Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada acemi protokollerde araştırmacılar için farmakolojik önemli bakteriyel cinsi Streptomycesfenotipleme başlatmak için mevcut.

Özet

Streptomycetes dünya çapında bulunur ve antibiyotik ve diğer ikincil metabolit geniş bir dizi üretmek evvel türe ait ipliksi toprak olan bakterilerdir. Streptomyces coelicolor laboratuvarda analizler çeşitli mükellef iyi karakterize, patojenik olmayan bir türdür. Fenotipleme yöntem tanımlamak burada S. coelicolor bir modeli streptomycete kullanın; Ancak, yakından ilgili bazı Aktinomiçes yanı sıra tüm üyeleri bu büyük cins, uygun yöntemlerdir. Fenotipleme yeni bir tür ortamda tespit Streptomyces karakterize gereklidir ve mutant suşları yeni izole Streptomyceskarakterize çok önemli bir ilk adım da. Fenotipleme yeterlilik bakteriyel geliştirme, hücre bölünmesi, kromozom segregasyon ve ikinci haberci sinyal çalışma içerir Streptomyces araştırma alanında giren birçok yeni araştırmacılar için önemlidir. Yeni toprak mikroplar yalıtım ile antibiyotik keşif son crowdsourcing öğrenciler için fenotipleme eğitim öğretim elemanları Streptomyces araştırma ve kendi üniversite veya yüksek okul alanına yeni için artan bir ihtiyaç sonuçlandı. Bu el yazması bakteriyel zorlanma yayma, depolama ve görsel ve mikroskobik açmasıyla karakterizasyonu için yöntemler açıklanır. Bu makale okuduktan sonra yeni araştırmacılar (Mikrobiyoloji eğitim laboratuvarları ve vatandaş bilim adamları) Streptomyces suşları işlemek ve görsel karakterizasyonu deneyler başlamak gerekir.

Giriş

Streptomycetes yeteneklerini sekonder metabolitler, ticari olarak mevcut antibiyotikler de gibi anti-tümör üçte dahil olmak üzere çeşitli üretmek için anti-HIV ve anti-paraziter ilaçlar bilinen gram-pozitif, ipliksi toprak bakteri vardır 1. S. coelicolor cins2,3 en genetik olarak karakterize üyesidir ve yöntem tanımlamak burada kullanılan türü. S. coelicolor agar orta büyür bir kapsamlı, dallanma bitkisel miselyum ilerliyor tek bir spor çimlenmesi ile başlar karmaşık bir yaşam döngüsü var. Yaşam döngüsü devam ettikçe, hava filamentler substrat miselyum yüzey gerilimi kırmak ve nihayet olgun, gri pigmentli Sporlar sonuçta dönüştürülen hücrelerin uzun zincirli ayrılır oluşur. Yeni kurulan bu sporlar dağılım sonraki yaşam döngüsü4başlangıcı kabul ettiğiniz anlamına gelir.

Farklılaşma onun karmaşık desen nedeniyle, S. coelicolor bakteriyel geliştirme çalışma için mükemmel bir model olarak hizmet vermektedir. Tarihsel olarak, mutasyonlar bloklar halinde iki büyük gelişimin için neden ve farklı görsel fenotipleri üretmek. Bld (kel) mutantlar hava miselyum oluşumu ve bulanık bir hava miselyum "kel" koloni görünüm imparting eksikliği sonucu için engellenir. Mutantlar spore oluşumunda inhibe ve olgunlaşma kabul edilir WHI (beyaz) mutantlar olarak çünkü onlar genellikle vahşi-türü düzeyleri gri spor pigment üretmek başarısız ve hava miselyum beyaz kalır. Diğer ilginç mutantlar antibiyotik üretim, hücre bölünmesi, kromozom segregasyon veya diğer önemli işlemleri4,5inhibe.

Streptomyces türleri birçok gelişimsel genlerin keşfi rağmen orada çok daha var doygunluk mutant ekranlarının eksikliği dayalı inanıyordu. Laboratuarlarımızda biz inşa ettik bir mini transposon sistemini kullanarak yeni gelişimsel genlerin tanımlamak devam edin. Rastgele mutagenesis deneylerde bizim transposon ile izole roman mutant suşları her yeni keşfedilen gen6,7olası rolü tanımlamak için fenotipik tarama geçmesi. Bakteriyel fenotipleme burada anlatılan yöntemleri transposon mutagenesis8,9,10,11,12'izole Streptomyces mutantlar alakalı, 13 ve kimyasal ve ultraviyole (UV) mutagenesis14, hem de recombineering15,16 kullanarak gen silme gibi mutasyonların yönlendirilmiş inşaat gibi rastgele diğer yöntemleri veya CRISPR-Cas9 (kümelenmiş düzenli olarak Interspaced kısa palindromik tekrarlar) genom teknoloji17,18,2019 ve nokta mutasyonlar düzenleme.

Antibiyotik direnci patojenler arasında giderek yaygın hale geldikçe, yeni antibiyotikler için ihtiyaç giderek daha acil21,22olur. "Küçük dünya girişimi" (veya SWI) bir etkili bilim, teknoloji, mühendislik ve matematik (kök) antibiyotik direnci crowdsourcing üniversite öğrencileri ve daha fazlası ile mücadele etmek için23 ve araştırma stratejisi24 öğreniyor Geçenlerde Lise öğrencileri. Desteklenen kurslar roman antibiyotik (http://www.smallworldinitiative.org) üretmek yeni toprak mikroplar belirleme çalışmaları içermektedir. Bu önemli bir kaynağı keşfedilmemiş antibiyotik Streptomyces türleri toprak geniş bir alanda bulundu ve habitatların25,26,27,28su olmaya devam edecektir inanılıyor, 29,31. Son zamanlarda, bizim laboratuvar ve başkalarının çalışmalarını keşfetti ve Morfoloji ve antibiyotik üretim7,32dahil olmak üzere gelişimi, düzenleyen Streptomyces türleri sinyal genler ile karakterize, 33. Değişiklikler bu genlerin ifadesinde bir değişim miktarı ve zamanlama üretilen antibiyotik neden. Yeni tür ve yeni mutantlar antibiyotik üreten yetenekli fenotipleme önemli olmaya devam edecektir. Yeni öğretim elemanları ve öğrencileri büyük katkıda bulunan ilaç keşif alanında olmak gibi bakteriyel fenotipleme eğitimde bu acemi bireylerin başarısı için gereklidir. Ayrıca, bu deneyler yüksek okul kök veya Üniversitesi Mikrobiyoloji eğitim laboratuvarları için uysal vardır. Temel mikrobiyal genetik ilkeleri ayarlama bir öğretim laboratuvarda bir gösteri temsil ederler.

Protokol

1. aletleri, Kültür medya, çözümleri ve Petri yemekler hazırlayın

  1. Otoklav kürdan bir 50 mL ölçek steril tutmak için alüminyum folyo ile kaplı.
  2. -Ecek var olmak bütün kuru mallar sterilize kullanılan (ipuçları, sopa, Züccaciye, vb) bir Otoklav içinde.
    Not: dikkat! Kullanılan basınçlı kap modeli için tüm güvenlik yönergelerini izleyin. Basınçlı kaplar, patlama ve Buhar ve sıcak yüzeyler, malzemeler ve medya ile temas yanıkları için bir riski. Otoklav güvenliği için "Uygun kullanımı, basınçlı kaplar"34görüntüleyin.
  3. MS kültürler büyümeye agar (Mannitol Soya unu (SFM))14 hazırlayın.
    1. 5 g soya unu ve agar 5 g 1 L şişesi için ekleyin.
    2. Doz mannitol musluk suyu 250 ml 5 g dağıtılması ve soya unu ve agar içeren balonun dağıtmak.
    3. 121 ° c, en az 30 dk 15 psi bir köpük Tak ve folyo balon ve basınçlı kap açılması için ekleyin.
      Dikkat: Bu orta kolayca kaynar. En az dört kez MS agar autoclaved olmak gerçek hacmiyle tutabilir bir şişesi kullanın. Standart bir düdüklü tencere benzer güvenlik konuları ile bir otoklav yerine kullanılabilir. Alternatif olarak, bir mikrodalga fırın bir otoklav erişimin mümkün35,36değilse kitle iletişim araçları ve malzemeleri sterilize etmek için kullanılabilir. Lise öğretmeni de yerel kolej veya üniversiteler autoclaved malzemeleri erişmek için birlikte çalışmak isteyebilirsiniz.
    4. Serin ortam rahat kadar yeterince işlemek. 50 ° c altındaki sıcaklıklarda agar katılaşır çünkü çok uzun süre sakin değil dikkatli olun
    5. Her Petri kabına dibinde yaklaşık yarısı kadar MS agar balonun üzerinden steril Petri yemekler dökün tam (medya Petri kabına başına yaklaşık 25 mL). Ağar kaplamalar kullanmadan önce kuvvetlendirmek için izin verir. Ağar kaplamalar bir plastik torba gerekinceye kadar oda sıcaklığında saklayın.
      Not: özellikle antibiyotik medyada gerekirse ağar kaplamalar da bir buzdolabında saklanabilir.

2. çizgi Streptomyces yayma için plakalar üzerine

  1. Çizgi Streptomyces suşları üzerine MS ağar kaplamalar çeyreği gibi standart bir yöntem kullanarak tek kolonileri için yöntem Sanders, 201237gösterildiği gibi çizgi.
    Not: İnoculating bir döngü veya steril kürdan kullanılabilir. İsteğe bağlı: Diğer medya yaygın olarak R2YE ve en az medya14gibi Streptomyces türleri için kullanılır.
  2. Tabak 30 ° C'de kuluçkaya
  3. Levhalar her 4-6 gün bir koloni seçerek restreak. Rasgele mutasyona eğilimli olurlar kolonileri yaş.

3. bakteriyel depolanmasında gliserol Mycelial hisse senetleri oluşturun

Not: Mycelial hisse senetleri WHI dahil olmak üzere tüm Streptomyces suşları ve bld suşları ve sporulation tamamlanması mümkün değildir diğer gelişimsel mutantlar için oluşturulabilir.

  1. 200-500 µL % 20 gliserol steril ahşap Kavela aplikatör kullanarak, kolonilerde 15-20 macerate.
  2. Bulamaç kolonileri macerated bir micropipette veya steril transfer pipet kullanarak bir 1,5 mL dondurucu kültür Tüp, aktarın.
    Not: Başka bir yerde micropipette kullanım temellerini ele alınmıştır38.
  3. Son hacim yapmak için yeterli % 20 gliserol eklemek 1 mL ve karışımı yavaşça. Örnekleri-80 ° C'de depolayın
    Not: dikkat! Kullanım kriyojenik Emanet eldiven ve önlük ile aşırı soğuk ilişkiden cildi korumak için. Alternatif olarak, bir-20 ° C-dondurucu potansiyel uzun vadeli depolama süresi azalma ile kullanılabilir. Aşırı soğuk ve canlılığı genişletmek için çözdürme kaçının.

4. suşları için gliserol Spore stokları oluşturma yeteneğine sahip Sporulation

Not: Spore hisse senetleri için uzun vadeli canlılığı tercih edilir ama sadece sporulation tamamlama özelliği olan suşları için uygulanabilir.

  1. Maserasyon konfluent çim büyüme37elde etmek için bir agar plaka üzerinde malzeme (Kimden adım 3.1) 100 µL yayıldı.
    Not: Sanders37 yılında yayılan kaplama gösterilir (değiştirme: bir pikap gerekli değildir.). Plaka tek eliyle yaymak yumuşak içinde ileri geri hareket etmek diğer yandan kullanırken hareket agar medya karşısında kapatılabilir.
    1. Damlalıklı 100 µL maserasyon miselyum bir MS agar plaka ortasına.
    2. Bir cam veya metal aracı tarafından kısmen % 70 etanol batış ve etanol buharlaşma hızı yavaş yavaş bir Bunsen burner alev aracılığıyla bir kez yayıcı geçtikten yayılan sterilize.
      Dikkat: Etanol çok kolay alevlenebilir. Yanan yayıcı etanol yerleştirin veya etanol etanol çanak içine düşmek için yanan damla izin değil. Alternatif olarak, bir tek kullanımlık steril pamuklu çubukla istemek hayır etanol ya da alev plaka üzerinde bakteri yaymak için kullanın.
    3. MS agar bir el ile bir geri kullanırken plaka ve plaka steril dağıtıcı ile aşılamak için ileri hareket açın.
    4. Zorlanma iyi sporulated kadar 5-7 gün 30 ° C'de için kuluçkaya.
      Not: Kuluçka kez türler ve zorlanma bağlı olarak değişir.
  2. 2 mL steril serum fizyolojik ekleyin (% 0.8 NaCl) sporulation uğramıştır konfluent bir çim Streptomyces hücre ortasına.
  3. Sporlar yavaşça bir kısır döngü (ya da bir pamuk tomurcuğu), yavaş yavaş aşı çim kenarına doğru hareket ile miselyum yüzey sürtünme hasat.
  4. Serum fizyolojik içeren damlalıklı 15 mL konik tüp içine sporlar. Girdap şiddetle bireysel hücrelere spore zincirleri kırmak için.
  5. Yaklaşık 2500 x gde 5 min için oda sıcaklığında santrifüj kapasitesi.
  6. Damlalıklı süpernatant ve atma. Spore pelet tarafından dinç girdap ajitasyon kalan sıvı küçük miktarda dağıtmak.
  7. Sporlar çözüm yukarı ve aşağı bir pipet ile çizerek 1 mL % 20 gliserol resuspend.
  8. Gliserol spor stok 1,5 mL dondurucu tüp aktarın. Mağaza-80 ° C'de
    Uyarı: Kullanım kriyojenik Emanet eldiven ve önlük ile aşırı soğuk ilişkiden cildi korumak için. Alternatif olarak,-20 ° C-dondurucu potansiyel azalma uzun süreli saklama süresi canlılık ile kullanılabilir. Aşırı soğuk ve canlılığı genişletmek için çözdürme kaçının.

5. Mutagenesis gerçekleştirmek

  1. Başvurulan giriş olarak istediğiniz sonuçlara dayalı ve yakın Baltz, 201639değerlendirme mutagenesis gerçekleştirin.
    Not: Bazı fenotipleme deneyler mutagenesis, çevreden yeni türler tanımlamak için niyet gibi kullanmanız gerekmez. Rastgele mutagenesis yöntemleri transposon8,9,10,11,12,13, UV radyasyon ya da kimyasal madde14kullanımını içerir. Site yönetmen-mutagenesis15,16,17,18,19,20 teknikleri belirli nokta mutasyonlar, silme, oluşturmak için kullanılan veya diğer türleri mutasyonlar.

6. karşılaştırmak ve görsel görünümünü kaydetmek

  1. Koloni morfolojisi ile karşılaştırıldığında belgili tanımlık vahşi-tipi üst soy her mutant için adım 2 olduğu gibi tüm suşların çizgiler sonra dikkat edin. Coelicolor S. veya ne zaman yeni Streptomyces türleri karakterize venezuelae, S. gibi iyi çalışılmış bir tür olan için yeni izole karşılaştırmak. Not temel şekli, koloni yüzey gibi özellikleri (Şekil 1) (bulanık, kel, buruşuk, vb), opaklık, yükseklik ve pigmentasyon (ayırt bitkisel miselyum, hava miselyum ve/veya çevredeki orta arasında).
  2. Bir MS agar plaka ve çizgi vahşi tipi ve mutant suşları kama desen (Şekil 1) etiketleyin. Hiçbir zorlanma çapraz bulaşma önlemek için başka bir soy dokunur dikkat et. Not suşları tabağa çizgili saat ve tarihi. Tabak 30 ° C'de kuluçkaya
  3. Yetişkin Petri yemekler arka homojenize için renkli veya beyaz kağıt yerleştirin. Kağıt soy adı, tarih, inkübasyon sıcaklığı ve süresi üzerinde çizgiler ilk tabaktan yazmak. Plaka dijital resim karışıklık simge durumuna küçültülmüş Kağıt arka plan üzerinde yazılı ikinci bilgi ile alın.
    Not: Eğer şekil hazırlık için kullanılmak üzere yazılı fotoğraftan daha sonra kırpılmış olarak.

7. aşama-kontrast mikroskobu gerçekleştirmek

  1. Cımbız % 70 etanol yıkama ve sonra etanol buharlaştırma Bunsen burner alev tarafından sterilize. Soğumasını bekleyin.
  2. Coverslips % 70 etanol yıkama ve sonra onları steril Petri kabına içinde kuru izin tarafından sterilize.
  3. Coverslip Asansör incelenmesine bakterilerin büyüme hazırlayın.
    1. Steril bir coverslip kadar steril cımbızla almak ve bakteriyel büyüme yoğun nerede coverslip bir MS agar tabağa yerleştirin. Coverslip arkasında cımbızla bakteriyel Sporlar ve hava miselyum yeterli transferini sağlamak için hafifçe bastırın.
  4. Coverslip plaka almak ve hücre malzemesi yanında mikroskop slayt yüzeyinin % 50 gliserol suda montaj için hazırlanan bir 15 µL damla ile doğru bakacak şekilde yerleştirin. Hava kabarcıkları yanında duvar ilanı coverslip slayt 45 ° açıyla azaltmak ve % 50 gliserol düşmesine izin.
  5. (İsteğe bağlı) Mühür ve netlik slayt korunması için cilası.
  6. Frohlich40 yaşam döngüsü sırasında çeşitli zaman aralıklarında açıklandığı faz kontrast mikroskobu gerçekleştirin.
    Not: Yinelenen görüntüleme için daha kapsamlı bir analiz ve gelişmede gecikmeler algılama yeteneğini sağlar. Bağımsız gözlemler hassasiyet ve tekrarlanabilirlik sağlamak için yineleyin.
    1. Hazırlanmış slayt mikroskop sahnesinde yerini ve kapak notu ortasına doğru bir damla daldırma yağı ekleyin. 100 X faz amacı yerleştirin ve kondansatör taret uygun "eşleştirme" faz ayarına döndürün. Objektif lens yağ ile temas halinde olduğunu bir kez sadece hassas ayar düğmesi kullanarak görüntüyü odaklan.
    2. Birkaç alanları mutant suşları ve form Sporlar, spor boyutu ve şekli ve genel sayısını (bkz. Şekil 2) Sporlar, yeteneği gibi vahşi türü arasındaki fark ve tutarlı farklılıkları ayırt etmek görüş inceleyin.
      Not: Faz kontrast mikroskobu alternatifleri fark girişim kontrast (DIC) mikroskopi40 içerir ve kristal violet boyama gibi parlak alan mikroskoplar41, basit boyama teknikleri için kullanın.

8. gerçekleştirmek floresans mikroskobu

  1. Cımbız % 70 etanol yıkama ve Bunsen burner alev çalışan tarafından sterilize.
  2. Steril bir coverslip kadar steril cımbız ve bakteriyel büyüme belirgin nerede yer bir MS agar plaka üzerinde almak. Coverslip arkası bakteriyel Sporlar ve hava filamentler yeterli transferini sağlamak için cımbız ile hafifçe dokun.
  3. Coverslip plaka almak ve böylece hücre malzemesi ile yan, coverslip manipülasyon kolaylığı için kartlar üzerinde karşı karşıya olduğu yer.
  4. Coverslip buz gibi metanol (20 x 20 mm2 coverslip için ~ 300 µL) ile sel ve tamamen kuru hava girsin.
    Dikkat: Bir alkil metanol var. Cilt ile doğrudan temas önlemek.
  5. Coverslip yavaşça dağıtımı ve çözüm kaldırma fosfat tamponlu tuz (PBS)42 yılında üç kez yıkayın.
  6. 100 μg/ml Propidium iyodür 15 µL eklemek ve/veya 10 μg/mL buğday-mikrop-Agglutinin % 50 gliserol etiketli mikroskop slayda yapılan floresein isothiocyanate (WGA-FITC) Birleşik.
    Not: Propidium iyodür DNA WGA-FITC hücre duvarı yeşil lekeleri ise kromozom DNA konum algılamak için kırmızı leke bırakır.
  7. Coverslip ön yüzü aşağı dönük floresan leke cam slayt üzerinde damla üzerine tersine çevirin. (İsteğe bağlı) slayt korunması için açık oje ile kapatın.  Boya ışığa duyarlı olduğu gibi 15 dakikalığına bir karanlık veya loş odada kuluçkaya.
  8. Slaytları bir 100 X objektif lens bir faz kontrast veya propidium iyodür (veya 535/617 nm uyarma/emisyon maxima 'Texas Red' filtre kümesi) ve FITC için epifluorescence uyarma küpleri ile donatılmış DIC mikroskop kullanarak altında gözlemlemek (FITC filtre kümesi veya 490/525 nm uyarma/emisyon maxima).
  9. Slayt üstünde belgili tanımlık sahne ve kaba ve ince ayar düğmeleri kullanarak odak yerleştirin.
  10. Başka bir yerde43gösterildiği gibi floresan gözlemlemek.
  11. Sporlar daha düşük floresan yoğunluğu44ile tanımlanmasına yardımcı olabilir bir ücretsiz görüntü analiz yazılım paketi kullanın.

Sonuçlar

İlk fenotipleme deneyler yeni türler ve suşların karakterize için gerekli olan ve filogenetik ve yeni tür karakterize için kullanılan DNA-DNA hibridizasyon deneyleri için ücretsiz bir yaklaşım olarak kullanılabilir. Streptomyces mutantlar gibi kimyasal, UV, rastgele mutagenesis yöntemleri kaynaklanan veya transposon mutagenesis genellikle ağar kaplamalar doğrudan, görsel ekranlarda aracılığıyla tanımlanır. Streptomyces kolonileri değişiklikleri fenotip ile karşılaştırıldığında vahşi-tipi, ebeveyn zorlanma için incelenir. Örneğin, bir daha açık renkli hava miselyum gri pigment sporulation bir üründe neden daha düşük düzeyde gösterebilir veya bulanık bir görünüm eksikliği bir blok (Şekil 1) hava miselyum oluşumunda göstergesidir. Birçok streptomycetes bitkisel miselyum veya çevredeki agar pigmentli antibiyotik üretmek. S. coelicolor iki pigmentli antibiyotik gibi iki sigara pigmentli üretir. Actinorhodin mavi pigmentli antibiyotik ve undecylprodigiosin bir kırmızı pigmentli antibiyotik45. İlk görsel koloni ekranlar uğramıştır suşları için tek kolonileri streaking tarafından yayılır.

Potansiyel olarak mutantlar ilginç görsel kimlik suşları için mikroskobik inceleme tabi tutulmaktadır. Faz kontrast mikroskobu vahşi tipi zorlanma bir denetimi (Şekil 2) olarak kullanarak Streptomyces mutantlar için gelişimsel kusurlar, incelenmesi için özellikle uygun. Vahşi türü S. coelicolor kolonileri genellikle bir hava miselyum büyüme MS agar üzerinde 30 ° C'de yaklaşık iki gün ve sporlar uzun zincirleri tarafından büyüme tarafından üç gün üretmek. Yaşam döngüsü biraz daha yavaş veya diğer medya türleri üzerinde daha hızlı ilerleme olacaktır. Bu mutantları vahşi türü olarak aynı büyüme koşullarda gelişimsel kusurlar ve gecikmeler hakkında kararınızı zaman analiz edilecek zorunludur. Kel mutantlar Sporlar agar medyada uzun süreli büyüme sonra neden olabilir. Bir beyaz mutantlar da spor oluşumu için gecikmiş olarak anılacaktır mutantların saygılı bir azalma Sporlar üretmek Sporlar şekli ve/veya boyutu kusurları ile üretilen, bolluk veya sadece üretmek daha düşük düzeyde Olgun, gri spor pigment46 . Başka mutantlar bugüne araştırıldı gecikmiş ya da sinyal molekülleri (Örneğin, döngüsel-di-GMP47) birikimi için etkilenen mutantlar gibi yaşam döngüsü ilerleme hızlandırılmış.

Yukarıda açıklanan ışık mikroskobu tekniği basit bir takip sporulation septa hücre duvarına leke leke kromozom DNA nucleoids ve fluorescently etiketli buğday tohumu agglutinin propidium iyodür kullanılarak floresans mikroskobu olduğunu. Bir kromozom eksik Sporlar, boyama (Şekil 3) boyama azalma görünüyorsa normal tanımlanan daha az DNA içeren sporlar kırmızı propidium iyodür yoksun olacak. Buğday tohumu agglutinin hücre duvarı leke için kullanılabilir ve hücre duvar boyama desenleri (yani, hücre bölünmesi kusurları) farklılıklar görülmektedir. S. venezuelae, son zamanlarda başka bir model olarak kullanılan bir tür suşu Şekil 4 vahşi türü içinde streptomycete daha hızlı yaşam döngüsü ve sıvı45', sporulate yeteneği nedeniyle lekeli WGA-FITC ile aydınlatmak için genellikle erken sporulation sırasında görülür bölünme septa merdiven benzeri dizisi.

Burada açıklanan ilk fenotipleme stratejileri aşağıda sonuçlanmalıdır: 1) için daha fazla çalışma; ilgi mutant suşları tanımlaması 2) yeni tanımlanan mutant ve mutasyona uğrattı genin potansiyel rolü hakkında edinilen bilgi; 3) daha fazla söz konusu gen rolünü netleştirmek için kullanılan sonraki deneysel adımlar izleyen bir dizi formülasyonu. Çevre yeni saptanan streptomycete durumunda araştırmacı bilgi zaten karakterize Streptomycestürleri karşılaştırıldığında potansiyel yeni türlerin kazanacaktır.

figure-results-4252
Resim 1: S. coelicolor, makroskopik koloni fenotipleri gösteren bir temsilcisi agar plaka fotoğrafı. Agar plaka bulanık, gösterir gri görünümünü hava miselyum vahşi tipi S. coelicolor için zorlanma MT1110 (WT) çeşitli rastgele transposon ekleme gelişimsel fenotipleri mutantlarla ile karşılaştırıldığında. Mutantlar da bir hava miselyum [kel (bld)] veya azaltılmış spore pigmentasyon [Beyaz (WHI)] ile bir hava miselyum eksik vardır. Transposon mutantlar ekleme mutagenesis6,7için mini-Tn5 kullanarak oluşturulan. Suşları MS agar üzerinde 30 ° C'de 5 gün boyunca yetiştirilmiştir Petri kabına çapı, 100 mm.

figure-results-5116
Resim 2: bir temsilcisi hava gösterilen faz kontrast filmler filaman için S. coelicolor beyaz mutant suşları içeren rasgele transposon ekleme mutasyonlar. (A)gösterildi olduğu zaman uyumlu, düzenli aralıklı hücre bölünmeler, eşit olarak üreten uğramıştır bir temsilcisi vahşi tipi hava filament şeklinde ve Sporlar (MT1110) boyutlu. (B-F) Kalan panel çok farklı mikroskobik fenotipleri rasgele transposon mutagenesis yolu ile izole edildi çeşitli beyaz mutantların göster. Panel B sporulation uğramıştır değil, ancak bunun yerine filaman içinde şişkin alanlarda üretti bir hava filaman gösterir. C, Dve F uzun oklar mutantlar MIC42, MIC43 ve TH49 karakteristik anormal derecede büyük Sporlar gösterir. D panelinde kısa ok lysed spor bölmesi örneği gösterir. Panel E tipik mutant TH10 tarafından üretilen spor zincirlerinin kısmen dar küçük bölmeleri gösterir. Suşları MS agar üzerinde 30 ° C'de 5 gün boyunca yetiştirilmiştir Bu Şekil 1' de gösterilen alakasız mutantız. Bir vahşi türü spor yaklaşık 1.1 µm uzun ekseni üzerinde olduğunu. Ölçek çubuğu 2 µm. = Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

figure-results-6692
Şekil 3: S. coelicolor mutant kromozom segregasyon fenotipleri gösterilen temsilcisi filmler. (A) A diyagramı temsil gösterir (her spor kromozom DNA içeren) Sporlar zinciri için tipik vahşi-tipi, düzenli aralıklı boyama görünümü bir kromozom görüntüler bir mutant için aralıklı boyama deseni ile karşılaştırıldığında segregasyon kusur. (B) panelleri her çifti aynı spor diferansiyel girişim kontrast (DIC) görüntü sol tarafından zinciri gözlenen ve propidium iyodür lekeli floresan görüntü sağ tarafta gösterilir gösterir. Vahşi-türü fenotip (a, b) iki rasgele transposon ekleme mutantlar için (c, d ve e, f) karşılaştırılır. Oklar Sporlar DNA yoksun gösterir. Suşları MS agar üzerinde 30 ° C'de 5 gün boyunca yetiştirilmiştir Gösterilen resim 1 ve Şekil 2ilgisiz mutantız. Ölçek çubuğu 1 µm. = Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

figure-results-8004
Şekil 4: Floresan test S. venezuelae vahşi tipi baskı lekeli WGA-FITC ile. Bir hava filaman (A) A diyagramı yok girintilerine ile pürüzsüz ve sporulation faz kontrast mikroskobu ile karşılaştırıldığında sporulation erken bir aşamada gösterir hücre duvar boyama merdiven gibi dizi kullanarak görünür belirtisi atanmış WGA-FITC floresans mikroskobu altında kullanma o aynı filaman olarak başladı. Vahşi-türü S. venezuelae(B) Filmler. (bir) düzgün hava filamentler Sporlar zincirleri arasında bulunur. (b) panel gösterilen miselyum içinde bir, bir hava filaman geliştirme erken bir aşamada hücre duvarı yükünün bir merdiven gibi dizi sahiptir. Oklar, çapraz-duvarlar düzenli aralıklı oluşumu WGA-gelişimsel olarak ilişkili sporulation uğrar gibi o zaman uyumlu olarak içinde tek bir hava filament geliştirmek FITC tarafından lekeli gösterir. Zorlanma MYM (Maltose, YDoğu özü, Malt özü) MYM agar 38 h 30 ° C'de için üzerinde büyüdü Ölçek çubuğu 2 µm. = Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Tartışmalar

Burada Streptomyces araştırmacılar çalışmalar suşları yaymak ve hisse senetleri uzun süreli depolama için hazırlamak için gerekli adımları ekleyerek başlatmak için başlangıç için protokolleri mevcut. Biz o zaman Streptomyces suşları görsel ve mikroskopik karakterizasyonu protokollerde tanımlamak. Fenotipleme gelişimsel mutantlar bazı tipik ilk adımlar şunlardır: 1) vahşi türü kolonileri agar ortamdaki; göre mutant kolonileri görsel muayene 2) faz kontrast mikroskobu; ve 3) sporogenic hava hif floresans mikroskobu. Bu üç adımda görüntülenen fenotip dayanarak, çeşitli teknikler daha da belirli bir yük fenotip farketmek için istihdam edilebilir.

İlk fenotipleme deneyler genellikle yeni tür karakterize, mutantlar ilgi tanımlamak, kısmen mutantlar karakterize ve belirli bir gen tespit bir mutant fenotip üzerinde dayalı tipik rolü ayırt etmek başlamak için kullanılır. Yöntem tanımlamak burada zaten belirlemek ve Streptomyces mutantlar, kusurları ile hücre bölünmesi48,49yılında, de dahil olmak üzere çok çeşitli karakterize laboratuvarları öğretim Üniversitesi'nde kullanılmıştır 50 , 51 , 52 , 53 , 54, sporulation55,56, hava miselyum oluşumu57,58, antibiyotik üretim59, ikinci haberci sinyal47ve kromozom segregasyon 60. bu teknikler mutantlar fenotip genel olarak belirleyen hayati ilk adımlardır ve ilgi genlerin rolleri hakkında önemli bilgi büyük miktarda açığa vurmak. Yöntemleri kolayca Streptomyces diğer türler için uzatılabilir ve zaten S. griseus, S. venezuelae, S. uyuzve birçok diğer streptomycetes suşların açıklamak için kullanılmıştır. Burada açıklanan video protokolleri Streptomyces araştırma, alanlar gibi ilaç keşif alanında girerek yeni araştırmacılar için önemli bir kaynak hizmet bekleniyor. Bu antibiyotik direnci kriz ve yeni lisans öğrencisi araştırmacılar küçük dünya girişimi crowdsourcing çabaları katılmadan sayısız sayıda eğitmek mücadele için çalışan yeni öğretim içerir.

Burada açıklanan teknikler, üniversite ve lise sınıf kullanımı araştırma laboratuvarları, video ve metin içinde açıklanan değişiklikleri kullanarak ek olarak kolayca uyarlanabilir. Küçük liberal sanat Koleji'nde ilk yıl mikroskobu modülde öğrencisiydi suşları çizgi, suşlarının agar ortamında yetiştirilen dijital fotoğraf çekmek ve teslim edilmesini sonuçlandı faz kontrast ve floresan mikroskopi gerçekleştirmek güçlü bir Portföy-laboratuar 15 h temsil eden 3 hafta modülün sonundaki çok panelli şekiller. Yaklaşık 160 ilk yıl öğrenciler için 320 roman transposon mutant fenotipleme ilk sorumlu olduğunu. Lisans'da araştırma öğrencileri üç kurumlarında ek mutant ilk fenotipleme ve suşlarının birçoğu sonraki karakterizasyonu'na katılmıştır. Nispeten kısa sürede elde edilen kapsamlı veriler burada açıklanan protokoller değerini göstermektedir. Ek mutantlar yüzlerce gelecekteki karakterizasyonu için gliserol mycelial hisse senedi olarak depolanmıştır.

Burada açıklanan ilk deneyler çeşitli yöntemler için ilgi suşları ile ilgili bilgilerin kalitesi genişletmek için istihdam edilebilir. Mutasyon bilinmiyorsa, Genotipleme yöntemi türü ve/veya mutasyon konumunu belirlemek için istihdam edilmelidir. Örneğin, rastgele transposon mutagenesis vahşi-türü kromozom6,7,8,9,10,11,12,13 sonuçları ilk fenotipik ekranlar yukarıda açıklananlar gibi geçmesi kolonilerde. O zaman transposon konumunu ters polimeraz zincir reaksiyonu (iPCR)61gibi bir teknik kullanarak tespit edilmelidir. Yeni keşfedilen mutantlar genotip belirleme ilk karakterizasyonu takip önemli bir adımdır.

Sınıfta belirtilen veya daha fazla araştırma yoluyla araştırdı sonraki fenotipleme analiz için yaygın olarak kullanılan bazı gelişmiş yöntemleri protein ilgi için yerelleştirme desenleri belirlemek için etiketleme yeşil flüoresan protein (GFP) dahil, gen ifade analizleri gibi gerçek zaman kantitatif PCR (qPCR) ve küresel gen ifade desenleri vahşi-türü mutant RNA sıralama (RNA-seq) üzerinden karşı. Fenotipleme becerileri de genetik uluslara analiz için gereklidir. Uluslara deneyde bir gen vahşi tipi kopyasını bir mutasyona uğramış yeni eklenen alleli kaybı-in-fonksiyonu için mutasyona uğramış alleli telafi edebilirsiniz olup olmadığını belirlemek için girmiştir. Hem özgün mutant ve ebeveyn için çıkarılan zorlanma fenotip karşılaştırarak, vahşi tipi zorlanma gereklidir.

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Yazarlar Otterbein Üniversitesi Lisans öğrenci araştırma bursu ve öğrenci araştırma fonu Ödülleri GVK ve SGK kabul etmek istiyorum; ve dini Program Ödülü Otterbein Profesör Gilbert E. Mills Memorial donatılmış ve Biyoloji bölümü ve yer Bilimleri Fakültesi Araştırma ve burs ödülü aşı için donatılmış. Bert ve Jane boynuz donatılmış öğrenci araştırma fonu Bilimleri GVK ve SGK verildi. Yazarlar ayrıca minnetle Duquesne Üniversitesi Lisans Araştırma Programı Bursu finanse GVK ve SGK için kabul etmek istiyorum. Eski Juniata üniversite lisans araştırma öğrencileri, Ryan Johnson ve Lindsey Draper mikroskobu görüntüleri resimler 2 ve 3, için sırasıyla bulunmuştur.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
50% GlycerolSigma-AldrichG5516
Immersion Oil (Type DF)Cragille 16482
Lens PaperFisherbrand11-995
Sterile WaterGeneMateG-3250-1L
100% EthanolSigma-AldrichE7023
Propidium IodideInvitrogenP1304MP
Toothpicks (flat)Target081-22-1957
Pipette Tips (10 ml)GeneMateP-1240-10
Pipette Tips (200 ml)GeneMateP-1240-200Y
Pipette Tips (1250 ml)GeneMateP-1240-1250
Wooden Applicators 6''Solon Care070809
Cotton SwabsFisherbrand23-400-124
Soy Flour Bob's Red Mill 1516C164
D-MannitolSigma-AldrichM4125-1KG
AgarSigma-AldrichA1296-1KG
Glycerol 100%VWR amresco life science 0854-1L
0.8% NaCl (Saline)Sigma-AldrichSLBB9000V
1.2 mL freezer tubeNEST606101
Ultra low (-80°C) freezerSO-LOWU85-18
Cryo Safety GlovesBel-ArtH13201
Petri dishes Sigma-AldrichP5856-500EA
Cover slips #1.5Thomas Scientific64-0721
SlidesCarolina63-2010
AutoclaveTuttnauer2540E
Phase-Contrast Microscope OlympusBX40
ForcepsCarolina Biological624504
Bunsen BurnerCarolina Biological706706
MethanolSigma-Aldrich34860-1L-R
PBS (phosphate buffer saline)Sigma-AldrichP4417-50TAB
WGA-FITCBiotium29022-1
Clear nail polishOPI22001009000
Image JNIHFree Software
100 mL beakerPyrex USA1000-T
1 L beakerCarolina Biological721253
1 L flaskFisherbrandS63274
250 mL flaskPyrex USA4980
100 mL graduated cylinderCarolina Biological721788
500 mL graduated cylinder Carolina Biological721792
Stir BarFisher Scientific22-271825
CentrifugeEppendorf5810R
Camera for MicroscopeOlympusDP72
Nitrile Examination Gloves (Med)Bio Excell71011002
Vortex MixerCarolina Biological701077

Referanslar

  1. Barka, E. A., et al. Taxonomy, physiology, and natural products of Actinobacteria. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 80 (1), 1-43 (2015).
  2. Bentley, S. D., et al. Complete genome sequence of the model actinomycete Streptomyces coelicolor A3(2). Nature. 417 (2), 141-147 (2002).
  3. Redenbach, M., et al. A set of ordered cosmids and a detailed genetic and physical map for the 8 Mb Streptomyces coelicolor A3(2) chromosome. Mol. Microbiol. 21 (1), 77-96 (1996).
  4. McCormick, J. R., Flardh, K. Signals and regulators that govern Streptomyces development. FEMS Microbiol. Rev. 36 (1), 206-231 (2012).
  5. Flardh, K., Buttner, M. J. Streptomyces morphogenetics: dissecting differentiation in a filamentous bacterium. Nat. Rev. Microbiol. 7 (1), 36-49 (2009).
  6. Bennett, J. A. . Molecular Genetic analysis of division and development in Streptomyces coelicolor. , (2007).
  7. Hull, T. D., et al. Cyclic Di-GMP phosphodiesterases RmdA and RmdB are involved in regulating colony morphology and development in Streptomyces coelicolor. J. Bacteriol. 194 (17), 4642-4651 (2012).
  8. Petzke, L., Luzhetskyy, A. In vivo Tn5-based transposon mutagenesis of streptomycetes. Appl. Microbiol. Biotechnol. 83 (5), 979-986 (2009).
  9. Xu, Z., et al. Large-Scale Transposition Mutagenesis of Streptomyces coelicolor Identifies Hundreds of Genes Influencing Antibiotic Biosynthesis. Appl. Environ. Microbiol. 83 (6), (2017).
  10. Fernandez-Martinez, L. T., et al. A transposon insertion single-gene knockout library and new ordered cosmid library for the model organism Streptomyces coelicolor A3(2). Antonie Van Leeuwenhoek. 99 (3), 515-522 (2011).
  11. Gehring, A. M., Nodwell, J. R., Beverley, S. M., Losick, R. Genomewide insertional mutagenesis in Streptomyces coelicolor reveals additional genes involved in morphological differentiation. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97 (17), 9642-9647 (2000).
  12. Bishop, A., Fielding, S., Dyson, P., Herron, P. Systematic insertional mutagenesis of a streptomycete genome: a link between osmoadaptation and antibiotic production. Genome Res. 14 (5), 893-900 (2004).
  13. Bilyk, B., Weber, S., Myronovskyi, M., Bilyk, O., Petzke, L., Luzhetskyy, A. In vivo random mutagenesis of streptomycetes using mariner-based transposon Himar1. Appl. Microbiol. Biotechnol. 97 (1), 351-359 (2013).
  14. Kieser, T., Bibb, M. J., Buttner, M. J., Chater, K. F., Hopwood, D. A. . Practical Streptomyces Genetics. , (2000).
  15. Gust, B., Kieser, T., Chater, K. F. . REDIRECT technology: PCR-targeting system in Streptomyces coelicolor. , (2002).
  16. Gust, B., Chandra, G., Jakimowicz, D., Yuqing, T., Bruton, C. J., Chater, K. F. Lambda red-mediated genetic manipulation of antibiotic-producing Streptomyces. Adv. Appl. Microbiol. 54, 107-128 (2004).
  17. Tong, Y., Charusanti, P., Zhang, L., Weber, T., Lee, S. Y. CRISPR-Cas9 based engineering of Actinomycetal genomes. ACS Synth. Biol. 4 (9), 1020-1029 (2015).
  18. Huang, H., Zheng, G., Jiang, W., Hu, H., Lu, Y. One-step high-efficiency CRISPR/Cas9-mediated genome editing in Streptomyces. Acta BiochimBiophys. Sin.(Shanghai). 47 (4), 231-243 (2015).
  19. Cobb, R. E., Wang, Y., Zhao, H. High-efficiency multiplex genome editing of Streptomyces species using an engineered CRISPR/Cas system. ACS Synth. Biol. 4 (6), 723-728 (2015).
  20. Carey, M. F., Peterson, C. L., Smale, S. T. PCR-mediated site-directed mutagenesis. Cold Spring Harb Protoc. 2013 (8), 738-742 (2013).
  21. Brown, E. D., Wright, G. D. Antibacterial drug discovery in the resistance era. Nature. 529 (7586), 336-343 (2016).
  22. Dodds, D. R. Antibiotic resistance: A current epilogue. Biochem. Pharmacol. 134, 139-146 (2017).
  23. Caruso, J. P., Israel, N., Rowland, K., Lovelace, M. J., Saunders, M. J. Citizen Science: The Small World Initiative improved lecture grades and California critical thinking skills test scores of nonscience major students at Florida Atlantic University. J. Microbiol. Biol. Educ. 17 (1), 156-162 (2016).
  24. Davis, E., et al. Antibiotic discovery throughout the Small World Initiative: A molecular strategy to identify biosynthetic gene clusters involved in antagonistic activity. Microbiology Open. 6 (3), (2017).
  25. van Keulen, G., Dyson, P. J. Production of specialized metabolites by Streptomyces coelicolor A3(2). Adv. Appl. Microbiol. 89, 217-266 (2014).
  26. Aigle, B., et al. Genome mining of Streptomyces ambofaciens. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 41 (2), 251-263 (2014).
  27. Antoraz, S., Santamaria, R. I., Diaz, M., Sanz, D., Rodriguez, H. Toward a new focus in antibiotic and drug discovery from the Streptomyces arsenal. Front. Microbiol. 6, 461 (2015).
  28. Onaka, H. Novel antibiotic screening methods to awaken silent or cryptic secondary metabolic pathways in actinomycetes. J. Antibiot.(Tokyo). 70 (8), 865-870 (2017).
  29. Chen, J., Wu, Q., Hawas, U. W., Wang, H. Genetic regulation and manipulation for natural product discovery. Appl. Microbiol. Biotechnol. 100 (7), 2953-2965 (2016).
  30. Katz, L., Baltz, R. H. Natural product discovery: past, present, and future. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 43 (2-3), 155-176 (2016).
  31. Liu, G., Chater, K. F., Chandra, G., Niu, G., Tan, H. Molecular regulation of antibiotic biosynthesis in Streptomyces. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 77 (1), 112-143 (2013).
  32. den Hengst, C. D., Tran, N. T., Bibb, M. J., Chandra, G., Leskiw, B. K., Buttner, M. J. Genes essential for morphological development and antibiotic production in Streptomyces coelicolor are targets of BldD during vegetative growth. Mol. Microbiol. 78 (2), 361-379 (2010).
  33. Tran, N. T., Den Hengst, C. D., Gomez-Escribano, J. P., Buttner, M. J. Identification and characterization of CdgB, a diguanylate cyclase involved in developmental processes in Streptomyces coelicolor. J. Bacteriol. 193 (12), 3100-3108 (2011).
  34. Anonymous. Lab Safety. Proper Use of Autoclaves. JoVE Science Education Database. , (2017).
  35. Border, B. G., Rice-Spearman, L. Microwaves in the laboratory: effective decontamination. Clin. Lab. Sci. 12 (3), 156-160 (1999).
  36. Bhattacharjee, M. K., Delsol, J. K. Does microwave sterilization of growth media involve any non-thermal effect?. J. Microbiol. Methods. 96, 70-72 (2014).
  37. Sanders, E. R. Aseptic laboratory techniques: plating methods. J. Vis. Exp. (63), e3064 (2012).
  38. Anonymous, General Laboratory Techniques. An Introduction to the Micropipettor. JoVE Science Education Database. , (2017).
  39. Baltz, R. H. Genetic manipulation of secondary metabolite biosynthesis for improved production in Streptomyces and other actinomycetes. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 43 (2-3), 343-370 (2016).
  40. Frohlich, V. C. Phase Contrast and Differential Interference Contrast (DIC) Microscopy. J. Vis. Exp. (18), e844 (2008).
  41. Anonymous, General Laboratory Techniques. Introduction to Light Microscopy. JoVE Science Education Database. , (2017).
  42. Sambrook, J., Fritsch, E. F., Maniatis, T. . Molecular Cloning: A Laboratory. 3, (1989).
  43. Anonymous, General Laboratory Techniques. Introduction to Fluorescence Microscopy. JoVE Science Education Database. , (2017).
  44. Jensen, E. C. Quantitative analysis of histological staining and fluorescence using ImageJ. Anat. Rec.(Hoboken). 296 (3), 378-381 (2013).
  45. Chater, K. F. Recent advances in understanding Streptomyces. F1000Res. 5, (2016).
  46. Chater, K. F. Regulation of sporulation in Streptomyces coelicolor A3(2): a checkpoint multiplex?. Curr. Opin. Microbiol. 4 (6), 667-673 (2016).
  47. Tschowri, N. Cyclic dinucleotide-controlled regulatory pathways in Streptomyces species. J. Bacteriol. 198 (1), 47-54 (2016).
  48. Bennett, J. A., et al. Medium-dependent phenotypes of Streptomyces coelicolor with mutations in ftsI or ftsW. J. Bacteriol. 191 (2), 661-664 (2009).
  49. Mistry, B. V., Del Sol, R., Wright, C., Findlay, K., Dyson, P. FtsW is a dispensable cell division protein required for Z-ring stabilization during sporulation septation in Streptomyces coelicolor. J. Bacteriol. 190 (16), 5555-5566 (2008).
  50. Bennett, J. A., Aimino, R. M., McCormick, J. R. Streptomyces coelicolor genes ftsL and divIC play a role in cell division but are dispensable for colony formation. J. Bacteriol. 189 (24), 8982-8992 (2007).
  51. Bennett, J. A., McCormick, J. R. Two new loci affecting cell division identified as suppressors of an ftsQ-null mutation in Streptomyces coelicolor A3(2). FEMS Microbiol. Lett. 202 (2), 251-256 (2001).
  52. Dharmatilake, A. J., Kendrick, K. E. Expression of the division-controlling gene ftsZ during growth and sporulation of the filamentous bacterium Streptomyces griseus. Gene. 147 (1), 21-28 (1994).
  53. McCormick, J. R., Losick, R. Cell division gene ftsQ is required for efficient sporulation but not growth and viability in Streptomyces coelicolor A3(2). J. Bacteriol. 178 (17), 5295-5301 (1996).
  54. McCormick, J. R., Su, E. P., Driks, A., Losick, R. Growth and viability of Streptomyces coelicolor mutant for the cell division gene ftsZ. Mol. Microbiol. 14 (2), 243-254 (1994).
  55. Flärdh, K., Findlay, K. C., Chater, K. F. Association of early sporulation genes with suggested developmental decision points in Streptomyces coelicolor A3(2). Microbiology. 145 (9), 2229-2243 (1999).
  56. van Wezel, G. P., van der Meulen, J., Kawamoto, S., Luiten, R. G., Koerten, H. K., Kraal, B. ssgA is essential for sporulation of Streptomyces coelicolor A3(2) and affects hyphal development by stimulating septum formation. J. Bacteriol. 182 (20), 5653-5662 (2000).
  57. Capstick, D. S., Willey, J. M., Buttner, M. J., Elliot, M. A. SapB and the chaplins: connections between morphogenetic proteins in Streptomyces coelicolor. Mol. Microbiol. 64 (3), 602-613 (2007).
  58. Ma, H., Kendall, K. Cloning and analysis of a gene cluster from Streptomyces coelicolor that causes accelerated aerial mycelium formation in Streptomyces lividans. J. Bacteriol. 176 (12), 3800-3811 (1994).
  59. Xu, Z., et al. Large-scale transposition mutagenesis of Streptomyces coelicolor identifies hundreds of genes influencing antibiotic biosynthesis. Appl. Environ. Microbiol. 83 (6), (2017).
  60. Dedrick, R. M., Wildschutte, H., McCormick, J. R. Genetic interactions of smc, ftsK, and parB genes in Streptomyces coelicolor and their developmental genome segregation phenotypes. J. Bacteriol. 191 (1), 320-332 (2009).
  61. Pavlopoulos, A. Identification of DNA sequences that flank a known region by inverse PCR. Methods Mol. Biol. 772, 267-275 (2011).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

mm noloji ve enfeksiyonsay 139Streptomycesmorfolojik fenotiplemegeli tirmemutagenesismutantlarantibiyotikliselaboratuvark k d nya giri imibakteri retim k kMikrobiyoloji e itimi

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır