Böbrek Araştırma İngiltere&#39;den finansman, Edinburgh ve Organ Nakli European Society of Surgeons Royal College of bu çalışmayı destekledi.

Uygun ulusal ve yerel kurumsal etik hayvan deneyleri gerçekleştirmeden önce bir yerde olmalıdır. Alıcı cerrah 2,1-2,8 gerçekleştirir iken Özellikle Birleşik Krallık&#39;ta şu deneyleri donör cerrah yapmalıdır iki mikrocerrah aynı anda çalıştırmak için kullanılabilir Hayvanlar (Bilimsel Prosedürleri) Yasası 1986 altında yapılmıştır, 1,1-1,16 sonra 3,1-3,5 adımları . Tek bir operatör için adımlar sırayla takip edilebilir. 1. Donör Hazırlığı Not: Burada sunulan prosedür, verici, C57BL / 6 BM12 ve alıcı 20 g veya daha büyük bir vücut ağırlığı olan 8-16 haftalık yaş arası, C57BL / 6 erkek farelere içindir. Bununla birlikte, bu prosedür, yeniden üretilebilir bir fare suşlarının çeşitli gerçekleştirilebilir. Örnek sonuçlar bölümünde sunulan veriler, C57BL / 6, C57BL / 6 BM12 ve BALB / c farelerinden elde edilmiştir. <ol><li> Davranış prosedürleri istimaluğraşlarla g steril cerrahi aletler ve malzemeler (otoklav), mümkün olduğunca steril çalışma alanını tutmak. İki cerrah olup olmadığını alıcı hazırlanması ile eşzamanlı olarak donör hazırlık yapın. </li><li> Medetomidin (0.5 mg / kg) ve ketamin hidroklorür (/ Kg 200 mg), intraperitoneal enjeksiyon (31G iğne) ile fare anestezisi. Tüm işlemi için yeterli zaman sağlayarak, 4 saat boyunca muhafaza edilen bir anestezik düzlemde Bu sonuç, gerçekleştirilmelidir. Ek anestezi gerekli değildir. </li><li> Fare (ayak tutam hiçbir yanıt) anestezi doğrulayın. </li><li> Farenizin karın Tıraş ve yapışkan bant ile herhangi bir gevşek saç kaldırmak. </li><li> Bir steril drape ısıtılmış mat sırtında fare yerleştirin ve gevşek steril maskeleme bandı ile bacaklarda hareketsiz. </li><li> Termal yanıklar için işlem boyunca fare izleyin. Mümkünse olmayan bir elektrikli ısı kaynağı kullanın. </li><li> Bir göz yağ ve sa UygulaBir iyot çözeltisi ile seyreltilmiş karın duvarı nitize. </li><li> Periton boşluğuna girin ve 3 cm Calibri karın ekartörünü eklemek için karın orta hat kesi olun. </li><li> Nemli bağırsakları ve cerrahi alanda tutmak ve organların gereksiz kurumayı önlemek için ısıtılmış serum fizyolojik uygulayın. </li><li> Steril örtüler ile fare Kapak ve aorta, vena kava ve sol böbrek maruz operatörün sol (Farenizin sağ) için bağırsakları hareket ettirin. </li><li> Mide bir kastanyollanmıştır forcep uygulayın ve tamamen büyük damarları ve sol böbrek maruz superiorda çekin. Uzak gibi karaciğer lobları, seminal kesecikler ve bağırsak gibi cerrahi alanında, dokuların geri çekmek için karın içine steril bezlerden (2 mm x 2 mm) nemli paketleyin. </li><li> Çevre adventia, yağ ve açık açık, ince uçlu forseps kullanılarak bağ dokusu diseksiyon ile periton boşluğuna sol adrenal bezden sol böbrek izole eder. Ne sebeple alanlar arasındaki forseps kapalı ipuçları yerleştirined ayrılır ve yavaş yavaş forcep ipuçları alanı incelemek için açmaya imkan vermek için. </li><li> Bağlanması ve daha sonra 9 / Ç naylon adrenal ven ve sol gonadal ven sol bölerek sol renal ven izole. Renal ven yakın dikiş yerleştirin. </li><li> Ligatı ve dikiş bırakarak mesaneye yakın 7 / Ç ipek sütür ile üreteri bölmek uzun biter. Böbrek toplandı ve üreter anastomoz için gerekli olan zaman, bu uzun ameliyat dikiş ipliği ucu kullanılacaktır. </li><li> Harekete ve tam renal arter superiorda ve alt aort ve vena kava incelemek ve açık açık gemilerin ön ve yanlardan lenfatik damarları ve yağ incelemek için ince uçlu forseps kullanabilir ven için. </li><li> Aorta ve vena kava ve yavaş yavaş yayıldı forseps arasındaki doku uçağı bulun. Yavaş yavaş minimal travma ile doku yaymak için ince uçlu forseps ipuçları açın. </li><li> Açılı cezası geçerek renal arter üstün ve aşağı aorta etrafında gevşek 7 / Ç ipek kravatucu forseps gemilerin arkasına etrafında ve üzerinden bir dikiş çizim. Bu dikişler University of Wisconsin solüsyonu retrograd perfüzyon izin böbrek alma önce sıkılır. </li></ol> 2. Alıcı Hazırlık Donör hazırlığı takip başına 1,2-1,8 adımları. <ol><li> Aort, vena kava maruz operatörün sağ (Farenizin sol) için bağırsakları hareket ettirin. Steril tuzlu batırılmış bezle bağırsakları örtün. </li><li> Sağ renal arter bağlanarak bir sağ nefrektomi gerçekleştirin ve 7/0 ipek sütür ile birlikte ven ve sonra da bölmek. </li><li> 7 / Ç ipek sütür ve bölünmesine doğru üreter Arter. </li><li> Harekete geçirmek ve adım 1.14 ve 1.15 açıklandığı gibi tamamen renal arter ve ven aşağı aorta ve vena kava teşrih. Aorta ve vena kava arasında tam diseksiyonu olun. Vena kava ve aort anterior çalışan internal spermatik arteri korumak için özenBir lenfatik paket ile birlikte. </li><li> , Omurga vena kava ve damardan retroperitonda çalışan lomber damarlarını tanımlamak süreklilik 9 / Ç ipek ile lige, damarları bölmek için gerek yoktur. </li><li> Vasküler anastomozlar için arasındaki boşluk mikrovasküler kelepçeleri yerleştirmek için yeterli alan tanımlayın. </li><li> Dorsal penil ven yoluyla intravenöz heparin (5 adet) uygulayın. </li></ol> 3. Donör Böbrek Alma Arteriyel dolaşımın böbrek izole etmek alt ve üst aort etrafında yerleştirilmiş 7 / Ç ipek bağları sıkın. <ol><li> Aort içine bir iğne (31 g) ile University of Wisconsin çözeltisi, 0.5 ml - retrograd soğuk 0.2 infüze. </li><li> Dikişler içinde aorta bölmek ve böbrek ve aort uzunluğu ile renal arter kaldırmak için vena kava ile kavşakta renal ven bölün. Varsa w, aort kaynaklanan bel damarları Bölildirimde ligasyon. </li><li> Bir kültür kabı içinde steril bir pamuk ile soğuk tuzlu su içinde böbrek yerleştirin. </li><li> Servikal dislokasyon ile, verici bir fare öldürülür. </li></ol> 4. Böbrek Nakli - Böbrek Hazırlık <ol><li> Renal arter karşısında uzunlamasına doğrudan aort duvarı bölerek bir aort yama oluşturun. Arteriyel anastomoz yaparken bağlandı veya kaçınılması gereken yama herhangi bir damar lümen tanımlayın. </li><li> Inferiorda superiorda renal ven lümen ve ikinci ayrı dikiş dışarıdan içeriye bir 10 / Ç dikiş yerleştirin. Dikişler adrenal damar bölmek için kullanılır ve gonadal damar damar yönlendirmek için kullanılabilir. </li><li> Alıcı (Şekil 1.1) sağ kanadını böbrek yerleştirin ve dikişler de vasküler anastomozlar bezlerden veya diğer araçlar dolaşık olma dikişler olmadan tamamlanabilir sağlamak için yerleştirilir emin olun. </li></ol> 5. Böbrek Transplanlama - Vasküler Anastomoz İlk inferiorda sonra superiorda vena kava ve aorta kapsayan mikrovasküler kelepçeleri uygulayın. <ol><li> Vena kava ön duvarı delmek suretiyle bir iğne (31G) ile bir ventomy olun. % 0.9 NaCl yaklaşık 50 ul enjekte ederek vena kava yıkayın kan. </li><li> Uzunluğu, donor böbrek toplar damarı çapına denk olacak şekilde venotomi içinde açarak, ince uçlu forseps kullanılarak venotomi Widen. </li><li> Venotomi (Şekil 1.2) tepesinde birinci (renal ven lümeninde zaten) 10 / Ç üstün dikiş yerleştirin ve alt tepe ulaşana kadar (Şekil çalışan bir dikiş içinde anastomoz arka duvarını katılmak 1.3). </li><li> 10 / Ç alt dikiş yerleştirin ve sonra arka duvarından çalışan sütür kravat tek bir düğüm (Şekil 1.4) ilk kravat. </li><li> Ön wal oluşturmak alt dikiş kullanılarakanastomoz l çalışan bir dikiş ile (Şekil 1.5) ve üstün apeks (Şekil 1.6) de üstün dikiş sonuna kadar kravat. </li><li> Forseps ile aort duvarı çekme ve makas ile elips yama (yaklaşık aortotomy aortun çevresi ve uzunluğu üç kez renal arter lümeninin beşinci olmalı) keserek aortotomy oluşturun. </li><li> Içeriden dışarıdan aort yama üstün noktasında (Şekil 1.7) bir 10 / Ç dikiş yerleştirin ve aortotomy üstün tepesinde gemilere dışında kravat aorta geçer. </li><li> Çok sıkı sütür (Şekil 1.9) bağlayarak anastomoz daraltmak özen, çalışan bir dikiş superiorda alıcı aorta donör yama anastomoz (Şekil 1.8) başlayan arteriyel anastomoz oluşturun. </li><li> (Böbrek reperfüze sonra ilk üstün kelepçesini alt damar kelepçeleri sökünŞekil 1.10 ve 1.11). Üreter yeterli kan temini sağlandığı takdirde üreter Görünür peristaltizmin belki görülmektedir. </li></ol> 6. Böbrek Nakli - Üreterden Anastomoz <ol><li> Karın duvarından mesane ekleri bölün. </li><li> Her iki duvar aracılığıyla mesane sağa soldan iğne (21G) geçirin. </li><li> Iğne lümeninde düz forcep ipuçları yerleştirin ve geçmek hem de geri forseps artık mesanenin sol tarafında dışarı sağdan sola geçiyoruz şekilde mesane yoluyla. </li><li> Üreter sağ tarafında dışarı sonra sol mesane defekt geçecek şekilde mesane yoluyla donör üreter üzerinde dikiş çizin. </li><li> Yuvarlak gövdeli iğne 9 / Ç naylon sütür ile giriş noktası etrafında üç tek sütürler ile mesane adventisiyal üreter adventisya dikin. </li><li> Düğümlendikten için üreter proksimalinde kesti, böylece açılış inciE üreter idrar akışı ve üreter uç mesane vücuda geri çekilmesi için elde edilmesine olanak tanıyacak. Idrar Görünür üretim peri-üreter damarlardan kanama ile birlikte görülebilir. </li><li> Tek bir kesintiye 9 / Ç ipek sütür ile sağ yan mesane defekti kapatmak. </li></ol> 7. Kurtarma ve Post-operatif Bakım Orijinal yönde karın içine gastrointestinal organlara değiştirin ve 6 / Ç emilebilir sütür ile rektus kasları yaklaştırmayı karın duvarı kapatmak. <ol><li> Metal deri klipler ile cildi yaklaşır. </li><li> Kısmen atipamazole hidroklorür (10 g / ml) bir deri altından enjeksiyon ile anestezi ters. </li><li> Deri altından% 0.9 NaCl, 1 ml deri altından buprenorfin hidroklorür (0.05 mg / kg) ile ve akışkan destek enjeksiyon için analjezi uygulayın. </li><li> 24-48 saat boyunca 28 ° C&#39;de ısıtıldıktan kabininde fare kurtarmak. Için hastalık up fareyi gözlemleyinDeneyin tamamlanması. </li><li> 10 gün postoperativ - metal deri kliplerini 7 çıkartın. </li><li> Deney tamamlandıktan sonra, servikal dislokasyon ile fare euthanize. </li><li> Çıkarın ve histolojik analiz için, karşı böbrek allograftı ve toplar. </li></ol>

<ol>
	<li>Guild, W. R., Harrison, J. H., Merrill, J. P., Murray, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Successful+homotransplantation+of+the+kidney+in+an+identical+twin.">Successful homotransplantation of the kidney in an identical twin.</a> Trans. Am. Clin. Climatol Assoc. 67, 167-173 (1955).</li><li>Wolfe, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+mortality+in+all+patients+on+dialysis,+patients+on+dialysis+awaiting+transplantation,+and+recipients+of+a+first+cadaveric+transplant.">Comparison of mortality in all patients on dialysis, patients on dialysis awaiting transplantation, and recipients of a first cadaveric transplant.</a> N. Engl. J. Med. 341, 1725-1730 (1999).</li><li>Nankivell, B. J., Alexander, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Rejection of the Kidney Allograft. N. Engl. J. Med. 363, 1451-1462 (2010).</li><li>Tse, G. H., Hughes, J., Marson, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systematic+review+of+mouse+kidney+transplantation.">Systematic review of mouse kidney transplantation.</a> Transplant International. 26, 1149-1160 (2013).</li><li>Skoskiewicz, M., Chase, C., Winn, H. J., Russell, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kidney+transplants+between+mice+of+graded+immunogenetic+diversity.+Transplant.">Kidney transplants between mice of graded immunogenetic diversity. Transplant.</a> Proc. 5, 721-725 (1973).</li><li>Zhang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pattern+of+liver,+kidney,+heart,+and+intestine+allograft+rejection+in+different+mouse+strain+combinations.">Pattern of liver, kidney, heart, and intestine allograft rejection in different mouse strain combinations.</a> Transplantation. 62, 1267-1272 (1996).</li><li>Qi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Depletion+of+cells+of+monocyte+lineage+prevents+loss+of+renal+microvasculature+in+murine+kidney+transplantation.">Depletion of cells of monocyte lineage prevents loss of renal microvasculature in murine kidney transplantation.</a> Transplantation. 86, 1267-1274 (2008).</li><li>Dang, Z., Mackinnon, A., Marson, L. P., Sethi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tubular+atrophy+and+interstitial+fibrosis+after+renal+transplantation+is+dependent+on+galectin-3.">Tubular atrophy and interstitial fibrosis after renal transplantation is dependent on galectin-3.</a> Transplantation. 93, 477-484 (2012).</li><li>Jabs, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterogeneity+in+the+Evolution+and+Mechanisms+of+the+Lesions+of+Kidney+Allograft+Rejection+in+Mice.">Heterogeneity in the Evolution and Mechanisms of the Lesions of Kidney Allograft Rejection in Mice.</a> Am. J. Transplant. 3, 1501-1509 (2003).</li><li>Lin, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deficiency+of+C4+from+Donor+or+Recipient+Mouse+Fails+to+Prevent+Renal+Allograft+Rejection.">Deficiency of C4 from Donor or Recipient Mouse Fails to Prevent Renal Allograft Rejection.</a> Am. J. Pathol. 168, 1241-1248 (2006).</li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Arteriyel anastomoz gerçekleştirmek için en iyi tarif şekilde alıcı aorta uç-yan bir şekilde, devamında renal arter ile, donörün uzak aorta kullanmaktır. Daha uygun olması için inanıyoruz insan böbrek nakli yapılan &#39;Carrell ve yama &quot;ikizleme benzer bir aort yama, kullanımını tarif etmektedir. Donör ve alıcı operasyon süresi literatürde raporlar seyrek olsa biz alıcı aorta için uç-yan donör aort yerine alıcı aort, aort yama kullanan tercih olduğuna inanıyorum. Bir yama kullanara...

Uzunluk ve yaşam 2 kalitesinde iki gelişme sunan, dünya çapında son dönem böbrek yetmezliği olan hastalar için devrimci bir tedavi haline gelmiştir o zamandan bu yana böbrek yetmezliği tedavisi için başarılı böbrek nakli ilk, tek yumurta ikizleri 1 arasında 1955 yılında tarif edilmiştir. Ancak uzun dönem greft sağkalım kronik allogreft hasar 3 sonuçlanan patolojik süreçlerin bir çok engel olmuştur. İnsanlarda nakledilen böbreğin reddedilmesi immunosupporessive rejimlerinde önemli gelişmelere rağmen, önemli bir morbidite nedenidir. Böbrek nakli, bir fare modeli geliştirilmesi amacı yakından insan renal transplantasyon 4 bulundu süreci ve patolojiyi çoğaltmak. Skoskiewicz ve ark., 1973 5 böbrek nakli fare modelini tarif. Gelişmiş mikrocerrahi becerileri gerekli olmasına rağmen, değerli bir tçeşitli nedenlerden dolayı ool: fare genomu iyi karakterize ve deneysel yöntemler ve fare çalışmaları için mevcut tekniklerin büyük bir çeşitlilik söz konusudur olmuştur. Böbrek nakli fare modeli kullanılarak çok grup, ancak deney 4 süresince yerinde bırakılır diğer çalışmalarda ve alıcı farelerin saf böbreklerin bizim tarif edilen metodoloji, bir de, hayatı destekleyen organ olarak böbrek nakli kullandık. Yararı, fare ve böylece fare morbidite ve ikinci bir prosedür ölüm riskini azaltan, tek ve anestezi sergilemesidir. Ayrıca fare kademeli böbrek yetmezliği olumsuz etkilerinden muzdarip değil. Allojenik ret modelleri, kalp ve deri gibi diğer organlarda mevcut olmasına rağmen, bu her zaman böbrek nakli ile doğrudan ilgili değildir. Bu modeller farklı modları ve dy ortaya kanıtlar vardırreddinin iç- sel, örneğin kalp alograft ve böbrek nakli reddi, zaman süreci, belirli gerilme kombinasyonları 6 önemli ölçüde farklıdır. Bu transjenik olmayan FVB / NJ farelerine, BALB / c donörlerinde akut renal alograft reddi, kalıpları tarif etmişlerdir, bu model T hücreleri ve makrofajlar 7 birikimi ile hücresel kaynaklı yaralanma sergiledi. Bu farenin tek bir MHC sınıf II loci mis ile karakterizedir Alternatif olarak biz de interstisyel fibrozis ve tübüler atrofi sergileyen kronik allogreft hasar modeli tarif var, bu, C57BL / 6 alıcılar içine C57BL / 6 BM12 bağışçıları bir böbrek nakli sonucu -match 8. Naklinin çok yönlü olarak akut rejeksiyon, hücresel ve hümoral rejeksiyon, iskemi reperfüzyon yaralanması, ve yeni tedavi edici ajanlar da dahil olmak üzere ana hatlarını açıklar böbrek nakli fare modeli kullanarak çalışılmıştır. Biz cerrahi t değiştirdinizechnique çalışma süresini azaltmak ve cerrahi kolaylığını artırmak için. Özellikle simultane donör ve alıcı hazırlık ve sürekli aort yama anastomoz kullanarak basitleştirilmiş bir vasküler anastomoz tekniğini tarif var. Bu video ve el yazması bu tekniğin kurulması yardımcı olmak için kilit noktaları sağlayacaktır.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Surgical Instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blunt Dissecting Scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>&#160;14072-10</td>
			<td>For skin cutting</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Castoviejo scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>15017-10</td>
			<td>For tissue cutting</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spring Scissors &#8211; straight</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>15000-08</td>
			<td>For suture cutting</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Toothed forceps 1x2 teeth</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11021-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 x Fine Tip forceps (Dumont No.5)</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11251-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Angled Fine Tip forceps (Dumont No. 5/45)</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11253-25</td>
			<td>For blunt dissecting</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Fine Tip forcep (Dumont No.7)</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11273-22</td>
			<td>Useful to pass around vessels</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Crile Haemostat</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>1300-04</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro clip applicator with lock</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>18056-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 x Micro serrefines spring width 2mm, jaw length 4mm</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>18055-04</td>
			<td>Microvascular clamps</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 x Colibri 3cm wire retractor</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>17000-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Castroviejo needle holder with lock</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>120660-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wound clip applicator</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>12031-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>7mm wound clips</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>12032-07</td>
			<td>Remove 7 to 10 days after surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OPMI pico microscope</td>
			<td>Carl Zeiss</td>
			<td>S100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermal cautery unit with fine tip</td>
			<td>Geiger</td>
			<td>150A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heat electronic pad</td>
			<td>Cozee Cumfort</td>
			<td>n/a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Euroklav 23-S</td>
			<td>Melag</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Disposable equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>7/O Silk braided suture</td>
			<td>Pearsall</td>
			<td>30514</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10/O Dafilon (polyamide) suture</td>
			<td>B-Braun</td>
			<td>&#160;G1118099</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6/O Vicryl (plygalectin)</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>W9537</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Regular bevel needle, 1 inch, 21G</td>
			<td>Bection, Dickinson and Company</td>
			<td>305175</td>
			<td>For ureteric anastamosis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Regular bevel needle, 5/8 inch, 25G</td>
			<td>Bection, Dickinson and Company</td>
			<td>305122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Regular bevel needle, 1/2 inch, 30G</td>
			<td>Bection, Dickinson and Company</td>
			<td>304000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin needle 1ml, 29G</td>
			<td>Bection, Dickinson and Company</td>
			<td>324827</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin needle 0.3ml, 30G</td>
			<td>Bection, Dickinson and Company</td>
			<td>324826</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 ml syringe slip tip</td>
			<td>Bection, Dickinson and Company</td>
			<td>300184</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 ml syringe slip tip</td>
			<td>Bection, Dickinson and Company</td>
			<td>302187</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wypall paper swabs</td>
			<td>Kimberley-Clark</td>
			<td>L40</td>
			<td>sterilised by autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton wool buds</td>
			<td>Johnson and Johnson</td>
			<td>n/a</td>
			<td>sterilised by autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plain drapes</td>
			<td>Guardian</td>
			<td>CB03</td>
			<td>sterilised by autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell culture dish 60mm x 15mm</td>
			<td>Corning Incorporated</td>
			<td>430166</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dispensing Pin</td>
			<td>B-Braun</td>
			<td>DP3500L / 413501</td>
			<td>Used with NaCl 0.9%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Re-agents and Drugs</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>(Lacri-Lube) White soft paraffin 57.3%, mineral oil 42.5% and lanolin alcohols 0.2%</td>
			<td>Allergan Ltd</td>
			<td>21956GB10X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>(Videne) Povidone-iodine 10%</td>
			<td>Ecolab Ltd</td>
			<td>PL 04509/0041</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>(Vetalar V) Ketamine hydrochloride</td>
			<td>Pfizer Animal Health</td>
			<td>Vm 42058/4165</td>
			<td>100mg/ml solution (dose 200mg/kg)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>(Domitor) Medetomidine hydrochloride&#160;</td>
			<td>Orion Pharma</td>
			<td>Vm 06043/4003</td>
			<td>1mg/ml (dose 0.5mg/kg)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>(Vetergesic) Bupernorphine hydrochloride&#160;</td>
			<td>Alsto Animal Health</td>
			<td>Vm 00063/4002</td>
			<td>0.3mg/ml (dose 0.05mg/kg)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>(Antisedan) Atipamezole hydrochoride</td>
			<td>Orion Pharma</td>
			<td>Vm 06043/4004</td>
			<td>5mg/ml (dose 2mg/kg)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>University of Wisconsin Solution</td>
			<td>Belzer Bridge to Life</td>
			<td>n/a</td>
			<td>dose approximately 500 microlitres/mouse</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl 0.9%</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>FKE1323</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin Sulphate</td>
			<td>non-proprietary</td>
			<td>n/a</td>
			<td>5000units/ml (dose 5units/mouse)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

mouse kidney transplantation: models of allograft rejection

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely replicates both the technical and pathological processes that occur in human renal transplantation. Although mouse models of allogeneic rejection in organs other than the kidney exist, and are more technically feasible, there is evidence that different organs elicit disparate rejection modes and dynamics, for instance the time course of rejection in cardiac and renal allograft differs significantly in certain strain combinations. This model is an attractive tool for many reasons despite its technical challenges. As inbred mouse strain haplotypes are well characterized it is possible to choose donor and recipient combinations to model acute allograft rejection by transplanting across MHC class I and II loci. Conversely by transplanting between strains with similar haplotypes a chronic process can be elicited were the allograft kidney develops interstitial fibrosis and tubular atrophy. We have modified the surgical technique to reduce operating time and improve ease of surgery, however a learning curve still needs to be overcome in order to faithfully replicate the model. This study will provide key points in the surgical procedure and aid the process of establishing this technique.

Renal alograft reddi, nakledilen böbreğin (Şekil 2) metakarn sabitlenmiş parafine gömülü doku bölümleri histolojik analiz ile değerlendirilebilir. Renal iskemi reperfüzyon hasarı sinjeneiktir farenin sonuçları arasında böbreklerin Isograft nakli, ancak 4 hafta tübüller kurtarıldı ve yerli böbrekler için histolojik karşılaştırılabilir var. Akut rejeksiyon böbrek parankimi genelinde yaygın mononükleer hücre infiltrasyonu İnterstisyum, glomerüller ve tübüllerini içeren, ...

Watch this Scientific Journal Video about Mouse Kidney Transplantation: Models of Allograft Rejection at JoVE.com

Mouse Kidney Transplantation: Models of Allograft Rejection

Here, we present a protocol to study the immunology of rejection. The surgical model presented reports a short operating time and a concise technique. Depending on the donor-recipient strain combination, the transplanted kidney may develop acute cellular rejection or chronic allograft damage, defined by interstitial fibrosis and tubular atrophy.

Fare Böbrek Transplantasyonu: Allogreft Reddi Modelleri

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely ...

mouse-kidney-transplantation-models-of-allograft-rejection

Research

JoVE Journal

Medicine

20.3K Görüntüleme.  The University of Edinburgh. Here, we present a protocol to study the immunology of rejection. The surgical model presented reports a short operating time and a concise technique. Depending on the donor-recipient strain combination, the transplanted kidney may develop acute cellular rejection or chronic allograft damage, defined by interstitial fibrosis and tubular atrophy.