JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada tarif biz katlama, taşıma ve yıkımı canlı hücrelerde takip edilecek proteinlerin kinetik analiz sağlar bir genel nabız-chase yöntemi için bir iletişim kuralı.

Özet

Radyoaktif nabız-chase etiketleme eğitim konformasyon olgunlaşma, taşıma fonksiyonel hücresel konumlarını ve hedef proteinler canlı hücrelerde bozulma için güçlü bir araçtır. Kısa (darbe) radiolabeling kez kullanarak (< 30 dk) ve sıkı kontrol chase kere, toplam protein havuzu yalnızca küçük bir kısmını etiket ve onun katlama izleyin mümkündür. Nonreducing/azaltılması SDS-polyacrylamide jel elektroforez (SDS-sayfa) ve immunoprecipitation (özel biçimi) antikorları ile birleştirildiğinde, süreçleri katlama ayrıntılı olarak incelenebilir. Bu sistem özellikleri çözünür protein, tekli ve çoklu geçiş transmembran proteinler, ağır N ve O glikozile proteinler gibi büyük bir varyasyon ile protein ve protein ve geniş disülfür olmadan Katlama çözümlemek için kullanılan bağ. Nabız-chase yöntemleri co ve ardından değişiklikleri, Oligomerizasyonda ve polimerizasyonu, temelde analiz bir protein doğumdan ölüme izin dahil olmak üzere ek özellikleri bir dizi içine kinetik çalışmalar temelidir. Nabız-chase çalışmalar protein katlanması üzerinde çalışmak için proteinler vitro artan zamansal çözünürlük ve fizyolojik bilgi sağlayarak diğer Biyokimya ve biyofizik yöntemleri ile tamamlayıcı niteliktedir. Bu kağıt içinde açıklandığı gibi yöntemleri kolayca neredeyse memeli ya da böcek-hücre sistemlerinde ifade edilebilir herhangi bir protein katlama çalışmaya adapte.

Giriş

Hatta nispeten basit protein katlama birçok farklı katlama enzim, moleküler chaperones ve kovalent modifikasyon1içerir. Bu işlemler vitro tam bir sulandırma farklı bileşenleri dahil çok sayıda göz önüne alındığında pratik olarak mümkün değildir. Bu nedenle, in vivo, canlı hücrelerde katlama protein çalışmaya son derece arzu edilir. Radyoaktif nabız-chase teknikleri sentezi, katlama, taşıma ve proteinlerin kendi doğal ortamlarında bozulma çalışmak için güçlü bir araç kanıtlamak.

Metabolik 35S etiketli metiyonin/Sistein ile kısa bir darbe sırasında proteinlerin etiketleme, radyoaktif bir etiket yokluğunda bir kovalamaca ardından, daha geniş hücresel ortamında yeni sentezlenmiş protein bir nüfusun belirli izlenmesini sağlar. Sonra hedef proteinler ve üzerinden SDS-sayfası veya diğer tekniklerle analiz izole yolu ile immunoprecipitation olabilir. Çoğu protein için onların yolculuk boyunca hücre SDS-sayfa jel üzerinde görülebilen değişiklikler tarafından işaretlenir. Örneğin, taşıma glikozile proteinlerin endoplazmik retikulum (ER) üzerinden Golgi kompleksi kez glukanlardir N bağlı değişiklikler veya ek O bağlantılı glukanlardir2,3tarafından eşlik ediyor. Bu değişiklikler büyük artışlar SDS-sayfa hareketlilik değişiklikler görülebilir belirgin molekül ağırlığı neden. Olgunlaşma, sinyal peptid bölünme veya pro-peptidler, değişiklikleri kolayca SDS-sayfa jel4üzerinde takip edilmesi belirgin molekül ağırlığı sonuçlanan kaldırılması gibi proteolitik kesim tarafından da işaretlenebilir. Radyoaktivite vardır sikloheksimit çarpma gibi karşılaştırılabilir teknikleri üzerinde önemli avantajlar olarak daha uzun tedaviler hücrelere zehirlidir ve büyük, kararlı durum proteinler çoğunluğu dışlamayın nerede roman protein sentezi, engellenir Analizi, bazı proteinler yarım-gün canlıdır. Proteinler nonreducing her ikisi de altında karşılaştırılması ve koşulları azaltmak sağlar analiz disülfit bağı oluşumu, birçok salgı proteinler4,5,6, katlanır önemli bir adım 7.

Burada biz bir radyoaktif nabız-chase yaklaşım kullanarak protein katlanması ve sağlam olan hücrelerde taşıma analizi için genel bir yöntem açıklanmaktadır. Yöntemi olarak sağlamak amaçlanmıştır iken mümkün olduğunca ayrıntılı protokol adaptasyon için neredeyse sınırsız bir potansiyele sahiptir ve optimizasyon her okuyucunun spesifik proteinlerin çalışmaya izin verir.

İki alternatif darbe-chase protokol, bir yapışık hücreleri (adım 1.1 burada sunulan Protokolü) ve süspansiyon hücreleri (adım 1.2 burada sunulan Protokolü) için sağlanır. Koşulun sağlanması halinde burada orta-yüksek ifade düzeyleri ile ifade edilen bir protein görselleştirmek yeterli vardır. Eğer okuyucu kötü ifade proteinler veya birden çok immunoprecipitations gibi çeşitli posttreatment koşulları ile çalışma çanak boyutunu artırın veya uygun şekilde sayı hücre gereklidir.

Süspansiyon darbe chase için her zaman noktada alınan chase örnekler tüm hücreleri tek bir tüp alınır. Darbe ihmal sonra yıkama adımları; Bunun yerine, daha fazla 35S birleşmesiyle etiketlenmemiş metionin ve sistein yüksek bir fazlalığı ile seyreltme tarafından engellenir.

Hücresel protein katlanması işlemlerini takip için radyoaktif 35S etiketli sistein ve metionin sunulan iletişim kurallarını kullanır. Radyoaktif reaktifleri ile tüm işlemleri herhangi bir operatör ve radyoaktif Radyasyon ortamına maruz en aza indirmek ve belirlenmiş bir laboratuarda gerçekleştirilen uygun koruyucu önlemleri kullanılarak gerçekleştirilmelidir. Nabız-chase teknik etiketleme kısa darbe zamanlarda nispeten verimsiz (< 15dk), radyoaktivite başlangıç miktarı % 1'i yeni sentezlenmiş protein dahil daha az. Üzerinden hedef protein immunoprecipitation zenginleştirme sonra radyoaktivite başlangıç miktarı daha az % 0.05 SDS-sayfa için örnek içerir.

35S metionin ve mix etiketleme sistein stabilize rağmen bazı ayrıştırma radyoaktif uçucu bileşikler, verimli, ortaya çıkar. Araştırmacı ve aparatı korumak için bazı önlemler alınmalıdır. Araştırmacı her zaman yerel radyasyon güvenlik kurallarına itaat etmelisin ve maske, önlük ve eldiven (Çift Kişilik) yanı sıra hemşirelik kömür olabilir. Hisse senedi şişeleri 35S metionin ve sistein ile her zaman bir duman başlıklı veya yerel aspirasyon noktası altında açılmalıdır. Bilinen laboratuvar kirlenme Santrifüjler Pipetler, su hamamlar, kuluçka ve shakers noktalardır. Bu alanların kirlenme pipet ipuçlarını kullanarak bir kömür filtre, pozitif-mühür microcentrifuge tüpler ( Tablo malzemelerigörmek), akvaryum kömür sünger nabız-chase yemekleri yapıştırılmış su banyoları, kömür filtre gazetelerde azalır, aspirasyon sistemi ve bulaşık kuluçka ve saklama kapları kömür tahıl içeren yerleşimini kömür muhafız.

Protokol

Tüm radyoaktif reaktifler ve yordamlar yerel Utrecht Üniversitesi radyasyon kurallara ve düzenlemelere uygun şekilde ele.

1. darbe Chase

  1. Nabız Chase yapışık hücreleri için
    Not: burada verilen birimleri 60 mm hücre kültür yemekleri üzerinde temel alır. 35 mm veya 100 mm yemekleri için birimleri tarafından 1/2 ya da 2, sırasıyla çarpın. Bu iletişim kuralı 0, 15, 30, 60, 120 ve 240 min 10 dk ve chase kez darbe zamanı kullanır. Bunlar belirli proteinler (Aşağıda tartışılan) okudu bağlı olarak farklı olabilir.
    1. Böylece onlar olacak altı 60 mm hücre kültür yemekleri tohum yapışık hücreleri (Örneğin, HEK 293, HeLa, CHO) subconfluent (% 80-%90) nabız chase gününde. Zaman noktası ve/veya koşulu başına en az bir tabak kullanın.
    2. Gerekirse, üreticinin yönergelerine göre piyasada bulunan transfection reaktifler hücrelerle transfect; veya virally hücreleri ifade için uygun yapı ile nabız-chase önce 1 gün deneme8 transduce.
    3. Bulaşık yıkama arabelleği (Hank'in dengeli tuz solüsyonu [HBSS]) 2 mL ile açlık Orta (normal kültür metionin ve sistein ve fetal Sığır serum [FBS], metionin ve sistein olmadan en az gerekli orta [MEM] gibi eksik Orta 2 mL ekleyin Ama 10 mM HEPES, pH 7.4 ile) ve bulaşıkları bir 37 ° C oksijen kuluçka makinesi %5 CO2 ile 15 dakika yerleştirin.
    4. Böylece onlar su ile temas ancak değil float bulaşıkları raflar prewarmed 37 ° C su banyosu içinde aktarın. Bir sayacı başlatmak.
    5. 40 s, açlık orta Aspire edin, darbe çözüm (açlık medya + etiket, adım 1.1.1 önceki nota bakın 55 µCi/35 mm çanak) 600 µL kadar çizmek pipet içine ve yavaşça yemeğin ortasına doğru tam olarak 1 dakika tekrar bu adımı t için 1 dk aralıklarla ekleyin o kalan yemekleri. Denemeniz sırasında zaman kazanmak için en uzun kovalamaca örnek ile başlayın.
      Not: radyoaktif madde ele alırken, uygun önlemler ve yerel kurallar ve düzenlemeler kazayla maruz kalma ve/veya kontaminasyonu önlemek için takip için gerekli olduğunu.
    6. Tam olarak 11 dk ve 0 dk chase örnek dışında tüm aşağıdaki yemekleri için doğrudan yemek için chase Orta 2 mL ekleyin, bu Aspire edin ve tekrar, chase Orta 2 mL ekleyin. 1 dk aralıklarla kalan yemekler için bu adımı yineleyin. Tüm yemekler 37 ° C kuluçka aktarın.
    7. Tam olarak 16 dk chase Orta 2 mL ekleyin (normal kültür orta + 10 mM HEPES [pH 7.4], 5 mM sistein ve 5 mM metionin) 0 dk örnek yemek üstüne etiketleme; durdurmak için nabız orta için doğrudan o zaman, hemen Aspire edin, çanak için soğutmalı alüminyum plaka aktarmak ve buz gibi dur arabellek (HBSS + 20 mM N- ethylmaleimide [NEM]) 2 mL ekleyin.
      Not: 0 dk chase örnek bu. Bu örnek için doğrudan 1.1.9 adım geçin.
    8. Her chase yemeğin geri su banyosu için 2 dk önce her chase zaman (Örneğin, bir 15dk chase için 24 dk) aktarmak ve, tam chase zaman (Örneğin, bir 15dk chase için 26 dk), chase medya Aspire edin (veya pr takip microcentrifuge tüp aktarmak Otein salgılanması) ve bir soğutulmuş alüminyum tabak çanak transfer. Buz gibi dur arabellek 2 mL ekleyin.
    9. Tüm yemekler buz durağı arabellek ≥5 min için kuluçkaya; o zaman, durmak eriyik Aspire edin ve buz gibi durmak eriyik 2 mL ile yıkayın. Yıkama Aspire edin ve yemekleri ile lizis arabelleği 600 µL parçalayıcı (fosfat tamponlu tuz [PBS] + nondenaturing deterjan [bkz: Malzemeler tablo] + proteaz inhibitörleri + 20 mM NEM). Bulaşıkları kantitatif lysed emin olmak için bir hücre kazıyıcı kullanın.
    10. Transfer lysate 1.5 mL microcentrifuge tüp ve santrifüj 15.000-20.000 x g , 10 min ve 4 ° C çekirdekleri cips.
  2. Nabız Chase süspansiyon hücreler için
    Not: verimli etiketleme emin olmak için hücreleri bir konsantrasyon 3 x 106 5 x 106 hücre/ml, Geniş puls ve chase birimleri 4 x nabız cilt olmalıdır. Aşağıdaki örnekte, 5 x 106 hücre 10 dk 1 ml hacminde Geniş puls, verim için beş saat chase puan (0, 15, 30, 60 ve 120 dk) 1 ml 1 x 106 hücreler her zaman noktası içeren. Tüm çözümler Bölüm 1.1 ile aynıdır.
    1. Böylece hücreleri yeterli sayıda deneme, zaman zaman başına en az 1 x 106 hücre üzerine gelin ve/veya durumu (Örneğin, 3T3, Jurkat) daha önce yayımlanan Protokolü9 göre süspansiyon hücre kültür.
    2. Gerekirse, üreticinin yönergelerine göre piyasada bulunan transfection reaktifler hücrelerle transfect veya virally hücreleri ifade için uygun yapı ile nabız-chase önce 1 gün deneme8 transduce.
    3. 5 x 106 hücre başına 50 mL tüp durumda vasıl 250 x g oda sıcaklığında 5 min için cips, onları yıkamak ile açlık medya, 5 mL 1 x onları tekrar cips ve onları açlık medya 1 mL resuspend.
    4. Hücreleri 37 ° C su banyosu aktarmak ve alt kısmında yerleşme hücreleri önlemek için her 10-15 dk tüpler 10-25 dk. kışkırtmak için onları kuluçkaya.
    5. Sayacı başlatmak. Tam olarak 1 dk, hücreleri içeren tüp doğrudan 275 µCi (55 µCi/1 x 106 hücreler) su katılmamış etiket eklemek ve karıştırmak için girdap.
      Not: radyoaktif madde ele alırken, uygun önlemler ve yerel kurallar ve düzenlemeler kazayla maruz kalma ve/veya kontaminasyonu önlemek için takip için gerekli olduğunu.
    6. Tam olarak 11 dk chase medya 4 mL ekleyerek etiketleme durdurmak. Örnek karıştırın ve hemen 1 mL 15 mL tüp buz, buz gibi durmak eriyik 9 mL içeren transfer.
      Not: 0 dk chase örnek bu.
    7. Her bir her başarılı zaman nokta için bu adımları yineleyin. Bir kez tüm zaman puan topladı, 250 x g 4 ° C'de 5 dakika için hücreleri cips Orta Aspire edin (veya protein salgılanması takip için yeni bir 15 mL tüp aktarmak). 5 mL durak çözüm de hücrelerle yıkama ve 250 x g 4 ° C'de 5 dakika için hücreleri cips
    8. Durmak eriyik Aspire edin, tamamen buz gibi lizis arabelleği 300 µL içeren hücreleri parçalayıcı ve onları tam lizis sağlamak için buz üzerinde 20 dk için kuluçkaya. Transfer lysate 1.5 mL microcentrifuge tüp ve santrifüj 15.000-20.000 x g çekirdekleri cips için 4 ° c de 10 dakika.

2. Immunoprecipitation

  1. Antikor birleştirmek (konuya bakın) ve 50 µL immunoprecipitation boncuk (örneğin, protein A-Sepharose) (% 10 süspansiyon [v/v] lizis arabellek + %0.25 Sığır serum albümin [BSA]) bir microcentrifuge içinde tüp ve onları 4 ° c ~ 30 dk bir shaker için kuluçkaya.
  2. Boncuk, 12.000 x g oda sıcaklığında 1 dk. için cips ve süpernatant Aspire edin. Lysate, 200 µL antikor-boncuk karışıma ekleyin ve bir shaker 1s veya baş-over 4 ° C'de immunoprecipitation gerektiriyorsa, kuluçkaya > 1 h.
  3. Boncuk, 12.000 x g oda sıcaklığında 1 dk. için cips. Süpernatant Aspire edin ve immunoprecipitation yıkama arabellek 1 mL ekleyin. Bir shaker oda sıcaklığında 5 min için örnek bir yer.
  4. 2.3. adımda açıklandığı gibi boncuk cips ve yıkama tekrar 1 x. Daha sonra süpernatant Aspire edin ve boncuk TE arabellek, pH 6.8 (10 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA) 20 µL içinde resuspend. Girdap örnek.
  5. 2 örnek arabellek olmadan indirgeyici, x 20 µL eklemek girdap, 95 ° C ve girdap 5 min için tekrar ısı.
    Not: 500 mm DTT 2 µL azalan bakiyeli örnekleri hazırlama yalnızca, bu noktada eklenmelidir. O zaman, 2.7 adıma geçin.
  6. Boncuk 2.3 adımda anlatıldığı gibi cips. 500 mm DTT 1 µL içeren bir taze microcentrifuge tüp nonreduced süpernatant ile 19 µL aktarmak, örnek ve girdap santrifüj kapasitesi 95 ° C'de 5 min için tekrar ısıtma daha önce.
  7. Spin aşağı 12.000 x g, 1 dk. için örnek; azaltılmış örnek bu. Aşağı oda sıcaklığına kadar serin ve 1 m NEM 1.1 µL hem azalır ve nonreduced örnek ekleyin. Girdap ve örnekleri aşağı spin.

3. SDS-SAYFA

  1. Önce uygun SDS-sayfa çözme jel yüzdesini protein için faiz belirleyin. Örneğin, HIV-1 gp120, ne zaman deglycosylated, ~ 60 kDa çalışır ve % 7.5 jel içinde analiz edilir.
  2. Üreticinin yönergelerine göre TEMED olmadan çözme jel karışım hazırlamak (% akrilamid, 375 mM Tris-HCl [pH 8.8,] % 0,1 SDS [w/v], x ve % 0.05 amonyum Persülfat [APS] [w/v]) ve için vakum altında degas > 15 dak. Jel karışım gaz giderme iken, iyice jel cam plakanın % 70 etanol ve hav bırakmayan dokular ile temiz ve bir döküm aparatı koyun.
  3. TEMED (at %0,005 [v/v] son bir konsantrasyon) çözme jel karışımı ekleyin, iyice karıştırın ve cam plakanın istifleme jel için ~1.5 cm boşluk bırakarak arasında pipet. Dikkatle deiyonize H2O veya isopropanol ile jel kaplama ve polimerize için bırakın.
  4. Sonra çözme jel polimerli, yığın jel karışım hazırlamak (%4 akrilamid, 125 mM Tris-HCl [pH 6.8], % 0,1 SDS [w/v] ve % 0,025 APS [w/v]).
  5. Çözme jel deiyonize H2O ile üst floş ve tüm su kaldır.
    Not: filtre kağıdı son damla kaldırmak için kullanın.
  6. TEMED yığın jel karışımı (%0,005 [v/v]) ekleyin, iyice karıştırın ve yığın jel ile çözme jel kaplama ve bir 15-iyi tarak yerleştirin. Yığın jel polimerli bir kez çalışan bir odasına aktarmak ve tampon çalıştıran ile alt ve üst odaları doldurmak (25 mM Tris-HCl, 192 mM glisin [pH 8.3] ve % 0.1 SDS [w/v]).
  7. Örnek 15-lane minigel şeritte başına 10 µL yükleyin. İlk örnekleri ve jel son Lane'de yüklenmesini önlemek ve nonreducing örnek arabellek grup gülümseyen engellemek için tüm boş şerit yük. Boya açık jel alt kısmında olana jelleri bir 25 mA/jel sabiti çalıştırın.
  8. Jelleri cam plakanın kaldırmak için çözüm protein boyama ile jelleri leke (% 10 asetik asit ve % 30 metanol H2O + %0.25 parlak mavi R250 [w/v]) ile ajitasyon, 5 min için ve sonra 30 dk (boyama çözüm destaining ile destain çözüm olmadan parlak mavi R250).
  9. Jelleri aşağı dönük bir plastik wrap ve görüntülenmemesini 0.4 mm Kromatografi kağıt üstünde tepe-in onları düzenleyin. Jel sandviç Kromatografi kağıt tarafında bir jel kurutma makinesi yerleştirin. Üreticinin yönergeleri izleyerek, 80 ° C'de 2 h için jeller Kuru
  10. Kurutulmuş jelleri bir kaset için transfer ve onları autoradiography film ya da fosfor ekran yerleşimi. Autoradiography film kullanıyorsanız, bu adımı karanlık bir odada gerçekleştirilmelidir.

Sonuçlar

Katlama ve HIV-1 gp120 bir yapisan darbe chase üzerinden salgılanmasını Şekil 2' de gösterildiği. Nonreducing jel (şekilde hücreleri NR) oksidatif gp120 katlama gösterir. Nabız hemen sonra 5 dk (0 dak chase) gp120 etiketleme diffüz grup jel içinde daha yüksek olarak görünür ve chase ilerledikçe grup jel ile aşağı daha da sıkı grup (NT) birikir kadar ara ürün (BT) katlanır yayılmış geçirir Yerel olarak katlanmış gp120 temsil ede...

Tartışmalar

Nabız-chase yöntemleri protein sağlam hücreleri katlama bilim adamlarının anlayış geliştirmek için gerekli olmuştur. Biz mümkün olduğu kadar genel bir yöntem sağlamak teşebbüs ederken, bu yaklaşım katlanır, taşıma ve yaşam proteinlerin hücre içinde sırasında oluşan çeşitli işlemleri incelemek neredeyse sınırsız varyasyonları için potansiyele sahiptir.

Yemekleri yapışık hücreleri kullanarak bir darbe takip gerçekleştirirken, aynı ayrı tabak olarak m?...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Yazarlar geçmiş Braakman Lab, tüm üye teşekkür ve, onların verimli tartışmalar için mevcut ve bu makalede sunulan yöntemleri geliştirmede yardımcı. Bu proje Avrupa Araştırma Konseyi Avrupa Birliği'nin yedinci çerçeve programı (FP7/2007-2013) N ° 235649 altında ve Hollanda organizasyon, bilimsel araştırma (NWO) ECHO programı N ° 711.012.008 altında fon aldı.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
1.5 mL safeseal microcentrifuge tubesSarstedt72.706.400
Acetic AcidSigmaA6283glacial acetic acid
BAS Storage phosphor screen 20x25 cmGE Life Sciences28956475
Bromophenol BlueSigmaB8026Molecular biology grade
Carestream Biomax MR filmsKodakZ350370-50EA
Cell-culture mediaVariousN/ANormal cell culture media for specific cell-lines used
Cell-culture media, no methionine/cysteineVariousN/ASame media formulation as normal culture media e.g DMEM/MEM/RPMI, lacking methionine and cysteine
Charcoal filter paperWhatman1872047
Charcoal filtered pipette tipsMolecular bioproducts5069B
Charcoal vacu-guardWhatman67221001
Coomassie Brilliant Blue R250Sigma112,553for electrophoresis
CysteineSigmaC7352Molecular biology grade, Make 500 mM stock, store at -20 
Dithiothreitol (DTT)Sigma10197777001Molecular biology grade
EasyTag Express35S Protein Labeling MixPerkin ElmerNEG772014MCOther size batches of label are available depending on useage
EDTASigmaE1644Molecular biology grade
Gel-drying equipmentVariousN/A
GlycerolSigmaG5516Molecular biology grade
Grade 3 chromatography paperGE Life Sciences3003-917
Hank's Balanced Salt Solution (HBSS)Gibco24020117
Kimwipes delicate task wipesVWR21905-026
MESSigma M3671Molecular biology grade
MethanolSigmaMX0490 
MethionineSigmaM5308Molecular biology grade, Make 250 mM stock, store at -20
Minigel casting/running equipmentVariousN/A
NaClSigmaS7653Molecular biology grade
N-ethylmaleimideSigmaE3876Molecular biology grade, Make 1M stock in 100% ethanol, store at -20
PBSSigmaP5368Molecular biology grade
Protein-A Sepharose fastflow beadsGE health-care17-5280-04
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS)SigmaL3771Molecular biology grade
Triton X-100SigmaT8787Molecular biology grade
Trizma base (Tris)SigmaT6066Molecular biology grade
Typhoon IP Biomolecular imagerAmersham29187194
Unwire Test Tube Rack 20 mm for waterbathNalgene5970-0320PK

Referanslar

  1. Ellgaard, L., McCaul, N., Chatsisvili, A., Braakman, I. Co- and Post-Translational Protein Folding in the ER. Traffic. 17 (6), 615-638 (2016).
  2. Pisoni, G. B., Molinari, M. Five Questions (with their Answers) on ER-Associated Degradation. Traffic. 17 (4), 341-350 (2016).
  3. Lamriben, L., Graham, J. B., Adams, B. M., Hebert, D. N. N-Glycan-based ER Molecular Chaperone and Protein Quality Control System: The Calnexin Binding Cycle. Traffic. 17 (4), 308-326 (2016).
  4. Snapp, E. L., et al. Structure and topology around the cleavage site regulate post-translational cleavage of the HIV-1 gp160 signal peptide. Elife. 6, 26067 (2017).
  5. Braakman, I., Hoover-Litty, H., Wagner, K. R., Helenius, A. Folding of influenza hemagglutinin in the endoplasmic reticulum. Journal of Cell Biology. 114 (3), 401-411 (1991).
  6. Jansens, A., van Duijn, E., Braakman, I. Coordinated nonvectorial folding in a newly synthesized multidomain protein. Science. 298 (5602), 2401-2403 (2002).
  7. Land, A., Braakman, I. Folding of the human immunodeficiency virus type 1 envelope glycoprotein in the endoplasmic reticulum. Biochimie. 83 (8), 783-790 (2001).
  8. Singh, Y., Garden, O. A., Lang, F., Cobb, B. S. Retroviral Transduction of Helper T Cells as a Genetic Approach to Study Mechanisms Controlling their Differentiation and Function. Journal of Visualized Experiments. (117), e54698 (2016).
  9. Das, A. T., Land, A., Braakman, I., Klaver, B., Berkhout, B. HIV-1 evolves into a nonsyncytium-inducing virus upon prolonged culture in vitro. Virology. 263 (1), 55-69 (1999).
  10. Chen, W., Helenius, J., Braakman, I., Helenius, A. Cotranslational folding and calnexin binding during glycoprotein synthesis. Proceedings of the National Academy of Sciences. 92 (14), 6229-6233 (1995).
  11. Daniels, R., Kurowski, B., Johnson, A. E., Hebert, D. N. N-linked glycans direct the cotranslational folding pathway of influenza hemagglutinin. Molecular Cell. 11 (1), 79-90 (2003).
  12. Ferreira, L. R., Norris, K., Smith, T., Hebert, C., Sauk, J. J. Association of Hsp47, Grp78, and Grp94 with procollagen supports the successive or coupled action of molecular chaperones. Journal of Cellular Biochemistry. 56 (4), 518-526 (1994).
  13. Hoelen, H., et al. The primary folding defect and rescue of DeltaF508 CFTR emerge during translation of the mutant domain. PLoS One. 5 (11), 15458 (2010).
  14. Kleizen, B., van Vlijmen, T., de Jonge, H. R., Braakman, I. Folding of CFTR is predominantly cotranslational. Molecular Cell. 20 (2), 277-287 (2005).
  15. Hagiwara, M., Ling, J., Koenig, P. A., Ploegh, H. L. Posttranscriptional Regulation of Glycoprotein Quality Control in the Endoplasmic Reticulum Is Controlled by the E2 Ub-Conjugating Enzyme UBC6e. Molecular Cell. 63 (5), 753-767 (2016).
  16. Copeland, C. S., Doms, R. W., Bolzau, E. M., Webster, R. G., Helenius, A. Assembly of influenza hemagglutinin trimers and its role in intracellular transport. Journal of Cell Biology. 103 (4), 1179-1191 (1986).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

KatlamaradiolabelingSDS sayfaimmunoprecipitationbiyokimyasay 144Protein darbe kovalamakkonformasyon analizikinetik

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır