Bu çalışma AO vakıf (S-08-42G) ve RISystem AG tarafından desteklenmiştir. Biz çok büyük bir sunarım &quot;teşekkür ederim!&quot; Bize bu cerrahi işlem çekimleri için kendi VEYA tesisleri kullanmak için izin kadar uzlaşmacı olduğu için AO Araştırma Enstitüsü Davos, İsviçre&#39;de Stephan Zeiter takımı için.

Hayvan bakım ve deneysel protokolleri NIH kurallarına uygun takip ve Beth Israel Deaconess Tıp Merkezi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi, Boston, MA tarafından kabul edildi. (Protokol Numarası: 098-2009) Cerrahi Malzemeler ve Araçların 1. Hazırlık <ol><li> Kullanmadan önce ameliyat gerçekleştirmek için kullanılan tüm cerrahi malzemelerin ve aletleri sterilize edin. Katlanmış bir bez veya sarılı kağıt içinde, veya bir alet tepsisine olmadan, gerekli malzemeleri paketi ve buhar sterilizasyonu için otoklav bandı ile kapatın. Otoklavın sıcaklıktaki bir sterilizasyon süresi 20-25 dakika boyunca 125-135 ° C&#39;de, ve kuruma süresi daha sonra 10-15 dakika gerekir. </li><li> Ameliyat sırasında fareler 200-250 gr olduğundan emin olun. Fareler boyutu ağır ise, o zaman farklı boyutta fiksatör kullanılmalıdır, bu çok önemlidir. Sıçanlar için eksternal fiksatör sistemi daha ağır 250 ga büyük versiyonu kullanılmalıdır. </li> &lt;/ Ol&gt; 2. Cerrahi Prosedür ve Eksternal Fiksatör Uygulaması <ol><li> Sertifikalı bir hayvan tedarikçiden Sprague-Dawley (ya da başka herhangi bir suşu) sıçanları (erkek veya dişi, 200-250 g) elde al. Araştırmacının Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından onaylanan ulusal kurallara uygun olarak uygun hayvan bakımı ve deneysel protokolleri izleyin. İşlemden önce 48 saatlik bir iklimlendirme dönemi en az izin. </li><li> Ameliyat için, özel bir cerrahi prosedür odasının sıçan taşımak. </li><li> Birinci induksiyon odacığı yoluyla izofluran ile anestezi sıçan ve O2 / dk 1-1.5 L% 1.5-2 oranında bir anestezi makineye bağlı bir yüz maskesi ile devam etmektedir. Cerrahi başlangıcında hayvanlar derin anestezi altında olduğundan emin olun. Bunu yapmak için, uzuv genişletmek ve parmakları ile ayak parmakları arasında web kısma pedal refleks tekniği kullanmalısınız (ayak kendisi!). Hayvan su değilfficiently uzuv kesilirse, kas seğirme oluştuğunda veya hayvan gürültü yaparsa anestezi. </li><li> Sıçan ameliyat için derin genel anestezi altında sonra, antibiyotik (sefazolin, 20 mg / kg) ve sağ bacak kas analjezik buprenorfin (0.08 mg / kg doz) enjekte edilir. Ameliyat sırasında sıvı kaybı büyük miktarda önlemek için ameliyat öncesi vücut ağırlığının% 3-5 sıcak steril tuzlu su deri altına yönetmek, ve sonunda eğer gerekli. Kornea yaralanmaları önlemek için hidrate onları tutmak için gözleri steril göz merhemi sürün. </li><li> Ilaç enjeksiyonları sonrasında, tıraş ve chlorohezadine veya diğer dezenfektan çözeltisi ile sıçanın sağ arka bacak, tüm temizlik ve ameliyat masasına için hayvan aktarın. (Bacak enjekte edilmiştir ile aynı olması gerekir üzerine işletilmektedir.) </li><li> Yüzükoyun pozisyonda (Şekil 1A) ve ısıtılmış yüzey üzerinde hayvan yerleştirin. Emin olun yüz maskesi burun ve ağız kıç kalırer cerrahi tablo transferi, ve 2.3 belirtilen anestezi rejimi) korumak. Ameliyat için amaçlanan sadece bacak maruz böylece steril fenestre örtü ile cerrahi işlemin alanını asmak. </li><li> Bisturi (Şekil 1C) ile diz suprakondiler bölgeye büyük trokanterden sağ femur yüzeyine deri yoluyla çalışan craniolateral 3-4 sm (Şekil 1B) yaklaşık bir kesi olun. Nazik diseksiyonu fasya lata ayıran ve kas dokusu kesilmez emin yaparak femur şaftı Açığa. Bundan sonra, M. vastus lateralis ve M. biseps femoris birbirinden ayrılması ve femur tam uzunlukta ortaya çıkarmak için, M. tensör fasiaları lata asansör (siyatik sinir korunur emin Şekil 1D). </li><li> Osteotomi planlanan alanında, Fe çevreleyen kas dokusunu serbest bırakarak gövde üzerinde, ortada alanı boyunca femur hazırlanmasımur. İlk olarak, femur açıktaki yüzeyine dik Henahan asansör koyarak ve daha sonra komşu bölgede kas serbest bir neşter kullanarak başlar. <ol><li> Ileri ilerleyen devam edin ve çevredeki kas dokusunun tüm (kusur oluşturulur) kemiğin tüm orta bölümünden serbest bırakılana kadar, kemik yüzeye yakın kalan, femur dolaşmak ve kas dokusu tamamen temizlenir kemikten. Bunu yaparken, herhangi bir büyük damarların kesilmesini önlemek için kemik yüzeyine yakın kalmak için çok önemlidir. </li></ol></li><li> 5 mm büyük kemik defekti için, medio-yanal yönde kemiğinin çevresindeki Gigli teli testere (0.22 mm) döngü 2 adet (Şekil 1E, F). , Konumu, bir diz eklemine yakın femur uzak tarafta bir parça, ve yakın kalça eklemi için yakın tarafında bir ikinci parçayı tel testere döngü sonra. Kelepçe Gigli teli S-şekli kavisli diseksiyon ve Ligat kullanarak her tarafta adet gördümböylece ure forseps, bu amaçlanan yerde kalır. Bir tek kesim osteotomi planlanan ise, o zaman sadece tel testere tek parça kullanın. </li><li> Implantın tam konumunu belirlemek için bir şablon olarak eksternal fiksatör plakası kullanın. Harici fiksatörün konumu femur merkezine mümkün olduğunca yakın olması gerekir. <ol><li> Kemiğin ön-yan yüzeyi üzerinde, dış fiksatör plakası yerleştirin. Bu harici femur döndürerek elde edilir. Bu konumda, yumuşak doku tabakası yara kapatılır sonra tespitleyici plakasının altına aşırı yumuşak doku gerilimi önleyen, en ince yer almaktadır. </li><li> Daha sonra biraz kemik yüzeyinden dış fiksatör plaka, plakanın delikleri kemik yüzeyine merkezli emin olmak için kaldırın. Kemiğin uzunlamasına eksenine paralel olarak kalmak için küçük bir kelepçe ile dış fiksatör tutun ve daha sonra 0.79 ile uyluk kemiğinin merkeze yakın tarafında birinci delik delin etmek için bir güç aracı veya bir el matkabı kullanımımm matkap ucu. Ileri ilerleyen önce, matkap ucu yine, kemik yüzeyi üzerinde ortalanmış olduğundan emin olun. </li><li> Matkabın ucu kayma devam ederse, ilk deliğin konumunu ortalamak için 1,00 mm sayaç pafta (Şekil 8F) kullanın. Sayaç, platin, geriye kalan tüm montaj cıvatası için kullanılmalıdır. Bu kemik yüzeyine göre deliklerin tam bir hizaya getirmesine ve fiksatör plaka sağlayacaktır. </li></ol></li></ol> 3. Dış Fiksatör implantasyonu yöntemi Testere Kılavuzu Kullanma <ol><li> Eksternal fiksatör plaka testere kılavuz üzerinde kırpma önce baş aşağı monte olmadığından emin olun. Plaka üzerindeki deliklerin boyutu karşılaştırarak belirler. Doğru tarafı büyük deliğin çapı yukarı bakacak şekilde olduğunu. Fiksatör içindeki deliklerin büyüklüğü arasındaki fark belirgin değildir, sayaç platin kullanılır. <ol><li> Üzerinde bir delik içine karşı kalkan platine de ucu takınsayaç platin kolayca deliğine geçen Eğer sayaç platin ucu bu fiksatör bir taban tarafı ve ters çevrilmesine var demektir uymazsa fiksatör levha, daha sonra bu, bununla birlikte, fiksatör ters olan , implantasyon için. (Önemli.:. Bu kemik yüzeyine fiksatör mükemmel bir yönlenmesini sağlamak gibi kemiğin uzunlamasına eksenine dik matkap emin olun birinci deliğin yönü, kemik üzerinde fiksatör nihai yönünü belirler unutmayın Montaj pimleri aynı uzunlukta ve fiksatör kemiğin uzunlamasına eksenine paralel olmaması durumunda, fiksatör ve kemik arasındaki mesafe çok fazla değişebilir ve her iki korteksleri nüfuz dört montaj pimleri yeteneğini engelleyebilir.) </li><li> Yönlendirme onaylandıktan sonra (Şekil 2A, B) testere kılavuzu üzerindeki plaka klip ve daha sonra kemik üzerinde birimi klip şekilde birinci önceden delinmiş bir deliğiplaka (Şekil 2C) üzerine, birinci delik ile hizalanır. Deliğe ilk montaj pimi sürmek için el matkap takılı 0.70 mm kare kutu anahtarı kullanın. Bunu yapmak kalan montaj pimleri için tekrarlanabilir konumlandırma izin verecektir. </li><li> Birinci montaj pimi yerine yerleştirilmesinden sonra, daha sonra uzak tarafındaki ilk montaj pimi en uzak delik açın ve deliğe ikinci montaj pimi sürücü. İki orta montaj pimleri implantasyon sırası önemli değildir. </li></ol></li></ol> Testere Kılavuz olmadan 4. Harici Fiksatör İmplantasyonu Yöntem: Eksternal fiksatör uygulaması da testere kılavuzunu kullanmadan yapılabilir. Eksternal fiksatör implantasyonu başlayan adımlar testere kılavuzu ile birim kemik (adım 3.1) üzerine bastırılır kadar aynıdır. Testere kılavuz kullanılmaz ise, sırasında doğru yönde fiksatör plaka tutmak için çok önemlidirtüm uygulama prosedürü. Femur dışa ön-yan yönde döndürülmesi gerekmektedir. <ol><li> Bu kemik (Şekil 3A) uzunlamasına eksenine paralel olacak şekilde küçük bir kelepçe ya da S-şeklinde kavisli bir diseksiyon ve bağ forseps ile eksternal plaka tutun. Fiksatör hizalanmasını belirler ilk montaj pimi uygulanması, bu nedenle, kemik dönüşü, birinci pim (Şekil 3B) takılana kadar muhafaza edilmesi gerekir. İlk piminin sonra, dikkatlice bir matkap kılavuz olarak hareket fiksatör plakayı tutmak için forseps kullanabilir. </li><li> İkinci deliğe matkap takın - Bu planlı osteotomisi boşluk (Şekil 3C) en uzak delik olduğunu. Delmeden önce, ikinci delik birinci delik gibi aynı yönü olduğundan emin olmak için kontrol edin; Ayrıca sondaj tamamlandıktan sonra, iki korteks nüfuz emin olun. </li><li> 0.70 mm kare bo takındaha sonra x, el matkabı anahtarı ve ucu içine montaj pimi takın. Dikkatle ilk delinmiş deliğin uyum kaybetmeden eksternal fiksatör plaka takın. </li><li> En kısa uç kemik ile temas halinde olduğu gibi, el matkabın yakın ucuna uygulanan sürekli Yük altında anahtarı olmaya başlar. Yaklaşık 5 tam dönüş sonrası, montaj piminin yakın ucunda iplik harici fiksatörün plakanın gövdesi tutaçları emin olun. Bu konu sistemini kilitler. Kemik ipliğinin bir ucu kemik (Şekil 3D) üst yüzeyine yakın olduğunda dönüm durdurun. </li><li> En uzak ve yakın tarafında pim yerine yerleştirildikten sonra, kalan iki orta delik delin. İki orta pimlerin implantasyon sırası önemlidir (Şekil 3C) böyle değildir. </li><li> Eksternal fiksatör yerde sonra, (defekt yapmak için testere kılavuz yönettiği gördüm Figür 0.22 mm&#39;lik Gigli teli kullanmake 4A). İkinci yöntem seçilir ise seçilsin, testere kılavuz kusur yapmadan önce kırpılır. <ol><li> Bunun için, bir 0.22 mm&#39;lik Gigli teli tuzlu suda dağıtmak için (kullanacağım 5 ml şırınga yeterli sulama kullanarak ileri ve geri (Şekil 5B) karşılıklı hareketi ile 5 mm defekt oluşturmak için femur (Şekil 5A) altında 2 oluklar yoluyla gördü geçmek kusur oluşturma süresi). Yumuşak dokuya zarar görmesini önlemek için, osteotomisini tamamladıktan sonra bir tarafta kemiğe testere tel yakın kesti. Testere kılavuzunu (Şekil 4B) sökün. </li></ol></li><li> Kusur veya osteotomi oluşturulduktan sonra, ardından cildi (Şekil 4D) testere kılavuzunu çıkarın ve katmanlar halinde yara, ilk kas (Şekil 4C) kapatın ve. Yara kapatılmadan önce çalışma protokolünde planlandığı gibi, kusur tedavi. Kas tabakası ve Ethibond vikril sütür 4-0 kullanarak fasya lata ve Ethicon monocryl 3-0 ler kullanarak cilt kapatınuture. Yaraları dikilmesi sırasında steril olmayan yüzeyler üzerinde dikiş materyali sürükleyerek kaçının. Not: ısırma yarası önlemek için, dikiş alt implanta uzak bitemez. Aynı şekilde, deri yapıştırıcı yerine dikiş kullanılabilir. </li><li> İlk üç sonrası günlerde, sıçan analjeziğin her 12 saat vermek ve her 24 saatte bir antibiyotik. Tabii ki, ilaçların post-operatif rejim, her araştırmacı tarafından kullanılan ilaçların marka ve marka bağlı olarak değişecektir (ilaç şartname talimatlarına bakın). </li><li> Bunlar anestezi kurtarmak ve sadece o lojmandan dönmelerini emin olmak için sık sık işlem sonrası hayvan izleyin. Herhangi bir komplikasyon olmadığından emin olmak için ameliyat sonrası ilk birkaç gün boyunca tek başına konut sağlayın. </li><li> Emin hayvan acı ve sıkıntı içinde değil yapmak için ameliyattan sonra su, gıda alımını ve vücut ağırlığını izleyin. Hayvan azalmış aktivite düzeyi gösterirse, zorluk dolaşırım (mümkünse implant yetmezliği), ataksiBir, dağınık yağlı kürk, gözler ve burun delikleri, kambur duruş, solunum sıkıntısı, gıda ve su azaltılmış alımı, vb etrafında porfirin boyama bir veteriner danışın. </li></ol> In vivo Dış Fiksatör Tutukluğu 5. Değişikliği <ol><li> Çalışma protokolü, in vivo bu iyileşme sürecinde fiksatör sertlik değişikliği gerektiriyorsa el uçlu 0.5 mm kare anahtar kutusu kullanılarak özel birbirine vida ile sabitlenmiş bağlantı elemanları değiştirerek elde edilir. Bu işlem için, sıçan uyutmak (protokolde 2.3 bakın) ve prosedür (Şekil 6A) anda sadece bir kez analjezi (protokolde 2.4 bakınız) vermek. <ol><li> Sıçan sakinleştirici ve daha sonra monte fiksatör tarafına bağlı birbirine vida içine 0.50 mm kare kutu anahtarı ucu takın ve pim yarım üzerinden (Şekil 6B kadar saat yönünün tersine çevirerek dikkatlice başlar </strong&gt;). Bu bölüm tamamlandıktan sonra, eksternal fiksatör plaka (Şekil 6C) aynı tarafta ikinci pimi için prosedürü tekrarlayın. </li><li> Aynı tarafta iki pim yarı yoldan olduğunda, yumuşak bir hareket (Şekil 6D) ile karşı taraftaki bağlantı elemanı çıkarmak için forseps veya bir kelepçe kullanılır. Bu, daha sonra sarım ek bir kaç yapmaz bağlantı elemanı birbirine vida ucunun bağlantı elemanında içine gömülü olmadığından emin olmak için her iki kilit vidalarının ilgili kolay gelmelidir. </li><li> Bağlantı elemanı kaldırıldıktan sonra, kaldırılan bir (Şekil 6E) yerine arzu edilen sertlik derecesine bağlantı kaymasını ve kilitleme cıvatası karşı tarafında yarım (Şekil kadar karşı taraftan kare kutu anahtarı kullanarak olmaya başlar 6F). İkinci kilitleme vidası (Şekil 6G) için aynı işlemi tekrarlayın. Önemli: thplakanın karşı tarafına geçiş gerektirecektir her iki birbirine geçen vida bağlantı elemanı (Şekil 6H, I) &#39;e değiştirildi tarafında yarı yoldan olduğundan emin olmak için. </li><li> Bu bölüm başarıyla tamamlandıktan sonra, ikinci bağlantı elemanı (Şekil 6J) kaldırmak ve karşı tarafa (Şekil 6K) hakkında ikame ile aynı sertlik bağlantı elemanı ile değiştirin. Ikinci bağlantı elemanı yerine yerleştirilmesinden sonra, birbirine vida uç plakanın karşı tarafına çıkana kadar birbirine vidanın başlar ve birbirine vida ucu her bir tarafında (Şekil 6 L) ile aynı miktarda çıkıldı. İkinci kilitleme vidası (Şekil 6M, N) için aynı işlemi tekrarlayın. Bu prosedür tamamlamak için yaklaşık 15 dakika sürer. </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Einhorn, T. A., Lane, J. M., Burstein, A. H., Kopman, C. R., Vigorita, V. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+healing+of+segmental+bone+defects+induced+by+demineralized+bone+matrix.+A+radiographic+and+biomechanical+study.">The healing of segmental bone defects induced by demineralized bone matrix. A radiographic and biomechanical study.</a> J Bone Joint Surg Am. 66, 274-279 (1984).</li><li>Feighan, J. E., Davy, D., Prewett, A. B., Stevenson, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+bone+by+a+demineralized+bone+matrix+gel:+a+study+in+a+rat+femoral+defect+model.">Induction of bone by a demineralized bone matrix gel: a study in a rat femoral defect model.</a> J Orthop Res. 13, 881-891 (1995).</li><li>Hunt, T. R., Schwappach, J. R., Anderson, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Healing+of+a+segmental+defect+in+the+rat+femur+with+use+of+an+extract+from+a+cultured+human+osteosarcoma+cell-line+(Saos-2).+A+preliminary+report.">Healing of a segmental defect in the rat femur with use of an extract from a cultured human osteosarcoma cell-line (Saos-2). A preliminary report.</a> J Bone Joint Surg Am. 78, 41-48 (1996).</li><li>Jazrawi, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bone+and+cartilage+formation+in+an+experimental+model+of+distraction+osteogenesis.">Bone and cartilage formation in an experimental model of distraction osteogenesis.</a> J Orthop Trauma. 12, 111-116 (1998).</li><li>Probst, A., Jansen, H., Ladas, A., Spiegel, H. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Callus+formation+and+fixation+rigidity:+a+fracture+model+in+rats.">Callus formation and fixation rigidity: a fracture model in rats.</a> J Orthop Res. 17, 256-260 (1999).</li><li>Richards, M., Huibregtse, B. A., Caplan, A. I., Goulet, J. A., Goldstein, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Marrow-derived+progenitor+cell+injections+enhance+new+bone+formation+during+distraction.">Marrow-derived progenitor cell injections enhance new bone formation during distraction.</a> J Orthop Res. 17, 900-908 (1999).</li><li>Aro, H. T., Chao, E. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bone-healing+patterns+affected+by+loading,+fracture+fragment+stability,+fracture+type,+and+fracture+site+compression.">Bone-healing patterns affected by loading, fracture fragment stability, fracture type, and fracture site compression.</a> Clin Orthop Relat Res. , 8-17 (1993).</li><li>Augat, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Shear+movement+at+the+fracture+site+delays+healing+in+a+diaphyseal+fracture+model.">Shear movement at the fracture site delays healing in a diaphyseal fracture model.</a> J Orthop Res. 21, 1011-1017 (2003).</li><li>Augat, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Local+tissue+properties+in+bone+healing:+influence+of+size+and+stability+of+the+osteotomy+gap.">Local tissue properties in bone healing: influence of size and stability of the osteotomy gap.</a> J Orthop Res. 16, 475-481 (1998).</li><li>Claes, L., Augat, P., Suger, G., Wilke, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+size+and+stability+of+the+osteotomy+gap+on+the+success+of+fracture+healing.">Influence of size and stability of the osteotomy gap on the success of fracture healing.</a> J Orthop Res. 15, 577-584 (1997).</li><li>Claes, L., Eckert-Hubner, K., Augat, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+fracture+gap+size+influences+the+local+vascularization+and+tissue+differentiation+in+callus+healing.">The fracture gap size influences the local vascularization and tissue differentiation in callus healing.</a> Langenbecks Arch Surg. 388, 316-322 (2003).</li><li>Duda, G. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interfragmentary+motion+in+tibial+osteotomies+stabilized+with+ring+fixators.">Interfragmentary motion in tibial osteotomies stabilized with ring fixators.</a> Clin Orthop Relat Res. , 163-172 (2002).</li><li>Goodship, A. E., Watkins, P. E., Rigby, H. S., Kenwright, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+fixator+frame+stiffness+in+the+control+of+fracture+healing.+An+experimental+study.">The role of fixator frame stiffness in the control of fracture healing. An experimental study.</a> J Biomech. 26, 1027-1035 (1993).</li><li>Williams, E. A., Rand, J. A., An, K. N., Chao, E. Y., Kelly, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+early+healing+of+tibial+osteotomies+stabilized+by+one-plane+or+two-plane+external+fixation.">The early healing of tibial osteotomies stabilized by one-plane or two-plane external fixation.</a> J Bone Joint Surg Am. 69, 355-365 (1987).</li><li>Wu, J. J., Shyr, H. S., Chao, E. Y., Kelly, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+osteotomy+healing+under+external+fixation+devices+with+different+stiffness+characteristics.">Comparison of osteotomy healing under external fixation devices with different stiffness characteristics.</a> J Bone Joint Surg Am. 66, 1258-1264 (1984).</li><li>Harrison, L. J., Cunningham, J. L., Stromberg, L., Goodship, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Controlled+induction+of+a+pseudarthrosis:+a+study+using+a+rodent+model.">Controlled induction of a pseudarthrosis: a study using a rodent model.</a> J Orthop Trauma. 17, 11-21 (2003).</li><li>Kaspar, K., Schell, H., Toben, D., Matziolis, G., Bail, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+easily+reproducible+and+biomechanically+standardized+model+to+investigate+bone+healing+in+rats,+using+external+fixation.">An easily reproducible and biomechanically standardized model to investigate bone healing in rats, using external fixation.</a> Biomed Tech (Berl). 52, 383-390 (2007).</li><li>Mark, H., Bergholm, J., Nilsson, A., Rydevik, B., Stromberg, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+external+fixation+method+and+device+to+study+fracture+healing+in+rats.">An external fixation method and device to study fracture healing in rats.</a> Acta Orthop Scand. 74, 476-482 (2003).</li><li>Mark, H., Nilsson, A., Nannmark, U., Rydevik, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+fracture+fixation+stability+on+ossification+in+healing+fractures.">Effects of fracture fixation stability on ossification in healing fractures.</a> Clin Orthop Relat. Res. , 245-250 (2004).</li><li>Mark, H., Rydevik, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Torsional+stiffness+in+healing+fractures:+influence+of+ossification:+an+experimental+study+in+rats.">Torsional stiffness in healing fractures: influence of ossification: an experimental study in rats.</a> Acta Orthop. 76, 428-433 (2005).</li><li>McCann, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+osteoporosis+on+bone+mineral+density+and+fracture+repair+in+a+rat+femoral+fracture+model.">Effect of osteoporosis on bone mineral density and fracture repair in a rat femoral fracture model.</a> J Orthop Res. 26, 384-393 (2008).</li><li>Betz, O. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+percutaneous+gene+delivery+to+enhance+healing+of+segmental+bone+defects.">Direct percutaneous gene delivery to enhance healing of segmental bone defects.</a> J Bone Joint Surg Am. 88, 355-365 (2006).</li><li>Cullinane, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+a+neoarthrosis+by+precisely+controlled+motion+in+an+experimental+mid-femoral+defect.">Induction of a neoarthrosis by precisely controlled motion in an experimental mid-femoral defect.</a> J Orthop Res. 20, 579-586 (2002).</li><li>Dickson, G. R., Geddis, C., Fazzalari, N., Marsh, D., Parkinson, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microcomputed+tomography+imaging+in+a+rat+model+of+delayed+union/non-union+fracture.">Microcomputed tomography imaging in a rat model of delayed union/non-union fracture.</a> J Orthop Res. 26, 729-736 (2008).</li><li>Jager, M., Sager, M., Lensing-Hohn, S., Krauspe, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+critical+size+bony+defect+in+a+small+animal+for+bone+healing+studies+(II):+implant+evolution+and+surgical+technique+on+a+rat's+femur.">The critical size bony defect in a small animal for bone healing studies (II): implant evolution and surgical technique on a rat's femur.</a> Biomed Tech (Berl). 50, 137-142 (2005).</li><li>Betz, V. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Healing+of+segmental+bone+defects+by+direct+percutaneous+gene+delivery:+effect+of+vector+dose.">Healing of segmental bone defects by direct percutaneous gene delivery: effect of vector dose.</a> Hum Gene Ther. 18, 907-915 (2007).</li><li>Glatt, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ability+of+recombinant+human+bone+morphogenetic+protein+2+to+enhance+bone+healing+in+the+presence+of+tobramycin:+evaluation+in+a+rat+segmental+defect+model.">Ability of recombinant human bone morphogenetic protein 2 to enhance bone healing in the presence of tobramycin: evaluation in a rat segmental defect model.</a> J Orthop Trauma. 23, 693-701 (2009).</li><li>Willie, B., Adkins, K., Zheng, X., Simon, U., Claes, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanical+characterization+of+external+fixator+stiffness+for+a+rat+femoral+fracture+model.">Mechanical characterization of external fixator stiffness for a rat femoral fracture model.</a> J Orthop Res. 27, 687-693 (2009).</li><li>Hess, T., Hopf, T., Fritsch, E., Mittelmeier, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+biomechanical+studies+of+conventional+and+self-tapping+cortical+bone+screws.">Comparative biomechanical studies of conventional and self-tapping cortical bone screws.</a> Z Orthop Ihre Grenzgeb. 129, 278-282 (1991).</li><li>Glatt, V., Evans, C. H., Matthys, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Design,+characterisation+and+in+vivo+testing+of+a+new,+adjustable+stiffness,+external+fixator+for+the+rat+femur.">Design, characterisation and in vivo testing of a new, adjustable stiffness, external fixator for the rat femur.</a> Eur Cell Mater. 23, 289-298 (2012).</li><li>Glatt, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+healing+of+large+segmental+defects+in+the+rat+femur+by+reverse+dynamization+in+the+presence+of+bone+morphogenetic+protein-2.">Improved healing of large segmental defects in the rat femur by reverse dynamization in the presence of bone morphogenetic protein-2.</a> J Bone Joint Surg Am. 94, 2063-2073 (2012).</li></ol>

Yazar Romano Matthys implantları, bu yazıda kullanılan implant özel araçlar ve sarf üretir RISystem AG İsviçre&#39;nin Davos bir çalışanıdır. Yazar Vaida Glatt hiçbir rakip mali çıkarları vardır.

Büyük bir kemik defekti oluşturmak için bir cerrahi prosedürün en kritik adımlar şunlardır: 1) sıçanın uygun vücut ağırlığını tercih eksternal fiksatör boyutuna uyacak; 2) işlem sırasında steril ortamı muhafaza; ve 3) cerrahi prosedür protokolü takip. Bu çalışmanın ana amacı, tasarım üretim ve sıçan femoral geniş bir defekt modeli için yeni bir değişken sertlik eksternal fiksatör karakterize, ve iyileşme sürecinde biyolojik ve mekanik faktörler aras...

Bir dizi çalışmada kemik doku onarımında 1-6 katılan biyolojik mekanizmaları daha iyi anlamamızı sağlamıştır. Bu eksenel, kesme ve interfragmenter hareketleri (IFM&#39;ler) gibi kemik tamir ve büyük mekanik etkileri yoğun 7-15 incelenmiştir. Geçtiğimiz birkaç yıl içinde, daha fazla çalışmalar in vivo modellerde kırığı, osteotomi ve büyük segmental kemik defekti ile kemik iyileşmesi üzerine mekanik çevrenin etkisini açıklayan ortaya çıkmaya başlamıştır. Bu nedenle, güvenilir tespit yöntemleri, güvenilir ve tekrarlanabilir çalışma sonuçlarını almak için gereklidir. Bu kırık iyileşir yolu belirler gibi şifa kırık çevresinde mekanik ortamı çok önemlidir. Bu nedenle, tespit cihazının seçimi çok önemlidir ve dikkatli bir çalışma tasarımına bağlı olarak seçilmelidir ve bu boşluk boyutu ve kırığın tipine gibi diğer faktörlere bağlıdır. Fiksasyon cihazın mekanik özellikleridaha da önemli yeniden tam yük arasında deney süresi boyunca eşit kalan bir boşluk boyutu değil, aynı zamanda kemik iyileşme için ideal bir ortam, sadece mekanik sağlayan bir tespit oluşturmak için büyük bir kemik defektlerinin kemik iyileşmesini çalışıldığında. Diğer fiksasyon cihazları üzerinde bir avantaj var, çünkü eksternal fiksatör yaygın kırık ve büyük kemik defekti deneysel iyileşmesi modellerinde kullanılmaktadır. Dış fiksatörlerin başlıca avantajı olarak deney sırasında cihazın stabilitesi çubuğu değişen ya da ayarlanması ile elde edilebilir ikinci bir müdahale olmadan, in vivo olarak hasarlı bölgede mekanik ortamının değişimi için izin veren olan kemik iyileşmesi ilerler. Ayrıca, kemik onarımı geliştirmek üzere özel lokal mekanik uyarım uygulama yapılmasına izin verir, ve aynı zamanda in vivo olarak yara dokusunun sertliğini ölçmek için potansiyel sağlamaktadır. Bununla birlikte, cihaz, aynı zamanda bazı dezavantajları vardırO şunlardır: yumuşak doku enfeksiyonları ve pim kırılma tahriş. Ne yazık ki, bu implantlar, implant gelişme sırasında &quot;raftan&quot; mevcut değildi ve araştırmacılar, amaçlanan kullanım için kendi fiksatörler tasarımı özel zorunda kaldılar. O iyileşene Bu nedenle, bu alanda araştırma bir kısıt büyük bir segmental defekt ve yerel mekanik çevre üzerindeki deneysel kontrol eksikliğinin yanı sıra osteotomilerini oldu. Bir harici fiksatörün mekanik özellikleri ile tanımlanır, ve modüle edilebilir, değişkenlere çok sayıda: pimler, pim çapı, iğne malzeme arasındaki mesafe, pim, fiksatör uzunluğu, fiksatör çubuk sayısı sayısı fiksatör Çubuk malzeme, fiksatör çubuk kalınlığı ve fiksatör bar (ofset) için kemik yüzeyinden olan mesafedir. Şaşırtıcı bir şekilde, çalışma sadece yetersizdir, ayrı ayrı bileşenlerin, mekanik katkıları araştırdığımızdan bulunamadıkemirgen çalışmalarında kullanılan sabitleyicilerin 16,18,28 veya bütün çerçeve konfigürasyonları. Örneğin, bir araştırma sonuçları sabitleme yapısının toplam sertliğinin belirlenmesinde ana faktörlerden biridir offset, çap ve malzeme özelliklerine bağlı olarak 28 pimlerinin esnekliği hakim olduğunu göstermiştir. Yukarıda bahsedilen çalışmalarda elde edilen sonuçlar açıkça tespit cihazı tarafından sağlanan mekanik çevre bilerek son derece önemlidir ve yine birçok durumda ayrıntılı bir şekilde incelenmiştir değildir olduğunu göstermektedir. Bu makale, bu sorunu gideren bir eksternal fiksatör tasarım, özellikler, ve in vivo implantasyonu raporlar. Bu iyileşme, aynı zamanda fiksatör ilerledikçe mekanik ortamında, in vivo olarak, iyileşme sürecinin farklı aşamalarında-mekanik duyarlılık çalışma sağlayan bir özelliği modülasyonu için izin verir. Buna ek olarak, hem de getiren bir kontrol edilen ve tekrar lokal mekanikark ortamı, erişilebilirlik kemik iyileşmesinin değişik aşamalarında bu ortamın modülasyonu için izin verir. Biz tasarlanmış fiksatör yaygın deney hayvanlarında 22-27 kırık tespit 16-21 ve geniş bir defekt modellerinde kullanılan eksternal fiksasyon, dayalıdır. Bizim eksternal fiksatör ve literatürde mevcut diğer tasarımlar arasında fark onların kararlılık bar Kirschner telleri (K-teli) ile sıkı bir kavrama sahip vidalarla sabitlenmiş olmasıdır. Bu tip tasarımın iki haftada tekrar sıkılması için vida gerektirir (hatta bazen haftalık) yükleme stabilite çubuğunun gevşemesinin önlenmesi için, yük taşıma vasıtasıyla uygulanır olarak ofset mesafesi muhafaza emin olmak için. Böyle gevşeme oluşursa, böyle köşeli, enine ve şifa kemiğe burulma kayma hareketleri gibi istenmeyen ek yükleme koşulları sağlar (Researche ile kişisel deneyim, iletişime dayalıBunu bilerek rs)., eksternal fiksatör fiksatör sertlik değiştirilmesi gerektiğinde, bu montaj pimleri gömülmüştür ana modülüne bağlı bağlantı elemanları kaldırarak elde edileceğini gibi tasarlanmıştır. In vivo Pilot deneme daha büyük miktarlarda üretilmektedir önce önerilen tüm taleplerini karşıladığından emin olmak için yeni eksternal fiksatör ile prototip yapıldı. Bu çalışmanın ana amacı, iyileşme süreci boyunca in vivo olarak sertlik değiştirme yeteneği ile sıçanlarda büyük kemik kusurları ve osteotomi için kullanılan bir harici fiksatörün için yeni bir cerrahi yöntem sunmaktır. Bu tespit yöntemi, sıçanların femur in vivo olarak uygulanır.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="848">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:232px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:283px;">Company</td>
			<td style="width:117px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:216px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">RatExFix simple 100%</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.612.120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">RatExFix simple 70%</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.612.123</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">RatExFix simple 40%</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.612.121</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">RatExFix simple 10%</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.612.122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:232px;">RatExFix Connection element 100%</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.612.130</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">RatExFix Connection element 70%</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.612.131</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">RatExFix Connection element 40%</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.612.132</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">RatExFix Connection element 10%</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.612.133</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">RatExFix Main body</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.611.101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">RatExFix InterlockingScrew</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.412.110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">RatExFix Mounting pin 0.85 mm</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.412.100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">RatExFix Saw Guide 100% 5 mm</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.312.100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Accu Pen 6V+</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.390.211</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">HandDrill</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.390.130</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Drill Bit 0.79 mm</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.593.203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Gigly wire saw 0.22 mm</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.590.100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Square box wrench 0.70 mm</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.590.112</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Square box wrench 0.50 mm</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.590.111</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Centering bit 1.00 mm</td>
			<td>RISystem AG Davos, Switzerland</td>
			<td style="width:117px;">RIS.592.205</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Scalpel Blade handle</td>
			<td style="width:283px;">Fine Science tools</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Scalpel Blade (Size 15)</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Tissue Forceps</td>
			<td style="width:283px;">Fine Science tools</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Scissors</td>
			<td style="width:283px;">Fine Science tools</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Retractor</td>
			<td style="width:283px;">Fine Science tools</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Needle Holder</td>
			<td style="width:283px;">Fine Science tools</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Henahan Elevator</td>
			<td style="width:283px;">Fine Science tools</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:232px;">S-shape curved dissecting and ligature forceps&#160;</td>
			<td style="width:283px;">Fine Science tools</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>2</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Dressing Forceps</td>
			<td style="width:283px;">Fine Science tools</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>2</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:232px;">Sterile Fenestrated drape</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>for surgery</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile gauze</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>for surgery</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">5 ml syringe&#160;</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>&#160;for irrigation of defect</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">24-27G needle&#160;</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>&#160;for irrigation of defect</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">1cc Insulin syringes&#160;</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>for drug injections</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">sterile saline&#160;</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>for bone defect irrigation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">sterile gloves</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>to perform surgeries</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">chlorohezadine</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>disinfecting solution for surgical site</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Vicryl suture 4-0 with SH-1</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>to suture muscle&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ethibond suture 3-0&#160;</td>
			<td style="width:283px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>to suture skin</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Isofluorine</td>
			<td style="width:283px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>for anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Buprenorphine</td>
			<td style="width:283px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>analgesia during and after the surgery</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cefazolin</td>
			<td style="width:283px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td>antibiotic during and after the surgery&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sprague-Dawley Rats or any other strain</td>
			<td>Charles River Laboratories International, Inc. (Wilmington, MA USA)&#160;</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

adjustable stiffness, external fixator for the rat femur osteotomy and segmental bone defect models

Bu kırık iyileşir yolu belirler gibi kırık kemiğin iyileşmesi etrafında mekanik ortamı çok önemlidir. Geçtiğimiz on yıl içinde lezyonun çevresinde tespit istikrar sayesinde mekanik ortamını değiştirerek kemik iyileşmesini büyük klinik ilgi olmuştur. Bu alanda klinik öncesi hayvan bir araştırma kısıt deneysel büyük bir segmental defekt ve yerel mekanik çevre üzerindeki kontrolü yanı sıra onlar iyileşmek Osteotomilerin eksikliğidir. Bu yazıda büyük segmental kemik defektleri veya Osteotomilerin iyileşmesini incelemek için tasarım ve eksternal fiksatör kullanımı hakkında rapor. Iyileşmeyen Bu tertibat kemik lezyonu kontrollü eksensel sertlik sağlar değil, ama aynı zamanda, in vivo olarak iyileşme sürecinde sertlik değişimi sağlar. Yürüttükleri deneyler, sabitleyicilerin 5 mm uyluk defekti boşluğu muhafaza etmek mümkün olduğunu göstermiştir sınırsız kafeste sırasında in vivo sıçanlardaen azından 8 hafta için faaliyet. Aynı şekilde, biz tüm iyileşme döneminde pimi enfeksiyonlar dahil hiçbir bozulma veya enfeksiyon gözlendi. Bu sonuçlar bizim yeni geliştirilen eksternal fiksatör tekrarlanabilir ve standardize stabilizasyonu sağlamak başardı, ve in vivo sıçan büyük kemik defektleri ve çeşitli boyutları osteotomi mekanik ortamının değişiklik göstermektedir. Bu eksternal fiksatör cihaz kemik rejenerasyonu ve onarımı alanında bir fare modeli kullanılarak klinik öncesi araştırma soruşturmalar için de uygun olduğunu onaylar.

Tasarım özellikleri Eksternal fiksatör sistemi ile sıçan femur istikrar 0,5 ila 5 mm Osteotomilerin oluşturulmasını sağlar. , Basit, tekrarlanabilir ve ayarlanabilir bir tasarım sunuyor - ([montaj pinleri] TAN) ve titanyum-alüminyum-niyobyum alaşımından - eksternal fiksatör sistemi polietereterketon ([Ana gövdesi] PEEK) yapılmış bir kilitli eksternal fiksatör olduğunu ve dört farklı katılıkları mevcuttur: 10, 40, 70 ve% 100 (% 100 standart olmak, en katı fiksatör <st...

Watch this Scientific Journal Video about Adjustable Stiffness, External Fixator for the Rat Femur Osteotomy and Segmental Bone Defect Models at JoVE.com

Adjustable Stiffness, External Fixator for the Rat Femur Osteotomy and Segmental Bone Defect Models

One constraint of preclinical research in the field of bone repair is the lack of experimental control over the local mechanical environment within a healing bone lesion. We report the design and use of an external fixator for bone repair with the ability to change fixator stiffness in vivo.

Ayarlanabilir Sertlik, Sıçan Femur Osteotomi ve Segmental Kemik Hata Modelleri için Eksternal Fiksatör

The mechanical environment around the healing of broken bone is very important as it determines the way the fracture will heal. Over the past decade there ...

adjustable-stiffness-external-fixator-for-rat-femur-osteotomy

Research

JoVE Journal

Medicine

22.4K Görüntüleme.  Queensland University of Technology. One constraint of preclinical research in the field of bone repair is the lack of experimental control over the local mechanical environment within a healing bone lesion. We report the design and use of an external fixator for bone repair with the ability to change fixator stiffness in vivo.

Video: Adjustable Stiffness, External Fixator for the Rat Femur Osteotomy and Segmental Bone Defect Models

Models of Bone Metastasis

Bone metastases are a common occurrence in several malignancies, including breast, prostate, and lung. Once established in bone, tumors are responsible for significant morbidity and mortality1. Thus, there is a significant need to understand the molecular mechanisms controlling the establishment, growth and activity of tumors in bone. Several in vivo models have been established to study these events and each has specific benefits and limitations. The most commonly used model utilizes intracardiac inoculation of tumor cells directly into the arterial blood supply of athymic (nude) BalbC mice. This procedure can be applied to many different tumor types (including PC-3 prostate cancer, lung carcinoma, and mouse mammary fat pad tumors); however, in this manuscript we will focus on the breast cancer model, MDA-MB-231. In this model we utilize a highly bone-selective clone, originally derived in Dr. Mundy's group in San Antonio2, that has since been transfected for GFP expression and re-cloned by our group3. This clone is a bone metastatic variant with a high rate of osteotropism and very little metastasis to lung, liver, or adrenal glands. While intracardiac injections are most commonly used for studies of bone metastasis2, in certain instances intratibial4 or mammary fat pad injections are more appropriate. Intracardiac injections are typically performed when using human tumor cells with the goal of monitoring later stages of metastasis, specifically the ability of cancer cells to arrest in bone, survive, proliferate, and establish tumors that develop into cancer-induced bone disease. Intratibial injections are performed if focusing on the relationship of cancer cells and bone after a tumor has metastasized to bone, which correlates roughly to established metastatic bone disease. Neither of these models recapitulates early steps in the metastatic process prior to embolism and entry of tumor cells into the circulation. If monitoring primary tumor growth or metastasis from the primary site to bone, then mammary fat pad inoculations are usually preferred; however, very few tumor cell lines will consistently metastasize to bone from the primary site, with 4T1 bone-preferential clones, a mouse mammary carcinoma, being the exception 5,6.
This manuscript details inoculation procedures and highlights key steps in post inoculation analyses. Specifically, it includes cell culture, tumor cell inoculation procedures for intracardiac and intratibial inoculations, as well as brief information regarding weekly monitoring by x-ray, fluorescence and histomorphometric analyses.

Animal models are frequently utilized to study cancer metastasis to bone. In this protocol we will describe two common methods of tumor inoculation for bone metastasis studies and briefly describe some of the analyses utilized to monitor and quantify these models.

Kemik Metastaz Modelleri

Bone metastases are a common occurrence in several malignancies, including breast, prostate, and lung. Once established in bone, tumors are responsible ...

Tıp

Procedure for Human Saphenous Veins Ex Vivo Perfusion and External Reinforcement

The mainstay of contemporary therapies for extensive occlusive arterial disease is venous bypass graft. However, its durability is threatened by intimal hyperplasia (IH) that eventually leads to vessel occlusion and graft failure. Mechanical forces, particularly low shear stress and high wall tension, are thought to initiate and to sustain these cellular and molecular changes, but their exact contribution remains to be unraveled. To selectively evaluate the role of pressure and shear stress on the biology of IH, an ex&#160;vivo perfusion system (EVPS) was created to perfuse segments of human saphenous veins under arterial regimen (high shear stress and high pressure). Further technical innovations allowed the simultaneous perfusion of two segments from the same vein, one reinforced with an external mesh. Veins were harvested using a no-touch technique and immediately transferred to the laboratory for assembly in the EVPS. One segment of the freshly isolated vein was not perfused (control, day 0). The two others segments were perfused for up to 7 days, one being completely sheltered with a 4 mm (diameter) external mesh. The pressure, flow velocity, and pulse rate were continuously monitored and adjusted to mimic the hemodynamic conditions prevailing in the femoral artery. Upon completion of the perfusion, veins were dismounted and used for histological and molecular analysis. Under ex&#160;vivo conditions, high pressure perfusion (arterial, mean = 100 mm Hg) is sufficient to generate IH and remodeling of human veins. These alterations are reduced in the presence of an external polyester mesh.

Procedure for Human Saphenous Veins Ex Vivo Perfusion and External Reinforcement

The mechanisms leading to the development of intimal hyperplasia (IH) and vein graft failure are still poorly understood. This study describes an ex&#160;vivo system to perfuse human veins under controlled flow and pressure. Furthermore the efficiency of external mesh reinforcement to limit the development of IH was evaluated.

İnsan Safen Ven Prosedürü<em&gt; Ex vivo</em&gt; Perfüzyon ve Dış Takviye

The mainstay of contemporary therapies for extensive occlusive arterial disease is venous bypass graft. However, its durability is threatened by intimal ...

A Simple Critical-sized Femoral Defect Model in Mice

While bone has a remarkable capacity for regeneration, serious bone trauma often results in damage that does not properly heal. In fact, one tenth of all limb bone fractures fail to heal completely due to the extent of the trauma, disease, or age of the patient. Our ability to improve bone regenerative strategies is critically dependent on the ability to mimic serious bone trauma in test animals, but the generation and stabilization of large bone lesions is technically challenging. In most cases, serious long bone trauma is mimicked experimentally by establishing a defect that will not naturally heal. This is achieved by complete removal of a bone segment that is larger than 1.5 times the diameter of the bone cross-section. The bone is then stabilized with a metal implant to maintain proper orientation of the fracture edges and allow for mobility. 
Due to their small size and the fragility of their long bones, establishment of such lesions in mice are beyond the capabilities of most research groups. As such, long bone defect models are confined to rats and larger animals. Nevertheless, mice afford significant research advantages in that they can be genetically modified and bred as immune-compromised strains that do not reject human cells and tissue.
Herein, we demonstrate a technique that facilitates the generation of a segmental defect in mouse femora using standard laboratory and veterinary equipment. With practice, fabrication of the fixation device and surgical implantation is feasible for the majority of trained veterinarians and animal research personnel. Using example data, we also provide methodologies for the quantitative analysis of bone healing for the model.

Animal models are frequently employed to mimic serious bone injury in biomedical research. Due to their small size, establishment of stabilized bone lesions in mice are beyond the capabilities of most research groups. Herein, we describe a simple method for establishing and analyzing experimental femoral defects in mice.

Farelerde Basit Kritik ölçekli Femoral Hata Modeli

While bone has a remarkable capacity for regeneration, serious bone trauma often results in damage that does not properly heal. In fact, one tenth of all ...

Establishment of a Segmental Femoral Critical-size Defect Model in Mice Stabilized by Plate Osteosynthesis

The use of tissue-engineered bone constructs is an appealing strategy to overcome drawbacks of autografts for the treatment of massive bone defects. As a model organism, the mouse has already been widely used in bone-related research. Large diaphyseal bone defect models in mice, however, are sparse and often use bone fixation which fills the bone marrow cavity and does not provide optimal mechanical stability. The objectives of the current study were to develop a critical-size, segmental, femoral defect in nude mice. A 3.5-mm mid-diaphyseal femoral ostectomy (approximately 25% of the femur length) was performed using a dedicated jig, and was stabilized with an anterior located locking plate and 4 locking screws. The bone defect was subsequently either left empty or filled with a bone substitute (syngenic bone graft or coralline scaffold). Bone healing was monitored noninvasively using radiography and in vivo micro-computed-tomography and was subsequently assessed by ex vivo micro-computed-tomography and undecalcified histology after animal sacrifice, 10 weeks postoperatively. The recovery of all mice was excellent, a full-weight-bearing was observed within one day following the surgical procedure. Furthermore, stable bone fixation and consistent fixation of the implanted materials were achieved in all animals tested throughout the study. When the bone defects were left empty, non-union was consistently obtained. In contrast, when the bone defects were filled with syngenic bone grafts, bone union was always observed. When the bone defects were filled with coralline scaffolds, newly-formed bone was observed in the interface between bone resection edges and the scaffold, as well as within a short distance within the scaffold. 
The present model describes a reproducible critical-size femoral defect stabilized by plate osteosynthesis with low morbidity in mice. The new load-bearing segmental bone defect model could be useful for studying the underlying mechanisms in bone regeneration pertinent to orthopaedic applications.

Although mouse models are invaluable tools for bone tissue engineering, models of long bone defects are sparse. This need motivated development of the present protocol which uses a locking plate with four screws and a dedicated jig to perform and stabilize a reproducible, femoral, critical-size defect with low morbidity.

Farelerde bir Segmental Femoral Kritik boyutlu Defekt Modelinde kurulması Plaka Osteosentez tarafından Stabilize

The use of tissue-engineered bone constructs is an appealing strategy to overcome drawbacks of autografts for the treatment of massive bone defects. As a ...

An Intramedullary Locking Nail for Standardized Fixation of Femur Osteotomies to Analyze Normal and Defective Bone Healing in Mice

Bone healing models are essential to the development of new therapeutic strategies for clinical fracture treatment. Furthermore, mouse models are becoming more commonly used in trauma research. They offer a large number of mutant strains and antibodies for the analysis of the molecular mechanisms behind the highly differentiated process of bone healing. To control the biomechanical environment, standardized and well-characterized osteosynthesis techniques are mandatory in mice. Here, we report on the design and use of an intramedullary nail to stabilize open femur osteotomies in mice. The nail, made of medical-grade stainless steel, provides high axial and rotational stiffness. The implant further allows the creation of defined, constant osteotomy gap sizes from 0.00 mm to 2.00 mm. Intramedullary locking nail stabilization of femur osteotomies with gap sizes of 0.00 mm and 0.25 mm result in adequate bone healing through endochondral and intramembranous ossification. Stabilization of femur osteotomies with a gap size of 2.00 mm results in atrophic non-union. Thus, the intramedullary locking nail can be used in healing and non-healing models. A further advantage of the use of the nail compared to other open bone healing models is the possibility to adequately fix bone substitutes and scaffolds in order to study the process of osseous integration. A disadvantage of the use of the intramedullary nail is the more invasive surgical procedure, inherent to all open procedures compared to closed models. A further disadvantage may be the induction of some damage to the intramedullary cavity, inherent to all intramedullary stabilization techniques compared to extramedullary stabilization procedures.

This protocol describes an osteosynthesis technique using an intramedullary locking nail for standardized fixation of femur osteotomies, which can be used to analyze normal and defective bone healing in mice.

Femur Osteotomiler standardize Sabitleme için bir intramedüller Kilitleme Nail Fare Normal ve Arızalı Kemik Şifa Analiz

Bone healing models are essential to the development of new therapeutic strategies for clinical fracture treatment. Furthermore, mouse models are becoming ...

Method of Direct Segmental Intra-hepatic Delivery Using a Rat Liver Hilar Clamp Model

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ischemia/reperfusion (I/R) injury with myriad negative consequences. Potential I/R injury in marginal organs destined for liver transplantation contributes to the current donor shortage secondary to a decreased organ utilization rate. A significant need exists to explore hepatic I/R injury in order to mediate its impact on graft function in transplantation. Rat liver hilar clamp models are used to investigate the impact of different molecules on hepatic I/R injury. Depending on the model, these molecules have been delivered using inhalation, epidural infusion, intraperitoneal injection, intravenous administration or injection into the peripheral superior mesenteric vein. A rat liver hilar clamp model has been developed for use in studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating I/R injury. The described model for rat liver hilar clamp includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic hepatic segment via a side branch of the portal vein, allowing for direct segmental hepatic delivery. Our approach is to induce ischemia in the left lateral and median lobes for 60 min, during which time the substance under study is infused. In this case, pegylated-superoxide dismutase (PEG-SOD), a free radical scavenger, is infused directly into the ischemic segment. This series of experiments demonstrates that infusion of PEG-SOD is protective against hepatic I/R injury. Advantages of this approach include direct injection of the molecule into the ischemic segment with consequent decrease in volume of distribution and reduction in systemic side effects.

A unique rat liver hilar clamp model was developed for studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating ischemia-reperfusion injury. This model includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic liver segment via a branch of the portal vein, allowing for direct hepatic delivery.

Bir Sıçan Karaciğer Hilar Kelepçe Modeli Kullanılarak Doğrudan Segmental İçi hepatik Dağıtım Yöntemi

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ...

In Vivo Evaluation of Fracture Callus Development During Bone Healing in Mice Using an MRI-compatible Osteosynthesis Device for the Mouse Femur

Endochondral fracture healing is a complex process involving the development of fibrous, cartilaginous, and osseous tissue in the fracture callus. The amount of the different tissues in the callus provides important information on the fracture healing progress. Available in vivo techniques to longitudinally monitor the callus tissue development in preclinical fracture-healing studies using small animals include digital radiography and &#181;CT imaging. However, both techniques are only able to distinguish between mineralized and non-mineralized tissue. Consequently, it is impossible to discriminate cartilage from fibrous tissue. In contrast, magnetic resonance imaging (MRI) visualizes anatomical structures based on their water content and might therefore be able to noninvasively identify soft tissue and cartilage in the fracture callus. Here, we report the use of an MRI-compatible external fixator for the mouse femur to allow MRI scans during bone regeneration in mice. The experiments demonstrated that the fixator and a custom-made mounting device allow repetitive MRI scans, thus enabling longitudinal analysis of fracture-callus tissue development.

In Vivo Evaluation of Fracture Callus Development During Bone Healing in Mice Using an MRI-compatible Osteosynthesis Device for the Mouse Femur

The evaluation of tissue development in the fracture callus during endochondral bone healing is essential to monitor the healing process. Here, we report the use of a magnetic resonance imaging (MRI)-compatible external fixator for the mouse femur to allow MRI scans during bone regeneration in mice.

Vivo Fare uyluk için bir MRI uyumlu Osteosentez aygıtı kullanma farelerde kemik iyileşme sırasında kırık Kallus gelişimi değerlendirme

Endochondral fracture healing is a complex process involving the development of fibrous, cartilaginous, and osseous tissue in the fracture callus. The ...

Using a Knee Arthrometer to Evaluate Tissue-specific Contributions to Knee Flexion Contracture in the Rat

Normal knee range of motion (ROM) is critical to well-being and allows one to perform basic activities such as walking, climbing stairs and sitting. Lost ROM is called a joint contracture and results in increased morbidity. Due to the difficulty of reversing established knee contractures, early detection is important, and hence, knowing risk factors for their development is essential. The rat represents a good model with which the effect of an intervention can be studied due to the similarity of rat knee anatomy to that of humans, the rat's ability to tolerate long durations of knee immobilization in flexion, and because mechanical data can be correlated with histologic and biochemical analysis of knee tissue.
Using an automated arthrometer, we demonstrate a validated, precise, reproducible, user-independent method of measuring the extension ROM of the rat knee joint at specific torques. This arthrometer can be used to determine the effects of interventions on knee joint ROM in the rat.

The goal of the protocol is to measure the extension range of motion of the rat knee. The effects of various diseases that increase the stiffness of the knee joint and the effectiveness of treatments can be quantified.

Diz Arthrometer diz fleksiyon kontraktürü fare içinde doku özgü katkıları değerlendirmek için kullanma

Normal knee range of motion (ROM) is critical to well-being and allows one to perform basic activities such as walking, climbing stairs and sitting. Lost ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the luminal surface area in arteries thereby reducing adequate blood flow to organs and distal tissues. Clinically, revascularization procedures such as balloon angioplasty with or without stent placement aim to restore blood flow. Although these procedures reestablish blood flow by reducing plaque burden, they damage the vessel wall, which initiates the arterial healing response. The prolonged healing response causes arterial restenosis, or re-narrowing, ultimately limiting the long-term success of these revascularization procedures. Therefore, preclinical animal models are integral for analyzing the pathophysiological mechanisms driving restenosis, and provide the opportunity to test novel therapeutic strategies. Murine models are cheaper and easier to operate on than large animal models. Balloon or wire injury are the two commonly accepted injury modalities used in murine models. Balloon injury models in particular mimic the clinical angioplasty procedure and cause adequate damage to the artery for the development of restenosis. Herein we describe the surgical details for performing and histologically analyzing the modified, pressure-controlled rat carotid artery balloon injury model. Additionally, this protocol highlights how local periadventitial application of therapeutics can be used to inhibit neointimal hyperplasia. Lastly, we present light sheet fluorescence microscopy as a novel approach for imaging and visualizing the arterial injury in three-dimensions.

The rat carotid artery balloon injury mimics the clinical angioplasty procedure performed to restore blood flow in atherosclerotic vessels. This model induces the arterial injury response by distending the arterial wall, and denuding the intimal layer of endothelial cells, ultimately causing remodeling and an intimal hyperplastic response.

Periadventitial Terapötik Uygulama ile Sıçan Karotis Arter Basınç Kontrollü Segmental Balon Yaralanması

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...

Protocol for Developing a Femur Osteotomy Model in Wistar Albino Rats

Fracture healing is a physiological process resulting in the regeneration of bone defects by the coordinated action of osteoblasts and osteoclasts. Osteoanabolic drugs have the potential to augment the repair of fractures but have constraints like high costs or undesirable side effects. The bone healing potential of a drug can initially be determined by in vitro studies, but in vivo studies are needed for the final proof of concept. Our objective was to develop a femur osteotomy rodent model that could help researchers understand the development of callus formation following fracture of the shaft of the femur and that could help establish whether a potential drug has bone healing properties. Adult male Wistar albino rats were used after Institutional Animal Ethics Committee clearance. The rodents were anesthetized, and under aseptic conditions, complete transverse fractures at the middle one-third of the shafts of the femurs were created using open osteotomy. The fractures were reduced and internally fixed using intramedullary K-wires, and secondary fracture healing was allowed to take place. After surgery, intraperitoneal analgesics and antibiotics were given for 5 days. Sequential weekly x-rays assessed callus formation. The rats were sacrificed based on radiologically pre-determined time points, and the development of the fracture callus was analyzed radiologically and using immunohistochemistry.

Here, we present a protocol to iatrogenically fracture the shaft of the femur of Wistar albino rats and follow up on the development of the callus. This femur osteotomy model can help researchers evaluate the process of fracture healing and to study how a drug could influence fracture healing.

Wistar Albino Sıçanlarında Femur Osteotomi Modeli Geliştirme Protokolü

Fracture healing is a physiological process resulting in the regeneration of bone defects by the coordinated action of osteoblasts and osteoclasts. ...