JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Sağlıklı laboratuarda yetiştirilen kenelerin üretimi, kene biyolojisi ve kene patojen etkileşimleri üzerine çalışmalar için gereklidir. Burada, fare için düşük maliyetli ve stresli olgunlaşmamış kene beslemesi için basit bir protokolü gösteriyoruz.

Özet

Lyme hastalığının vektörü Ixodes scapularis , doğu ve orta batı Amerika Birleşik Devletleri'ndeki en önemli hastalık vektörlerinden biridir. Bu tür, her gelişim evresi için bir omurgalı konakçıdan bir kan yemek isteyen üç ana kene ve yetişkin dişiler üreme için kan dolumu gerektirir. Larval keneler beslenmek için ev sahibine 3 - 5 gün boyunca bağlarlar ve evin tamamen tıkıldıktan sonra bırakırlar. Birkaç farklı konağa bağımlılık ve engorgement için uzun ekleme zamanı, laboratuar ortamında kenelerin yetiştirilmesini zorlaştırır. Bununla birlikte, kene biyolojisi ve kene-patojen etkileşimlerini anlamak için sağlıklı, laboratuar bakımlı kenelerin üretimi önemlidir. Burada, farelerde olgunlaşmamış kene beslemeye yönelik basit ve uygun maliyetli bir protokol gösteriyoruz. Farelerde azaltılmış stres için varolan protokolleri değiştirdik ve kenelerin temas etmesini önlemek için örgü dipleri olmayan tek kullanımlık kafesleri kullanarak kene besleme başarısı ve hayatta kalma oranını arttırdık.İdrar ve dışkılarla kirlenmiş su.

Giriş

Keneler omurgalıların zorunlu hematophagous ektoparazitlerdir ve dünya çapında dağıtılmaktadır. Amerika Birleşik Devletleri'nde, kenelerin en az 11 türün halk sağlığı önemi 1'in patojenlerin vektörler bulunmaktadır. Ixodes scapularis, Lyme hastalığı (Borrelia burgdorferi) ateş (B. miyamotoi) nükseden, insan granülosit anaplazmoz (Anaplasma phagocytophilum) ve babeziyoz neden olan maddeler olarak çeşitli patojenlerin iletiminden sorumludur (Babesia spp.). Laboratuvarda çalışmalar için vahşi bolca bu arachnids toplama bir hastalık vektörü olarak I. scapularis önemine rağmen her zaman mümkün değildir. Bu nedenle, sağlıklı laboratuvarda yetiştirilmiş kene üretimi kene biyolojisi üzerinde çalışmalar çok önemlidir ve etkileşimleri-patojen işaretleyin.

I. scapularis dahil tüm sert keneler (aile Ixodidae), yaşam döngüsü, yumurta ve üç activ oluşurE aşamaları: larva, nimf ve yetişkin. Her aktif aşamada bir omurgalı konakçı beslenir. Bağlar ve besleme birkaç gün içinde keneler ve onların konak arasında gerçekleşen karmaşık etkileşimler yapay besleyiciler kullanarak çoğaltmak için neredeyse imkansızdır ve 2 , 3 , 4 toplu yetiştirme için yeterli sayıdaki beslemiş kenelerin sağlanması pek olası değildir. Dolayısıyla, canlı fareler ve tavşanlar en sık olgunlaşmamış (larvalar ve nimfler) yetiştirme ana bilgisayarları ve tavukların olgun aşamaları (yetişkinler) olarak kullanılır. Her gelişim evresi boyunca kan beslemeye yönelik çoklu konut gereksinimi, kenelerin yetiştirilmesini zorlaştırmaktadır ve zaman ve maliyet yoğun 5 , 6 , 7 . Çoğu kene destekleme protokolleri, fareleri asma tel ızgara taban kafesindeki 7 , 8 ya da silindirik bir kabin içinde tutmayı gerektirirHayvan öyle boyutlara sahip ki, hayvan serbestçe hareket edemez ve kendini damatlayamaz 6 , 9 , 10 .

Bu silindirik kafesler daha sonra bir tel örgü ile bir ayakkabı kutusu kafesine aktarılır. Sızdırılmış, ayrılmış keneler altındaki sudan toplanır. Bununla birlikte, bu yöntem, beslenen kenelerin, idrar ve dışkı ile kirlenmiş mantar büyümesini ve kene ölüm oranını artırabilecek suya maruz kalmasına neden olur. Buna ek olarak, kene su çukurundan kaçma ve aynı zamanda farelere stres yaratma olasılığını artırır. Bu sorunları gidermek için, burada plastik ayakkabı kutusu tipi tek kullanımlık kafeslerdeki farelerde larval kene beslemeyi göstermektedir. Bu yöntem, farelerin normal davranışına izin verir, tıkanmış tıkanıklığı artırır ve kontaminasyondan ötürü kene ölümünü azaltır.

Protokol

aşağıda özetlenen protokolü (Sayı-00682) Nevada Reno Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmış ve Nevada, Reno hayvan araştırma etik komitesi Üniversitesi kurallarına uygun olduğundan. Kısaca, fareler izofluran ile anestezi uygulandı ve burunluk 20 dakika süre ile devamlı izofluran düzeylerini muhafaza için kullanılmıştır. Bir veteriner merhem anestezi altında gözlerin kurumasını önlemek için kullanılmıştır. Ayak tutam anestezi seviyesini tespit etmek için kullanıldı ve nefes alma hızı prosedürü boyunca ölçüldü. Fareler ayrı kafeslerde tutulur ve bilinç kazanmış kadar takip edildi. Fareler kene beslemek için sadece bir kez kullanıldı ve post kene kurtarma ötenazi uygulandı. Ötenazi Hayvan Tıp personeli personelin Laboratuvarı tarafından gerçekleştirilmiştir. CO2 ve servikal dislokasyon hayvanlar ötenazi kullanılmıştır.

NOT: keneler üzerinde çalışmak tam bir kişisel koruyucu eq kullanımını gerektiriruipment. Olgunlaşmamış keneleri saymak için, beyaz laboratuar önlüğü giyin, lastik bantlarla kaplı laboratuar kaplamasının manşonu açıklığını örten uzun nitril eldivenler ve kapalı ayakkabı kullanın. Fareleri kenelerle enfeste öldürmek için saç ağını, tek kullanımlık tulumları, kolları üzerine uzun kollu eldivenleri ve ayaklıkları kullanın. Yanlış kene tespiti için beyaz veya açık renkli tulum kullanın. Eldiven ve kılıfları periyodik olarak kontrol edin.

1. Hayvan Barınağına Hazırlanma Odası

  1. Kenelerle bulaşmış fareleri eve ayırmak için ayrı bir oda belirleyin. Kazara kene kaçışını önlemek için, yapışkan bir hasır veya iki taraflı halı bantını kapının dışında ve içinde yerleştirin.

2. Fare Infestation için Keneler Sayma

  1. Çift taraflı bantları 7 "x 5" x 14 "plastik kapların üst kenarlarına koyun ve yaklaşık 2 cm su ile doldurun.
  2. Kabın ortasına başka bir küçük kutu veya Petri kabı koyun ve 1 cm su ile doldurun,# 34; Bu kapsayıcı etrafına hendek"
  3. Petri kabı içinde larva veya perileri içeren flakon saklayın.
  4. şişeden larvaları ya da nymphs çıkarın ve mikroskop altında saymak için iyi bir boya fırçası kullanın. 50 larva veya ayrı ayrı sintilasyon şişelerine 25 nymphs sayın. naylon mesh veya organze kumaş ekran ve lastik bantlar ile yakın hemen şişeleri örtün.

Olgunlaşmamış Keneler 3. İstila Fareler

  1. beyaz veya açık renkli çalışma tezgahı kullanın ve çalışma alanının çevresinde çift taraflı bant yapıştırın.
  2. izofluran ile fare anestezisi. Ayak tutam tarafından anestezi seviyesini kontrol edin. Bir kez anestezi, kağıt havlu ile örtülü bir ısıtma pedi fare aktarmak ve sürekli izofluran temini için bir burun konisi eklemek.
  3. kuruluğu önlemek için vazelin esaslı göz merhemi uygulanır. Min normal başına 230 nefes br halinde izofluran seviyesini azaltmak -. Izofluran seviyesi (80 ayarlamak için fare solunum desen NotHayvanı öldürmekten kaçınmak için eating oranı dakikada 80 nefesin altındadır).
  4. Bir şişe 50 larva veya 25 nimf alın ve kulakların arasında kürkün altına kene takozları bir boya fırçası ile yerleştirin ( Şekil 1 ). Kenların iliştirilmesi için yeterli zaman tanımak için 20 dakika boyunca fare ile anestezi altında tutun.
  5. Fareyi, statik kapaklar ve beyaz yatak takımı ile standart, plastik bir ayakkabı kutusu tipi tek kullanımlık fare kafesine taşıyın. Normal fare bakımı uyarınca oyuncaklar , su ve yiyecekleri ad libitum olarak verin.
  6. Fare kafesini, üst kenarlar etrafında çift taraflı yapışkan bant ile kaplı daha büyük bir fare veya gerbil kafesi içinde saklayın. Dış kafese 3 cm su doldurun ( Şekil 2 ).

4. Farelerden Kene Toplama

  1. Olgunlaşmamış keneler, beslenmenin 3. ve 6. günleri arasında ayrılır. Kafesleri ve su hendeklerini 3. günden sonra her gün tıkanmış keneler için kontrol edin.
  2. 4. ve 6. günler arasında kafesden müstakil keneler toplayın. Bir ağrı kullanınT fırça veya yumuşak forseps ile tıkanmış kene tutun ve naylon örgü kumaş lastik bantlarla sabitlenmiş temiz sintilasyon şişeleri içinde saklayın.
  3. Kalan kenarlar için 7. günde anestezi uygulayın ve fare kontrol edin.
  4. 7. günde engellenmiş keneler için yatak takımları, yiyecek yemi ve su şişesini kontrol edin. Yukarıda açıklandığı gibi prosedürü takiben fareleri euthanize edin. Tek kullanımlık kafesleri, yatak takımları, su şişesi ve yiyecek yalakçısı otoklav ederek, kaçmayan kaynaksız kenelerden kaçınınız.

5. Fed Kenarlarının Depolanması

  1. % 90 nemde tıkanmış kene koruyun, 20 ° C ve 12:12 ışık: koyu renk döngüsü, nem ve sıcaklık kontrolü altındaki inkübatör oluşuncaya kadar. Bu işlemin yaklaşık 12 ila 18 hafta sürebilir.
  2. Yüksek nem, kene sağkalımını arttırırken, kenelerin mantar büyümesine eğilimli olmasını sağlar. Kalıp için haftada en az bir kere mikroskop altında beslenen keneleri kontrol edin. Saptanırsa, hayatta kalanları% 5 etanol içinde 5Dak., Suda durulayın, kuru bir filtre kağıdına aktarın ve yeni, temiz tüplere aktarın.

Sonuçlar

Geliştirilmiş besleme etkinliği ve fare konak üzerinde stresin azaltılması için mevcut kenot yetiştirme protokolleri 6 , 10'u değiştirdik. Sonuçlar, standart ayakkabı kutusu tarzı fare kafeslerinin, kenelerin yetiştirilmesi için çok uygun olduğunu ortaya koymaktadır. Beyaz yatak, beslenen kenelerin kolay toplanması için iyi bir kontrast sağladı. Çoğu keneler, beslendikten sonra kapların duvarlarına t...

Tartışmalar

Protokolün Kritik Adımları

Kazara kaçmayı önlemek için kenevir yetiştirirken birkaç güvenlik seviyesine sahip olmak önemlidir. Yapışkan bant ve su hendeği kullanımı, güvenliği sağlamak için kritik öneme sahiptir. Vücut ısısını sabit tutmak için anestezi uygulanmış fareyi ısıtma pedinde tutmak önemlidir. Fareyi tıraş etmenin kene ataşmanı için herhangi bir ek fayda sağlamadığını da bulduk. Bireysel bir fare, belirlenen bir "kene odası" nda bir...

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Teşekkürler

The authors acknowledge the help from the staff of Laboratory Animal Medicine, University of Nevada, Reno. MM received funding from Nevada INBRE.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Puralube vet ointmentAmazonAvailable from any Pet store or online store
Disposable mouse cage Innovive, San Diego, CA MV 2Set of bottom and lid
White Alpha dri bedding Lab Supply, Fort Worth, TX ALPHA-Dri™

Referanslar

  1. Gleim, E. R., et al. Factors associated with tick bites and pathogen prevalence in ticks parasitizing humans in Georgia, USA. Parasites & Vectors. 9 (125), 1-13 (2016).
  2. Krober, T., Guerin, P. M. In vitro feeding assays for hard ticks. Trends Parasitol. 23 (9), 445-449 (2007).
  3. Kuhnert, F. Feeding of Hard Ticks In Vitro: New Perspectives for Rearing and for the Identification of Systemic Acaricides. ALTEX. 13 (2), 76-87 (1996).
  4. Voigt, W. P., et al. In vitro feeding of instars of the ixodid tick Amblyomma variegaturn on skin membranes and its application to the transmission of Theileria mutans and Cowdria ruminantium. Parasitol. 107, 257-263 (1993).
  5. Gregson, J. D., Smith, C. N. Ticks. Insect Colonization and Mass Production. , 49-72 (1966).
  6. Sonenshine, D. E. . Biology of Ticks. 2, (1993).
  7. Bouchard, K. R., Wikel, S. K., Marquaedt, W. C. Care, maintenance, and experimental infestation of ticks in the laboratory setting. Biology of Disease Vectors. , 705-711 (2005).
  8. Schumaker, T. S., Barros, D. M. Life cycle of Ornithodoros (Alectorobius) talaje. (Acari:Argasidae) in laboratory. J Med Entomol. 32, 249-254 (1995).
  9. Banks, C. W., Oliver, J. H., Hopla, C. E., Dotson, E. M. Laboratory life cycle of Ixodes woodi (Acari:Ixodidae). J. Med. Entomol. 35, 177-179 (1998).
  10. James, A. M., Oliver, J. H. Feeding and host preference of immature Ixodes dammini,I.scapularis,and I.pacificus.(Acari:Ixodidae). J. Med. Entomol. 27, 324-330 (1990).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

EnfeksiyonSay 123Ixodes scapularisLyme hastal k vekt ryavru yavru yeti tirmekene beslemefarelarval kene besleme

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır