Bu çalışma, Amerikan Kalp Derneği 14FTF20370058 (DMA) ve NIH T32 HL007101-35 (DMA) tarafından desteklenmektedir.

1. iletkenlik Kateter Hazırlıklar ve Basınç Kalibrasyon <ol><li> Hemodinamik kateter modülüne iletkenlik kateteri bağlayın. Elektronik kateter modülünde ayarlanmış önceden ayarlanmış basınç ve hacim kaydederek basınç ve hacim ölçümlerini kalibre. 0 mm Hg ve 25 mm Hg (Şekil 1A) bir izleme kaydedin ve her iki basınç trasların (Şekil 1B ve 1C) ile gerilimleri atayın. Benzer şekilde, 5 RVU ve 25 RVU (Şekil 1D) bir hacim izleme kayıt ve hem hacim trasların (1E ve 1F) ile gerilimleri atayın. </li><li> Bir cıva sütunu sfingomanometre kullanarak, manuel basınç kalibrasyon ile elektronik basınç kalibrasyonunu onaylayın. 3-yollu ile tansiyon aleti manşet noktasını yerleştirin. Yan bağlantı noktasını kullanarak RT su ile sık sık koroner anjiyoplasti için kullanılan bir 3-port hemostaz valf sistemi, doldurun. <ol><li> Sıvı dolu hemostaz valfi içine iletkenlik kateterin ucunu yerleştirin ve yavaşça zekâ güvenceyehout kateter dolanması. Tansiyon aleti ile hemostaz valfini bağlayın ve 200 mmHg şişirmek ve 3-yollu stopcock kilitleyin. Ölçülen basınç tansiyon aleti üzerinde şişirilmiş basınç uygun olup olmadığını inceler. </li></ol></li><li> Tuzlu su içinde yer kateter çalışma alanı ve ölçü basınç seviyesinde 37 ° C&#39;ye ısıtıldı. Kaydedilen basınçlar sıfır oluncaya kadar basınç kontrolünü ayarlayın. </li></ol> 2. Anestezi / Entübasyon <ol><li> Ketamin / ksilazin bir intraperitoneal olarak (-1 80-100 / 10 mg kg) yönetin. Not: Alternatif anestezik maddeler kullanılabilir. Anestezik kapsamlı bir liste bu tekniğin 11,12 önceki incelemelerde verilmektedir. Uygun Anesthetization nazik kuyruk tutam tarafından teyit edilebilir. </li><li> Bir kez anestezi, ısıtmalı pad üzerinde saç kesme ve yer ile boyun ve göğüs tıraş. 36,5-37,5 ºC fare rektal ısısını korumak. Düşük vücut sıcaklıklarıdepresif kalp hızı neden olacaktır. Kuruluğunu önlemek için gözlere merhem sürün </li><li> Boyundaki bir orta hat kesi yapmak ve trakea maruz uzakta trakea kasları teşrih. Entübasyon sağlamak için trakea görselleştirilmesi ise, ağız yoluyla bir endotrakeal tüpü yerleştirin ve solunum bağlanın. </li><li> İşlem sırasında ventilatör üzerinde fare koruyun. Daha önce açıklandığı gibi 11 ayarla ventilatör ayarları hayvan ağırlığına dayalı. Tidal Hacim (ml) 6.2 x (kilogram hayvan ağırlığı) 1.01 ve Solunum hızı = 53.5 x (kilogram hayvan ağırlığı) -0,26 =. </li></ol> LV odasında İletkenlik Kateterin 3. Yerleştirme <ol><li> Karotis yaklaşımı <ol><li> Sterilite sağlamak için, steril cerrahi aletlerin iki takım ilk cilt kesi ve torakotomi faaliyet biri için used- biridir. Araçlar tek bir cerrahi seans a sırasında hayvanlar arasında kuru sterilizatör kullanılarak dekontamine edilmelidirnd her cerrahi günün sonunda otoklavlanmıştır. </li><li> Cilt Klorheksidin + alkol cilt fırçalayın (% 0.5 klorheksidin /% 70 alkol solüsyonu) üç döngü ile dekontamine edildikten sonra, sternum mandibulanın sağ karotis üzerinde bir kesi yapmak. Sağ karotis maruz doku çevresindeki teşrih ve karotis bitişik çalışan vagus siniri kesti. </li><li> Kravat ve güvenli (uzakta göğüs) karotid arter distal ucuna etrafında steril 6-0 ipek sütür yerleştirin. Gevşek, orta dikiş bağlama, ilk sütür (göğüs yakın) karotis proksimal altında iki ek sütür yerleştirin. Yavaşça proksimal sütür çekin ve cilde sıkma yoluyla emniyete alın. Karotis arter Devam etmeden önce hem proksimal ve distalde kenetlenmiş edilmiş olduğundan emin olun. </li><li> İlk sütür küçük R. karotid arter kesi, proksimal olun ve göğse doğru uzunlamasına uzanır. </li><li> Iletkenlik kateter ucu takın,Daha önce kesikten damar içine, 30 dakika boyunca ılık tuzlu su içinde ıslatılmış ve orta dikiş kullanılarak deriye tespit. </li><li> Doğru yerleşimi sağlamak için izleme basınç-hacim döngü izlerken yavaşça, karotis yoluyla sol ventriküle kateter ilerlemek. Not: dikdörtgen görünür basınç-volüm döngüler verim gerekir kateterin Optimal yerleştirme (Bakınız Şekil 2). Kateterin geçişine herhangi dirençle karşılaşılırsa, yavaşça geri çekin ve nazik bir basınç ile tekrar ilerlemek. Kateterin Nazik rotasyon sol ventrikül içine yerleştirme ile yardımcı olabilir. Iletkenlik kateter zorlamak ciddi kardiyovasküler komplikasyon veya kateter zarar görmesine neden olabilir. </li><li> Kayıt bazal basınç-hacim ~ 10 kateter yerleştirildikten sonra min ve kararlı bir duruma ulaşmak (Şekil 2) döngüler. </li></ol></li><li> Apikal Yaklaşım <ol><li> Bir anestezi ve havalandırmalı fare, bir kesi yapmak from kılıç şeklinde süreci ve diyafram görünür yanal kadar göğüs duvarından kesti. </li><li> Diyaframın olsa kesin ve kalbin apeks görselleştirmek. </li><li> Yakın elektrot sadece ventrikül içinde kadar, (25-30 G iğne kullanarak) bir iğne bıçak yarası ile sol ventrikül apeksi içine iletkenlik kateter yerleştirin. </li><li> Kayıt bazal basınç-hacim ~ 10 kateter yerleştirildikten sonra min ve kararlı bir devlet elde döngüler. </li></ol></li></ol> Geçici Aort Occlusion Kullanılması 4. Değişen art yük <ol><li> Geçici aort tıkanıklığı gerçekleştirmek için, göğsün üst kısmında küçük bir yatay bir kesi yapmak ve enine aorta maruz doku çevresindeki teşrih. </li><li> Enine aort altında 6-0 ipek bitişik harfleri yerleştirin. Basınç-volüm eğrileri başlangıca geri döndü sonra, hafifçe ve yavaşça, bir iğne kelepçesi ile sütür iki ucunu toka 1-2 sn boyunca dikiş yükseltmek ve yavaşça serbest gerginlik. </li&gt; <li> Üç ayrı optimum kayıtları aynı hayvandan yapılana kadar, bu işlemi tekrarlayın. Not: Optimal kayıtları en az 5 basınç volüm döngüleri ve sütür (Şekil 3A ve 3C) hakkında gerginlik uygulama sırasında uç sistolik basınçlarında sürekli bir artış olmalıdır. </li></ol> 5. Değişen Preload Geçici İnferior Vena Kava Occlusion Kullanma (IVC) <ol><li> Geçici inferior vena kava tıkanıklığı gerçekleştirmek için, IVC maruz diyaframın altında, kılıç şeklinde bir süreç altında yatay bir kesi yapmak. </li><li> IVC altında 6-0 ipek bitişik harfleri yerleştirin. Basınç-volüm eğrileri başlangıca geri döndü sonra, bir iğne kelepçesi ile sütür iki ucunu toka; ve yavaşça 1-2 saniye boyunca dikiş yükseltmek ve yavaşça serbest gerginlik. IVC oklüzyonu da çubukla uçlu pamuk kullanarak basınç hassas bir uygulama tarafından gerçekleştirilebilmektedir. </li><li> Üç ayrı optimum kayıtlar m kadar bu işlemi tekrarlayınAynı hayvandan ade. Not: Optimal kayıtları en az 5 basınç volüm döngüleri ve dikiş üzerindeki gerginlik uygulama sırasında sol ventrikül diyastol sonu basınçları sürekli bir düşüş olması gerekir (Şekil 4A ve 4B). </li></ol> 6. Tuzlu Kalibrasyon <ol><li> Çalışmanın sonunda, bir paralel iletkenlik (V p) değeri juguler ven yoluyla hayvana hipertonik salin (% 15) bir 10 ul bolus enjekte edilerek elde olması (Şekil 5A ve 5B) olabilir. Not: Bu, bolus basıncında herhangi bir değişiklik yapılmadan hacminde belirgin bir artışa neden olur. Bu tür bir hacim belirgin değişiklik nedeniyle hacim gerçek bir artış kan havuzu iletkenlik yerine bir değişiklik sonucudur. Hipertonik salin bir negatif inotropik etkiye sahip olduğu 13 dP / dt max geçici bir düşüş, görülebilir. Hesaplanan V p boyunca basınç volüm analizi yazılımı içine girilebilirKüvet kalibrasyon parametreleri ile ve mikrolitre RVUs dönüştürmek için. </li></ol> 7. Cuvette Kalibrasyon <ol><li> Bir küvet kalibrasyonu gerçekleştirmek için, ° C 37 ° C&#39;de ısıtıldı, bir ısıtma yastığı ya da bir su banyosu üzerinde, üretici tarafından tedarik edilen bilinen çaplar oyuklarına sahip bir küvet kullanır. Hemodinamik değerlendirmeler geçiren farelerin taze sıcak heparinize kan ilk 4-5 delik doldurun. Not: Bir küvet kalibrasyon fare kanı kullanılarak sol ventrikül kan havuzunun doğru değerlendirilmesi için izin verir ve mikrolitre RVUs gelen hacimli veri dönüşüm sağlar. </li><li> Tüm elektrotlar batık kadar, ilk kuyunun içine iletkenlik kateter yerleştirin. Yavaşça değişen RVUs üretecek olan kuyuda kateter hareket ettirin. </li><li> RVUs hacmi kanalında iletkenlik değişiklikleri kaydedin. Kalibrasyon için, en yüksek RVU seçin. Not: deliklerin hacim ya volum için bir denklem kullanılarak) 1 ile hesaplanabiliryarıçapı küvet oyuk ve uzunluk olduğu bir silindirin, e Dahili iki algılama elektrotlar veya 2), üretici talimatlarına kontrol arasındaki uzunluğuna bağlıdır. Iletkenlik çıkış mikrolitre 11 içine RVUs veri dönüştüren bir kalibrasyon ifadesinin bilinen hacmi ile korele edilebilir. </li></ol> 8. Ötenazi <ol><li> Protokolün sonunda, fareler anestezi altında iken servikal dislokasyon ile ötenazi. </li><li> Sağlamak amacıyla ölüm, uygulanan servikal dislokasyon sahip fareler ötenazi ikincil bir yöntem geçmesi gerekir. Biz anestezi altında deney için kalp dokusunun hasat veya iki taraflı torakotomi ile, anestezi altında kansız kullanın. </li></ol> 9. Veri Analizi kullanılarak Basınç Hacim Döngüsü Analizi Yazılımı <ol><li> Tuzlu Kalibrasyon V p hesaplayın <ol><li> Seçin basınç ve VOLUBeni hipertonik salin ejeksiyon sırasında elde edilen döngüler (Şekil 5A ve 5B) </li><li> İhracat basınç hacim analiz yazılımı döngüler. Tuzlu kalibrasyon için seçeneği seçin (Şekil 5C) </li><li> Hesaplanan V p değeri (Şekil 5D) kaydedin. Not: V p değeri tuzlu kalibrasyona sonu sistolik hacim vs 1) End-diyastolik hacim kesişimi belirlenmesi ve 2) sonu diyastolik hacim = Sonu sistolik hacim çizgisi ile hesaplanır. Bu satırların kesiştiği basıncı volüm analiz yazılımı tarafından hesaplanan V s sağlar. </li></ol></li><li> Hacmine iletkenlik girin (RVU) hacim kanal seçenekleri ilişki (Şekil 1F) </li><li> Temel Basınç Hacim döngü ilişkisini ölçmek <ol><li> Kararlı durum elde edildikten sonra basınç ve hacim kanalları 8-10 kardiyak döngülerini seçin (Şekil 2A) ve yumuşak analize ihracatware. 5-6 ekspiryum sonu döngüler (Şekil 2B) tespit </li><li> Paralel iletkenlik düzeltmek için V p değerini kullanın. &quot;Kararlı Durum&quot; seçeneğini seçin ve bir hemodinamik özet tablo oluşturmak (Şekil 2C) </li></ol></li><li> Aort Konstrüksiyon sırasında Tedbir Basınç Hacim döngü İlişkisi <ol><li> Diyastol sonu basınçları (Şekil 3A) ve analiz yazılımları ihracat artışı öncesinde aort daralma karşılık basınç ve hacim kanalları 8-10 kalp döngüleri seçin. 5-6 ekspiryum sonu döngüler (Şekil 3C) tespit </li><li> Sonu Sistolik Basınç Hacim İlişkisi hesaplar Seç &quot;Kasılma&quot; analizi (Şekil 3B), (ESPVR) </li></ol></li><li> VKİ Konstrüksiyon sırasında Tedbir Basınç Hacim döngü İlişkisi <ol><li> (Figür IVC daralma karşılık basınç ve hacim kanalları 8-10 kardiyak döngüleri seçinanaliz yazılımı, e 4A) ve ihracat. 5-6 ekspiryum sonu döngüler (Şekil 4B) tespit </li><li> &quot;Kasılma&quot; analizi Preload askere almalarla İnme Çalışma hesaplar (Şekil 3B), (PRSW) (Şekil 4C) seçin, EDV (Şekil 4D), yanı sıra ESPVR ve sonu diyastolik basınç hacim ilişkisi vs dt Maksimum dP / (Şekil 4E) </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Clark, J. E., Marber, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Advancements+in+pressure-volume+catheter+technology+-+stress+remodelling+after+infarction.">Advancements in pressure-volume catheter technology - stress remodelling after infarction.</a> Exp Physiol. 98 (3), 614-621 (2013).</li><li>Sunagawa, K., Maughan, W. L., Burkhoff, D., Sagawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+ventricular+interaction+with+arterial+load+studied+in+isolated+canine+ventricle.">Left ventricular interaction with arterial load studied in isolated canine ventricle.</a> Am J Physiol. 245 (Pt 1), H773-H780 (1983).</li><li>Suga, H., Sagawa, K., Demer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determinants+of+instantaneous+pressure+in+canine+left+ventricle.+Time+and+volume+specification.">Determinants of instantaneous pressure in canine left ventricle. Time and volume specification.</a> Circ Res. 46 (2), 256-263 (1980).</li><li>Suga, H., Sagawa, K., Shoukas, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Load+independence+of+the+instantaneous+pressure-volume+ratio+of+the+canine+left+ventricle+and+effects+of+epinephrine+and+heart+rate+on+the+ratio.">Load independence of the instantaneous pressure-volume ratio of the canine left ventricle and effects of epinephrine and heart rate on the ratio.</a> Circ Res. 32 (3), 314-322 (1973).</li><li>Kass, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+left+ventricular+mechanics+from+acute+VDD+pacing+in+patients+with+dilated+cardiomyopathy+and+ventricular+conduction+delay.">Improved left ventricular mechanics from acute VDD pacing in patients with dilated cardiomyopathy and ventricular conduction delay.</a> Circulation. 99 (12), 1567-1573 (1999).</li><li>Kass, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diastolic+Compliance+of+Hypertrophied+Ventricle+Is+Not+Acutely+Altered+by+Pharmacological+Agents+Influencing+Active+Processes.">Diastolic Compliance of Hypertrophied Ventricle Is Not Acutely Altered by Pharmacological Agents Influencing Active Processes.</a> Annals of Internal Medicine. 119 (6), 466-473 (1993).</li><li>Georgakopoulos, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+murine+left+ventricular+pressure-volume+relations+by+miniaturized+conductance+micromanometry.">In vivo murine left ventricular pressure-volume relations by miniaturized conductance micromanometry.</a> Am J Physiol. 274 (4 pt 2), H1416-H1422 (1998).</li><li>Cingolani, O. H., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pressure-volume+relation+analysis+of+mouse+ventricular+function.">Pressure-volume relation analysis of mouse ventricular function.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301 (6), H2198-H2206 (2011).</li><li>Baan, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Continuous+Measurement+of+Left-Ventricular+Volume+in+Animals+and+Humans+by+Conductance+Catheter.">Continuous Measurement of Left-Ventricular Volume in Animals and Humans by Conductance Catheter.</a> Circulation. 70 (5), 812-823 (1984).</li><li>Pearce, J. A., Porterfield, J. E., Larson, E. R., Valvano, J. W., Feldman, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Accuracy+considerations+in+catheter+based+estimation+of+left+ventricular+volume.">Accuracy considerations in catheter based estimation of left ventricular volume.</a> Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 2010, 3556-3558 (2010).</li><li>Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Batkai, S., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+cardiac+function+using+pressure-volume+conductance+catheter+technique+in+mice+and+rats.">Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats.</a> Nature Protocols. 3 (9), 1422-1434 (1038).</li><li>Hanusch, C., Hoeger, S., Beck, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anaesthesia+of+small+rodents+during+magnetic+resonance+imaging.">Anaesthesia of small rodents during magnetic resonance imaging.</a> Methods. 43 (1), 68-78 (2007).</li><li>Georgakopoulos, D., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimation+of+parallel+conductance+by+dual-frequency+conductance+catheter+in+mice.">Estimation of parallel conductance by dual-frequency conductance catheter in mice.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 279 (1), H443-H450 (2000).</li><li>Esposito, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Increased+myocardial+contractility+and+enhanced+exercise+function+in+transgenic+mice+overexpressing+either+adenylyl+cyclase+5+or+8.">Increased myocardial contractility and enhanced exercise function in transgenic mice overexpressing either adenylyl cyclase 5 or 8.</a> Basic Res Cardiol. 103 (1), 22-30 (2008).</li><li>Kohout, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Augmentation+of+cardiac+contractility+mediated+by+the+human+beta(3)-adrenergic+receptor+overexpressed+in+the+hearts+of+transgenic+mice.">Augmentation of cardiac contractility mediated by the human beta(3)-adrenergic receptor overexpressed in the hearts of transgenic mice.</a> Circulation. 104 (20), 2485-2491 (2001).</li><li>Kim, K. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=beta-Arrestin-biased+AT1R+stimulation+promotes+cell+survival+during+acute+cardiac+injury.">beta-Arrestin-biased AT1R stimulation promotes cell survival during acute cardiac injury.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 303 (8), H1001-H1010 (2012).</li><li>Suga, H., Sagawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mathematical+Interrelationship+between+Instantaneous+Ventricular+Pressure-Volume+Ratio+and+Myocardial+Force-Velocity+Relation.">Mathematical Interrelationship between Instantaneous Ventricular Pressure-Volume Ratio and Myocardial Force-Velocity Relation.</a> Annals of Biomedical Engineering. 1 (2), 160-181 (1972).</li><li>Suga, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ventricular+energetics.">Ventricular energetics.</a> Physiol Rev. 70 (2), 247-277 (1990).</li><li>Kass, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+contractile+state+on+curvilinearity+of+in+situ+end-systolic+pressure-volume+relations.">Influence of contractile state on curvilinearity of in situ end-systolic pressure-volume relations.</a> Circulation. 79 (1), 167-178 (1989).</li><li>Little, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+left+ventricular+dP/dtmax-end-diastolic+volume+relation+in+closed-chest+dogs.">The left ventricular dP/dtmax-end-diastolic volume relation in closed-chest dogs.</a> Circ Res. 56 (6), 808-815 (1985).</li><li>Glower, D. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Linearity+of+the+Frank-Starling+relationship+in+the+intact+heart:+the+concept+of+preload+recruitable+stroke+work.">Linearity of the Frank-Starling relationship in the intact heart: the concept of preload recruitable stroke work.</a> Circulation. 71 (5), 994-1009 (1985).</li><li>Sharir, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ventricular+systolic+assessment+in+patients+with+dilated+cardiomyopathy+by+preload-adjusted+maximal+power.+Validation+and+noninvasive+application.">Ventricular systolic assessment in patients with dilated cardiomyopathy by preload-adjusted maximal power. Validation and noninvasive application.</a> Circulation. 89 (5), 2045-2053 (1994).</li><li>Baan, J., Van der Velde, E. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensitivity+of+left+ventricular+end-systolic+pressure-volume+relation+to+type+of+loading+intervention+in+dogs.">Sensitivity of left ventricular end-systolic pressure-volume relation to type of loading intervention in dogs.</a> Circ Res. 62 (6), 1247-1258 (1988).</li><li>Wei, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Volume+catheter+parallel+conductance+varies+between+end-systole+and+end-diastole.">Volume catheter parallel conductance varies between end-systole and end-diastole.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 54 (8), 1480-1489 (2007).</li><li>Porterfield, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+correction+for+parallel+conductance,+GP,+and+gain+factor,+alpha,+in+invasive+murine+left+ventricular+volume+measurements.">Dynamic correction for parallel conductance, GP, and gain factor, alpha, in invasive murine left ventricular volume measurements.</a> J Appl Physiol (1985). 107 (6), 1693-1703 (2009).</li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Biz kardiyak kontraktilite ve rahatlama hem de kapsamlı analizler elde etmek, farelerde bir iletkenlik kateter kullanılarak basınç-hacim döngü analizi perfoming için bir yöntem açıklanmaktadır. Suga, Sagawa ve arkadaşları basınç-volüm kardiyak kontraktilite önlemleri özellikle ESPVR eğimini veya sistol sonu elastans (E es) ve E max tanımlamak için döngüler kullanılır. Hacminin (P / V) basınç oranı ile tanımlanır elastisite, sistol süresi boyunca değişir. Her sistol ...

Kardiyak basınç volüm analizi kalp fonksiyonu ayrıntılı bilgi sağlar ve fonksiyonel değerlendirme 1 altın standarttır. Böyle ekokardiyografi veya kardiyak MR gibi görüntüleme teknikleri, fonksiyonel tedbirleri sağlarken, bu önlemlerin yükleme koşulları son derece bağımlıdırlar. Kalp kontraktilite ve gevşeme Yük bağımsız önlemler ön ve son yüklerin aralığında ventriküler basınç ve hacim ilişkisi dinamik ölçümlerini gerektirmektedir. Basınç-hacim ilişkisi Bu anlayış Sagawa ve arkadaşları 2,3 çığır açan çalışmalarından kaynaklanmaktadır. Bunlar basınç-hacim döngü türetilmiş kontraktilite önlemleri yükleme koşulları 4 bağımsız olduğunu ex vivo olarak perfüze köpek kalplerinde gösterdi. Bu analizlerin in vivo uygulamasında 1980&#39;lerde iletkenliği kateter geliştirilmesi ile mümkün oldu. Ka izin Bu teknik ilerlemess ve arkadaşları insanlarda 5,6 basınç-volüm halkası analizi gerçekleştirmek için. Geç 1990 7 iletkenlik kateter ve cerrahi tekniklerdeki gelişmeler minyatürleştirilmesi yapılacak genetik ve farmakolojik çalışmalar için izin kemirgen kalp fonksiyonunun analizi mümkün yaptı. Bu peşin basınç-volüm döngü analizi yaygın kullanımı kurşun beri vardır ve memeli kalp fizyolojisi içgörü büyük bir üretti. Iletkenlik kateter kullanımı ve ondan elde edilen verilerin yorumlanması bir anahtar kavram hacmi ve iletkenlik arasındaki ilişkidir. İletkenlik ters proksimale yerleştirilen elektrotlar, genellikle LV apeks 8&#39;de, aort kapak altına yerleştirilir ve distalde bir kateter kullanılarak ölçülür gerilime ile ilgilidir. Voltaj veya iletkenlikteki değişimler proksimal uzak elektrot akan akım değişiklikleri ile ölçülür. Kan havuzu katkıda rağmenönemli ölçüde iletkenliğe s, ventriküler duvar katkısı, paralel iletkenlik (V p) olarak adlandırılan, ölçülen iletkenlik mutlak LV volüm ölçümleri elde etmek için çıkarılır olması gerekir. Yöntemler bu düzeltme yapmak için, aşağıdaki protokolde ele alınmaktadır, tuzlu kalibrasyonu denir. Baan ve meslektaşları tarafından açıklanan iletkenlik ve hacim arasındaki matematiksel ilişki, bu hacim = 1 / α olduğunu; (ρ L 2) (GG p), burada α = üniforma alan düzeltme faktörü, ρ = kan direnç, L = elektrotlar arasındaki mesafe, G = iletkenlik ve G p = olmayan kan iletkenliği 9. Not, farelerde üniforma alan düzeltme faktörü nedeniyle küçük odacık hacimleri 10 1.0 yaklaşır. Basınç dönüştürücüler ile birleştiğinde, iletkenlik kateter gerçek zamanlı eşzamanlı basınç ve hacim verileri sağlar. Kardiyak pressuonlar yükleme koşulları ve kalp hızından bağımsız ventrikül fonksiyonu ölçümü için izin verdiği yeniden hacim analizi, kalp fonksiyonunun diğer tedbirler üzerinde özel avantajlar sunuyor. Sonu sistolik basınç hacim ilişkisi (ESPVR) d P / d t max -end-diyastolik volüm ilişkisi, maksimal elastisite (E max) ve askere almalarla inme çalışmaları (PRSW) preload: kontraktilitenin Özgül yük bağımsız kalp endeksleri içerir. Diyastolik fonksiyon bir yük bağımsız önlem diyastol sonu basınç hacim ilişkisi (EDPVR) 11 olduğunu. Aşağıdaki protokol karotis ve apikal yaklaşım her ikisini de kullanarak, kardiyak basınç volüm halkası analizinin yürütülmesini açıklar. Bu çalışmaları gerçekleştirmek için metodoloji detaylı, daha önce 8,11 olarak tarif edilmiş olmasına rağmen, biz de tuzlu ve küvet kalibrasyon düzeltme de dahil olmak üzere hassas basınç-hacim ölçümleri elde etmek önemli adımlar gözden ve thes görsel gösteri sağlayacake prosedürleri. Bu çalışma için yürütülen hayvanlarla Araştırma protokollerle ve onaylanmış Duke Üniversitesi Tıp Merkezi&#39;nin Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu hayvan refahı düzenlemelerine göre ele alınmıştır.

<table><tbody><tr><td>AnaSed (xylazine)&amp;nbsp;</td><td>Lloyd Laboratories</td><td>NADA no. 139-236</td><td>Anesthetic</td></tr><tr><td>Ketaset (ketamine)</td><td>Pfizer</td><td>440842</td><td>Anesthetic</td></tr><tr><td>VIP3000</td><td>Matrx Medical Inc.</td><td></td><td>Anesthesia machine</td></tr><tr><td>Ventilator</td><td>Harvard Apparatus</td><td>Model 683</td><td>Surgical Equipment</td></tr><tr><td>Tubing kit</td><td>Harvard Apparatus</td><td>72-1049</td><td>Surgical Equipment</td></tr><tr><td>Homeothermic Blanket&amp;nbsp;</td><td>Kaz Inc.</td><td>5628</td><td>Surgical Equipment</td></tr><tr><td>Stereo microscope</td><td>Carl Zeiss Optical Inc.</td><td>Stemi 2000</td><td>Surgical Equipment</td></tr><tr><td>Illuminator</td><td>Cole&amp;ndash;Parmer</td><td>41720</td><td>Surgical Equipment</td></tr><tr><td>Dumont no. 55 Dumostar Forceps&amp;nbsp;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>11295-51</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>Graefe forceps, curved&amp;nbsp;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>11052-10</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>Moria MC31 forceps&amp;nbsp;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>11370-31</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>Mayo scissors&amp;nbsp;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>14512-15</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>Iris scissors&amp;nbsp;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>14041-10</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>Halsey needle holder&amp;nbsp;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>12501-13</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>Olsen&amp;ndash;Hegar needle holder&amp;nbsp;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>12002-12</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>spring scissors</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>15610-08</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>disposable underpads</td><td>Kendall/Tyco Healthcare</td><td>1038</td><td>Surgical Supplies</td></tr><tr><td>Sterile gauze sponges, sterile&amp;nbsp;</td><td>Dukal</td><td>62208</td><td>Surgical Supplies</td></tr><tr><td>Cotton-tipped applicators, sterile&amp;nbsp;</td><td>Solon</td><td>368</td><td>Surgical Supplies</td></tr><tr><td>Surgical suture,&amp;nbsp; silk, 6-0&amp;nbsp;</td><td>DemeTECH</td><td>FT-639-1</td><td>Surgical Supplies</td></tr><tr><td>1 cc Insulin syringes&amp;nbsp;</td><td>Becton Dickenson</td><td>329412</td><td>Surgical Supplies</td></tr><tr><td>Access 9 Hemostasis Valve</td><td>Merit Medical&amp;nbsp;</td><td>MAP111</td><td>Hemodynamic equipment</td></tr><tr><td>Sphygmomanometer</td><td>Baumanometer</td><td>320</td><td>Hemodynamic equipment</td></tr><tr><td>Millar PV system MPVS-300/400 or MPVS Ultra (includes calibration cuvette)</td><td>ADInstruments Inc</td><td></td><td>Hemodynamic equipment</td></tr><tr><td>1.4F conductance catheter&amp;nbsp;</td><td>ADInstruments Inc</td><td>SPR-839</td><td>Hemodynamic equipment</td></tr><tr><td>PowerLab 4/30 with Chart Pro</td><td>ADInstruments Inc.</td><td>ML866/P</td><td>Hemodynamic software</td></tr><tr><td>animal clipper</td><td>Wahl</td><td>8787-450A</td><td>Miscellaneous</td></tr><tr><td>Intradermic tubing PE-10</td><td>Becton Dickenson</td><td>427401</td><td>Miscellaneous</td></tr><tr><td>Intradermic tubing PE-50</td><td>Becton Dickenson</td><td>427411</td><td>Miscellaneous</td></tr><tr><td>Needle assortment (18, 25 and 30 gauge; Thomas Scientific)</td><td></td><td></td><td>Miscellaneous</td></tr><tr><td>0.9% (wt/vol) sodium chloride injection, USP)</td><td>Hospira</td><td>NDC no. 0409-4888-50</td><td>Miscellaneous</td></tr><tr><td>Surgical tape</td><td></td><td></td><td>Miscellaneous</td></tr><tr><td>Alconox (Alconox Inc.) for catheter cleaning</td><td>ADInstruments Inc.</td><td></td><td>Miscellaneous</td></tr></tbody></table>

cardiac pressure-volume loop analysis using conductance catheters in mice

Cardiac pressure-volume loop analysis is the &#8220;gold-standard&#8221; in the assessment of load-dependent and load-independent measures of ventricular systolic and diastolic function. Measures of ventricular contractility and compliance are obtained through examination of cardiac response to changes in afterload and preload. These techniques were originally developed nearly three decades ago to measure cardiac function in large mammals and humans. The application of these analyses to small mammals, such as mice, has been accomplished through the optimization of microsurgical techniques and creation of conductance catheters. Conductance catheters allow for estimation of the blood pool by exploiting the relationship between electrical conductance and volume. When properly performed, these techniques allow for testing of cardiac function in genetic mutant mouse models or in drug treatment studies. The accuracy and precision of these studies are dependent on careful attention to the calibration of instruments, systematic conduct of hemodynamic measurements and data analyses. We will review the methods of conducting pressure-volume loop experiments using a conductance catheter in mice.

Basınç-hacim döngü yöntemi, ilaç çalışmaları 16 uygulanan genetik olarak tadil edilmiş fareler 14,15 veya farelerde kalp fonksiyonu ölçmek için kullanılabilir. Temsili basınç hacim döngüler ß-arrestin etkisini araştıran daha önce yayınlanmış çalışmaları 16 sağlanmaktadır TRV120023, AT1R ligand önyargılı. TRV120023 in vivo kardiyak fonksiyonları etkiler olup olmadığını sınamak için, basınç-volüm döngü analizi konvansiyonel v...

Watch this Scientific Journal Video about Cardiac Pressure-Volume Loop Analysis Using Conductance Catheters in Mice at JoVE.com

Cardiac Pressure-Volume Loop Analysis Using Conductance Catheters in Mice

Cardiac pressure-volume loop analysis is the most comprehensive way to measure cardiac function in the intact heart. We describe a technique to perform and analyze cardiac pressure volume loops, using conductance catheters.

Farelerde İletkenlik Balon Kullanımı kalp Basınç Hacim Döngüsü Analizi

Cardiac pressure-volume loop analysis is the &#8220;gold-standard&#8221; in the assessment of load-dependent and load-independent measures of ventricular ...

cardiac-pressure-volume-loop-analysis-using-conductance-catheters

Research

JoVE Journal

Biology

19.4K Görüntüleme.  Duke University Medical Center. Cardiac pressure-volume loop analysis is the most comprehensive way to measure cardiac function in the intact heart. We describe a technique to perform and analyze cardiac pressure volume loops, using conductance catheters. 

Video: Cardiac Pressure-Volume Loop Analysis Using Conductance Catheters in Mice

Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these strategies is to examine their effects on heart function. There are several techniques to measure in vivo cardiac mechanics (e.g., echocardiography, pressure/volume relations, etc.). Compared to echocardiography, real-time left ventricular (LV) pressure/volume analysis via catheterization is more precise and insightful in assessing LV function. Additionally, LV pressure/volume analysis provides the ability to instantaneously record changes during manipulations of contractility (e.g., &#946;-adrenergic stimulation) and pathological insults (e.g., ischemia/reperfusion injury). In addition to the maximum (+dP/dt) and minimum (-dP/dt) rate of pressure change in the LV, an accurate assessment of LV function via several load-independent indexes (e.g., end systolic pressure volume relationship and preload recruitable stroke work) can be attained. Heart rate has a significant effect on LV contractility such that an increase in the heart rate is the primary mechanism to increase cardiac output (i.e., Bowditch effect). Thus, when comparing hemodynamics between experimental groups, it is necessary to have similar heart rates. Furthermore, a hallmark of many cardiomyopathy models is a decrease in contractile reserve (i.e., decreased Bowditch effect). Consequently, vital information can be obtained by determining the effects of increasing heart rate on contractility. Our and others data has demonstrated that the neuronal nitric oxide synthase (NOS1) knockout mouse has decreased contractility. Here we describe the procedure of measuring LV pressure/volume with increasing heart rates using the NOS1 knockout mouse model.

This article describes the measurement of murine left ventricular function via pressure/volume analysis at different heart rates.

Bowditch Efekt incelenmesi: Basınç Hacim İlişkisi Tedbir Fare Kardiyak Kateterizasyon

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these ...

Tıp

Patch Clamp and Perfusion Techniques for Studying Ion Channels Expressed in Xenopus oocytes

The protocol presented here is designed to study the activation of the large conductance, voltage- and Ca2+-activated K+ (BK) channels. The protocol may also be used to study the structure-function relationship for other ion channels and neurotransmitter receptors1. BK channels are widely expressed in different tissues and have been implicated in many physiological functions, including regulation of smooth muscle contraction, frequency tuning of inner hair cells and regulation of neurotransmitter release2-6. BK channels are activated by membrane depolarization and by intracellular Ca2+ and Mg2+ 6-9. Therefore, the protocol is designed to control both the membrane voltage and the intracellular solution. In this protocol, messenger RNA of BK channels is injected into Xenopus laevis oocytes (stage V-VI) followed by 2-5 days of incubation at 18&deg;C10-13. Membrane patches that contain single or multiple BK channels are excised with the inside-out configuration using patch clamp techniques10-13. The intracellular side of the patch is perfused with desired solutions during recording so that the channel activation under different conditions can be examined. To summarize, the mRNA of BK channels is injected into Xenopus laevis oocytes to express channel proteins on the oocyte membrane; patch clamp techniques are used to record currents flowing through the channels under controlled voltage and intracellular solutions.

Patch Clamp and Perfusion Techniques for Studying Ion Channels Expressed in Xenopus oocytes

Ionic current of BK channels is recorded using patch clamp techniques. BK channels are expressed in Xenopus oocytes by injecting messenger RNA. The intracellular solution during patch clamp recordings is controlled by a perfusion system.

İyon Kanalları incelenmesi için yama Kelepçe ve Perfüzyon Teknikleri cinsinden ifade edilir Xenopus Oosit

The protocol presented here is designed to study the activation of the large conductance, voltage- and Ca2+-activated K+ (BK) channels. The protocol may ...

Biyoloji

Hemodynamic Characterization of Rodent Models of Pulmonary Arterial Hypertension

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a rare disease of the pulmonary vasculature characterized by endothelial cell apoptosis, smooth muscle proliferation and obliteration of pulmonary arterioles. This in turn results in right ventricular (RV) failure, with significant morbidity and mortality. Rodent models of PAH, in the mouse and the rat, are important for understanding the pathophysiology underlying this rare disease. Notably, different models of PAH may be associated with different degrees of pulmonary hypertension, RV hypertrophy and RV failure. Therefore, a complete hemodynamic characterization of mice and rats with PAH is critical in determining the effects of drugs or genetic modifications on the disease. 
Here we demonstrate standard procedures for assessment of right ventricular function and hemodynamics in both rat and mouse PAH models. Echocardiography is useful in determining RV function in rats, although obtaining standard views of the right ventricle is challenging in the awake mouse. Access for right heart catheterization is obtained by the internal jugular vein in closed-chest mice and rats. Pressures can be measured using polyethylene tubing with a fluid pressure transducer or a miniature micromanometer pressure catheter. Pressure-volume loop analysis can be performed in the open chest. After obtaining hemodynamics, the rodent is euthanized. The heart can be dissected to separate the RV free wall from the left ventricle (LV) and septum, allowing an assessment of RV hypertrophy using the Fulton index (RV/(LV+S)). Then samples can be harvested from the heart, lungs and other tissues as needed.

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a disease of pulmonary arterioles that leads to their obliteration and the development of right ventricular failure. Rodent models of PAH are critical in understanding the pathophysiology of PAH. Here we demonstrate hemodynamic characterization, with right heart catheterization and echocardiography, in the mouse and rat.

Pulmoner Hipertansiyon Kemirgen Modeller Hemodinamik Karakterizasyonu

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a rare disease of the pulmonary vasculature characterized by endothelial cell apoptosis, smooth muscle ...

Bioengineering Human Microvascular Networks in Immunodeficient Mice

The future of tissue engineering and cell-based therapies for tissue regeneration will likely rely on our ability to generate functional vascular networks in vivo. In this regard, the search for experimental models to build blood vessel networks in vivo is of utmost importance 1. The feasibility of bioengineering microvascular networks in vivo was first shown using human tissue-derived mature endothelial cells (ECs) 2-4; however, such autologous endothelial cells present problems for wide clinical use, because they are difficult to obtain in sufficient quantities and require harvesting from existing vasculature. These limitations have instigated the search for other sources of ECs. The identification of endothelial colony-forming cells (ECFCs) in blood presented an opportunity to non-invasively obtain ECs 5-7. We and other authors have shown that adult and cord blood-derived ECFCs have the capacity to form functional vascular networks in vivo 7-11. Importantly, these studies have also shown that to obtain stable and durable vascular networks, ECFCs require co-implantation with perivascular cells. The assay we describe here illustrates this concept: we show how human cord blood-derived ECFCs can be combined with bone marrow-derived mesenchymal stem cells (MSCs) as a single cell suspension in a collagen/fibronectin/fibrinogen gel to form a functional human vascular network within 7 days after implantation into an immunodeficient mouse. The presence of human ECFC-lined lumens containing host erythrocytes can be seen throughout the implants indicating not only the formation (de novo) of a vascular network, but also the development of functional anastomoses with the host circulatory system. This murine model of bioengineered human vascular network is ideally suited for studies on the cellular and molecular mechanisms of human vascular network formation and for the development of strategies to vascularize engineered tissues.

Here, we describe a methodology to deliver human cord blood-derived endothelial colony-forming cells (ECFCs) and bone marrow-derived mesenchymal stem cells (MSCs), embedded in a collagen/fibronectin gel, subcutaneously into immunodeficient mice. This cell/gel combination generates a human vascular network that connects with the mouse vasculature.

Bağışık yetmezliği olan farelere Biyomühendislik İnsan Mikrovasküler Ağları

The future of tissue engineering and cell-based therapies for tissue regeneration will likely rely on our ability to generate functional vascular networks ...

Biventricular Assessment of Cardiac Function and Pressure-Volume Loops by Closed-Chest Catheterization in Mice

Assessment of cardiac function is essential to conduct cardiovascular and pulmonary-vascular preclinical research. Pressure-volume loops (PV loops) generated by recording both pressure and volume during cardiac catheterization are vital when assessing both systolic and diastolic cardiac function. Left and right heart function are closely related, reflected in ventricular interdependence. Thus, recording biventricular function in the same animal is important to get a complete assessment of cardiac function. In this protocol, a closed chest approach to cardiac catheterization consistent with the way catheterization is performed in patients is adopted in mice. While challenging, the closed chest strategy is a more physiological approach, because opening the chest results in major changes in preload and afterload that create artifacts, most notably a fall in systemic blood pressure. While high-resolution echocardiography is used to assess rodents, cardiac catheterization is invaluable, particularly when assessing diastolic pressures in both ventricles.
Described here is a procedure to perform invasive, closed chest, sequential left and right ventricular pressure-volume (PV) loops in the same animal. PV loops are acquired using&#160;admittance technology with a mouse pressure-volume catheter and pressure-volume system acquisition. The procedure is described, beginning with the neck dissection, which is required to access the right jugular vein and the right carotid artery, to the insertion and positioning of the catheter, and finally the data acquisition. Then, the criteria required to ensure the acquisition of high-quality PV loops are discussed. Finally, the analysis of the left and right ventricular PV loops and the different hemodynamic parameters available to quantify systolic and diastolic ventricular function are briefly described.

Presented here is a protocol to assess biventricular heart function in mice by generating pressure-volume (PV) loops from the right and left ventricle in the same animal using closed chest catheterization. The focus is on the technical aspect of surgery and data acquisition.

Farelerde Kapalı Göğüs Kateterizasyonu ile Kardiyak Fonksiyon ve Basınç-Hacim Döngülerinin Biventriküler Değerlendirmesi

Assessment of cardiac function is essential to conduct cardiovascular and pulmonary-vascular preclinical research. Pressure-volume loops (PV loops) ...

Cardiac Response to &#946;-Adrenergic Stimulation Determined by Pressure-Volume Loop Analysis

Determination of the cardiac function is a robust endpoint analysis in animal models of cardiovascular diseases in order to characterize effects of specific treatments on the heart. Due to the feasibility of genetic manipulations the mouse has become the most common mammalian animal model to study cardiac function and to search for new potential therapeutic targets. Here we describe a protocol to determine cardiac function&#160;in vivo using pressure-volume loop measurements and analysis during basal conditions and under &#946;-adrenergic stimulation by intravenous infusion of increasing concentrations of isoproterenol. We provide a refined protocol including ventilation support taking into account the positive end-expiratory pressure to ameliorate negative effects during open-chest measurements, and potent analgesia (Buprenorphine) to avoid uncontrollable myocardial stress evoked by pain during the procedure. All together the detailed description of the procedure and discussion about possible pitfalls enables highly standardized and reproducible pressure-volume loop analysis, reducing the exclusion of animals from the experimental cohort by preventing possible methodological bias.

Here we describe a cardiac pressure-volume loop analysis under increasing doses of intravenously infused isoproterenol to determine the intrinsic cardiac function and the &#946;-adrenergic reserve in mice. We use a modified open-chest approach for the pressure-volume loop measurements, in which we include ventilation with positive end-expiratory pressure.

Basınç-Hacim Döngüsü Analizi ile Belirlenen β-Adrenerjik Stimülasyona Kardiyak Yanıt

Determination of the cardiac function is a robust endpoint analysis in animal models of cardiovascular diseases in order to characterize effects of ...

Closed Chest Biventricular Pressure-Volume Loop Recordings with Admittance Catheters in a Porcine Model

Pressure-volume (PV) loop recording enables the state-of-the-art investigation of load-independent variables of ventricular performance. Uni-ventricular evaluation is often performed in preclinical research. However, the right and left ventricles exert functional interdependence due to their parallel and serial connections, encouraging simultaneous evaluation of both ventricles. Furthermore, various pharmacological interventions may affect the ventricles and their preloads and afterloads differently. 
We describe our closed chest approach to admittance-based bi-ventricular PV loop recordings in a porcine model of acute right ventricular (RV) overload. We utilize minimally invasive techniques with all vascular accesses guided by ultrasound. PV catheters are positioned, under fluoroscopic guidance, to avoid thoracotomy in animals, as the closed chest approach maintains the relevant cardiopulmonary physiology. The admittance technology provides real-time PV loop recordings without the need for post-hoc processing. Furthermore, we explain some essential troubleshooting steps during critical timepoints of the presented procedure. 
The presented protocol is a reproducible and physiologically relevant approach to obtain a bi-ventricular cardiac PV loop recording in a large animal model. This can be applied to a large variety of cardiovascular animal research.

Here we present a closed chest approach to admittance-based bi-ventricular pressure-volume loop recordings in pigs with acute right ventricular dysfunction.

Domuz Modelinde Kabul Kateterleri ile Kapalı Göğüs Biventriküler Basınç-Hacim Döngüsü Kayıtları

Pressure-volume (PV) loop recording enables the state-of-the-art investigation of load-independent variables of ventricular performance. Uni-ventricular ...

Measuring Pressure Volume Loops in the Mouse

Understanding the causes and progression of heart disease presents a significant challenge to the biomedical community. The genetic flexibility of the mouse provides great potential to explore cardiac function at the molecular level. The mouse&#39;s small size does present some challenges in regards to performing detailed cardiac phenotyping. Miniaturization and other advancements in technology have made many methods of cardiac assessment possible in the mouse. Of these, the simultaneous collection of pressure and volume data provides a detailed picture of cardiac function that is not available through any other modality. Here a detailed procedure for the collection of pressure-volume loop data is described. Included is a discussion of the principles underlying the measurements and the potential sources of error. Anesthetic management and surgical approaches are discussed in great detail as they are both critical to obtaining high quality hemodynamic measurements. The principles of hemodynamic protocol development and relevant aspects of data analysis are also addressed.

This manuscript describes a detailed protocol for the collection of pressure-volume data from the mouse.

Fare Basınç Hacim Döngüler Ölçme

Understanding the causes and progression of heart disease presents a significant challenge to the biomedical community. The genetic flexibility of the ...

Basınç-Hacim İletkenlik Tekniği Kullanılarak Sıçanların Kardiyak Fonksiyonunun İzlenmesi

Real-Time Detection of Ferulic Acid Effects on Rat Left Ventricle Using Pressure-Volume Conductivity Catheter

Decreased cardiac function can have a negative impact on other organs. The left ventricular pressure-volume relationship is considered to be a valid method for evaluating cardiac function. Real-time monitoring of cardiac function is important for drug evaluation. Under closed-chest conditions, the miniature transducer, which is an important component of the pressure-volume catheter, enters the left ventricle of the rat through the right carotid artery. The device visualizes the changes in cardiac function during the experiment in the form of a pressure-volume loop. The actual volume of the ventricle is calculated by altering the conductivity of the blood by injecting 50 &#181;L of a 20% sodium chloride solution into the rat's left jugular vein. The actual volume of the rat's ventricular cavity is calculated by measuring the conductivity of the blood in a known volume using a pressure-volume conductance catheter. This protocol allows for continuous observation of the effects of drugs on the heart and will promote the rationale for the use of specialty ethnic drugs in cardiovascular disease.

Yazar Spotlight: Kardiyovasküler Araştırmalarda Basınç-Hacim Döngüsü Ölçüm Yönteminin Avantajları

This protocol describes a method for measuring left ventricular pressure and volume using the pressure-volume conductance technique. This method enables continuous real-time monitoring of the effects of drugs on the heart.

Basınç-Hacim İletkenlik Kateteri Kullanılarak Sıçan Sol Ventrikül Üzerindeki Ferulik Asit Etkilerinin Gerçek Zamanlı Tespiti

Decreased cardiac function can have a negative impact on other organs. The left ventricular pressure-volume relationship is considered to be a valid ...

Farelerde İletkenlik Balon Kullanımı kalp Basınç Hacim Döngüsü Analizi

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Bowditch Efekt incelenmesi: Basınç Hacim İlişkisi Tedbir Fare Kardiyak Kateterizasyon

İyon Kanalları incelenmesi için yama Kelepçe ve Perfüzyon Teknikleri cinsinden ifade edilir Xenopus Oosit

Pulmoner Hipertansiyon Kemirgen Modeller Hemodinamik Karakterizasyonu

Bağışık yetmezliği olan farelere Biyomühendislik İnsan Mikrovasküler Ağları

Farelerde Kapalı Göğüs Kateterizasyonu ile Kardiyak Fonksiyon ve Basınç-Hacim Döngülerinin Biventriküler Değerlendirmesi

Basınç-Hacim Döngüsü Analizi ile Belirlenen β-Adrenerjik Stimülasyona Kardiyak Yanıt

Domuz Modelinde Kabul Kateterleri ile Kapalı Göğüs Biventriküler Basınç-Hacim Döngüsü Kayıtları

Fare Basınç Hacim Döngüler Ölçme

Basınç-Hacim İletkenlik Kateteri Kullanılarak Sıçan Sol Ventrikül Üzerindeki Ferulik Asit Etkilerinin Gerçek Zamanlı Tespiti

Basınç-Hacim İletkenlik Kateteri Kullanılarak Sıçan Sol Ventrikül Üzerindeki Ferulik Asit Etkilerinin Gerçek Zamanlı Tespiti