The authors are thankful to the nurses at the AMC that have facilitated the tissue collection. We would also like to acknowledge A.M.A. van der Laan for excellent technical support with the SHG and the two-photon imaging.

Bu protokol, insan araştırma etik kurul LUMC ve AMC yönergeleri takip eder. 1. Cerrahi Prosedür ve Doku Koleksiyonu Not: Dupuytren kontraktürü cerrahi eksizyon için çeşitli teknikler mevcut olmasına rağmen, mevcut altın standart kısmi fasiyektomi 15 olduğunu. Hastaların çoğu günübirlik cerrahi kliniğinde tedavi edilir. <ol><li> Hasta ve anesteziyoloji tercihlerine ve hastanın komorbidite göre genel veya bölgesel anestezi altında ameliyat gerçekleştirin. Bu düşünceler, bu yazının kapsamı dışındadır. Bundan önce anestezi tatmin edici doğrulamak için keskin bir nesne ile cilde temas, insizyon. Kansız bir alanda cerrahi görselleştirme kolaylaştırmak için bir turnike kullanın. </li><li> Steril hazırlıyor ve draping sonra, bir kalem ile beklenen kesi işaretleyiniz. Ya uzunlamasına o büyüteç büyütme altında bir neşter ile cilt insizyonr ek kontraktürlerini önlemek için zikzak kesiler kullanarak ve aynı zamanda yeterli pozlama için izin vermek. </li><li> Makas diseksiyon kullanarak, altta yatan sözleşmeli fasya Palmaris cilt ve cilt altı tabaka ücretsiz. Belirlemek ve hastalıklı kord orta hatta doğru yerinden çünkü parmak nörovasküler demeti korumak. Fibröz doku (nodül ve / veya kordon) özetlenen sonra, bir neşter kullanılarak keskin ve bölgesel (subtotal) o tüketim. Hematom oluşumunu önlemek için işlem sonunda turnike kontrol altında titiz hemostaz gerçekleştirin. </li><li> Cildi kapatmak için, cildin kısmi uzatma elde etmek için ek Z-plasti kullanın. </li><li> Bu çalışmalar fibrotik kablosu, hastalığın en aktif ve hücresel kısmının sadece nodül bölümünü kullanın. Cerrah makroskopik kimlik gerçekleştirmek var. avucunun izole nodüller genellikle öncüleri veya kordon ama onlar genellikle belirtilere neden yok gibi neredeyse hiç, rezeke edilir.Biz rezeksiyon olanlar sözleşmeli parmak bir kordon parçası olan nodüller. Handpalm (Şekil 1A) kordların sert kalın kısmı bu nodüller belirleyin. </li><li> Cerrah doku kaldırdığında, hemen% 10 FCS ve% 1 (P / S) ile takviye edilmiş DMEM ortamı içeren 50 ml&#39;lik bir tüpe steril pensler kullanılarak transfer. Islak buz (4 ° C) bir kutu, bu ortam içinde 2 saatlik bir süre için doku tutulur (örneğin, hücre kültürü tesisine işlem odasından doku nakli). </li><li> Bir sonraki aşama için hazırlarken, ıslak buz (4 ° C) örnekleri tutun. Malzemeler ve hücre kültür odası içinde Preparasyon 10-20 dakika gerektirir. </li></ol> Araçların, Kültür Orta ve Kültür Ekler 2. Hazırlık Not: özellikle belirtilmedikçe tüm işlemler, oda sıcaklığında gerçekleştirilir. <ol><li> DMEM Hazırlama 500 mi,% 10 FCS ve% 1 (P / S) ve filtre s ile desteklenmişterilize. 37 ° C&#39;de orta Prewarm. </li><li> Otoklav forseps, eğri kanatlı Mayo makası, bir çift (uzunluk olarak 150-170 mm) bir steril kap içinde, bir Metzenbaum makas saklayın. </li><li> Laminer akış altında, bir steril 12-yuvalı kültür plakası açın. 12-çukurlu bir tablaya (Şekil 1B, alt panel) her çukuruna bir kültürü eki (0.45 mikron gözenek büyüklüğü, 12 mm çap) koyun. </li><li> Ekin zar üzerinde doğrudan 600 çukuruna pipetle önceden ısıtılmış (37 ° C), kültür ortamı ul olup 12 oyuklu plaka doldurun. Inkübatör (37 ° C,% 5 CO2) (Şekil 1B, üst panel) içine plaka koyun. <ol><li> Seçenek olarak ise, bir 24-çukurlu plaka kullanabilir ve ortam 300 ul ekle ile sabitleştirilir. menisküs tabaka sıvı ve membran elemanın alt kısmı arasında meydana getirildiği zaman oyuk başına ortamının hacmi en uygunudur. Not: kuyunun altındaki orta nitroselüloz Membr boyunca yayılırŞekil 1B (alt panel) şemalarda gösterildiği gibi ane menisküs tabakası oluştu. </li></ol></li></ol> 3. Doku Hazırlama ve Ex Vivo Doku Kültürü Kurulumu Not: özellikle belirtilmedikçe tüm işlemler, oda sıcaklığında gerçekleştirilir. <ol><li> 100 mm Petri tabağına 50 mi borusundan kablosunun nodül parçası aktarın ve önceden ısıtılmış (37 ° C) ortam 10 ml ekleyin. Doku Bütün işlem boyunca sıvı ile temas halinde olduğundan emin olun. <ol><li> Metzenbaum makas kullanarak perinodular yağ tabakası çıkarın. Yağ dokusu atın. Forseps ve kavisli uçlu makas kullanımı ile, enine küçük parçalar halinde doku (200 um maksimum kalınlığı) kesildi. </li></ol></li><li> Laminer kaput içine inkübatör 12-plaka aktarın. Ekin membran (ıslak) şeffaf olduğundan ve bu nedenle ortam maddesi ile temas içinde olan kontrol edin. </li><li> Forseps kullanmadikkatle (doku üzerinde gerginlik geçerli değildir) dış katmanı dokunarak bir doku parçası kaldırın. Doku hava orta interfazda kalır böylece hücre kültürü ucun membran üzerine bir doku parçası yerleştirin. Kültür aynı insert iki doku parçalarının maksimum / kuyu. </li><li> Doku gibi dokusu o orta uzunlamasına temas, membranın üzerine düz olarak yerleştirilir ne membran kapalı yüzer ne de tam orta ile kaplıdır emin olun. Hava kabarcıkları kaçının. Not: Bu aşamada, büyüme faktörleri ya da ortam ilgi inhibitörlerinin ilave edilmesi de mümkündür; Örneğin, tekrarlamalı ve / veya konsantrasyon eğrisindeki test bileşikleri (A, B, C, D, E). Deney düzgün kurulduktan emin olmak için, normal büyüme koşullarında dokusunun en az 2 kontrol (işlenmemiş) adet mevcuttur. Bir doku kültürü kuluçka makinesi içinde 3-7 gün için dokular inkübe edin. </li><li> Aşırı ekspresyonu ise Lentiviral veya adenoviral yapı ile ya doku enfekte veya e yıkmakbir gen-faiz ihtiyacı xperiments (Şekil 2) yapılması için kullanılır. Forseps kullanarak 35 mm çanak içine 12-plaka bir doku parçası aktarın. <ol><li> Yüksek titre virüsü 10 ul maksimum bir hacme sahip kullanın. </li><li> 50 ul PBS seçilmiş virüs 10 ul ihtiva eden yüklü bir ensülin şırınga ile, bir teşhir mikroskopu altında enjeksiyon yapın. Doku merkezine dik iğne yerleştirin. </li><li> Yavaş yavaş şırınga içerik enjekte edilir. Doğrudan iğneyi geri etmeyin. Doku delme, iğne diğer taraftan geçmesi ancak (doku merkezi etrafında) dokusu kendi içinde iğne korumak izin vermeyin. </li><li> 12 oyuklu bir plakaya geri doku transferi kültürü plakası yakın ve inkübatör içine yerleştirin (37 ° C,% 5 CO2). </li></ol></li></ol> 4. Tüm montaj İmmünofloresan Boyama ve 3D İmar Not: Tüm yanlısıözellikle belirtilmedikçe prosedürlerinin oda sıcaklığında yapılır. Aşağıda açıklanan tüm montaj immün ve görüntüleme için protokol diğer dokularda 16-19 için kullanılan önceden bildirilen yöntemlerden bir uyarlamasıdır. Tamponlar ve malzeme Tablo 1 ve Malzeme Listesi açıklanmaktadır. <ol><li> PBS içeren 2 ml mikrosantrifüj tüplerine kültür plaka transfer dokuları. Dönen bir platform üzerinde PBS çözeltisi 5 dakika boyunca yıkama 2x. Dönen bir platform üzerinde 4 ° C &#39;de% 4 tamponlu PFA (2 ml mikrosantrifüj tüplerine doku başına 1.5 ml solüsyon), O / N dokuları düzeltildi. </li><li> PFA çıkarın ve 5 dakika her biri için PBS içinde 3x yıkayın. </li><li> Dönüşlü bir platform üstünde oda sıcaklığında 2 saat boyunca% 25 metanol çözeltisi içine daldırma ile dokuların dihidrat. Dönüşlü bir platform üstünde oda sıcaklığında 2 saat süre ile, her çözeltinin bir batırılmış doku ile yavaş yavaş metanol yüzdesi (% 50,% 75,% 100) artış. </li><li> 4 ° C&#39;de DMSO 3 hafta / metanol solüsyonu (permeabilizasyon aşaması) Transfer dokulardaha önce tarif edildiği 18. Not: Bu aşamada, dokular -20 ° C&#39;de% 100 metanol içinde uzun süreli saklanabilir. </li><li> Prosedürü 16, 17 boyanma ile devam; yavaş yavaş dokular (% 75 -50% -25% -0% metanol serisi) rehydrate. Sürekli ajitasyon altında 4 ° C&#39;de oda sıcaklığında ya da O / N, 2 saat süre ile, her rehidrasyon aşamasını gerçekleştirir. </li><li> 4 ° C&#39;de% 1 sığır serum albümini (BSA) ve% 20 DMSO O / N içeren PBS içinde primer antikorlar ile inkübe edin. Anti-α düz kas aktini: PBS ticari stokları kullanarak aşağıdaki oranlarda antikorlar kullanın: (1 500, fare), anti-kollajen tip I (1: 500, keçi), tip III (1, anti-kollajen: 500, keçi). </li><li> 4 ° C&#39;de (değişim PBS solüsyonu 3-4 kez) 48 saat süre ile, PBS içinde iyice yıkayın. </li><li> 1 ile uygun bir ikincil antikor (Alexa 555, anti-fare, Alexa 488, anti-keçi) seyreltin PBS,% 1 (BSA) ve% 20 DMSO ihtiva eden 250 dilüsyon. 4 ° C &#39;de O / N inkübe edin. </li><li> 4 ° C&#39;de 48 saat süre ile, PBS içinde iyice yıkayın76 C ve nükleer karşı-kuluçkalanması-PRO-3 1 sulandırılmış, son yıkama adımında PBS içinde 500. Not: Bu-PRO-3 (He-Ne 633 nm lazer çizgi ile) bir uzak-kırmızı ışık DNA boya ve diğer kanallar ile aynı anda görüntülenmesi için bir araya getirilmektedir; Bu durumda kolajen tip I / III tipi kolajen (488 nm), α düz kas aktin (555 nm), TO-Pro-3 (647 nm) yıkanmıştır. </li><li> Bir metanol serisi (% 25 -50,% -75%) yavaş yavaş doku kurutmak için dokuların transfer; sabit bir ajitasyon altında 4 ° C&#39;de oda sıcaklığında ya da O / N, 2 saat süre ile, her dehidrasyon adımı gerçekleştirmek. <ol><li> Polipropilen tüplere Transfer dokular. Temizle metilsalisilat dokular (kimyasal başlık altında kolu) 18 ya da alternatif kullanım BABB çözümü 19 olarak. Dokular şeffaf hale gelene kadar sabit bir ajitasyon altında oda sıcaklığında inkübe edin. Dağı slayt ve sert seti montaj orta (Şekil 1C, üst panel) ile kapatılmış bir lamel arasında. </li></ol></li><li> Bir ters konfokal mikro Image örnekleriyüksek NA 63x ve / veya 100X yağ daldırma hedefler (Şekil 1C) ile donatılmış kapsamı. <ol><li> Mikroskop üreticisi tarafından sağlanan temizleme solüsyonu ile merceğini temizleyin. </li><li> Objektif lens petrol bir damla uygulayın. Numune üzerinde mikroskop sahnede ve odak numune ile slayt yerleştirin. </li></ol></li><li> Lazer hatları 488 nm, 514 nm ve 633 nm ile üç-kanal floresan eşzamanlı görüntüleme için mikroskop yapılandırmaları ayarlayın. </li><li> Tek XY görüntüleri veya birden odak düzlemi görüntüleri (Z yığını) (Şekil 3A) edinin. 3D rekonstrüksiyon gerçekleştirmek için Z yığını artan genişliği kullanın. Yüksek çözünürlüklü görüntü, düşük tarama hızı, ortalama taramalar (≥ 3) sayısını kullanın ve 1.024 x 1.024 piksel çözünürlükte 16-bit görüntüleri elde elde etmek için. </li><li> Z yığını elde edilen görüntüleri analiz: İlk adlandırmak ve görüntü dosyası (xyz) kaydedin. Konfokal mikroskop yazılım programı kullanılarak, maksimum yoğunluk proje yapılandırmaBir 3D içine Z yığını görüntüleri ction görüntüsünü yeniden. <ol><li> &quot;Görsellik&quot; ve &quot;3D Projeksiyon&quot; altında tıklayın &quot;Süreç Araçlar&quot;, xyz dosyasını seçin. Projeksiyonu (ya da floresan sinyal doymuş ise &quot;Ortalama&quot;) yönteminde &quot;Maximum&quot; girin. Tek bir projeksiyon X, Y ve Z Uçakları değiştirmek, ve projeksiyon aleti (Şekil 3B, r1) geçerli değildir için. </li></ol></li><li> Görüntüleme amacıyla animasyon (konfokal yazılımı) ile 3D projeksiyon oluşturmak için Z yığın görüntüleri kullanın. Xyz dosyasını seçin, Süreç Araçları, &quot;Görsellik&quot; ve &quot;3D Projeksiyon&quot; altında tıklayın. <ol><li> &quot;Film Oluştur&quot; butonuna tıklayın. Derece Başlat Rotasyon açısını girin (örneğin, film, Y ekseni başlangıç ​​noktası olarak 0 °) ve &quot;Set Başlat&quot; üzerine tıklayın. Son filmi noktasına (örneğin, 180 ° veya 360 gibi derece End Rotasyon açısı (Y ekseni) girin6; ve) bir tam dönüş için &quot;Set End&quot; üzerine tıklayın. </li><li> Çıkıntının (ya da flüoresan sinyal doymuş olması halinde &quot;Ortalama&quot;) &#39;in bir yöntemi olarak &quot;Maksimum&quot; seçin. 3D rekonstrüksiyon rotasyon için &quot;Çerçeveler sayısı&quot; girin (örneğin, 20 dönmeler veya daha yüksek dönme hızını azaltmak için). &quot;Uygula&quot; üzerine tıklayın. Film ihraç görsel dosyası olarak (örneğin, &quot;avi&quot;), her dönme açısı için bir resim dosyası oluşturur &quot;tiff&quot; dosyası olarak (Ek Film 1) veya ihracat (Şekil 3B; rotasyon r4, r10, r18). </li></ol></li></ol> 5. Kombine İkinci Harmonik Nesil (Kollajen) ve Kültür sırasında Ex Vivo Doku İki foton Heyecanlı Floresan (elastin) Görüntüleme Not: özellikle belirtilmedikçe tüm işlemler, oda sıcaklığında gerçekleştirilir. <ol><li> Inkübatör Transwell plakaları çıkarın ve ti (sabitlenmemiş) tek yerortamının 500 ul ihtiva eden bir 35 mm hücre kültür plakasına ssue parçası. </li><li> Uzun eksen plaka üzerinde düz şekilde yerleştirin doku. Ancak her zaman ıslak değil yüzen doku tutun. </li><li> Doğrudan doku (Şekil 1C) ile temas halinde multiphoton mikroskop su batırılmış objektif yerleştirin. </li><li> 800 nm&#39;lik bir eksitasyon dalga boyu ile görüntü elde edilir ve 371-425 nm&#39;de (SHG, kolajen) ve 474-532 nm (otofloresansı, elastin) (Şekil 3C) arasında yayılan ışığı toplamak. 20X / 1.0 NA su daldırma hedefi kullanarak bir femtosaniye lazer ile donatılmış bir dik konfokal mikroskop iki-foton mikroskopi gerçekleştirin. Süreç konfokal üreticinin yazılımı ile yığınlar. Not: kollajen moleküllerinin bir yakın kızılötesi lazer ile uyarma farklı derinliklerde yerli kollajen yapıların yüksek kontrastlı görüntüleme oluşturur. </li></ol>

<ol>
	<li>Shih, B., Bayat, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Scientific+understanding+and+clinical+management+of+Dupuytren+disease.">Scientific understanding and clinical management of Dupuytren disease.</a> Nat Rev Rheumatol. 6 (12), 715-726 (2010).</li><li>Bisson, M. A., McGrouther, D. A., Mudera, V., Grobbelaar, A. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+different+characteristics+of+Dupuytren's+disease+fibroblasts+derived+from+either+nodule+or+cord:+expression+of+&#945;-smooth+muscle+actin+and+the+response+to+stimulation+by+TGF-&#946;1.">The different characteristics of Dupuytren's disease fibroblasts derived from either nodule or cord: expression of &#945;-smooth muscle actin and the response to stimulation by TGF-&#946;1.</a> The Journal of Hand Surgery. 28 (4), 351-356 (2003).</li><li>Brickley-Parsons, D., Glimcher, M. J., Smith, R. J., Albin, R., Adams, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biochemical+changes+in+the+collagen+of+the+palmar+fascia+in+patients+with+Dupuytren's+disease.">Biochemical changes in the collagen of the palmar fascia in patients with Dupuytren's disease.</a> The Journal of Bone &amp; Joint Surgery. 63 (5), 787-797 (1981).</li><li>Berndt, A., Kosmehl, H., Katenkamp, D., Tauchmann, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Appearance+of+the+myofibroblastic+phenotype+in+Dupuytren's+disease+is+associated+with+a+fibronectin,+laminin,+collagen+type+IV+and+tenascin+extracellular+matrix.">Appearance of the myofibroblastic phenotype in Dupuytren's disease is associated with a fibronectin, laminin, collagen type IV and tenascin extracellular matrix.</a> Pathobiology. 62 (2), 55-58 (1994).</li><li>Karkampouna, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+ex+vivo+culture+method+for+the+study+of+Dupuytren's+disease:+effects+of+TGF&#946;+type+1+receptor+modulation+by+antisense+oligonucleotides.">Novel ex vivo culture method for the study of Dupuytren's disease: effects of TGF&#946; type 1 receptor modulation by antisense oligonucleotides.</a> Mol Ther Nucleic Acids. 3, e142 (2014).</li><li>Kruithof-de Julio, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Canonical+Wnt+signaling+regulates+Nkx3.1+expression+and+luminal+epithelial+differentiation+during+prostate+organogenesis.">Canonical Wnt signaling regulates Nkx3.1 expression and luminal epithelial differentiation during prostate organogenesis.</a> Developmental Dynamics. 242 (10), 1160-1171 (2013).</li><li>Krause, C., Kloen, P., ten Dijke, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Elevated+transforming+growth+factor+&#946;+and+mitogen-activated+protein+kinase+pathways+mediate+fibrotic+traits+of+Dupuytren's+disease+fibroblasts.">Elevated transforming growth factor &#946; and mitogen-activated protein kinase pathways mediate fibrotic traits of Dupuytren's disease fibroblasts.</a> Fibrogenesis &amp; Tissue Repair. 4 (1), 14 (2011).</li><li>Gorman, D. B., Wu, Y., Seney, S., Zhu, R. D., Gan, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Wnt+expression+is+not+correlated+with+beta-catenin+dysregulation+in+Dupuytren's+Disease.">Wnt expression is not correlated with beta-catenin dysregulation in Dupuytren's Disease.</a> J Negat Results Biomed. 5, 13 (2006).</li><li>Streuli, C. H., Schmidhauser, C., Kobrin, M., Bissell, M. J., Derynck, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+matrix+regulates+expression+of+the+TGF-beta+1+gene.">Extracellular matrix regulates expression of the TGF-beta 1 gene.</a> The Journal of Cell Biology. 120 (1), 253-260 (1993).</li><li>Vogel, V., Sheetz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Local+force+and+geometry+sensing+regulate+cell+functions.">Local force and geometry sensing regulate cell functions.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 7 (4), 265-275 (2006).</li><li>Gottrup, F., &#197;gren, M. S., Karlsmark, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Models+for+use+in+wound+healing+research:+A+survey+focusing+on+in+vitro+and+in+vivo+adult+soft+tissue.">Models for use in wound healing research: A survey focusing on in vitro and in vivo adult soft tissue.</a> Wound Repair and Regeneration. 8 (2), 83-96 (2000).</li><li>Gudjonsson, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Normal+and+tumor-derived+myoepithelial+cells+differ+in+their+ability+to+interact+with+luminal+breast+epithelial+cells+for+polarity+and+basement+membrane+deposition.">Normal and tumor-derived myoepithelial cells differ in their ability to interact with luminal breast epithelial cells for polarity and basement membrane deposition.</a> Journal of Cell Science. 115 (1), 39-50 (2002).</li><li>Xu, R., Boudreau, A., Bissell, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue+architecture+and+function:+dynamic+reciprocity+via+extra-+and+intra-cellular+matrices.">Tissue architecture and function: dynamic reciprocity via extra- and intra-cellular matrices.</a> Cancer and Metastasis Reviews. 28 (1-2), 167-176 (2009).</li><li>Jokinen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrin-mediated+cell+adhesion+to+type+I+collagen+fibrils.">Integrin-mediated cell adhesion to type I collagen fibrils.</a> Journal of Biological Chemistry. 279 (30), 31956-31963 (2004).</li><li>Au-Yong, I. T. H., Wildin, C. J., Dias, J. J., Page, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+common+practice+in+Dupuytren+surgery.">A review of common practice in Dupuytren surgery.</a> Techniques in Hand &amp; Upper Extremity Surgery. 9 (4), 178-187 (2005).</li><li>Deries, M., Collins, J. J. P., Duxson, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mammalian+myotome:+a+muscle+with+no+innervation.">The mammalian myotome: a muscle with no innervation.</a> Evolution &amp; Development. 10 (6), 746-755 (2008).</li><li>Deries, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+matrix+remodeling+accompanies+axial+muscle+development+and+morphogenesis+in+the+mouse.">Extracellular matrix remodeling accompanies axial muscle development and morphogenesis in the mouse.</a> Developmental Dynamics. 241 (2), 350-364 (2012).</li><li>Martins, G. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+3D+Cell+Rearrangements+Guided+by+a+Fibronectin+Matrix+Underlie+Somitogenesis.">Dynamic 3D Cell Rearrangements Guided by a Fibronectin Matrix Underlie Somitogenesis.</a> PLoS ONE. 4 (10), e7429 (2009).</li><li>Yokomizo, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Whole-mount+three-dimensional+imaging+of+internally+localized+immunostained+cells+within+mouse+embryos.">Whole-mount three-dimensional imaging of internally localized immunostained cells within mouse embryos.</a> Nat. Protocols. 7 (3), 421-431 (2012).</li><li>Karkampouna, S., de Julio, M. K. r. u. i. t. h. o. f. -. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fibrosis:+a+novel+approach+for+an+old+problem.">Fibrosis: a novel approach for an old problem.</a> Receptors &amp; Clinical Investigation. 1 (5), (2014).</li><li>Wolf, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Collagen-based+cell+migration+models+in+vitro+and+in+vivo.">Collagen-based cell migration models in vitro and in vivo.</a> Seminars in Cell &amp; Developmental Biology. 20 (8), 931-941 (2009).</li><li>Freund, I., Deutsch, M., Sprecher, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Connective+tissue+polarity.+Optical+second-harmonic+microscopy,+crossed-beam+summation,+and+small-angle+scattering+in+rat-tail+tendon.">Connective tissue polarity. Optical second-harmonic microscopy, crossed-beam summation, and small-angle scattering in rat-tail tendon.</a> Biophysical Journal. 50 (4), 693-712 (1986).</li><li>Mohler, W., Millard, A. C., Campagnola, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Second+harmonic+generation+imaging+of+endogenous+structural+proteins.">Second harmonic generation imaging of endogenous structural proteins.</a> Methods. 29 (1), 97-109 (2003).</li><li>Boulesteix, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Micrometer+scale+ex+vivo+multiphoton+imaging+of+unstained+arterial+wall+structure.">Micrometer scale ex vivo multiphoton imaging of unstained arterial wall structure.</a> Cytometry Part A. 69A (1), 20-26 (2006).</li><li>Tomasek, J. J., Gabbiani, G., Hinz, B., Chaponnier, C., Brown, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myofibroblasts+and+mechano-regulation+of+connective+tissue+remodelling.">Myofibroblasts and mechano-regulation of connective tissue remodelling.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 3 (5), 349-363 (2002).</li><li>Hinz, B., Mastrangelo, D., Iselin, C. E., Chaponnier, C., Gabbiani, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanical+tension+controls+granulation+tissue+contractile+activity+and+myofibroblast+differentiation.">Mechanical tension controls granulation tissue contractile activity and myofibroblast differentiation.</a> The American Journal of Pathology. 159 (3), 1009-1020 (2001).</li><li>Eastwood, M., McGrouther, D. A., Brown, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+culture+force+monitor+for+measurement+of+contraction+forces+generated+in+human+dermal+fibroblast+cultures:+evidence+for+cell-matrix+mechanical+signalling.">A culture force monitor for measurement of contraction forces generated in human dermal fibroblast cultures: evidence for cell-matrix mechanical signalling.</a> Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. 1201 (2), 186-192 (1994).</li><li>Verjee, L. S., Midwood, K., Davidson, D., Eastwood, M., Nanchahal, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Post-transcriptional+regulation+of+&#945;-smooth+muscle+actin+determines+the+contractile+phenotype+of+Dupuytren's+nodular+cells.">Post-transcriptional regulation of &#945;-smooth muscle actin determines the contractile phenotype of Dupuytren's nodular cells.</a> Journal of Cellular Physiology. 224 (3), 681-690 (2010).</li></ol>

3D organ kültürü: Yazarlar Dupuytren hastalığı için bir Patent Başvurusu bulundular. # GB1307200. Ticari lisans ve hizmet sözleşmeleri mevcuttur.

ex vivo insan bağ dokusu kültürleme en kritik adımlar canlılığı sağlamak için cerrahi müdahaleden sonra dokusunun hemen kullanımı vardır; Doku her zaman orta ya da tuzlu su çözeltisi içinde kalmalıdır; steril kültür korumak; doku enine kesitleri en fazla 200 mikron kalınlığına sahip olmalıdır; Doku ortamı ile temas içinde olan, ancak tamamen su olmadığında, ex vivo kültür sistemi kurmak en uygunudur. Orta sadece küçük bir hacim içinde transwell dış bölme (ö...

Dupuytren hastalığı (DD), benign fibroproliferatif hastalık nedeniyle avucunun içinde nodüller ve kord oluşumuna parmakların fleksiyonu kalıcı olur. Hastalık yayılmış Kuzey Avrupa Kafkasyalılar arasında özellikle yüksek olmasına rağmen, hastalığın altta yatan genetik nedenleri 1 bilinmemektedir. DD temel özelliği, tendon ve el ve parmakların avuç derisi arasındaki boşluğu işgal zor bir fibröz doku oluşturan hücre dışı matriks (ECM) proteinleri (örneğin, kolajen), aşırı üretim sürekli ince hareketleri kesintiye el 2, 3. Hastalığın nüks fibrozis 1, 4 nedeni olarak altta yatan genetik değişiklikler göstermektedir. Etkili bir tedavi doğrudan hücresel ve moleküler düzeyde kontrol edilemeyen fibrotik mekanizmaları hedef olabilir. Fibrozis Bizim son çalışma gelişmesine bizi açmıştıruyuşturucu testi potansiyeli ile insan fibrotik doku kısa vadeli kültürünü tanır yeni 3D kültür sistemi. Bu sistem 2B fibroblast kültürleri sınırlayıcı yaklaşımı aşmak ve fibrozis 5 aracılık TGFβ yolu aktivasyonu ekson atlama elde kısmi aşağı düzenlenmesi için bir rol, tanımlamak için yardımcı olmuştur. Biz DD hastaların ex vivo insan rezeksiyon örnekleri miyofibroblastlar arasındaki etkileşimi ve çevresindeki ECM 5, 6 çalışma kültürüne bir yöntem geliştirdik. DD bağ dokusu fibrozis çalışma yanı sıra diğer fibrotik hastalıklar, cerrahi eksize histopatolojik analizi dayanır Numuneler, doku ve primer kültürlerinde ya da hücre sıralama prosedürlerin kuruluşundan fibroblastların izolasyonu. Onlar deneyci tarafından hastalık özelliklerine veya terapötik müdahale eksojen manipülasyon izin vermez çünkü bu yaklaşımlar oldukça statik bulunmaktadır. Ek olarak, birincil cell kültürleri kültür koşullarına uyum ve gen ifadesi özellikleri hatta erken geçişleri sırasında, her pasajda üzerine esasen in vivo durumdan farklı eğilimi (geçit 3 arasında ve 6) 7, 8. Biz atık cerrahi malzeme korumak başarmış hastaya özgü özellikleri ve bunların anti-fibrotik veya iltihap-önleyici ilaç bileşimlerinin tarama izin veren bir zaman süresi için ex vivo kültür koşulları. Sistem DD fibroblastlar gibi diğer hücre tipleri 9 kültürlenmesi, önceden görüldüğü gibi, bağlantı üzerine doku değişimini önlemek, böylece, orta değil plastik doku teması sağlayan bir nitroselüloz zar üzerine dayanır. DD dokulardaki bu proteinlerin, büyük miktarlarda üretim için herhangi kolajen jel veya başka bir ECM protein alt-tabakası, gereklidir. Bu yerli ECM mikroçevresinin ve ciro günah bakımı için avantajlıdırce matriks substrat doku yapısının ve fonksiyonunun 10, 11 arasında önemli bir regülatör bulunmaktadır. Örneğin, bu gibi fibronektin, laminin ve kolajen gibi ECM proteinlerinin yanı Benzer epitel hücreleri 12 apikal-bazal polaritesi için gösterilen fibroblast ön-arka polarite, 13 etkileyebilir . Polarize hücreler, hücre göçü ve gen ekspresyonu, örneğin, zar üzerinde α1β1 integrini erişilebilirlik bir 14 kolajen tip hücre yapışmasını etkilediği tespit dışı moleküllerin asimetrik dağılımına sahiptir. Bu 3D modeli temel amacı yerli mikroçevreyi korumak için olduğundan, hiçbir yapay ECM matris substrat kullanılmıştır. Özet olarak: reseksiyon örneklerinden eşit steril bir ortamda kesilir ve nitrocellular zarlar üzerine yerleştirilir. Enjeksiyon yoluyla yönetilmektedir tedavi gerekiyorsa onlar membranın yerleştirilmiş sonra dokular enjekte edilir. Tedavi inj ile idare edilecek gerektirmiyorsaection daha sonra, bileşik (% 1 fetal buzağı serumu (FCS),% 1 penisilin-streptomisin (P / S), Dulbecco Modifiye Eagle Ortamı (DMEM)) kültür ortamına ilave edilir. Daha önce tarif edildiği gibi 5 kültürleri,% 30 sukroz çözeltisi ile işlenmiş doku% 4 paraformaldehit (PFA) içerisinde sabitlenir ve bundan sonra on gün kadar, OCT bileşiği içine gömülmüş ve -80 ° C&#39;de saklandı tutulur.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8217;s Modified Eagle&#8217;s Medium</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>11965-084</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fetal calf serum (FCS)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td></td>
			<td>high glucose, heat inactivated</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>penicillin-streptomycin</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>15070-063</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell culture inserts</td>
			<td>Millicell</td>
			<td>PIHA01250</td>
			<td>0.45um pore size, 12mm diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-collagen type I</td>
			<td>Southern Biotech</td>
			<td>1310-08</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti- &#945; smooth muscle actin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A2547</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-collagen type III</td>
			<td>Southern Biotech</td>
			<td>1330-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa Fluor555 Donkey Anti-Mouse IgG (H+L)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>A-31570</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa Fluor 488 Donkey Anti-Goat IgG (H+L) Antibody</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>A-11055</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TOPRO-3</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>T3605</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>methylsalicylate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>M6752</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>paraformaldehyde</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P6148</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue Tek OCT</td>
			<td>Sakura</td>
			<td>25608-930</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsccope glass coverslips</td>
			<td>Menzel-Glaser</td>
			<td>BB024060A1</td>
			<td>24x60mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope SuperFrost slides</td>
			<td>Menzel-Glaser</td>
			<td>AA00000102E</td>
			<td>76x26mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VECTASHIELD HardSet Mounting Medium</td>
			<td>Vector laboratories</td>
			<td>H-1400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leica TCS SP5 II confocal microscope</td>
			<td>Leica Microsystems</td>
			<td></td>
			<td>Argon-488, 514 nm and HeNe-633 nm laser lines</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zeiss 710 NLO upright confocal microscope</td>
			<td>Jena, Germany</td>
			<td></td>
			<td>equipped with femtosecond Spectra - Physics Deep See MP laser (Santa Clara, United States) using a Plan -Apochromat 20x/1.0 NA 
			water-immersion objective.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

human dupuytren's ex vivo culture for the study of myofibroblasts and extracellular matrix interactions

Organ fibrosis or &#8220;scarring&#8221; is known to account for a high death toll due to the extensive amount of disorders and organs affected (from cirrhosis to cardiovascular diseases). There is no effective treatment and the in vitro tools available do not mimic the in vivo situation rendering the progress of the out of control wound healing process still enigmatic.
To date, 2D and 3D cultures of fibroblasts derived from DD patients are the main experimental models available. Primary cell cultures have many limitations; the fibroblasts derived from DD are altered by the culture conditions, lack cellular context and interactions, which are crucial for the development of fibrosis and weakly represent the derived tissue. Real-time PCR analysis of fibroblasts derived from control and DD samples show that little difference is detectable. 3D cultures of fibroblasts include addition of extracellular matrix that alters the native conditions of these cells. 
As a way to characterize the fibrotic, proliferative properties of these resection specimens we have developed a 3D culture system, using intact human resections of the nodule part of the cord. The system is based on transwell plates with an attached nitrocellulose membrane that allows contact of the tissue with the medium but not with the plastic, thus, preventing the alteration of the tissue. No collagen gel or other extracellular matrix protein substrate is required. The tissue resection specimens maintain their viability and proliferative properties for 7 days. This is the first &#8220;organ&#8221; culture system that allows human resection specimens from DD patients to be grown ex vivo and functionally tested, recapitulating the in vivo situation.

ex vivo yöntemi, bağ dokusu 3D kültürü de fibrozis ECM ve DD doku oluşturan diğer hücre bileşenleri ve potansiyel diğer türleri arasındaki ilişkiyi anlamak için kolay ve sağlam bir set up sistemi olduğunu. Ayrıca bu sistem, güvenilir bir yöntem, farklı hücre tipleri ve fibrotik yük 20 üzerindeki etkileri üzerinde bileşiklerin etkisini test etmek için izin verir. dupuytren fibroz türetilen cerrahi atık maddelerin toplanması ile ilgili adım kü...

Watch this Scientific Journal Video about Human Dupuytren's Ex Vivo Culture for the Study of Myofibroblasts and Extracellular Matrix Interactions at JoVE.com

Human Dupuytren&#039;s Ex Vivo Culture for the Study of Myofibroblasts and Extracellular Matrix Interactions

Dupuytren hastalığı (GG) avucunun bir fibroproliferatif hastalıktır. Burada, biz üç-boyutlu (3D) kültür sistemi DD kültür rezeksiyon örneklerinde bir protokol mevcut. Bu tür kısa vadeli kültür sistemi 3D yapı korunması ve fibrotik doku moleküler özelliklerini tanır.

İnsan Dupuytren en<em&gt; Ex vivo</em&gt; Miyofibroblastların Çalışması ve Ekstrasellüler Matriks Etkileşimleri Kültür

Organ fibrosis or &#8220;scarring&#8221; is known to account for a high death toll due to the extensive amount of disorders and organs affected (from ...

human-dupuytren-s-ex-vivo-culture-for-study-myofibroblasts

Research

JoVE Journal

Medicine

Human Dupuytren's Ex Vivo Culture for the Study of Myofibroblasts and Extracellular Matrix Interactions

10.3K Görüntüleme.  Leiden University Medical Center.  Dupuytren hastalığı (GG) avucunun bir fibroproliferatif hastalıktır. Burada, biz üç-boyutlu (3D) kültür sistemi DD kültür rezeksiyon örneklerinde bir protokol mevcut. Bu tür kısa vadeli kültür sistemi 3D yapı korunması ve fibrotik doku moleküler özelliklerini tanır. 

Video: Human Dupuytren's Ex Vivo Culture for the Study of Myofibroblasts and Extracellular Matrix Interactions

Ex Vivo Culture of Patient Tissue &amp; Examination of Gene Delivery

This video describes the use of patient tissue as an ex vivo model for the study of gene delivery. Fresh patient tissue obtained at the time of surgery is sliced and maintained in culture. The ex vivo model system allows for the physical delivery of genes into intact patient tissue and gene expression is analysed by bioluminescence imaging using the IVIS detection system. The bioluminescent detection system demonstrates rapid and accurate quantification of gene expression within individual slices without the need for tissue sacrifice. This slice tissue culture system may be used in a variety of tissue types including normal and malignant tissue and allows us to study the effects of the heterogeneous nature of intact tissue and the high degree of variability between individual patients. This model system could be used in certain situations as an alternative to animal models and as a complementary preclinical mode prior to entering clinical trial.

Ex Vivo Culture of Patient Tissue &amp; Examination of Gene Delivery

This article describes the culture of patient tissue slices for gene delivery studies and subsequent analysis of gene expression using IVIS bioluminescence imaging.

Hasta Doku ve Gen Teslimat Sınav Ex Vivo Kültür

This video describes the use of patient tissue as an ex vivo model for the study of gene delivery.  Fresh patient tissue obtained at the time of surgery ...

Tıp

Human Neuroendocrine Tumor Cell Lines as a Three-Dimensional Model for the Study of Human Neuroendocrine Tumor Therapy

Neuroendocrine tumors (NETs) are rare tumors, with an incidence of two per 100,&#x200A;000 individuals per year, and they account for 0.5% of all human malignancies.1 Other than surgery for the minority of patients who present with localized disease, there is little or no survival benefit of systemic therapy. Therefore, there is a great need to better understand the biology of NETs, and in particular define new therapeutic targets for patients with nonresectable or metastatic neuroendocrine tumors. 3D cell culture is becoming a popular method for drug screening due to its relevance in modeling the in vivo tumor tissue organization and microenvironment.2,3 The 3D multicellular spheroids could provide valuable information in a more timely and less expensive manner than directly proceeding from 2D cell culture experiments to animal (murine) models.
To facilitate the discovery of new therapeutics for NET patients, we have developed an in vitro 3D multicellular spheroids model using the human NET cell lines. The NET cells are plated in a non-adhesive agarose-coated 24-well plate and incubated under physiological conditions (5% CO2, 37 &deg;C) with a very slow agitation for 16-24 hr after plating. The cells form multicellular spheroids starting on the 3rd or 4th day. The spheroids become more spherical by the 6th day, at which point the drug treatments are initiated. The efficacy of the drug treatments on the NET spheroids is monitored based on the morphology, shape and size of the spheroids with a phase-contrast light microscope. The size of the spheroids is estimated automatically using a custom-developed MATLAB program based on an active contour algorithm. Further, we demonstrate a simple method to process the HistoGel embedding on these 3D spheroids, allowing the use of standard histological and immunohistochemical techniques. 
This is the first report on generating 3D spheroids using NET cell lines to examine the effect of therapeutic drugs. We have also performed histology on these 3D spheroids, and displayed an example of a single drug's effect on growth and proliferation of the NET spheroids. Our results support that the NET spheroids are valuable for further studies of NET biology and drug development.

We present a simple agarose overlay platform to grow 3D multicellular spheroids using neuroendocrine cancer cell lines. This method provides a very convenient way to examine the effect of therapeutic drugs on the neuroendocrine tumor cells. It could also help us establish human neuroendocrine tumor spheroids for cancer therapy.

İnsan Nöroendokrin Tümör Terapi Çalışmaları Üç Boyutlu Model İnsan nöroendokrin tümör hücre hatlarında

Neuroendocrine tumors (NETs) are rare tumors, with an incidence of two per 100,&#x200A;000 individuals per year, and they account for 0.5% of all human ...

A Human Ex Vivo Atherosclerotic Plaque Model to Study Lesion Biology

Atherosclerosis is a chronic inflammatory disease of the vasculature. There are various methods to study the inflammatory compound in atherosclerotic lesions. Mouse models are an important tool to investigate inflammatory processes in atherogenesis, but these models suffer from the phenotypic and functional differences between the murine and human immune system. In vitro cell experiments are used to specifically evaluate cell type-dependent changes caused by a substance of interest, but culture-dependent variations and the inability to analyze the influence of specific molecules in the context of the inflammatory compound in atherosclerotic lesions limit the impact of the results. In addition, measuring levels of a molecule of interest in human blood helps to further investigate its clinical relevance, but this represents systemic and not local inflammation. Therefore, we here describe a plaque culture model to study human atherosclerotic lesion biology ex vivo. In short, fresh plaques are obtained from patients undergoing endarterectomy or coronary artery bypass grafting and stored in RPMI medium on ice until usage. The specimens are cut into small pieces followed by random distribution into a 48-well plate, containing RPMI medium in addition to a substance of interest such as cytokines or chemokines alone or in combination for defined periods of time. After incubation, the plaque pieces can be shock frozen for mRNA isolation, embedded in Paraffin or OCT for immunohistochemistry staining or smashed and lysed for western blotting. Furthermore, cells may be isolated from the plaque for flow cytometry analysis. In addition, supernatants can be collected for protein measurement by ELISA. In conclusion, the presented ex vivo model opens the possibility to further study inflammatory lesional biology, which may result in identification of novel disease mechanisms and therapeutic targets.

A Human Ex Vivo Atherosclerotic Plaque Model to Study Lesion Biology

Atherosclerosis is a chronic inflammatory process. This manuscript illustrates an easy to use ex vivo model to investigate fresh carotid or coronary artery plaques. The ex vivo model allows for the investigation of potential substances on the inflammatory milieu in human atherosclerotic lesions and results can be analyzed by various methods.

Bir İnsan<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Aterosklerotik Plak Model Lezyon Biyoloji Eğitim için

Atherosclerosis is a chronic inflammatory disease of the vasculature. There are various methods to study the inflammatory compound in atherosclerotic ...

Procedure for Human Saphenous Veins Ex Vivo Perfusion and External Reinforcement

The mainstay of contemporary therapies for extensive occlusive arterial disease is venous bypass graft. However, its durability is threatened by intimal hyperplasia (IH) that eventually leads to vessel occlusion and graft failure. Mechanical forces, particularly low shear stress and high wall tension, are thought to initiate and to sustain these cellular and molecular changes, but their exact contribution remains to be unraveled. To selectively evaluate the role of pressure and shear stress on the biology of IH, an ex&#160;vivo perfusion system (EVPS) was created to perfuse segments of human saphenous veins under arterial regimen (high shear stress and high pressure). Further technical innovations allowed the simultaneous perfusion of two segments from the same vein, one reinforced with an external mesh. Veins were harvested using a no-touch technique and immediately transferred to the laboratory for assembly in the EVPS. One segment of the freshly isolated vein was not perfused (control, day 0). The two others segments were perfused for up to 7 days, one being completely sheltered with a 4 mm (diameter) external mesh. The pressure, flow velocity, and pulse rate were continuously monitored and adjusted to mimic the hemodynamic conditions prevailing in the femoral artery. Upon completion of the perfusion, veins were dismounted and used for histological and molecular analysis. Under ex&#160;vivo conditions, high pressure perfusion (arterial, mean = 100 mm Hg) is sufficient to generate IH and remodeling of human veins. These alterations are reduced in the presence of an external polyester mesh.

Procedure for Human Saphenous Veins Ex Vivo Perfusion and External Reinforcement

The mechanisms leading to the development of intimal hyperplasia (IH) and vein graft failure are still poorly understood. This study describes an ex&#160;vivo system to perfuse human veins under controlled flow and pressure. Furthermore the efficiency of external mesh reinforcement to limit the development of IH was evaluated.

İnsan Safen Ven Prosedürü<em&gt; Ex vivo</em&gt; Perfüzyon ve Dış Takviye

The mainstay of contemporary therapies for extensive occlusive arterial disease is venous bypass graft. However, its durability is threatened by intimal ...

An Ex vivo Model to Study Hormone Action in the Human Breast

The study of hormone action in the human breast has been hampered by lack of adequate model systems. Upon in vitro culture, primary mammary epithelial cells tend to lose hormone receptor expression. Widely used hormone receptor positive breast cancer cell lines are of limited relevance to the in vivo situation. Here, we describe an ex vivo model to study hormone action in the human breast. Fresh human breast tissue specimens from surgical discard material such as reduction mammoplasties or mammectomies are mechanically and enzymatically digested to obtain tissue fragments containing ducts and lobules and multiple stromal cell types. These tissue microstructures kept in basal medium without growth factors preserve their intercellular contacts, the tissue architecture, and remain hormone responsive for several days. They are readily processed for RNA and protein extraction, histological analysis or stored in freezing medium. Fluorescence activated cell sorting (FACS) can be used to enrich for specific cell populations. This protocol provides a straightforward, standard approach for translational studies with highly complex, varied human specimens.

An Ex vivo Model to Study Hormone Action in the Human Breast

We have developed a novel ex vivo model to study hormone action in the human breast. It is based on tissue microstructures isolated from surgical breast tissue specimens which preserve tissue architecture, intercellular interactions, and paracrine signaling.

Bir<em&gt; Ex vivo</em&gt; Model İnsan Meme Hormon Eylem Eğitim için

The study of hormone action in the human breast has been hampered by lack of adequate model systems. Upon in vitro culture, primary mammary epithelial ...

In Vivo and Ex Vivo Approaches to Study Ovarian Cancer Metastatic Colonization of Milky Spot Structures in Peritoneal Adipose

High-grade serous ovarian cancer (HGSC), the cause of widespread peritoneal metastases, continues to have an extremely poor prognosis; fewer than 30% of women are alive 5 years after diagnosis. The omentum is a preferred site of HGSC metastasis formation. Despite the clinical importance of this microenvironment, the contribution of omental adipose tissue to ovarian cancer progression remains understudied. Omental adipose is unusual in that it contains structures known as milky spots, which are comprised of B, T, and NK cells, macrophages, and progenitor cells surrounding dense nests of vasculature. Milky spots play a key role in the physiologic functions of the omentum, which are required for peritoneal homeostasis. We have shown that milky spots also promote ovarian cancer metastatic colonization of peritoneal adipose, a key step in the development of peritoneal metastases. Here we describe the approaches we developed to evaluate and quantify milky spots in peritoneal adipose and study their functional contribution to ovarian cancer cell metastatic colonization of omental tissues both in vivo and ex vivo. These approaches are generalizable to additional mouse models and cell lines, thus enabling the study of ovarian cancer metastasis formation from initial localization of cells to milky spot structures to the development of widespread peritoneal metastases.

In Vivo and Ex Vivo Approaches to Study Ovarian Cancer Metastatic Colonization of Milky Spot Structures in Peritoneal Adipose

We outline a protocol that implements both in vivo and ex vivo approaches to study ovarian cancer colonization of peritoneal adipose tissues, particularly the omentum. Furthermore, we present a protocol to quantitate and analyze immune cell-structures in the omentum known as milky spots, which promote metastases of peritoneal adipose.

Vivo ve Ex Vivo Periton yağ içinde Samanyolu Nokta Yapıların Yumurtalık Kanseri Metastatik Kolonizasyon Eğitim Yaklaşımlar içinde

High-grade serous ovarian cancer (HGSC), the cause of widespread peritoneal metastases, continues to have an extremely poor prognosis; fewer than 30% of ...

Generation of Microtumors Using 3D Human Biogel Culture System and Patient-derived Glioblastoma Cells for Kinomic Profiling and Drug Response Testing

The use of patient-derived xenografts for modeling cancers has provided important insight into cancer biology and drug responsiveness. However, they are time consuming, expensive, and labor intensive. To overcome these obstacles, many research groups have turned to spheroid cultures of cancer cells. While useful, tumor spheroids or aggregates do not replicate cell-matrix interactions as found in vivo. As such, three-dimensional (3D) culture approaches utilizing an extracellular matrix scaffold provide a more realistic model system for investigation. Starting from subcutaneous or intracranial xenografts, tumor tissue is dissociated into a single cell suspension akin to cancer stem cell neurospheres. These cells are then embedded into a human-derived extracellular matrix, 3D human biogel, to generate a large number of microtumors. Interestingly, microtumors can be cultured for about a month with high viability and can be used for drug response testing using standard cytotoxicity assays such as 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) and live cell imaging using Calcein-AM. Moreover, they can be analyzed via immunohistochemistry or harvested for molecular profiling, such as array-based high-throughput kinomic profiling, which is detailed here as well. 3D microtumors, thus, represent a versatile high-throughput model system that can more closely replicate in vivo tumor biology than traditional approaches.

Patient-derived xenografts of glioblastoma multiforme can be miniaturized into living microtumors using 3D human biogel culture system. This in vivo-like 3D tumor assay is suitable for drug response testing and molecular profiling, including kinomic analysis.

Kinomic Profil Yöntemi ve İlaç Tepki Testi için 3D İnsan BIOGEL Kültür Sisteminin Kullanılması Microtumors ve Hasta kaynaklı Glioblastom Hücreleri Üretimi

The use of patient-derived xenografts for modeling cancers has provided important insight into cancer biology and drug responsiveness. However, they are ...

Strategic Endothelial Cell Tube Formation Assay: Comparing Extracellular Matrix and Growth Factor Reduced Extracellular Matrix

Malignant tumors require a blood supply in order to survive and spread. These tumors obtain their needed blood from the patient's blood stream by hijacking the process of angiogenesis, in which new blood vessels are formed from existing blood vessels. The CXCR2 (chemokine (C-X-C motif) receptor 2) receptor is a transmembrane G-protein-linked molecule found in many cells that is closely associated with angiogenesis1. Specific blockade of the CXCR2 receptor inhibits angiogenesis, as measured by several assays such as the endothelial tube formation assay. The tube formation assay is useful for studying angiogenesis because it is an excellent method of studying the effects that any given compound or environmental condition may have on angiogenesis. It is a simple and quick in vitro assay that generates quantifiable data and requires relatively few components. Unlike in vivo assays, it does not require animals and can be carried out in less than two days. This protocol describes a variation of the extracellular matrix supporting endothelial tube formation assay, which tests the CXCR2 receptor.

This manuscript describes a tube formation assay to quantify the effects of a given compound or condition on angiogenesis by using endothelial cell tube formation in a controlled environment.

Stratejik Endotel Hücre Tüp Oluşumu Testi: Azaltılmış Ekstrasellüler Matrix Ekstrasellüler Matrix ve Büyüme Faktörü Karşılaştırılması

Malignant tumors require a blood supply in order to survive and spread. These tumors obtain their needed blood from the patient's blood stream by ...

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo and noninvasively in humans via phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS). However, the approach has not been widely adopted in translational and clinical research, with variations in methodology and limited guidance from the literature. Increased optimization, standardization, and dissemination of methods for in vivo 31PMRS would facilitate the development of targeted therapies to improve OXPHOS capacity and could ultimately favorably impact cardiovascular health. 31PMRS produces a noninvasive, in vivo measure of OXPHOS capacity in human skeletal muscle, as opposed to alternative measures obtained from explanted and potentially altered mitochondria via muscle biopsy. It relies upon only modest additional instrumentation beyond what is already in place on magnetic resonance scanners available for clinical and translational research at most institutions. In this work, we outline a method to measure in vivo skeletal muscle OXPHOS. The technique is demonstrated using a 1.5 Tesla whole-body MR scanner equipped with the suitable hardware and software for 31PMRS, and we explain a simple and robust protocol for in-magnet resistive exercise to rapidly fatigue the quadriceps muscle. Reproducibility and feasibility are demonstrated in volunteers as well as subjects over a wide range of functional capacities.

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

This work demonstrates the feasibility of an in vivo phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS) technique to quantify mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity in human skeletal muscle.

Fosfor-31 Manyetik Rezonans Spektroskopisi: Ölçme için Aracı<em&gt; İn Vivo</emİnsan İskelet Kası içinde&gt; Mitokondriyal Oksidatif Fosforilasyon Kapasitesi

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo ...

Preparation Steps for Measurement of Reactivity in Mouse Retinal Arterioles Ex Vivo

Vascular insufficiency and alterations in normal retinal perfusion are among the major factors for the pathogenesis of various sight-threatening ocular diseases, such as diabetic retinopathy, hypertensive retinopathy, and possibly glaucoma. Therefore, retinal microvascular preparations are pivotal tools for physiological and pharmacological studies to delineate the underlying pathophysiological mechanisms and to design therapies for the diseases. Despite the wide use of mouse models in ophthalmic research, studies on retinal vascular reactivity are scarce in this species. A major reason for this discrepancy is the challenging isolation procedures owing to the small size of these retinal blood vessels, which is ~ &#8804; 30 &#181;m in luminal diameter. To circumvent the problem of direct isolation of these retinal microvessels for functional studies, we established an isolation and preparation technique that enables ex vivo studies of mouse retinal vasoactivity under near-physiological conditions. Although the present experimental preparations will specifically refer to the mouse retinal arterioles, this methodology can readily be employed to microvessels from rats.

Preparation Steps for Measurement of Reactivity in Mouse Retinal Arterioles Ex Vivo

Many vision-threatening ocular diseases are associated with dysfunctional retinal microvessels. Therefore, the measurement of retinal arteriole responses is important to investigate the underlying pathophysiological mechanisms. This article describes a detailed protocol for mouse retinal arteriole isolation and preparation to assess the effects of vasoactive substances on vascular diameter.

Fare retina arteriyoller Ex Vivo reaktivite ölçümü için hazırlık adımları

Vascular insufficiency and alterations in normal retinal perfusion are among the major factors for the pathogenesis of various sight-threatening ocular ...