Titrasyon ELISA reseptör Ligand etkileşim ayrışma sabiti belirlemek için bir yöntem olarak

Özet

Titrasyon ELISA gerçekleştirmek için detaylı bir protokol açıklanmıştır. Ayrıca, yeni bir algoritma titrasyon ELISAs değerlendirmek için ve plaka immobilize microtiter reseptör için çözünür bir ligand bağlayıcı bir ayrışma sabiti edinmek için sunulmaktadır.

Özet

Ayrışma sabiti bağlama denge iki ortağı arasındaki etkileşim açıklar ve onların ilgi bir ölçüsüdür. Farklı ligandlar, örneğin, rekabetçi inhibitörleri, protein izoformlarının ve mutantlar için bağlama güçlerini bağlama ortağa karşılaştırmak için çok önemli bir parametredir. Ayrılma sabitler ilişkili karşı ücretsiz ligand konsantrasyonu olarak bağlama eğrileri komplo tarafından belirlenir. Buna ek olarak, ilişkili ligand konsantrasyonu orantılı bir sinyal eklenen ligand, toplam konsantrasyonu karşı çizilen titrasyon eğrileri kaydetmek çok daha kolaydır. Sinyal spectroscopically ve enzim bağlı immunosorbent assay (ELISA) tarafından tespit edilebilir. Bu bir titrasyon yılan zehri elde edilen rhodocetin α2β1 Integra, onun immobilize hedef etki alanına bağlama ölçer ELISA için bir protokol içinde örneklenir. Titrasyon ELISAs çok yönlü ve geniş kullanılmış. Herhangi bir çiftini etkileşen proteinlerin immobilize reseptörü ve çözünür ligand her iki protein saf ve onların konsantrasyonları bilinen koşuluyla kullanılabilir. Zorluk defa ayrışma sabiti titrasyon eğrisi üzerinden belirlemek olmuştur. Bu çalışmada, titrasyon eğrileri altta yatan bir matematiksel işlev giriliyor. Bir doygunluk verim herhangi bir hataya grafik tahmini, bu algoritma doğrusal olmayan regresyon ile matematiksel değerlendirme tarafından doğrudan ham veri (sinyal kırmızının koyulukları eklenen ligand farklı konsantrasyonlarda) işleme izin verir. Böylece, birkaç titrasyon eğrileri aynı anda kaydedildi ve aralarında ayrışma sabiti ve bağlama-aktif reseptör, konsantrasyon karakteristik parametreleri kümesini haline dönüştürdü ve istatistiksel olarak değerlendirilebilir. Bu algoritma ile birleştirildiğinde, titrasyon ELISAs doğrudan ayrışma sabiti sunma avantajı kazanmak. Bu nedenle, onlar daha verimli bir şekilde gelecekte kullanılabilir.

Giriş

Ayrışma sabiti K bir reseptör (R) benzeşim onun ligand (L) açıklamak için önemli bir parametredir. Kitlesel eylem hukuk üzerinde bağlı olarak, K içinde Reseptör-ligand karmaşık RL R reseptörü ve ligand L: ayrışıp denge için tanımlanan

            Denklem 1

reseptör ve ligand ücretsiz/ilişkisiz durumunu gösteren endeksi f ile. Reseptör-ligand kompleks RL, konsantrasyon reseptör bağlı ligand Lbkonsantrasyon için aynıdır. Reseptör Rt toplam konsantrasyonu ücretsiz reseptör Rf ve ligand bağlı reseptör Rb toplamı olarak = Lb, ayrışma sabiti olarak da yazılabilir:

        Denklem 2

Bu nedenle, doygunluk ilişkili ligand Lb reseptör Rttoplam konsantrasyonu ilişkisi kesir olarak tanımlanmış Y, verim,

        Denklem 3

Ücretsiz ligand Lfkonsantrasyon üzerinde bağlıdır:

        Denklem 4

Hiperbolik bu ilişki bir Reseptör-ligand etkileşim bağlama eğriyi tanımlayan ve onun arsa ilişkili ligand Lb toplama ücretsiz ligand Lfkonsantrasyonu bir fonksiyonu olarak gösterir. Bağlama eğrisi ayrışma sabiti K, yarı-azami doygunluk verim ücretsiz ligand konsantrasyonu olarak elde edilebilir. Ayrıca, bağlama eğrileri linearize farklı algoritmaları, gibi çift karşılıklı arsa Klotz^1,2veya Scatchard veya Hanes (Bisswanger³tarafından gözden) göre dönüşümleri tarafından kurulmuştur. Ancak, tüm algoritmaları asimptotik ücretsiz ligand bağlayıcı eğri yüksek konsantrasyonlarda yaklaştı doygunluk verim maksimum değeri bir grafik öncesi değerlendirilmesinde tahmin edilecek sahip ve bu nedenle sorunu muzdarip hataya.

Buna ek olarak, bir bağlama eğrisi belirlenmesi ücretsiz ve ilişkili ligand miktar sırasında bağlama denge gerektirir. Bu amaçla, ücretsiz ligand reseptör bağlı ligand ayrılmış ve sayısal gerekiyor. Bu nedenle, ligand ve reseptör protein ligand olarak karşı bir protein reseptörü gibi özellikleri, farklı gerekir. Her iki bağlama ortak proteinler ise, kendi boyutları, ücret veya diğer moleküler özellikleri ayırt olmak zorundalar. Yine de, küçük ölçekli bağlama yaklaşımlar konsantrasyonlarda ligand miktar zor bir iştir. Özellikle reseptörleri önemli miktarda kullanılabilir veya uygun olmasa radyoaktif ligand etiketleme genellikle ilişkili ligand, düşük yoğunlukta algılamak gerekli oldu. Ayrıca, reseptör bağlı ligand-ihmal edilebilir bir şekilde sırasında ve sonrasında yalıtım ayırmak. Bu nedenle, denge jel filtrasyon⁴, Kapiler Elektroforez⁵ve nabız proteolizis⁶, gibi karmaşık yöntemler reseptör bağlı ligand ölçmek ve ücretsiz ligand ayırmak için gereklidir.

Bu bağlama deneyleri aksine titrasyon deneyler ilişkili ve ücretsiz ligand nicel ayrılması gerek yoktur. Bu amaçla, bir reseptör sabit bir konsantrasyon, eklenen ligand farklı konsantrasyonları ile titre. Reseptör için bağlama tarafından ilişkili ligand ücretsiz ligand ayıran ve örneğin, fotometri, fluorometry veya antikor algılama, ölçülebilir biyofiziksel bir özelliğe sahiptir. Böylece, bir sinyal ile doygunluğu ile doğru orantılıdır S Y verim ve sonuç olarak da reseptör bağlı ligand (Lb) konsantrasyon için eklenen ligand (Lt) toplam konsantrasyonu bir fonksiyonu olarak algılanır. Parametreleri, sinyal S ve eklenen ligand toplam konsantrasyonu ilişkili ve ücretsiz ligand konsantrasyonu daha doğrudan ve kolay bir şekilde sayılabilir. Özellikle, reseptör bağlı ligand enzim bağlı immunosorbent assay (ELISA) tarafından algılanmasını 100 µL aşağıda örnek birimlere azaltılması yanı sıra birkaç ligand konsantrasyonu paralel ölçümleri çok iyi microtiter levha izin. Bir titrasyon ELISA, bir reseptör fiziksel olarak aynı toplama bir microtiter plaka adsorbe ve çözünür ligand ile titre. Reseptör plastik yüzeye aslında hidrofobik adsorpsiyon tarafından immobilize. İmmobilize reseptör ilişkilendirir yüzey konsantrasyon reseptör Langmuir´s adsorpsiyon izoterm⁷göre muhtemel bir doğrusal olmayan ilişkide kaplama konsantrasyonu ile. Genel adsorbe reseptör molekülleri ek olarak, etkinlik durumlarına titrasyon deneyleri için başka bir önemli parametre sayısıdır. Sadece hangi ligand bağlayıcı faaliyet korunur, titrasyon tahlil için uygundur ve sonunda etkin reseptörleri Rt doğrudan belirlenemez titrasyon testin toplam konsantrasyonu katkıda reseptörleri immobilize.

İmmobilize reseptör tarafından kapsanmayan siteleri plastik yüzeyi ligand gibi diğer proteinler absorbe yatkındır. Tür plastik yüzey sitelerde ligand fiziksel adsorpsiyon reseptör bağlı ligand olarak benzer bir sinyal, henüz belirsiz bir şekilde sonuçlanır. Bu nonspesifik sinyal plastik yüzey siteleri hangi protein ile kaplı değil henüz sığır serum albumin (BSA)-ecek var olmak kütük parçası microtiter plakaların azaltmak için. Ancak, bazı Reseptör-ligand titrasyon deneyleri için spesifik olmayan arka plan sinyalleri gözlenen. O zaman, engelleme diğer ajanlar gibi bir çözüm % 0,2 jelatin veya %0,04 ara 20, önerilir.

Reseptör için bağlama sonra ücretsiz ligand tarafından iki çamaşır adımı kaldırılır. Microtiter iyi plastik yüzeye immobilize ve isteğe bağlı olarak kimyasal fiksasyonu tarafından güçlendirilmiş reseptör ile ilişkili ligand kalır. Sonraki kovalent çapraz-bağlantı için ilişkili ligand ve oxazolidin ile immobilize reseptör arabellek madde TRIS ligand bağlayıcı herhangi bir değişiklik olmadan HEPES için değiştirilir. TRIS, aksine HEPES oxazolidin devre dışı değil. Oxazolidin ile kovalent çapraz bağlantı ile onun reseptör ilişkili ligand giderir ve onun ayrılma sonraki çamaşır ve kuluçka adımları sırasında engeller. Böylece, Reseptör-ligand etkileşimi kimyasal dondurulur ve çamaşır ve kuluçka sonraki adımlarla etkilenmez bir titrasyon eğrisi garanti eder. Ancak, oxazolidin fiksasyon kimyasal olarak ligand ve reseptör etkileşimlerini azaltılmış veya kaldırılmış şekilde değiştirebilir. Ayrıca, özellikle Monoklonal antikor ilişkili ligand ölçmek için kullanılıyorsa epitopları ligand içinde değişiklik algılama antikor bağlama benzeşme değişebilir. Oxazolidin fiksasyon bu olumsuz etkilerin ikisi de bu titrasyon ELISA oluşmakla birlikte, test oxazolidin karşı duyarlılığını titrasyon deney öncesinde her Reseptör-ligand etkileşim için test edilmelidir. Fiksasyon sonra aşırı oxazolidin TRIS içeren bir arabellek ile üç yıkama adımda kaldırılır. TRIS nonspecifically antikorlar sonraki adımda algılama ile tepki kalan aldehit gruplarını inaktive.

Fotometrik ELISA sinyal S. sağlayan enzim bağlı antikorlar ile ilişkili ligand miktarını sayısal Bu eklenen toplam ligand konsantrasyonu Lt karşı çizilir her şey için. Onun daha kolay satın alma rağmen titrasyon eğrisi hiperbolik işlevi bağlama eğrisi aksine değil. Ayrıca, nasıl bir titrasyon eğrisi üzerinden ayrışma sabiti K hesaplamak için belli olmuştur. Algoritmalar spectroscopically Edinsel titrasyon eğrileri linearize bağımsız olarak Stockell⁸ ve Hey ve Weischet⁹tarafından bildirilmiştir rağmen yüksek sinyal tahmin onların belirsizlik nedeniyle yetersiz kalmışlar değeri doygunluk verim eklenen ligand yüksek konsantrasyonları yaklaşıyor.

Burada, bir titrasyon ELISA ve doğrusal regresyon algoritması titrasyon eğrisi Reseptör ligand müdahalesini ayrışma sabiti K türetmek açıklanmıştır. Bu protokol ile bir yılan zehri elde edilen inhibitörü kollajen bağlayıcı A-etki integrin α2β1, etkileşim için örneklenir. İntegrinler hücrelerin etrafındaki hücre dışı matriks veya temel membran^10,11anchorage aracılık hücre adezyon molekülleri vardır. Ayrıca, ek moleküller sinyal ve yeni hücre organelleri, adhesomes, hücre-matris etkileşim^12,13, üzerine şekillendirme işe integrinler hücreleri ve hücre dışı matriks arasında önemli sinyalleri iletmek ¹⁴. kollajen, α2β1 Integra, ligand insan vücudunun en bol protein ve bağ dokusu¹⁵önemli iskele bileşenidir. Α2β1 integrin ve kollajen arasındaki etkileşimi bir integrin α2 alt birimi A etki tarafından aracılık ettiği. İntegrin α2A-etki alanı, kollajen bağlama için gereklidir ve yapısını stabilize bir divalent ba * içerir. Mutantlar hangi biri gibi yüzey maruz kalan Y216 glycine için yerine α2A etki alanının yanı sıra yaban türü formlar kolayca recombinantly bir bakteriyel ifade sisteminde üretilen ve onların oligo-His-etiketleri ile bir NiNTA ile izole bir sonraki diyaliz TRIS arabelleğe alınmış serum (TBS; 50 mM TRIS/HCl, pH 7.4, 150 mM NaCl) içeren 2 mM MgCl₂¹⁶karşı montaj sütun. Bicinchoninic asit tahlil (BCA) ile onların konsantrasyonları belirlenmiştir ve onların eroine geleneksel SDS-PAGE tarafından test edilmiş ve Coomassie-parlak mavi R250 ile lekeli.

Α2β1 integrin ve kollajen arasındaki etkileşimi bağlama yılan zehri bileşeninin Malaya çukur engerek (Calloselasma rhodostoma)^16,17rhodocetin tarafından engellendi. Bu titrasyon ELISA içinde çözünür bir ligand olarak kullanılan, rhodocetin ham saflaştırıldı¹⁶daha önce açıklandığı gibi zehir. HEPES arabelleğe alınmış serum (HBS; 10 mM HEPES/NaOH, pH 7.4, 150 mM NaCl) içinde çözünmüş ve -20 ° C'de dondurulmuş depolanır Onun konsantrasyonu BCA tarafından tespit edildi ve saflığı SDS-PAGE tarafından kanıtlanmış oldu. Bir antagonisti rhodocetin sadece kollajen için integrin bağlama engeller α2β1 A etki alanı, ama aynı zamanda böylece herhangi bir kollajen hücreleri ya da trombosit¹⁸sinyal önleme integrin etkin olmayan biçimi stabilize. Rhodocetin reseptör hedefine ile ayrışma sabiti belirlemek ve böylece onun moleküler mekanizması ve ilaç potansiyel örneğin, antitrombotik bir ajan olarak çözmek Biyomedikal büyük önem taşımaktadır. Bu amaçla, ELISA onun değerlendirme de dahil olmak üzere anlatılan bir titrasyon hangi bir 1:1 etkileşim stoichiometry ile hemen hemen her Reseptör-ligand etkileşim için geçerlidir.

Protokol

1. stok çözümleri

1. 10 x TBS 100 mL pH 7.4 çözüm hazırlamak için 6,06 g TRIS ve NaCl 8,77 g 90 mL deiyonize su içinde dağıtılması, pH %7,4 37 HCl çözüm için ayarlamak, birimin 100 ml deiyonize su ile doldurun ve çözüm filtre.
2. 100 mL 1 hazırlamak için M HEPES/NaOH, pH 7.4 çözüm, HEPES 23.83 g 90 mL deiyonize su içinde erimesi, pH 7.4 ile 1,5 M NaOH için ayarlamak, birimin 100 ml deiyonize su ile doldurun ve çözüm filtre.
3. 100 mL 5 M NaCl çözeltisi hazırlamak için NaCl 29.2 g 90 mL deiyonize su içinde çözülür. Birimin 100 ml deiyonize su ile doldurun ve çözüm filtre.
4. 100 mL 1 M MgCl₂ çözeltisi hazırlamak için çözülür 20.33 g MgCl₂ · 6H₂O 90 mL deiyonize su içinde. Birimin 100 ml deiyonize su ile doldurun ve çözüm filtre.
5. %5 ısı inaktive BSA su hazırlamak için BSA (kesir V, pH 7,0) 2.5 g 50 mL tüp içinde ağırlığında ve 45 mL deiyonize su geçiyoruz. Çözüm 50 ml deiyonize su ile doldurun ve 45 dk. bir buz banyosu içinde serin ve -20 ° C'de depolamak için bir su banyosu 68 ° C'de çözümde ısı
6. Sulu % 25 oxazolidin çözüm hazırlamak.
   Dikkat: Oxazolidin zararlı olup olmadığını yuttu, toksik Solunduğunda ve burns neden olur. Koruyucu giysiler, eldiven, giyim ve göz/koruma yüz.
7. Tavşan anti-serum yukarıda açıklanan¹⁹kaldırın. Anti-serum titresi standart protokolleri²⁰göre belirlendi.
8. Anti-tavşan immünglobulin-antikorlar ile alkalen fosfataz Birleşik keçi gelen hazır olun.
9. 100 mL 0.1 M glisin çözeltisi hazırlamak için glisin 90 ml deiyonize su, 0.75 g geçiyoruz. 1,5 M NaOH çözüm ile 10.4 için pH ayarlama, birimin 100 ml deiyonize su ile doldurun ve çözüm filtre.
10. 100 mL 0.5 M Zn (II) hazırlamak için-asetat çözüm, 10,98 g Zn (II) dağıtılması-asetat · 2H₂O 90 mL deiyonize su içinde. Birimin 100 ml deiyonize su ile doldurun ve çözüm filtre.
11. 100 mL 1,5 M NaOH çözeltisi hazırlamak için 90 mL deiyonize su 6.0 g NaOH geçiyoruz. Birimin 100 ml deiyonize su ile doldurun ve çözüm filtre.

2. arabellekleri hazırlayın ve çalışma çözümleri

1. 5 deiyonize mL 10 x TBS pH 7.4, 45 mL ile su sulandırmak ve bir 1 M MgCl₂ hisse senedi çözeltinin 100 µL ekleyin. Oda sıcaklığında tutmak. TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂ çözüm için reseptör ve microtiter tabak yıkama immobilizasyon arasındadır.
2. Isı inaktive BSA suda % 5 ve 10 x TBS, 5 mL pH 7.4 50 mL deiyonize su ile 10 mL seyreltik. 100 µL 1 M MgCl₂ hisse senedi çözüm çözüm iyi ekleyip karıştırın. Buz üstünde tutmak ve -20 ° C'de daha fazla deneyler için saklayın Not % 1 BSA TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂ içinde o 2.5 mL her titrasyon eğrisi için gereklidir.
3. 1 2.5 mL seyreltik M HEPES/NaOH, pH 7,4 ve 1.5 mL 5 M NaCl çözüm 50 ml deiyonize su ile 100 µL 1 M MgCl₂ çözüm ekleyip karıştırın iyice 50 mL HBS, pH 7.4: 50 mM HEPES/NaOH hazırlamak için çözüm , 150 mM NaCl.
4. 1 M MgCl₂ hisse senedi çözüm 5 µL ekleyip 2 µL 0,5 M Zn (II)-asetat hisse senedi çözüm 5 mL 0.1 M glisin çözüm, pH alkalen fosfataz (AP) arabellek (0.1 M glisin çözüm, pH 10.4, 1 mM MgCl₂, 0.2 mM Zn(II)-acetate). hazırlamak için 10.4 için

3. immobilizasyon bir Microtiter plakasına reseptör (Integrin α2A-etki alanı)

1. İntegrin α2A-etki alanında TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂ 5 µg/mL nihai bir konsantrasyon için hisse senedi çözüm sulandırmak.
   Not: 12 iyi satır yarım alan-microtiter plaka oluşan bir titrasyon eğrisi için 650 µL kaplama çözüm birimdir.
2. Her şey yarım alan-microtiter tabakta bir satırın 50 µL/kuyu ile 5 µg/mL kaplama çözüm integrin α2A-etki alanı (vahşi-türü veya mutant) doldurun. Her titrasyon satır en az çoğaltmaları gerçekleştirin (Bu örnekte dördüz; olarak şekil 1' deki microtiter plaka yerleşimini bakın).
3. Plaka folyo ile kapatın veya bir kapak ile kapatın. Plaka 4 ° C'de gece bırakın.

4. yıkama Kuyu yapımı tabak iki kez TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂ ile kaplı

1. Çözünür reseptör kaldırmak için plastik yüzey-değil var immobilize tarafından fiziksel adsorpsiyon, kaplama çözümü kaldırmak ve her doldurmak molekülleri MgCl₂TBS, pH 7.4, 2 mM 50 µL ile iyi.
2. Yıkama çözüm kaldırın. Kuyuları kuru olmazlar sağlamak. Bu nedenle, kalan sıvı kaldırmak için bir doku bez microtiter tabağa dokunun değil. Multistep bir pipet veya çok kanallı pipet kuyuları hızlı bir şekilde doldurmak için kullanın.
3. Bir kez bu çamaşır tekrarlayın.

5. nonspesifik bağlama sitelerini engelleme

1. TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂ her şey için 50 µL % 1 BSA çözüm ekleyin.
2. Wells folyo ile yeniden mühürlemek veya bir kapak ile kapatın.
3. Wells, oda sıcaklığında 1 h için kuluçkaya.
   Not: Bu protokol kuluçka adımlardan herhangi birini bir sallanan veya sallayarak platform üzerinde gerçekleştirilebilir. Ancak, bu gerekli değildir ve denemenin sonucu değiştirmez.

6. Rhodocetin Ligand bir seri seyreltme satırı hazırlanması

1. Rhodocetin başlangıç konsantrasyonu ve seri seyreltme ligand konsantrasyonu uygun bir dizi elde etmek için ve bir minimum ve maksimum sinyal ile tam titrasyon eğrisi kaydetmek için seyreltme faktörü değişir. Bu deneyde, 243 nM rhodocetin bir başlangıç konsantrasyonu ve 2.3 bir seyreltme faktörü istihdam. Rhodocetin hisse senedi çözüm seri seyreltme satır en yüksek ligand konsantrasyonu sulandırmak. 2.3 bir seyreltme faktörü ile her titrasyon eğrisi için 243 nM (Yani, 15,2 µg/mL) rhodocetin çözüm %1 115 µL hazırlamak BSA/TBS, pH 7.4, deney tüpü #1 2 mM MgCl₂ .
2. 65 µL % 1 BSA çözüm TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂ #2-#11 etiketli 10 test tüpleri doldurun.
3. #1 için tüp rhodocetin seyreltme 50 µL aktarmak tüp #2, her iki çözüm mix (Toplam birim: 115 µL; seyreltme faktörü: 1:2. 3) toz ve ardından test tube #3, vb bu karışım üzerinden transfer 50 µL
4. Bu seri seyreltme test tüpü #11 kadar devam edin.
   Not: 6.1 6.4 adımda verilen birimleri bir titrasyon eğrisi için yeterlidir. Bu birimler çoğaltır sayısı ile çarpın. Bu durumda, sekiz titrasyon eğrileri (iki α2A etki alanı form dördüz) gerçekleştirmek ve aşağıdaki birimler hazır olun: rhodocetin çözüm test tüpü #1; en yüksek konsantrasyon, 920 µL TBS, pH 7.4 her test tüpleri #2 #11 içinde doldurmak için 2 mM MgCl_%2 1 BSA 520 µL; ve bir tüp transferi birimden diğerine 400 µL.

7. bağlama Ligand (Rhodocetin) için farklı konsantrasyonlarda immobilize reseptör (Integrin α2A-etki alanı)

1. Engelleme çözüm microtiter plaka kuyulardan vakum bir çizgiyle kaldırın.
2. Hemen rhodocetin çözüm %1 50 µL eklemek BSA/TBS, pH 7.4/MgCl₂ çözüm test tüpüne wells sütun 1, deney tüpü #2 sütun 2,vb ekle 50 µL TBS, pH %7,4 1 BSA, kuyu için çözüm #1 , 2 mM MgCl₂ (arabellek engelleme ve seyreltme) ligand-Alerjik denetimi olarak sütun (bkz: microtiter plaka, şekil 1yerleşimini) 12 kuyu için.
3. Wells folyo ile yeniden mühürlemek veya bir kapak ile kapatın.
4. Wells, oda sıcaklığında (20-22 ° C civarında) 1,5 saat için kuluçkaya.

8. yıkama Wells, plaka iki kez HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂ ile

1. Bağlı olmayan ligand molekülleri kaldırmak için bağlama çözüm kaldırın ve her doldurmak HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂50 µL ile iyi. Sonra yıkama çözüm kaldırın.
2. Kendine iyi bak kuyuları kuru olmazlar. Bu nedenle, kalan sıvı kaldırmak için bir doku bez microtiter tabağa dokunun değil. Multistep bir pipet veya çok kanallı pipet kuyuları hızlı bir şekilde doldurmak için kullanın.
3. Bir kez bu çamaşır tekrarlayın.

9. reseptör bağlı Ligand %2.5 ile düzeltmek HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂ oxazolidin

1. Bir taze % 2.5 oxazolidin çözüm %1 25 oxazolidin çözümün parçası ve HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂9 bölümlerini karıştırarak hazırlayın.
2. Her şey microtiter plaka HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl_%22.5 oxazolidin çözümünde 50 µL ile doldurun. Oda sıcaklığında 10 dk microtiter plaka kuluçkaya.

10. plaka üç kez yıkama Wells'le TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂ 50 µL/kuyu

1. -E doğru çıkarmak ve aşırı oxazolidin devre dışı bırakabilirsiniz, fiksasyon çözümü kaldırmak ve her doldurmak TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂50 µL ile iyi. Yıkama çözüm kaldır.
   Not: microtiter plaka oxazolidin içeren fiksasyon çözüm bir tabak içine dökün ve sonra bu TBS, pH 7.4 eşit bir birimi tarafından inaktive fiksasyon çözüm atın.
2. Kendine iyi bak kuyuları kuru olmazlar. Bu nedenle, kalan sıvı kaldırmak için bir doku bez microtiter tabağa dokunun değil. Multistep bir pipet veya çok kanallı pipet kuyuları hızlı bir şekilde doldurmak için kullanın.
3. İki kez bu çamaşır tekrarlayın.

11. reseptör bağlı Ligand tarafından ELISA miktar

1. TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl_%21 BSA 50 µL/iyi birincil antikor çözüm ekleyin. Birincil antikor bir tavşan anti-serum rhodocetin¹⁹karşı kaldırdı, 1:2,000 TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl_%21 BSA içinde seyreltilmiş çözümdür.
2. 75-90 dk oda sıcaklığında plaka kuluçkaya. Plaka bütün wells üç kez TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂50 µL/kuyu ile yıkayın. Adımları yıkama, microtiter plaka üzerine bir doku dokunarak üç sırasında bez gerekli değildir.
3. TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl_%21 BSA 50 µL/iyi ikincil antikor çözüm ekleyin. Bu amaçla, ikincil antikor, keçi antikorlar immünglobulin hedefleme tavşan TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl_%21 BSA içinde 1:2,000 için alkalen fosfataz ile Birleşik oranında seyreltin. 75-90 dk oda sıcaklığında plaka kuluçkaya.
4. 4-nitrophenyl fosfat disodyum tuzu hekzahidrat (fosfataz substrat) AP arabellek (0.1 M glisin çözüm, 1 mM MgCl₂ ve 0.2 mM Zn(II)-acetate) içeren pH 10.4,. 5 ml içeren bir 5 mg tablet çözülerek AP tespit edici çözüm hazırlamak
5. Plaka bütün wells üç kez TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl₂, hemen sonraki adım gerçekleştirmeden önce 50 µL/kuyu ile yıkayın. Bir doku bez microtiter tabağa son yıkama adımdan sonra sıvı tüm izlerini kaldırmak için dokunun.
6. 50 µL/iyi AP tespit edici çözüm microtiter plaka wells için ekleyin. AP tespit edici çözüm derhal mümkün olduğunca aynı anda enzimatik dönüşüm başlatmak için bütün wells ekleyin. Bu nedenle, bir çok kanallı pipet kullanın.
7. En yüksek ligand konsantrasyonu Wells'le çözümde çevirmek kadar sarı oda sıcaklığında plaka kuluçkaya.
   Not: Kuluçka süresi 5 min ve sinyal şiddeti bağlı olarak 1 saat arasında değişebilir.
8. Fosfataz substrat çevrimi 50 µL/iyi 1.5 M NaOH çözüm ekleyerek durdurmak. Her iki çözüm de çizgi-Alerjik karıştırma sağlamak birkaç dakika için plaka ayakta bırakın. Aynı kuluçka dönemi bütün wells emri için bir çok kanallı pipet kullanın ve kuyu Bu adımda 11,8 AP tespit edici substrat olarak eklenen aynı sırada 1.5 M NaOH ekleyin.
9. Optik yoğunluk (OD) ölçmek 405 nm her iyi bir ELISA okuyucu tarafından.

12. titrasyon sinyalleri değerlendirilmesi

1. Ham veri, OD_405nm değerleri tablo Excel ile açın. Titrasyon eğrileri bu sinyal değerleri satırları okurken, değerleri bir sütun ve başka bir sütun eklenen ligand konsantrasyonları ile etiket işlemi tersine çevir.
2. Graphpad prizma 5 (sürüm 5.0) açın. Ana menüde yeni bir proje dosyasını açın. Yeni veri ve grafikaltında XY biçimini seçin. Y ekseni için Enter ve arsa her değer için tek bir noktadan seçeneğini seçin.
3. İki sütun, eklenen ligand konsantrasyonu kopyalayın ve değerleri (OD_405nm ) Excel dosyası ve GraphPad prizma veri sayfası yapıştırın sinyal X ve Y değerleri, sırasıyla.
4. GraphPad prizma 5 analiz alt programı açın ve Non-linear regresyon XY-analizaltında seçeneğini seçin. Kullanıcı tanımlı denklemi seçin ve yeni bir denklemi oluşturmak için Yeni düğmesine basın.
5. Titrasyon eğrisi denklem şeklinde yazın: Y =(Smax-Smin)*((X+R+K)-sqrt((X+R+K)^2-4*R*X)) /(2*R) + Smin + B * X Y S, sinyal değeri eklenen ligand L konsantrasyonu varlık ile yeni açılan şablon sayfasına , Konsantrasyonu olmak R immobilize reseptör, ayrışma sabiti olan K ve B arka olmak inişli. K gibi uygun kısıtlamaları tanımlamak > 0 ve R > 0.
   Not: Bu denklem Denklem 9 farklı bir formu aynı denklemdir.
6. Veri sayfasının değerleri yeni oluşturulan kullanıcı tanımlı denklem seçerek analiz. Tablo hesaplanan yaklaşım değerleri ile açın (K, Rt, Smax, Sminve B) hangi yazılım ekranın sol tarafında sonuç bölümü altında gösterilir.
   Not: Yazılım titrasyon eğrisi en az 5 veri noktalarından oluşuyorsa yinelemeli doğrusal olmayan regresyon yaklaştırarak 5 parametreleri belirler.
7. Parametreleri K, Rt, Smax, Sminve B titrasyon eğrileri her grup için istatistiksel olarak değerlendirmek ve parametreleri (mutasyona uğramış veya kimyasal olarak değişikliğin ligand veya reseptör) grup belirli özelliği ile aralarındaki ilişkileri belirlemektir.

Sonuçlar

ELISA sonra geliştirilmiştir, dönüştürülmüş alkalen fosfataz substrat, para- nitrophenolate sarı rengini, ilişkili rhodocetin ligand tutarı eklenen rhodocetin konsantrasyonları azaltılarak azalır gösterir sütun 1-11 (şekil 1). Sütun 12 rhodocetin-Alerjik Wells renksiz wells bir düşük arka plan sinyal göster.

Fotometrik miktar itibariyle 405 nm doğrudan bir analiz yaz...

Tartışmalar

Titrasyon ELISA Reseptör-ligand etkileşim ayrılma belirlemek için bir çok yönlü test sistemidir. Titrasyon ELISA ücretsiz ve ilişkili ligandlar etkili bir şekilde ayırmak için ve onların konsantrasyonları nicelik, çözümlemek için önemli ölçüde daha fazla çalışmalar zorunluluk kaçınmanızı sağlar ve yayınlar titrasyon ELISAs bağlama eğrileri kayıt yerine istihdam . Ayrıca, titrasyon ELISAs gerçekleştirmek ve reseptör ve ligand oldukça düşük miktarda gerektirir kolaydır. Ayrılma s...

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
TRIS	neoFrox	1125KG001
HEPES	Sigma-Aldrich	H4034
NaCl	Applichem	1,316,591,214
MgCl2	Merck	172571
integrin a2A, wild-type and mutant, recombinant		isolated in author's lab
NiNTA superflow column	Qiagen, Germany	30821
Coomassie-Brilliant Blue R250	Serva	35050
bicinchoninic acid assay (BCA), protein concentration determination kit	Fisher Scientific	23225
bovine serum albumine (BSA), fraction V	Applichem	A1391
25 % solution of glutaraldehyde	Merck	354400
anti-rabbit immunglobulin-antibodies from goat, conjugated with alkaline phosphatase	Sigma-Aldrich	A9919
Glycine	Applichem	A1377
Zn(II)-acetate	Applichem	A4324
NaOH	Applichem	A1551
Alkaline phosphatase substrate tablet (5 mg)	Sigma-Aldrich	S0942
Costar half-area microtiter plate	Thermo Scientific	Corning 3690
micro reaction tubes	Eppendorf	30120086
Microplate ELISA reader	BioTek	Synergy HT