JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Biz optik bir tahlil sinaptik vezikül (SV) kültürlü nöronlarda geri dönüşüm için açıklar. Bu iletişim kuralı bir presynaptic işaret ve protein ilgi ifade etmek için çift transfection ile birleştirerek presynaptic siteleri, onların sinaptik vezikül kapasitesi geri dönüşüm bulun ve faiz protein rolünü belirlemek için bize izin verir.

Özet

Active presynaptic sinir terminallerine sinaptik veziküller exo - ve endositoz döngüleri tabi. Geri dönüşüm sırasında luminal etki alanları SV transmembran proteinler, hücre yüzeyi maruz olur. Bu proteinler biridir Synaptotagmin-1 (Syt1). Syt1, bir kez kültür ortamına eklenen luminal etki karşı bir antikor exo-endocytotic döngüsü sırasında alınır. Bu alımı SV geri dönüşüm miktarı ile doğru orantılıdır ve ayirt sayılabilir. Burada, Syt1 antikor alımını kültürlü hipokampal nöronlar Çift Kişilik transfection ile birleştirmek. Bu bize (1) yerelleştirmek rekombinant presynaptic işaretçisi Synaptophysin ifade üzerinde temel alan presynaptic siteleri (2) Syt1 alımını kullanarak onların işlevlerini belirleyin ve karakterize (3) hedefleme ve etkileri ilgi, GFP-Rogdi bir protein sağlar.

Giriş

Presynaptic özelliklerini değiştirmek, sinaptik plastisite sırasında veya Yanıt pertürbasyon sinaptik fonksiyon olarak nasıl sinaptik vezikül geri dönüşüm eğitim belirlemede önemlidir. Synaptotagmin-1 (Syt1) eğitim antikor alımını SV geri dönüşüm miktarını ölçmenin bir yöntem sağlar. Syt1 Ca2 + sensörü davranır ve nörotransmitter1,2exocytotic serbest bırakılması için gereklidir, SV ilişkili bir proteindir. Bir C-terminal sitoplazmik etki alanı dışında ZF ve SV3içinde N-terminal luminal etki alanı ile bir transmembran proteindir. Ekzositozu sırasında Syt1 luminal etki dış ortamına maruz olur. Bu dış orta, endositoz sırasında içselleştirilmiş olur sitoplazmik etki karşı antikorlar ekleyin. Bu antikorlar da önceden fluorophores veya immunostained ile ikincil antikorlar4,5,6,7ile Birleşik olabilir. Elde edilen immunosignal floresan yoğunluğu SV geri dönüşüm miktarı orantılıdır. Bu yaklaşım, kurucu ve depolarizasyon kaynaklı ZF6,8geri dönüşüm belirlemek için kullanılabilir.

Syt1 alımını deneyleri seyrek transfection hücreleri küçük bir dizi ya da virüs-aracılı gen transferi tabak içinde hemen hemen tüm hücrelere sonra gerçekleştirilebilir. Bizim Yöntem tahlil kalsiyum fosfat9kullanarak birincil hipokampal nöronlar seyrek Çift Kişilik transfection ile birleştirir. Presynapses biriktirmek için bilinen bir rekombinant marker protein fluorescently etiketli Synaptophysin, presynaptic terminalleri bulun ve bizim protein ilgi, Rogdi overexpress için kullanıyoruz. Bu Rogdi hedefleri fonksiyonel synapses ve geri dönüşüm SV etkiler olup olmadığını test bize sağlar. Rogdi kodlama gen aslında Drosophila mutantlar Engelliler bellek10tarafından karakterize bir ekran tespit edilmiştir. İnsanlarda, Kohlschütter-Tönz sendromu denen nadir ve yıkıcı bir hastalık Rogdi gen mutasyonlar neden. Hastalar diş mine malformasyonlar, pharmacoresistant epilepsi ve psikomotor gecikmeler muzdarip; Ancak, gen ürünü hücre altı lokalizasyonu zor11kaldı. Böylece, Syt1 alımını tahlil GFP öğesini Rogdi fonksiyonel sinapslarda9lokalizasyonu için anahtar kanıt sağladı.

Bu alımı teknik birçok faydası vardır. İlk olarak, SV geri dönüşüm hem gerçek zamanlı canlı görüntüleme7,12yaparak ve sonra fiksasyon6,9 Syt1 floresan etiket floresan yoğunluğu ölçme tarafından görülebilir. Ayrıca, çeşitli Syt1 antikor türevleri geliştirilmiştir. Standart immunostaining protokol fiksasyon sonra sonrası ikincil bir antikor ile etiketli etiketsiz türevleri ve önceden eklenmiş bir floresan etiketi önceden konjuge türevleri vardır. Son olarak, floresan antikor tabanlı kullanılan piyasada bulunan ikincil veya konjuge boyalar geniş yelpazesi nedeniyle avantajlıdır.

Ne zaman tamir ve immunostaining nöronlar, ayrıca ek proteinler için leke ve colocalization analiz gerçekleştirmek mümkündür. Bu geri dönüşüm SVs ile ilgili olarak bulundukları belirlemenize yardımcı olabilir. Floresans etiket yoğunluğunu geri dönüşüm SV miktarını doğrudan ölçüsüdür. Buna ek olarak, antikorlar seçmeli olarak yüksek özgüllük ve küçük arka plan floresans4ile sonuçlanan yapıları, Syt1 içeren etiket. Farklı stimulasyon protokolleri de, depolarizasyon arabellekleri veya elektrik stimulasyon protokolleri9,12,13,14gibi kullanılabilir. Ancak, bazal SV geri dönüşüm nöronal kültürler15uyarıcı olmadan ölçülebilir.

Bizim yöntem özellikle fiksasyon sonra Syt1 antikor Anlamazdın çift transfected nöronlar ile ikincil antikor immunolabeling giderir. Ancak, tüm rutin olarak kullanılan türevleri tahlil için izleyiciler Protokolü ihtiyaçlarınıza uyum için size şans vermek amacıyla tartışma bizim bakın.

Protokol

Hiçbir canlı hayvan çalışmaları yapılmıştır. Hücre kültürleri altında onay yerel hayvan koruma yetkilileri (Tierschutzkommission der Universitätsmedizin Göttingen) tarafından onaylanmış almak için ötenazi hayvanları içeren deneyler T10/30 numara. Deneyler ile onaylanmış protokoller yapılmıştır.

1. birincil hipokampal hücre kültürü

  1. Embriyonik gün 1916,17fare hipokampus Disosiye hücre kültürünü hazırlayın. 12 mm coverslips 50.000-60.000 hücreler/iyi bir yoğunluğu 24-iyi yemekler polyethyleneimine (PEI) ile kaplı hücrelerdeyse plaka. Bir hücre sayım odası ve faz kontrast optik kullanarak yoğunluğu kontrol edin.
  2. 3 gün (gün vitro (DIV) 3) 24-şey plaka %5 CO237 ° C'de kuluçka nöronlar kültür.
  3. Coverslips iletilen ışık mikroskobu (Örneğin, faz kontrast optik, 10-20 X büyütme) kullanarak hücre sağlık göstergeleri için değerlendirmek. Kontrol için iyi sağlık göstergeleri aşağıdaki: bir açık faz kontrast hale, neurites boncuklu yapıları, olmadan ve hiçbir soma kümeleme veya neurite donatılacak.

2. transfection

Not: Aşağıdaki iletişim kuralı 3 kuyuları için bir çift-transfection ifade eder. Ancak, zaman 4 kuyular için yeterli miktarda hazırlanan protokol en iyi çalışır.

  1. Transfection arabellek (274 mM NaCl, 10 mM KCl, 1.4 mM Na2HPO4, 15 mM glikoz, 42 mM HEPES) 500 mL bir Erlenmeyer şişeye hazırlayın.
    1. NaCl 8.0 g, KCl 0,37 gr, 0,095 g Na2HPO4, 1.35 g glikoz ve HEPES 5.0 g 400 ml distile su içinde bir Erlenmeyer flask geçiyoruz.
    2. PH 6,95 için 1 M NaOH pH metre kullanarak ayarlayın.
    3. 500 ml distile su ile ses seviyesini ve pH metre kullanarak pH kontrol edin.
    4. 20-30 mL aliquots transfection arabelleği aşağıdaki pH değerleri ile pipetting 1 tarafından yapmak transfection arabelleğine M NaOH: 6,96, 6.97, 6.98, 6,99, 7,00, 7,01, 7.04, 7,05, 7,03 7,02 7.06, 7,07, 7,08, 7,09, 7.11.
      Not: Transfection tampon pH transfection etkinliği için çok önemlidir.
    5. Transfected hücre en yüksek sayısı transfection arabellek neden test etmek için 6,96 7.11 her pH değeri sınayın. 2.2-2,11 ve doğrulanmış bir plazmid GFP ifade olan transfection yöntemi kullanın. En iyi hangi arabellek çalışır coverslip değerlendirmek her transfection tampon pH değeri başına transfected hücre sayısını belirleyin.
    6. Aliquot 2 mL microcentrifuge tüpler içine en yüksek transfection verimliliği ile tampon donma ve tüpler-20 ° C'de depolayın
  2. İndirimli serum orta, hücre kültürü orta ve 37 ° c su banyosu içinde distile su önceden ısıtmak.
  3. 1.5 mL microcentrifuge tüp transfection karışımı hazırlayın. Steril çalışma koşulları sağlamak için laminar akış başlık altında çalışır.
    1. Mix 7.5 µL 4 µg her endotoksin içermeyen DNA'ın (Synaptophysin-mOrange ve mGFP/GFP-Rogdi) ile 2 M kalsiyum klorür. Toplam hacmi 1.5 mL microcentrifuge tüp içinde 60 mL ulaşmak için su ekleyin.
    2. Transfection arabellek 60 mL karışıma ekleyin. En iyi sonuçları elde etmek için transfection tampon dropwise DNA-mix vortex Tarih hafifçe sallayarak süre ekleyin.
    3. (RT) Oda sıcaklığında 20 dakika kuluçkaya. Laminar akış hood yanındaki tüp yerleştirerek kuluçka süresi sırasında kuluçka tüp sallayarak kaçının.
  4. Laminar akış başlık altında hücre kültür orta ("şartına orta") 1000 mL damlalıklı kullanarak kuyulardan çıkarın ve kuluçka ayrı bir kapta saklayın.
  5. İndirimli serum orta 500 mL her şey için ekleyin. 20 dakika kuluçka dönemi (adım 2.3.3) bitene 37 ° C ve % 5 CO2 hücreleri kuluçkaya.
  6. Transfection mix 30 mL birkaç damla pipetting tarafından her şey için ekleyin. Tüpün dibinde tortu atmak.
  7. Bütün wells transfection karışımı ile temin edildikten sonra orta transfection karışımının dağıtımını sağlamak için 24-şey plaka yavaşça salla.
  8. 60 dakika 37 ° C ve % 5 CO2kuyu kuluçkaya.
  9. Kaldırmak ve transfection mix atmak ve hücre kültür orta ile üç kez yıkayın. Her şey için hücre kültür orta 1 mL ekleyin ve onları Orta RT. kaldırmak 750 mL 30 saniye için kuluçkaya ve taze orta aynı miktarda ekleyin. Bunu üç kez tekrarlayın.
    Not: Çamaşır adım önemlidir. Her şey en azından yok orta vardır zaman tutmak (i.e., çıkarma ve iyi iyi değiştirme) ve çamaşır orta yavaşça ekleyin.
  10. Kaldırmak ve hücre kültür orta atın ve şartına orta iyi-tarafından-da 450 mL ekleyin.
  11. Nöronlar kuluçka DIV 10 37 ° C ve % 5 CO2 olgun izin.

3. stimülasyon ve Syt1 alımı

Not: Aşağıdaki protokol için 3 kuyu Anlamazdın uygulanır. İçin depolarizasyon kuyu diğer herhangi bir sayıda tutarları uygun şekilde ayarlayın.

  1. 10 x depolarizasyon arabellek (640 mM NaCl, 700 mM KCl, 10 mM MgCl2, 20 mM CaCl2, 300 mM glikoz, 200 mM HEPES, pH 7,4) bir Erlenmeyer şişesi 50 mL hazırlayın.
    Not: Depolarizasyon arabellek birkaç hafta için 4 ° C'de tutulabilir. Bir sigara depolarize çözüm de kullanılırsa, bir 10 hazırlamak 1290 mM oluşan x Tyrode'nın çözüm NaCl, 50 mM KCl, 10 mM MgCl2, 20 mM CaCl2, 300 mM glikoz, 200 mM HEPES pH 7.4 karşılaştırmak üzere stimülasyon kaynaklı ile kendiliğinden geri dönüşüm geri dönüşüm. 1 x seyreltme sonra Tetradotoksin 1 µM Aksiyon potansiyeli üretimi engellemek için kullanmadan önce ekleyin.
    1. 1.87 gram NaCl, KCl, 0.1 g MgCl2-6 H20, CaCl2-2 H2O 0,15 g ve 3.0 g glikoz-1 H2O ve HEPES 2.38 g 50 ml distile su içinde bir Erlenmeyer flask 2,61 g geçiyoruz. NaOH ve steril-filtre çözümü ile pH ayarlayın. Arabellek 1:10 1 x konsantrasyon ulaşmak için distile suda sulandırmak.
  2. %4 paraformaldehyde (PFA) 1 x PBS (pH 7,4) stimülasyon sonra fiksasyon için hazır olun.
    1. 500 mL % 4'lük için 1 x PBS, PFA çözülür paraformaldehyde 450 ml distile H2o 20 g
      Not: Çözüm Isıtma eriterek kadar hızlandırabilir ancak PFA parçalanır gibi çözüm üzerinde 70 ° C, ısı değil.
      Uyarı: Toksik, potansiyel olarak kanserojen ve teratojenik PFA. PFA ile çalışırken eldiven, duman başlık altında çalışmak ve sindirim kaçının.
    2. RT için çözüm soğumaya bırakın ve 50 mL 10 x PBS stok çözeltisi ekleyin. PH 7.4 için NaOH/HCl pH metre kullanarak ayarlayın.
  3. 1 depolarizasyon arabellek x 600 mL ve hücre kültür ortamına su banyosu 37 ° C'de 10 mL önceden ısıtmak.
  4. Fare anti-Syt1 antikor (klon 604.2) 1 mL 1 x depolarizasyon arabellek ve girdap 10 saniyeliğine ekleyin.
  5. Kaldırmak ve hücreleri hücre kültür ortamından atın. 200 mL her şey ve 37 ° C ve % 5 CO2 kuluçka makinesi'de 5 dakika kuluçkaya depolarizasyon-antikor karışımı ekleyin.
  6. Kaldırmak ve depolarizasyon-antikor mix atmak ve hücre kültür orta ile üç kez yıkayın. Her şey için hücre kültür orta 1 mL ekleyin ve orta RT. kaldırmak 750 mL 30 saniye için kuluçkaya ve taze orta aynı miktarda ekleyin. Üç kere tekrar edin.
  7. Kaldırın ve hücre kültür orta atmak ve % 4'lük 300 mL ekleyin 1 x PBS PFA. 4 ° C'de 20 dakikadır kuluçkaya
  8. 1 x PBS ile 5 dakika her için üç kez yıkayın.
    Not: Protokol burada duraklatılmış.

4. Immunocytochemistry

  1. 50 mL engelleme arabelleği hazırlayın.
    Not: arabellek engelleme-20 ° C'de aylarca tutulabilir.
    1. 2.5 g sükroz ve sığır serum albumin (BSA) 1 g 5 mL 10 x PBS stok çözeltisi geçiyoruz. 1.5 mL % 10 deterjan stok çözeltisi ekleyin. Çözüm kadar tüm bileşenleri düzgün çözünmüş ve distile H2O son hacmi 50 mL erişene dek ekleyin karıştırın. Aliquot çözüm ve depolama için aliquots Don.
  2. (Birincil Syt1-antikor türler karşı yönetmen) ikincil, fluorophore birleşince antikor 1: 1000 seyreltme her kuyuda engelleme arabellekte 200 ml seyreltik.
  3. Kaldırmak ve her şey bir coverslip içeren üzerinden 1 x PBS atın.
  4. Arabellek-antikor karıştırmak için her şey engelleme 200 mL ekleyin ve RT. az 60 dakika boyunca kuluçkaya
    Dikkat: ikincil antikorlar ışığa duyarlı olduğundan, tüm adımları ilerlemeye karanlıkta gerçekleştirilmesi gerekir.
  5. Kuluçka sonra hücreleri üç kez için 1 mL 1 x PBS ile 5 dakika yıkayın.
  6. Mikroskop slaytlar üzerindeki coverslips ile gömme orta gömün.
    1. Mikroskop slayt ortamına katıştırma 7 mL damla ekleyin. Coverslip bir şırınga ile kaldırma ve forseps ile kapma 24-şey plaka çıkarın.
      Dikkat: forseps dikkatli olmalıdır bu yüzden hücreleri coverslip yüzeyi kolayca, zarar görmüş.
    2. Coverslip PBS kaldırmak ve dikkatli bir şekilde yumuşak bir doku için bir kenar dokunarak kuru için distile su içine daldırma.
    3. Böylece hücreleri taşıyan yüzey böylece hücreleri gömme orta katıştırma mikroskop slayt yüzleri coverslip gömme orta damlacık üzerine çevirmek.
  7. Slaytlar için 1-2 h başlık altında kurumaya bırakın (ışığa maruz önlemek için kapak) ve 4 ° C'de bir mikroskop slayt kutusunda saklamak
    Not: Protokol burada duraklatılmış.

5. mikroskobik analizlerin yapıldığı

  1. Coverslips kuru sonra onları objektif ve kamera ile mikroskop altında yerleştirin.
  2. Kaç piksel gri değerlerden en büyük dağıtım sağlamak için pozlanmış her kanal için çekim hızı ayarlayın.
    Not: çekim hızı kanallar arasında farklı olabilir iken, coverslips arasında karşılaştırılabilir emin olmak bir kanal için sabit olmalıdır.
  3. İlgi coverslip (ROIs) 10 bölgeler için çok kanallı görüntüler elde etmek. GFP-floresan, hangi-meli var olmak punctate kontrol ederek yatırım getirisi transfected nöron aksonal işlemlerini içerdiğini denetleyin.

6. istatistiksel analiz

  1. Görüntüleri .tif dosyaları olarak dışa aktarma. Yanında tıkırtı eğe OpenView18 ilgili resimleri yüklemek | Görüntü dosyasını yükle.
  2. Synaptophysin-mOrange görüntüsü olarak Kanal 1, Rogdi-GFP/mGFP resmi gibi 2 kanal ve Kanal 3 olarak Alexa647 floresan görüntü seçin.
  3. Eşik ROIs.
    1. Çözümleme ' yi tıklatın | Yer alan puncta üzerinde. Görsel incelenmesi üzerine, diffüz floresan, sadece punctate sinyalleri (temsil eden Synaptophysin-mOrange floresan) Kanal 1 görüntü bırakarak söz konusu değildir eşik ve Delta yoğunluk değerleri seçin. Tüm görüntüler için aynı eşik tutun.
  4. Bu ROIs (GFP-Rogdi/mGFP floresan) karşılık gelen kanal 2 ve 3 (Syt1-floresan) her coverslip alanının Şimdi Çalıştır' ı tıklatarak aktarın.
    Not: ROIs hücre çift transfected ise sadece düşünülmelidir. Bu yöntemde, mOrange ve GFP floresans açıkça görünür olmalıdır.
  5. Verileri günlük verilerinitıklatarak analiz günlük düzenleyicisine kaydetmek.
  6. Windows sekmesinin altındaki analiz günlük Düzenleyicisi'ni açın ve her kanal için değerleri kopyalayın. Değerleri ayrı kanallar için bir elektronik tabloya yapıştırabilirsiniz.
  7. Her iki transfection koşullarında (GFP-Rogdi ve mGFP) ROIs Syt1 kanalda ortalama floresans yoğunluğunu belirlemek.
  8. Önemli farkları belirlemek için bir öğrenci t-testi gibi uygun istatistiksel testler uygulanır.

Sonuçlar

Beklenen sonuç bu yaklaşımın coverslip başına yaklaşık 50 nöronlar çift transfected bir yoğunluk iyi başına 50.000 nöronların, yerini. Her nöron axon birikimi kümeleri ofSVs gösteren fluorescently öğesini Synaptophysin, birden çok etkin noktaları göstermek için bekleniyor. Fonksiyonel presynaptic siteler, rekombinant Synaptophysin sinyal punctate Syt1 floresan ile colocalizes. Çift Kişilik transfection, GFP-Rogdi ilgi (Şekil 1) prot...

Tartışmalar

Orada üç deneyleri rutin olarak sinaptik vezikül (SV) geri dönüşüm çalışırdım. İlk iki kullanımını içerecek bir) Floresan styryl Boyayıcılar FM1-(hangi organelleri endositoz sırasında alınır ve ekzositozu sonra yayımlanan membranlar dahil) 43 gibi; ve b) fluorescently rekombinant SV proteinler (ki, overexpression proteinaceous geri dönüşüm makineleri dahil) öğesini. Ekli fluorophores onların floresans pH bağlı olarak değiştirirseniz, bir SV asidik iç ve ekstraselüler ortamın pH aras?...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Irmgard Weiss uzman teknik destek için teşekkür ederiz. Bu eser DFG kümenin mikroskobu nanometre mesafeden için mükemmel ve moleküler fizyolojisi (CNMPB, B1-7, T.D.) beyin üzerinden tarafından desteklenmiştir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
B27Gibco17504-044
BSASigmaA7030-50g
CaCl2Sigma-AldrichC3306-100g
CoolSNAP HQ2Photometrics
dH2OInvitrogen15230
DABCOMerck8.03456.0100
donkey anti mouse Alexa 647Jackson-Immunoresearch715605151antibody
DMEMInvitrogen41966
DPBSGibco14190
Eppendorf tubesEppendorf30120094
multiwell 24 wellFisher Scientific087721H
tube (50 mL)Greiner Bio-One227261
FBS superiorBiochromAGS0615
GlucoseMerck1,083,421,000
HBSSInvitrogen14170
HEPESSigmaH4034-500g
Hera Cell 150 (Inkubator)ThermoElectron Corporation
KCLSigma-AldrichP9541-500g
L-GlutaminGibco25030
MgCl2HoneywellM0250-500g
microscope slidesFisher Scientific10144633CF
Microsoft ExcelMicrosoft
Mowiol4-88Calbiochem475904
NaClBioFroxx1394KG001
Na2HPO4BioFroxx5155KG001
NeurobasalInvitrogen21103049
OpenView Experiment Analysis ApplicationFree software, see commentswritten by Noam E. Ziv, Technion – Israel Institute of Technology, Haifa, Israel
PBS (10x)Roche11666789001
OptimemInvitrogen31985
PenstrepGibco15140-122
PFASigmaP6148-1kg
safety hoodThermoElectronSerial No. 40649111
SucroseneoFroxx1104kg001
Synaptotagmin1Synaptic Systems105311mouse monoclonal; clone 604.2
Triton X-100Merck1,086,031,000
Vortex Genius 3 IKA3340001
Water bathGFL1004
Zeiss Observer. Z1 Zeiss

Referanslar

  1. Koh, T., Bellen, H. J. Synaptotagmin I, a Ca2+ sensor for neurotransmitter release. Trends in Neurosciences. 26, 413-422 (2003).
  2. Chapman, E. R. How Does Synaptotagmin Trigger Neurotransmitter Release. Annual Review of Biochemistry. 77, 615-641 (2008).
  3. Perin, M. S., et al. Structural and Functional Conservation of Synaptotagmin (p65) in Drosophila and Humans. Journal of Biological Chemistry. 266, 615-622 (1991).
  4. Matteoli, M., Takei, K., Perrin, M. S., Südhof, T. C., De Camilli, P. Exo-endocytotic Recycling of Synaptic Vesicles in Developing Processes of Cultured Hippocampal Neurons. Journal of Cell Biology. 117, 849-861 (1992).
  5. Ko, J., et al. Neuroligin-1 performs neurexin-dependent and neurexin-independent functions in synapse validation. The EMBO Journal. 28, 3244-3255 (2009).
  6. Shinoda, Y., et al. BDNF enhances spontaneous and activity-dependent neurotransmitter release at excitatory terminals but not at inhibitory terminals in hippocampal neurons. Frontiers in Synaptic Neuroscience. 6, 27 (2014).
  7. Ivanova, D., et al. Synaptic activity controls localization and function of CtBP 1 via binding to Bassoon and Piccolo. The EMBO Journal. 34, 1056-1077 (2015).
  8. Crawford, D. C., Ramirez, D. M. O., Trauterman, B., Monteggia, L. M., Kavalali, E. T. Selective molecular impairment of spontaneous neurotransmission modulates synaptic efficacy. Nature Communications. 8, 1-14 (2017).
  9. Riemann, D., Wallrafen, R., Dresbach, T. The Kohlschütter-Tönz syndrome associated gene Rogdi encodes a novel presynaptic protein. Scientific Reports. 7, (2017).
  10. Kim, M., et al. Rogdi Defines GABAergic Control of a Wake-promoting Dopaminergic Pathway to Sustain Sleep in Drosophila. Scientific Reports. 7, 1-14 (2017).
  11. Schossig, A., Wolf, N. I., Kapferer, I., Kohlschütter, A., Zschocke, J. Epileptic encephalopathy and amelogenesis imperfecta: Kohlschütter-Tönz syndrome. Euopean Journal of Medical Genetics. 55, 319-322 (2012).
  12. Kraszewski, K., et al. Synaptic Vesicle Dynamics in Living Cultured Hippocampal Neurons Visualized with CY3-Conjugated Antibodies Directed against the Lumenal Domain of Synaptotagmin. Journal of Neuroscience. 15, 4328-4342 (1995).
  13. Willig, K. I., Rizzoli, S. O., Westphal, V., Jahn, R., Hell, S. W. STED microscopy reveals that synaptotagmin remains clustered after synaptic vesicle exocytosis. Nature. 440, 935-939 (2006).
  14. Petkova, A., Goedecke, N., Korte, M., Dresbach, T. Neuroligins mediate presynaptic maturation through brain-derived neurotrophic factor signaling. bioRxiv. , 262246 (2018).
  15. Fuchs, C., et al. GABA(A) receptors can initiate the formation of functional inhibitory GABAergic synapses. European Journal of Neuroscience. 38, 3146-3158 (2013).
  16. Dresbach, T., et al. Functional regions of the presynaptic cytomatrix protein Bassoon: Significance for synaptic targeting and cytomatrix anchoring. Molecular and Cellular Neuroscience. 23, 279-291 (2003).
  17. Seibenhener, M. L., Wooten, M. W. Isolation and Culture of Hippocampal Neurons from Prenatal Mice. Journal of Visualized Experiments. (65), 4-9 (2012).
  18. Tsuriel, S., et al. Local sharing as a predominant determinant of synaptic matrix molecular dynamics. PLOS Biology. 4, 1572-1587 (2006).
  19. Iwabuchi, S., Kakazu, Y., Koh, J., Goodman, K. M., Harata, N. C. Examination of Synaptic Vesicle Recycling Using FM Dyes During Evoked, Spontaneous, and Miniature Synaptic Activities. Journal of Visualized Experiments. (85), 1-10 (2014).
  20. Villarreal, S., Lee, S. H., Wu, L. Measuring Synaptic Vesicle Endocytosis in Cultured Hippocampal Neurons. Journal of Visualized Experiments. (127), 1-8 (2017).
  21. Kavalali, E. T., Jorgensen, E. M. Visualizing presynaptic function. Nature Neuroscience. 17, 10-16 (2014).
  22. Opazo, F., et al. Limited Intermixing of Synaptic Vesicle Components upon Vesicle Recycling. Traffic. 11, 800-812 (2010).
  23. Wollebo, H. S., Woldemichaele, B., White, M. K. Lentiviral transduction of neuronal cells. Methods in Molecular Biology. 1078, 141-146 (2013).
  24. Yang, X., Kaeser-Woo, Y. J., Pang, Z. P., Xu, W., Südhof, T. C. Complexin Clamps Asynchronous Release by Blocking a Secondary Ca2+ Sensor via Its Accessory α Helix. Neuron. 68, 907-920 (2010).
  25. Wittenmayer, N., et al. Postsynaptic Neuroligin1 regulates presynaptic maturation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 13564-13569 (2009).
  26. Lazarevic, V., Schone, C., Heine, M., Gundelfinger, E. D., Fejtova, A. Extensive Remodeling of the Presynaptic Cytomatrix upon Homeostatic Adaptation to Network Activity Silencing. Journal of Neuroscience. 31, 10189-10200 (2011).
  27. Kraszewski, K., Daniell, L., Mundigl, O., De Camilli, P. Mobility of synaptic vesicles in nerve endings monitored by recovery from photobleaching of synaptic vesicle-associated fluorescence. Journal of Neuroscience. 16, 5905-5913 (1996).
  28. Hua, Y., Sinha, R., Martineau, M., Kahms, M., Klingauf, J. A common origin of synaptic vesicles undergoing evoked and spontaneous fusion. Nature Neuroscience. 13, 1451-1453 (2010).
  29. Han, W., et al. N-Glycosylation Is Essential for Vesicular Targeting of Synaptotagmin 1. Neuron. 41, 85-99 (2004).
  30. Kwon, S. E., Chapman, E. R. Glycosylation is dispensable for sorting of synaptotagmin 1 but is critical for targeting of SV2 and synaptophysin to recycling synaptic vesicles. Journal of Biological Chemistry. 287, 35658-35668 (2012).
  31. Afuwape, O. A. T., Wasser, C. R., Schikorski, T., Kavalali, E. T. Synaptic vesicle pool-specific modification of neurotransmitter release by intravesicular free radical generation. The Journal of Physiology. 595, 1223-1238 (2017).
  32. Sara, Y., Virmani, T., Deák, F., Liu, X., Kavalali, E. T. An isolated pool of vesicles recycles at rest and drives spontaneous neurotransmission. Neuron. 45, 563-573 (2005).
  33. Wilhelm, B. G., Groemer, T. W., Rizzoli, S. O. The same synaptic vesicles drive active and spontaneous release. Nature Neuroscience. 13, 1454-1456 (2010).
  34. Bacci, A., et al. Chronic blockade of glutamate receptors enhances presynaptic release and downregulates the interaction between synaptophysin-synaptobrevin-vesicle-associated membrane protein 2. Journal of Neuroscience. 21, 6588-6596 (2001).
  35. Piccoli, G., et al. LRRK2 Controls Synaptic Vesicle Storage and Mobilization within the Recycling Pool. Journal of Neuroscience. 31, 2225-2237 (2011).
  36. Tracy, T. E., Yan, J. J., Chen, L. Acute knockdown of AMPA receptors reveals a trans-synaptic signal for presynaptic maturation. The EMBO Journal. 30, 1577-1592 (2011).
  37. Truckenbrdot, S., Viplav, A., Jaehne, S., Vogts, A., Denker, A., Wildhagen, H., Fornasiero, E. F., Rizzoli, S. O. Ageing synaptic vesicles are inactivated by contamination with SNAP25. bioRxiv. , 172239 (2017).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Neurosciencesay 136sinaptik vezik llergeri d n m sinapslardan ronlarSynaptotagmin 1hipokampuss anh cre k lt r

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır