökelti DAB dönüştürmek için bir enzim içerir bayırturpu peroksidaz (HRP) konjüge edilmiş ikincil bir antikor. Tek bir antijen ilgi ya da boyama uzun ömürlü olması için gerekli olan durumlarda, DAB floresan boyama daha uygun olabilir. Bununla birlikte, DAB boyama iki nükleer antijen ilgi, özellikle, birden fazla belirteçleri arasında farklılaşması için çok uygundur değildir. DAB malzemeleri ve protokol değişiklikler hakkında bilgi için, Tablo 1 bakınız. Alternatif olarak, nitro mavi tetrazolyum klorür / 5-bromo-4-kloro-3-indolil fosfat (NBT / BCIP) orta konjüge bir alkalin fosfataz (AP) görselleştirmek için kullanılabilmektedir antikordur.

Şekil 2:. Nikel geliştirilmiş DAB tek etiketli sıçan beyin dokusu kesitlerinin Temsilcisi görüntüleri Sıçan beyin seTek başına mikroglia veya nöronların uzun süren analiz için Iba1 (A) ve Pan-nöronal (B) için nikel geliştirilmiş DAB ile etiketlenmiş olan seksiyonlar. Ölçek çubuğu 20 mikron. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Bir doku içinde ilgi antijenin tahmini bolluğu analiz ediliyor düşünmek gerekir. Dolaylı yöntemler (yukarıda anlatıldığı gibi) düşük yoğunlukta olan hedefler için yararlıdır. Ilgi, antijen yüksek bolluk olduğunda, direkt yöntemler uygulanabilir. Doğrudan yöntemler doğrudan görselleştirme sinyaline konjuge edilmiş bir birincil antikor içerir ve dolayısıyla ikincil antikor gereklidir. Bu yöntem boyama işlemini kolaylaştırır, ancak dolaylı yöntemlerle elde amplifikasyon ortadan kaldırır. Bir doğrudan konjüge edilmiş birincil antikor kullanarak da sekonder antikorların çapraz reaktivite ortadan kaldırırne zaman çift etiketleme.

Bu iletişim Iba1 ve Pan-nöronal (Tablo 1 ayrıntıları) ile çift etiketleme için protokol göstermektedir. Iba1 dallanmış, hiper-dallanmış, aktif, amoeboid ve çubuk dahil olmak üzere birçok aktivasyon devletler içinde mikroglia lekeler. Pan-nöronal lekeler nöronal akson, dendrit ve soma. Iba1 çoğu mikroglia ve Pan-nöronal olası hedefler nöron leke yana, lekeleri bu kombinasyon mikroglia-nöron etkileşimleri geniş bir anlayış kazanıyor yararlıdır.

Özetle, immünohistokimyasal antikorların dikkatli seçimi dayanmaktadır. Araştırma sorusu daha spesifik hale geldikçe, diğer antijenlere karşı üretilen antikorlar arzu edilebilir. Belirli bir mikrogliyal aktivasyon durumunu hedeflemek için, bir yerine Iba1 daha CD45 veya CD68 antikorları kullanmayı tercih edebilir. Dahası, fareler ile çalışma, F4 / 80 gerekli sonuçlar verebilir. Benzer şekilde, nöronal elemanlar özellikle antikorlar ra ile hedeflenebilirçekirdeğin karşı kili, sinaps (öncesi veya sonrası), akson ve büyüme konisinin. Ayrıca, nöron (Çift cortin, Neun) yaşını ayırt diğer belirteçler ve nöronal rejenerasyon (GAP-43) vardır.

Protokol

NOT: Tüm işlemler Arizona Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) uygun olarak yürütülmüştür. Tavsiye malzeme ve ekipman listesi Tablo 1'de bulunabilir.

1. Doku Hazırlanması

1. Serpilme
   1. Sodyum pentobarbital (25 mg / kg, ip) bir fazla dozu ile kemirgen Euthanize ve 8 ml / dk'lık bir akış hızında tam kandan arındırıldı (3-5 dakika kadar) fosfat tamponlu tuzlu su (PBS) ile transkardiyal serpmek. Derinlemesine perfüzyon talimatlar için Gage ve ark 2012 ⁹ bkz.
   2. Hemen / dak, 8 ml bir akış hızında 15-20 dakika boyunca PBS içinde% 4 paraformaldehit ile perfüze doku çözmek PBS gömme et.
   3. 4 ° C 'de, (tris tamponlu salin içinde hazırlanan sırayla% 15,% 30,% 30) kademeli sakaroz çözeltileri, ardından 24 saat için% 4 paraformaldehid beyin ve yer çıkarın. Sonraki sakaroz çözüm o beyin aktarınnly beynin sonra her çözeltide batırdı. Not: Genellikle, her çözümün 5 gün doku batmaya için yeterli bir süredir.
2. Doku Dondurma ve Cryosectioning
   1. Örneğin Ekim bileşiği olarak, gömme orta beyin yerleştirin ve -35 ° C arasında bir sıcaklıkta, izopentan içinde daldırın. Beyin, 10 dakika içinde en az dondurma, ve daha sonra -80 ° C'de saklayın izin verin. Sıcaklık titizlik alınmadığı takdirde sorunlar ortaya çıkabilir; sorun giderme bilgileri için tartışma bakınız.
   2. 20 um kadar bir kalınlıkta ve -20 ° C arasında bir sıcaklıkta bir seri koronal kesitler halinde kesilmiştir. Pozitif yüklü slaytlar üzerine doku toplayın. Beyin kesitleri, -80 ° C'de, bir fermuar-top çantası ve depolanmış uzun vadede folyo ile sarılmış bir slayt kutuya yerleştirilmiş olabilir. Depolama Bu yöntem hava ve dona maruz kalmasını önlemek için bir çift sınır oluşturur.

2. Doku İşleme

NOT: Örnek ekipman ve materyaller rboyama için equired Şekil 3'te gösterilmiştir. Alternatifleri mevcut, ancak bu görüntülerin immünohistokimyasal yeni başlayanlar ön alım için uygun öğeleri görselleştirmek için yardımcı olacaktır.

Şekil 3: Örnek öğeler immünohistokimyasal için gerekli (A) gösterilen siyah kutu immünofloresan için ideal bir nem odası olan, slaytlar folyo kutuyu sarmak için gerek kalmadan ışıktan korunmalıdır gibidir.. Kesit sonrasında slaytlar, örneğin (B) 'de gösterildiği san bir kutu gibi bir kutu içinde depolanabilir. Folyo sıkıca kutuyu tamamlayan ve önceki dondurucu bir zip-top çantası yerleştirerek dondurucu yanık doku örnekleri korunmasına yardımcı olur. Slaytlar bir örneği D (çeşitli boyama (D) 'de gösterilen yemekler ile (C)' de verilmektedir ). Lameller ancak 1.2 kalınlığında lamelleri en dik ve konfokal mikroskoplar güzel görüntüleme sonuçlarını sağlamak, büyüklük ve kalınlıkta (F) değişebilir. Örneğin (G) 'de gösterildiği gibi bir kalem slaytlar etiketlemek için kullanılabilir. Mürekkep çalıştırabilirsiniz gibi kalıcı belirteçler boyama ve örnek ne olduğunu belirlemek için yeteneği hem etkileyen, kaçınılmalıdır. (H) 'de gösterildiği gibi bir Mini PAP kalemi bir itici sınır slaytlar üzerine çekilmesini mümkün kılar.

1. Slayt hazırlama
   1. Oda sıcaklığında dondurucu ve çözülme slaytları çıkarın.
      1. İsteğe bağlı: bölümler, daha önce slaytlar süzülüyor varsa, slaytlar rahatsız yüzen doku kesitleri önlemeye yardımcı olmak için en fazla 4 saat süre ile 60 ° C'de bir fırın içinde çözülmüş slaytlar yerleştirin.
   2. Bir slayt raf ve ilgili tabak yerleştirin kayar.
   3. Yıkama yıkamalar arasında çözelti, değişen her biri 5 dakika süreyle PBS içinde üç kez kayar. Ileriye Bu adımdan itibaren, secti önlemekons uzun bir süre için sıvı olmadan. Not: bölümler kurumasına, arka plan boyama artar ve anlamlı veriler güvenilir elde edilemez.
2. Doku Boyama
   1. Bir ışık geçirmez boyama kutusunda, iyonu giderilmiş su ile ıslatılmış tüysüz bir doku ile bir "nem odası" oluşturur.
   2. Uzak doku kesitlerinden, slayt çok kenarında bir sıvı itici sınır yapmak için mini bir pap kalem kullanın, tüysüz bir doku ile slayt kenarlarını kurutun. Bu sınır sıvı menisküs ve yüzey gerilimi boyama etkilemez, böylece doku kenarı arasında geniş bir alan temin etmelidir.
      Not: ilgi antikorlar mikrodalga antijen alımı gerektirmeyen, PAP kalem kovucu sınır önce 2.1.3 uygulanabilir. PAP kalem PBS içinde yıkama öncesi uygulanmış ise, sıvı itici sınır bütünlüğü bu aşamada kontrol edilmelidir. Sınırda herhangi boşlukları doldurmak için bir mini-pap kalem kullanın.
   , blok nonspesifik antijen PBS (blok çözeltisi) içinde% 4 h / h serumu içinde inkübe edilerek bağlama. Pipet oda sıcaklığında 1 saat için slayt başına blok çözeltisi 300 ul. Emin blok çözüm slayt kenarında pap kalem uzanır ve tamamen dokuya yakın yüzey gerilimi nedeniyle düzensiz boyama önlemek için doku kapsar emin olun.
   1. İkincil antikor yapıldığı aynı türden serum kullanın. Not: Bu prosedürde, ikincil antikorlar eşek yapılır, ve bu nedenle eşek serumu kullanılmıştır. İki veya daha fazla farklı türlerden ikincil antikorlar kullanıldığında, her türden serum içerir.
   3. Slaytlarınıza Pipet primer antikor. Not: Bu boyama için antikor konsantrasyonları 1'den optimize edilmiştir: 5,000 ve 1: sırasıyla Iba1 ve Pan-nöronal 500. Bu konsantrasyonlar, bir arka plan boyama yokluğu ile anlamlı bir lekeleme göstermek için tespit edilmiştir.
      1. Blok çözümü sulandırmak% 1 PBS içinde serum ve primer antikor ilave edin. Slayt başına% 1 serum içinde primer antikor çözeltisi 300 ul Pipet. Yine, sıvı pap kalem kenarına olduğundan emin olun. 4 ° C 'de bir gece boyunca inkübe edin.
      2. Iba1 ne Pan-nöronal ne antikorları içeren bir Pan-nöronal antikor olmadan Iba1 ile bir ve Iba1 olmadan Pan-nöronal antikor: biri üç kontrol slaytlar ekleyin. Bununla birlikte, ikincil antikor, spesifik olmayan bağlanmanın test etmek için, birincil antikor ihmal aynı çözeltiler için de aynı vadede bu slaytlar Leke.
   4. Ertesi sabah, yıkama yıkamalar arasında solüsyonu değişen her biri 5 dakika süreyle PBS içinde üç kez kayar.
   5. Floresan antikorlar ileri bu adımı, siyah veya karanlıkta inkübe ya olan yıkama kapları folyo ve melezleme kutularında sarılır sağlayarak ışık maruziyeti en aza indirmek, bu nedenle, ışığa duyarlı bulunmaktadır. Tüm slaytlarda uygun ikincil antikorlar pipet ve inkübe1 bir konsantrasyonda, oda sıcaklığında 60 dakika: blok çözeltisi içinde 250, bir ışık geçirmez "nem odası" (aşama 2.2.3) (adım 2.2.1).
      1. Farklı dalga boyları ikincil antikorlar kullanın. Burada, birincil antikor tavşan anti-Iba1 için uygun ikincil antikor olarak eşek anti tavşan 594 kullanın. Birincil antikor fare anti-pan-nöronal için, ilgili ikinci antikor olarak eşek anti-fare 488 kullanır. Alternatif olarak, anti-tavşan 488 ve anti-fare 594 kullanır.
   6. Yıkama her biri 5 dakika süreyle PBS içinde üç kez kayar.
   7. İsteğe bağlı: Nükleer boyama gerçekleştirin.
      1. Tam olarak 60 saniye boyunca iki kez damıtılmış H ₂ 0 içinde 0.03 ug / ml 'lik bir konsantrasyonda, Hoechst (ya da diğer nükleer leke)' de yer.
      2. Yıkama her biri 5 dakika süreyle PBS içinde üç kez kayar.
   8. GKD ₂ 0 yıkayın.
3. Coverslipping
   1. Böyle Fluor gibi sulu montaj orta ile lamel slaytlar,omount-G ya da ProlongGold. Bir pamuk uçlu aplikatör kullanarak tüm kabarcıklarını çıkarmak için özen gösterin.
      Not: Diğer montaj ajanlar kullanılabilir, ancak yüksek sızdırma-yoluyla boyalar arasındaki coverslipping gün içinde bazıları tarafından not edilmiştir.
   2. , Kenarları mühür açık oje kullanın buharlaşma nedeniyle kurumasını engelleyen bölümleri. Slaytlar düz ve oda sıcaklığında devam ederken tırnak cilası bir ışık geçirmez bir kap içinde kurumasını bekleyin ve daha sonra 4 ° C'de folyo ile sarılmış bir ışık geçirmez bir kapta saklayın.

3. Lekeli Doku Görüntüleme

1. Mikroskopla inceleme
   1. Oje karanlık bir odada yer alması gereken, mikroskopi başlamadan önce en az bir saat kurumasını bekleyin.
   2. Floresan ışık kaynağı ve bir dijital kamera eki olan bir konfokal veya araştırma mikroskobu kullanılarak fotomikrografları edinin. Ekteki yazılımı kullanarak, her dalga boyu için pozu ayarlamak - 405, 488, ve 594 - ayrı. Not: derinlemesine görüntüleme talimatları mikroskop üreticisinden online olmalıdır.
   3. Bölümleri hareketli ya da odak ayarlama yapmadan her kanalda fotomikrografları edinin. Renkli fotoğraf çekmek, ya da dönüşümlü olarak gri tonlu ve daha sonra renk dönüştürmek.
      Not: Renk veya her kanaldan gri tonlu görüntüleri sonrası işleme harmanlanmış edilebilir.
   4. Kesitlerin fotoğraf beyazlatma oluşacak şekilde, doku kesitleri uzun süre için ortam ışığı veya mikroskopik ışığa maruz kalmayacağı emin olun. Bunu önlemek için, artan ışık / lazer yoğunluğu yerine pozlama süresini artırın.
   5. Açıldıktan 30 dakika içinde floresan ışık kaynağı kapatmayın.
      Not: hızlı bir şekilde açık ve kapalı kaynak geçiş floresan ampul ömrünü azaltabilir.

Sonuçlar

Bu boyama protokolü mikrogliya floresan 594 kanal (kırmızı) etiketli olan sıçan beyin dokusu kesitlerinde sonuçları ve 488 kanal etiketli nöronlar (yeşil, Şekil 4). Nükleer leke yapılmış ise, 405 kanalın (mavi) gösterilecektir. Çıkan farklı kanallar içine alınır ve üç kanalın doğrudan bir karşılaştırma için kaplanmış, ya da herhangi bir, iki kanal arasında olabilir. Birçok dijital kazanım yazılım suit, bu işlevselliği içerir. Burada gösterilen Iba1 ve Pan-nöro...

Tartışmalar

Bu iletişimin genel amacı okuyucuya immünhistokimya prosedürleri tanıtmak oldu. Bunun için, Iba1 ve Pan-nöronal antijenler ile çift etiketleme örneği mikroglia ve perfüze paraformaldehid nöronlar gözlemlemek, sükroz cryoprotected cryosectioned sıçan beyin kullanıldı.

Bu teknik, sonsuz amaçlara hizmet etmek için adapte edilebilir. Beyin, akciğer, karaciğer, böbrek ve bağırsak sınırlayıcı gibi, ancak doku tiplerinin, çeşitli farklı antijenlerin dizisi protokolü...

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
Fisherbrand Superfrost Plus Glass Slides	Fisher Scientific	22-034-979	Used for tissue mounting (1.2.2)
Oven	Thermo Scientific	51028112	Used for tissue drying (2.1.1)
Mini Pap pen	Life Technologies	00-8877	Used in step 2.2.2
Andwin Scientific Tissue-tek Slide Staining Dish	Fisher Scientific	22-149-429	Used for all washes during staining (2.2), as well as the Hoechst step (2.2.8)
Kimwipes	Fisher Scientific	06-666-A	Used for drying slides (2.2)
Black Staining Box	Ted Pella	21050	Used for blocking and staining steps (2.2)
Normal Donkey Serum	Fisher Scientific	50-413-253	Used for block and antibody incubation (2.2)
Mouse α-Pan-neuronal	Millipore	MAB2300	Used for primary antibody (2.2.4)
Rabbit α-Iba1	Wako Chemical	019-19741	Used for primary antibody (2.2.4)
Donkey α-rabbit 594	Jackson ImmunoResearch	711-585-152	Used for secondary antibody (2.2.6)
Donkey α-mouse 488	Jackson ImmunoResearch	715-545-150	Used for secondary antibody (2.2.6)
Caterer's foil	Any	N/A	Used in steps 1.2.2 and 2.3.2
Fluoromount-G	Southern Biotech	0100-01	Used for coverslipping (2.2.8)
Coverslips	Fisher Scientific	12544E	Used for coverslipping (2.2.8)
Clear Nail Polish	Any	N/A	Used for coverslipping (2.2.8)
Axio Observer.Z1 and LSM 710 (laser scanning, confocal)	Carl Zeiss	N/A	Used for imaging (3)
Axioskop A2	Carl Zeiss	N/A	Used for imaging (3)
CitriSolv	FisherScientific		For DAB protocol
ABC	Vector Laboratories	PK-6100	For DAB protocol
DAB Peroxidase kit	Vector Laboratories	SK-4100	For DAB protocol
Biotinylated horse α-rabbit IgG	Vector Laboratories	BA-1100	For DAB protocol
Biotinylated horse α-mouse IgG	Vector Laboratories	BA-2001	For DAB protocol
30% Hydrogen Peroxide	FisherScientific	H325-500	For DAB protocol
Wheaton slide racks and staining dishes	TedPella	21043	For DAB protocol
Masterflex perfusion pump and tubing	Cole-Parmer		Used for perfusion (1.1.1 and 1.1.2)
Andwin scientific tissue-tek CRYO-OCT compound (case of 12)	Fisher Scientific	14-373-65	Used for tissue freezing (1.2.1)
Thermometer (-50 to 50 C)	Fisher Scientific	15-059-228	Used for tissue freezing (1.2.1)
Cryostat	Leica	CM3500S	Used for tissue sectioning (1.2.2)
Staining Dish, Plastic with 2 Lids	Grale Scientific	353	For antigen retrival
20 Place Staining Rack, Slides Horizontal	Grale Scientific	354	For antigen retrival
Microwave	Any	N/A	For antigen retrival