Yazarlar (WT HL097246 ve HL119371) AHA (WT 13GRNT16990019) ve NHLBI dahil finansman kaynakları, kabul etmek istiyoruz.

1. Silanizasyon ve Slide biyomoleküler Functionalization veya Polikarbonat Membran Not: Bu protokol kapsamında kimyasalların ve çözümleri çoğu yüksek buharlaşma oranları (etanol (EtOH), aseton, vb) var. Diğer adımlar düşük buharlaşma oranları için uzun inkübasyon süreleri gerektirir. Parafin Film kapları mühür önerilir. Dikkat: (içerir: sülfürik asit, aseton, (3-aminopropil) trietoksisilan, glutaraldehid, EtOH) bulunan kimyasalların bir çoğu tehlikeli ya da uçucu kabul edilir. Kullanmadan önce uygun depolama, taşıma ve bertaraf için her malzemenin malzeme güvenlik bilgi formu (MSDS) başvurun. <ol><li> Tam daldırma sağlanması yönüne bakılmaksızın temiz, cam slayt boyama çanak 1 mm 50 mm 75 mm ölçülerindeki yeni cam slayt, yerleştirin. Adımlarla 1,1-1,12 için kap kullanın. Not: Tüm takip eden ste için, 50 mm 75 mm boyutlarında kesilir 0,4 mikron gözenek boyutu ile ko-kültür için polikarbonat dahil (PC) zarPC işlevsellik ve AK tohumlama için PS. </li><li> Sülfürik asit (% 20), O / N slayt bırakın. Dikkat: Kullanmadan önce sülfürik asit için MSDS danışın. </li><li> , 5 dakikada, üç kez iyonu giderilmiş su içinde (DI) daldırma her DI değiştirerek slayt yıkayın. </li><li> 30 dakika boyunca aseton içinde slayt bırakın. Dikkat: Kullanmadan önce aseton MSDS&#39;ye danışın. </li><li> % 6 (3-aminopropil) trietoksisilan / aseton çözeltisi O / N slayt bırakın. Dikkat: Kullanmadan önce (3-aminopropil) trietoksisilan ve aseton için MSDS danışın. </li><li> Aseton her zaman değişen, 5 dakika, üç kez aseton slayt daldırın. Dikkat: Kullanmadan önce aseton MSDS&#39;ye danışın. </li><li> 5 dakika, üç kez DI daldırma her zaman DI değiştirerek slayt yıkayın. </li><li> 60 dakika boyunca% 1.5 glutaraldehid / DI çözeltide slayt daldırın. Dikkat: Kullanmadan önce glutaraldehit için MSDS danışın. </li><li> 5 dakika, iki kez DI daldırma her zaman DI değiştirerek slayt yıkayın. </li><li> Yer slaytSteril, laminar akış başlığı içinde 30 dakika boyunca% 70 etanol (EtOH) içinde s. </li><li> EtOH çıkarın ve buharlaştırılması için bir tortu geri kalan izin verir. Slaytlar rehydrate amacıyla steril DI ve drenaj slaytlar bırakın. Not: Slaytlar veya PC zar bir haftaya kadar 4 ° C&#39;de cam slayt tutucu mühürlü ve saklanabilir. Hücre kültürü için kullanılması üzerine, tekrar 1.10 ve 1.11 adımları. </li><li> Slayt tutucudan slayt çıkarın ve laminer akış kaputu 100 mm kare petri tarafından 100 mm içine yerleştirin. Not: Bu kap, kalan tüm adımlar için kullanılacaktır. <ol><li> Monokültür deney için endotel hücre tohumlama için slayt veya PC hazırlayın. <ol><li> Coat fonksiyonalize kayar ya da PC, bir tarafta 1 mi fibronektin çözeltisi (25 ug / ml) ile (aşama 1,11), hücre kültür odası maruz yaklaşık alanı kapsayan. </li><li> 1-2 saat boyunca 37 ° C&#39;ye ayarlanmış, steril inkübatör slaytlar veya PC inkübe edin. </li><li> İnkübasyondan sonra, GLA kullanarak kalan çözelti aspireBir vakum bağlı ss aspiratör pipet. Not: Slaytlar hemen ileride kullanılmak üzere 4 ° C sıcaklıkta O / N depolanabilir. </li></ol></li><li> Sadece EC / SMC ko-kültür hazırlanması için 1.12.2 adımları izleyin. Hazırlama ve ortak kültürlenme deney için yumuşak kas hücresi (SMC) kültür tohum. <ol><li> Akış odası, vakum ile uyum 50 mm dış çaplı, 30 mm, 50 mm iç çapı, 0.5 mm kalınlığında 75 mm boyutlarında, ve delikleri olan sürgünün (aşama 1,11) üstünde yer silikon conta. </li><li> % 10 FBS / DMEM süspansiyon içinde 1 mi SMC hazırlayın. 7,% NaHCO 3 ve 7.4 arasında pH 0.1 M NaOH çözeltisi ile 2 mg / ml kolajen tip-I 1 ml solüsyon nötralize ve 2 x 10 6 hücre / ml nihai hücre yoğunluğu ile SMC süspansiyonu ile karıştırılır. </li><li> Conta içindeki SMC çözeltisi yayılır ve 30 dakika boyunca CO2 37 ° C&#39;de inkübe slaytlar ve% 5. </li><li> Kuluçkadan sonra, Modifiye Dulbecco karıştırılır, 25 ml% 0.1 fetal sığır serumu (FBS) ile birlikte slayt kapağı72 saat süre ile Eagle Ortamı (DMEM). </li></ol></li></ol></li><li> Cam slayt / polikarbonat membran üzerine Kültür endotel hücreleri (EC). <ol><li> Tohum cam slayt veya polikarbonat membran fibronektin yüzeylerinde 6,0 x 10 5 hücre / ml başlangıç ​​konsantrasyonunda,% 10 FBS / DMEM içerisinde 1 ml EC. </li><li> 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 &#39;de bir kuluçka hücreleri inkübe ve% 10 FBS 120 dakika karıştırıldı. </li><li> 37 ° C kuluçka makinesi içinde ilave% 10 FBS / DMEM ile hücreleri ve yer ihtiva eden kapak slaytlar, 5% CO2 O / N, 70% -80% konfluent kadar. </li></ol></li></ol> Sıvı Viskozite ve hacimsel Akış Oranının Belirlenmesi 2. Not: Döner viskometreler hassas ekipmanlar ve viskozimetre kullanım kılavuzu, kalibre sıfırlama ya da ölçümler gerçekleştirmeden önce danışılmalıdır. <ol><li> Denemenin hedeflenen damar literatürde istenen sıvı kesme (τ) belirleyin. </li><li> KuvBir döner viskometre kullanılarak e,% 1 FBS / (μ) DMEM viskozitesi. </li><li> Poiseuille denklemi gerekli hacimsel akış hızı (Q) belirleyin: <img alt="Denklem 1" src="/files/ftp_upload/53224/53224eq1.jpg" /> , burada τ = sıvı kayma, μ = viskozite, Q = vol. akış hızı, w = bölme genişliği ve h = odası yükseklik). </li><li> Set pompa adımında 2.3 türetilmiş akış hızı ve sonraki tüm adımlar için kullanın. </li></ol> Pulsatilite İndeksi 3. Belirlenmesi Not: Sistemin içindeki tüm bağlantı portları uygun büyüklükte kilit halkası to-barb veya dişi luer-to-barb bağlantıları ile bağlanmış olması gerekir. Bağlama PVC boru daha sonra diken parçaları bağlanabilir ve devre tamamladı. <ol><li> Doğru akış yönünde bölme (Şekil 3) ve ultrasonik akış ölçer süspansiyon, Şekil 2&#39;de olduğu gibi akım devresine bağlayın. Ultrasonik debimetre ekipman hassas bir parçasıdır ve Not:Kullanım kılavuzu Kullanmadan önce danışılmalıdır. </li><li> Rezervuar hacmi içinde batık (pompa) rezervuar çıkış borusunu sağlayarak, DI su akış devresi ve haznesini doldurun. Bir akış ölçer kullanılarak akış dalga formu gözünüzde canlandırın. </li><li> Sönümleme odasının açık hava tahliye valfi sıvı / hava hacmi oranını değiştirmek için. Kapat farklı sıvı seviyesi aralıklarında hava tahliye vanası ve hesaplamak pulsatilite indeksi (PI = (V Max - V Min) / V Ortalama) akış dalga tepe (V Max), çukur (V Min) kullanarak ve ortalama (V Ortalama). Notebook Tutanak PI değerleri. </li><li> Mark ileride kullanmak üzere uçlu keçeyi, kalıcı mürekkep kalem kullanarak, sönümleme odasının sıvı seviyesini ve PI sonuçlanır. Patoloji literatüründe 11 istenen PI düzeylerinin belirlenmesi. </li><li> Silikon Tüp Formation- İsteğe bağlı, kontrol pulsatilitesini daha gelişmiş bir yöntem <ol><li> Örneğin (a bas değişik oranlarda silikon elastomer tabanı ve kür ajanı karıştırın1 ila 36&#39;dan: 10: e-to-çapraz bağlayıcı oranı. 1) değişik hedef elastik modülünün için, daha önce açıklandığı gibi 2 </li><li> Kısa bir süre önceden tespit edilmiş bir baz ile çapraz bağlayıcı oranına sahip silikon ön-polimer karışımı içine çelikten bir kanül (14 g), daldırma, tekrar daldırma tedavisi işlemi ile silikon tüp imal. </li><li> Sertleştirme işlemi ortasında yön değiştirme, kanül polimer kaplamayı sertleştirmek üzere 4 saat boyunca 60 ° C&#39;ye ayarlanmış bir fırın içine ön-polimer ile kaplanmış bir kanül yerleştirin. </li><li> Aynı silikon elastomer karışımı ile daldırma işlemi tekrarlayın ve 0.3 ~ in mm kalınlığında borular sonuçları ek 4 saat, geri fırında koyun. </li><li> Paslanmaz çelik kanül gelen ultra ince silikon tüp çıkarın. </li><li> 3.3 Her yerine odasına sönümleme devresi ve test PI akış tüpleri bağlayın. </li></ol></li></ol> 4. Pompa Sterilizasyon <ol><li> 1 akış bölmesini (Şekil 2), PVC boru ve contalar daldırın0% hidrojen peroksit (H2O 2). 4. adımda önce steril DI ile yıkayın. </li><li> Yedek inkübatör rafta kan pompasını yerleştirin. Not: Kuluçka raflar paslanmaz çelik olmalı ve tüm akım devresi ağırlığını taşıyabilecek gerekir. </li><li> Rezervuar hacmi içinde batık rezervuar çıkış borusu (pompa) sağlayarak% 10 H 2 O 2 ile akış devresi ve haznesini doldurun. UV ışığı ile laminer akış başlığı içinde 20 dakika boyunca devre üzerinden pompalanarak O 2 H 2 sirküle. </li><li> Aspire Tüm H2O borudan 2 ve akım devresi üzerinden pompalanarak steril PBS ile yıkayın. </li></ol> 5. Akış Odası Meclisi Not: Akış odacıklı vakum portu ve giriş ve çıkış akış bağlantı noktası (Şekil 2 ye bakınız) ile birlikte, bir akrilik, özel yapılmış levha oluşur. Chamber montaj kültür slaytlar üstüne akış odası ve contaları yerleştirme oluşur proPerly, hizalı ve aşağıda tarif edilmiştir. <ol><li> 37 ° C su banyosunda% 1 FBS / DMEM Isınma ve akış odası hazırlayın. <ol><li> Hücre tarafı yukarı üstünde ve yer conta (adım 1.13) medya üzerinden AK slayt atın. </li><li> (İsteğe bağlı) medya üzerinden PC zarı atın hücre tarafı yukarı üstünde ve yer conta (adım 1.13). PC zarının altında seribaşı SMC (adım 1.12.2) ile birlikte kültür slayt yerleştirin. </li></ol></li><li> Conta deliklerden (Şekil 2) ile akış odasının vakum kanalını hizalayın. </li><li> Vakum hiçbir ortam sızıntı sağlanması vakum portu (Şekil 2) Vakum tüp takın. </li><li> Bahar kelepçeler, akış odasının her tarafında (Şekil 2 ve 5) üzerinde biriyle cam slayt ve kelepçe akış odası tertibatının altındaki yerleştirin polikarbonat levha. </li><li> Talep akışı 37 ° C&#39;de inkübatör içinde sistemi ve% 5 CO2 ve düşük pulsatilitesini doldurulur hazneden pompalayarak ortam ile devre doldurun.Hücrelerin önceden hazırlamak için 4 saat boyunca bu akış koruyun. </li><li> İstediğiniz zaman sıvı belirgin PI seviyesine odasına sönümleme hacim ve kültür ayarlayın. </li></ol>

<ol>
	<li>Scott-Drechsel, D., Su, Z., Hunter, K., Li, M., Shandas, R., Tan, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+flow+co-culture+system+for+studying+mechanobiology+effects+of+pulse+flow+waves.">A new flow co-culture system for studying mechanobiology effects of pulse flow waves.</a> Cytotechnology. 64 (6), 649-666 (2012).</li><li>Tan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stiffening-Induced+High+Pulsatility+Flow+Activates+Endothelial+Inflammation+via+a+TLR2/NF-&#954;B+Pathway.">Stiffening-Induced High Pulsatility Flow Activates Endothelial Inflammation via a TLR2/NF-&#954;B Pathway.</a> PLoS ONE. 9 (7), e102195 (2014).</li><li>Wexler, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coronary+Artery+Calcification:+Pathophysiology,+Epidemiology,+Imaging+Methods,+and+Clinical+Implications+A+Statement+for+Health+Professionals+From+the+American+Heart+Association.">Coronary Artery Calcification: Pathophysiology, Epidemiology, Imaging Methods, and Clinical Implications A Statement for Health Professionals From the American Heart Association.</a> Circulation. 94 (5), 1175-1192 (1996).</li><li>Lan, T. -. H., Huang, X. -. Q., Tan, H. -. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascular+fibrosis+in+atherosclerosis.">Vascular fibrosis in atherosclerosis.</a> Cardiovasc Pathol. 22 (5), 401-407 (2013).</li><li>Lee, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Promoting+endothelial+recovery+and+reducing+neointimal+hyperplasia+using+sequential-like+release+of+acetylsalicylic+acid+and+paclitaxel-loaded+biodegradable+stents.">Promoting endothelial recovery and reducing neointimal hyperplasia using sequential-like release of acetylsalicylic acid and paclitaxel-loaded biodegradable stents.</a> Int J Nanomedicine. 9, 4117-4133 (2014).</li><li>Intengan, H. D., Schiffrin, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascular+Remodeling+in+Hypertension+Roles+of+Apoptosis+Inflammation,+and+Fibrosis.">Vascular Remodeling in Hypertension Roles of Apoptosis Inflammation, and Fibrosis.</a> Hypertension. 38 (3), 581-587 (2001).</li><li>Greil, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+carotid+artery+flow+velocities+after+stent+implantation:+a+fluid+dynamics+study+with+laser+Doppler+anemometry.">Changes in carotid artery flow velocities after stent implantation: a fluid dynamics study with laser Doppler anemometry.</a> J Endovasc Ther. 10 (2), 275-284 (2003).</li><li>Egorova, A. D., van der Heiden, K., Poelmann, R. E., Hierck, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primary+cilia+as+biomechanical+sensors+in+regulating+endothelial+function.">Primary cilia as biomechanical sensors in regulating endothelial function.</a> Differentiation. 83 (2), S56-S61 (2012).</li><li>Liu, S. Q., Goldman, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+blood+shear+stress+in+the+regulation+of+vascular+smooth+muscle+cell+migration.">Role of blood shear stress in the regulation of vascular smooth muscle cell migration.</a> IEEE T Bio-Med Eng. 48 (4), 474-483 (2001).</li><li>Scott, D., Tan, Y., Shandas, R., Stenmark, K. R., Tan, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+pulsatility+flow+stimulates+smooth+muscle+cell+hypertrophy+and+contractile+protein+expression.">High pulsatility flow stimulates smooth muscle cell hypertrophy and contractile protein expression.</a> AJP: Lung C. 304 (1), L70-L81 (2013).</li><li>Panaritis, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pulsatility+Index+of+Temporal+and+Renal+Arteries+as+an+Early+Finding+of+Arteriopathy+in+Diabetic+Patients..">Pulsatility Index of Temporal and Renal Arteries as an Early Finding of Arteriopathy in Diabetic Patients..</a> Ann Vasc Surg. 19 (1), 80-83 (2005).</li><li>Miao, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+Flow+Patterns+on+the+Localization+and+Expression+of+VE-Cadherin+at+Vascular+Endothelial+Cell+Junctions:+In+vivo+and+in+vitro+Investigations.">Effects of Flow Patterns on the Localization and Expression of VE-Cadherin at Vascular Endothelial Cell Junctions: In vivo and in vitro Investigations.</a> J Vasc Res. 42 (1), 77-89 (2005).</li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Bu protokol, in vitro pulsatil akışını taklit için bir yöntem tarif etmektedir ve hastalık patolojilerinde akış koşullarının etkilerini belirlenmesinde etkili ilk adım olabilir. Bu protokolü kullanarak önceki çalışmalar, bu protokol deneyimli laboratuarlar için tasarlanmıştır, akış koşullarının Ayrıca vasküler inflamatuar yanıt. 1, 10 katkıda bulunmuştur. Bunun gibi, ne de derinliği akışkanlar mekaniği, ne de biyokimyasal analizi tarif edilmektedir. Daha g...

Kardiyovasküler hastalıklar için morbidite oranları birçok sağlıksız damar sonuçlanan, Amerika&#39;daki en büyük bulunmaktadır. Sağlıklı arterler bir endotel hücre (AK) tek tabaka ile kaplanmış yumuşak lümen yüzeyi ile, elastik doku oluşur. Arter akışı pozitif ortalama debi ile salınan bir dalga fonksiyonu olarak modellenmiştir olabilir. Pulsatilite indeksi (PI) salınım büyüklüğü bölüm ve ortalama debi (.. PI = (Max - Min) / Ortalama) ise, 1 ve değişken damar elastikiyeti ile in vitro modellenmiştir 2 Arter elastikiyet akışının depolanması önemlidir. Kalp kasılmaları enerji, sistolik basınç altında dilate ve kan akımı PI modüle önemli bir rol oynamaktadır. Kalp tutarlı olarak, belirli aralıklarla, hacimsel akışı muhafaza için, arteryel genleşme akım hızı, kesme stresi ve PI azaltarak akış stabilitesinin arttırılması, enine kesit alanını arttırmaktadır. Elastikiyet Sıklıkla sağlıksız arterler mevcut değişikliklerya da uyum vasküler yeniden, skar dokusu veya kireçlenme 3, 4 sertleşme görüntüleniyor. Ek olarak, neointimal hiperplazi (NIH), 5 anevrizma ve hipertansiyon 6 ve vasküler fibrozların 4 gibi diğer damar hastalıkları, damar çapı daraltır olabilir. Ancak, mevcut ilaç tedavisi ve damar hastalıkları cihaz tedavisi genellikle sık sık damar morfolojisi ve özelliklerinde değişiklikler karmaşık bir damar hastalığında damar duvarı uyum veya kan akış dinamikleri önemini ihmal. Ne balon anjiyoplasti stent ne duvar elastisite 7 komplikasyon cevap. Bu nedenle, kan in vitro model arter hastalığı ve işlemlerin sonucu olan akımlarının hastalığı patolojileri ve tedavisinde gelecek etkisini araştıran önemlidir. Burada, damar hastalığı Pathol hücre yanıtını belirlemek için tasarlanmıştır fizyolojik ve patolojik kan akışını kopyalayan bir yöntem tariftakımının kontrolü. Sıvı akışı damar tüm hücreleri etkileyen damar sağlığında önemli bir mekanik sinyal olan damar duvarının kayma strese neden olur. Sıvı kesme için vasküler endotel üzerinde çeşitli mekanik algılayıcılar endotel 8 mechanosensing için son çalışmalarda gösterilmiştir birincil cilium dahil, tespit edilmiştir. Endotel hücre aktivitesi ve morfolojisi akış hızı, yönü ve pulsatilitesini etkilenir. Ek olarak, yumuşak kas hücresi (SMC) göçü interstisyel sıvı ile 9 arasındaki düşük hızlı akış mekano-sinyaller etkilenebilir ve akış ve sitokin ile akış sinyallerinin mekano-transdüksiyon için kendi yanıt verme yoluyla endotel hücrelerinden parakrin sinyali yoluyla olabilir 10 yayınlayacak. Ortalama kesme, PI ve parakrin sinyal iletiminin &quot;dozu&quot; bağımlılık da birbirine olabilir. Tek tabakalı kültürü bu amaçla, çeşitli &quot;doz&quot; ile sıvı kesmeye vasküler hücre yanıtının belirlenmesi içinya da in vitro ko-kültür vasküler yeniden içine mekanistik anlayış sağlamak ve hastalık ve tedavi tahmini artırabilirsiniz. Bu deneyde kullanılan akış sistemi, bir kan pompası, bir yukarı akış sönümleme hava haznesi sadece deney düzeneği, bir alt hücre kültürü, paralel plaka akış odası ve ortam haznesi sırasında kullanılan bir alt-akış ölçer oluşur. Akış hızı anlamına gibi damar akım değişkenlerin kontrol dakikadaki vuruş ve PI kontrol akış hızı, darbe frekans ve basıncının esas olarak söndürme yoluyla elde edilebilir. Pulsatif kan pompalar hacimsel akış hızı ve nabız frekansı ortalama doğrudan ilgili, kontrollü inme frekansında, değişken strok deplasman mevcuttur. Akım devresi içinde bir hava rezervuarının giriş akışı salınım büyüklüğünü azaltarak, basınç sönümleme sağlar. Sönümleme odasının içindeki hava olması akış dalga aşırı basınç sağlayan, sıkıştırılabilir ise medya, sıkışmaz bir sıvıdırHava sıkıştırma tarafından emilir. Medya oranı hava çok damping nasıl oluştuğu üzerinde kontrol sağlar. Genişliğinde 50 mm uzunluğunda 75 mm Özel bir hücre kültürü akış odası akrilik oluşturuldu. Akış giriş deliğinden girer, ve akış odasının tamamen tutarlı akış sağlayan, giriş manifoldu boyunca genişler. Benzer akışı ve yapılar odası çıkışında bulunmaktadır. Hücreler, işlevselleştirilmiş slaytlar üzerine ekilmiş ve daha sonra akış odasına bağlıdır. Bu kolayca çalışma sonrasında alınan büyük nüfus için izin verir. Ortak kültür deneyleri sitokin / akım taşıma izin verirken kültürleri arasında, hücre-hücre teması ortadan kaldırmak için, gözenekli bir polikarbonat membran kullanılabilir. Bu sistem daha önce yüksek PI akışı ve endotel tek tabaka kültürü ve EC / SMC ko-kültür 1, 10 üzerindeki etkisini modellemek için hücre yanıtı için patolojik yüksek PI hastalığı araştırmak için kullanılır olmuştur. Bu akış con modellemek için kullanılan protokol anlataraketkiler cihazın, biz yanıtı hücre akım sinyali katkısını belirlemek başkalarına yardım etmek istiyoruz.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Acetone</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>34850</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sulfuric Acid</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>320501</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>(3-Aminopropyl)trethoxysilane</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>440140</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde Solution</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G5882</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>459844</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Slide (70mm x 50mm)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>CLS294775X50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polycarbonate Membrane</td>
			<td>Millipore Corp.</td>
			<td>HTTP09030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicone Gasket</td>
			<td>Grace Bio-Labs</td>
			<td>RD 475464</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fibronectin (25 &#956;g/mL)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F1141</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagen Type-I</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C3867</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaHCO3</td>
			<td>Fluka</td>
			<td>36486</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaOH</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S5881</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Damping Chamber</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>This chamber is custom made, and may be requested using the engineering drawing of Figure 3.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blood Pump</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td>529552</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Poly-Vinyl Carbonate Tubing</td>
			<td>US Plastic</td>
			<td>65066, 65063, 65062</td>
			<td>Various sizes may be required</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer Connections</td>
			<td>Nordson Medical</td>
			<td>Various</td>
			<td>Various sizes will be required, and a number of parts should be purchased for replacement use.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Culture Chamber</td>
			<td>Machined in-house</td>
			<td>Custom</td>
			<td>Acrylic may be purchased in sheets and machined for intended use. The engineering drawing shown in Figure 2 may be used to recreate this chamber</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Square Petri Dish</td>
			<td>Cole-Parmer</td>
			<td>EW-14007-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Slide Holder</td>
			<td>Capitol Scientific</td>
			<td>WHE-900303</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum</td>
			<td>Mediatech, Inc.</td>
			<td>35-010-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#39;s Modified Eagle Medium</td>
			<td>Mediatech, Inc.</td>
			<td>10-013-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flow Meter</td>
			<td>Sonotec, GmbH</td>
			<td>Sonoflow co.55/060</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sylgard Elastomer Kit</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>761036-5EA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>14 G Steel Cannula</td>
			<td>General Laboratory Supply</td>
			<td>S8365-1</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vitro model of physiological and pathological blood flow with application to investigations of vascular cell remodeling

Vasküler hastalık Amerika Birleşik Devletleri içinde ölüm yaygın bir nedenidir. Bu yazıda, damar hastalığı patolojileri doğru akış dinamikleri katkısını incelemek için bir yöntem mevcut. Duvar sertleşme, yara izi veya tüm sıvı akış oranlarını etkileyebilir kısmi stenoz ve pulsatil akım büyüklüğü, ya da pulsatilite indeksi ile sıklıkla Sağlıksız arterler. Çeşitli akış koşullarının çoğaltma kan pompasının alt bölmeyi sönümleme akış basıncını ayarlama sonucudur. Sıkıştırılabilir ortamı pompasından pulsatil basıncı emmek ve bu nedenle pulsatilite indeksi değişir için kapalı bir akış sistemi içinde hava giriş sağlar. Burada açıklanan yöntemi sadece çok kontrollü giriş ve kolayca ölçülebilir sonuçlar, yeniden üretilir. Bazı sınırlamalar ancak sistem tarafından yaklaşılır karmaşık fizyolojik nabız dalga, rekreasyon vardır. Endotel hücreleri, düz kas hücreleri, fibroblastlar, kan akışı ve thr etkilenirarteri ough. Kan akımının dinamik bileşen kalp debisi ve arter duvarı uyumu ile belirlenir. Akış dinamikleri vasküler hücre mekano-transdüksiyon sitokin salınmasını ve arter içinde hücre tipleri arasında çapraz-tetikleyebilir. Vasküler hücrelerde ko-kültür damar duvarında ve mekanik sinyal vasküler tepkisi üzerinde daha doğru bir resim yansıtan hücre-hücre etkileşim. Akışın dinamik ve ortalama (ya da sabit) bileşenlerine hücre tepkisinin de dahil olmak üzere akış dinamikleri, katkısı, bu nedenle hastalığın patoloji ve tedavi etkinliğini belirleyen önemli bir ölçümdür. Bir in vitro ko-kültür yerine getirilmiştir ve basınç simüle kardiyak çıktı üretir kan pompası alt süspansiyon ile, çeşitli patolojiler arter hastalığı araştırılabilir.

Akış koşullarında Bakım akım devresi (Şekil 1) doğru montaj güvenmek durumundadır. Çapı Boru önce ve kültür odası sonra akış direncini ve sonraki basınç düşüşünü azaltarak büyük çaplarda mecliste önemli bir seçim vardır. Amaçlanan basınç ve akış hızı sağlamak için, amaçlanan boru ile deney öncesi akış ölçer ile sisteme monte edin. Silikon conta (resim mevcut değil) üzerinde delikli kültür odacıklı vakum kanalı (Şekil 2), hizalama, a...

Watch this Scientific Journal Video about In Vitro Model of Physiological and Pathological Blood Flow with Application to Investigations of Vascular Cell Remodeling at JoVE.com

In Vitro Model of Physiological and Pathological Blood Flow with Application to Investigations of Vascular Cell Remodeling

Bu protokol, hastalık patolojilerinde hücre yanıtını belirlenmesinde yardımcı olmak için, in vitro olarak fizyolojik veya patolojik kan akışını çoğaltır. Kan pompası alt bölmeyi sönümleme bir basınç katılmasıyla, damar boyunca kan akımı değinmeyecek edilebilir ve vasküler endotelyum, ya da taklit eden ko-kültür, bir tek tabaka üzerine koydu.

Vasküler Hücre Remodeling Soruşturma Fizyolojik in vitro Modeli ve Uygulaması ile Patolojik Kan Akış

Vascular disease is a common cause of death within the United States. Herein, we present a method to examine the contribution of flow dynamics towards ...

in-vitro-model-physiological-pathological-blood-flow-with-application

Research

JoVE Journal

Bioengineering

In Vitro Model of Physiological and Pathological Blood Flow with Application to Investigations of Vascular Cell Remodeling

9.5K Görüntüleme.  University of Colorado at Boulder.  Bu protokol, hastalık patolojilerinde hücre yanıtını belirlenmesinde yardımcı olmak için, in vitro olarak fizyolojik veya patolojik kan akışını çoğaltır. Kan pompası alt bölmeyi sönümleme bir basınç katılmasıyla, damar boyunca kan akımı değinmeyecek edilebilir ve vasküler endotelyum, ya da taklit eden ko-kültür, bir tek tabaka üzerine koydu. 

Video: In Vitro Model of Physiological and Pathological Blood Flow with Application to Investigations of Vascular Cell Remodeling

Improved Method for the Preparation of a Human Cell-based, Contact Model of the Blood-Brain Barrier

The blood-brain barrier (BBB) comprises impermeable but adaptable brain capillaries which tightly control the brain environment. Failure of the BBB has been implied in the etiology of many brain pathologies, creating a need for development of human in vitro BBB models to assist in clinically-relevant research. Among the numerous BBB models thus far described, a static (without flow), contact BBB model, where astrocytes and brain endothelial cells (BECs) are cocultured on the opposite sides of a porous membrane, emerged as a simplified yet authentic system to simulate the BBB with high throughput screening capacity. Nevertheless the generation of such model presents few technical challenges. Here, we describe a protocol for preparation of a contact human BBB model utilizing a novel combination of primary human BECs and immortalized human astrocytes. Specifically, we detail an innovative method for cell-seeding on inverted inserts as well as specify insert staining techniques and exemplify how we use our model for BBB-related research.

Establishment of human models of the blood-brain barrier (BBB) can benefit research into brain conditions associated with BBB failure. We describe here an improved technique for preparation of a contact BBB model, which permits coculturing of human astrocytes and brain endothelial cells on the opposite sides of a porous membrane.

Yöntem kan-beyin bariyerini bir insan hücre tabanlı bir İletişim Modelinin Hazırlanması için Geliştirilmiş

The blood-brain barrier (BBB) comprises impermeable but adaptable brain capillaries which tightly control the brain environment. Failure of the BBB has ...

Biyomühendislik

A Novel Three-dimensional Flow Chamber Device to Study Chemokine-directed Extravasation of Cells Circulating under Physiological Flow Conditions

Extravasation of circulating cells from the bloodstream plays a central role in many physiological and pathophysiological processes, including stem cell homing and tumor metastasis. The three-dimensional flow chamber device (hereafter the 3D device) is a novel in vitro technology that recreates physiological shear stress and allows each step of the cell extravasation cascade to be quantified. The 3D device consists of an upper compartment in which the cells of interest circulate under shear stress, and a lower compartment of static wells that contain the chemoattractants of interest. The two compartments are separated by porous inserts coated with a monolayer of endothelial cells (EC). An optional second insert with microenvironmental cells of interest can be placed immediately beneath the EC layer. A gas exchange unit allows the optimal CO2 tension to be maintained and provides an access point to add or withdraw cells or compounds during the experiment. The test cells circulate in the upper compartment at the desired shear stress (flow rate) controlled by a peristaltic pump. At the end of the experiment, the circulating and migrated cells are collected for further analyses. The 3D device can be used to examine cell rolling on and adhesion to EC under shear stress, transmigration in response to chemokine gradients, resistance to shear stress, cluster formation, and cell survival. In addition, the optional second insert allows the effects of crosstalk between EC and microenvironmental cells to be examined. The translational applications of the 3D device include testing of drug candidates that target cell migration and predicting the in vivo behavior of cells after intravenous injection. Thus, the novel 3D device is a versatile and inexpensive tool to study the molecular mechanisms that mediate cellular extravasation.

The three-dimensional flow chamber device is a novel in vitro technology for the quantitative and step-wise evaluation of the extravasation cascade of cells circulating under conditions of physiological shear stress. The device therefore fills a critical need for basic, preclinical, and clinical studies of cell migration.

Fizyolojik Akış Koşullarında Sirkülasyon Hücre Kemokin-yönettiği Ekstravazasyon Eğitim Bir Roman Üç boyutlu Akış Odası Cihazı

Extravasation of circulating cells from the bloodstream plays a central role in many physiological and pathophysiological processes, including stem cell ...

Shock Wave Application to Cell Cultures

Shock waves nowadays are well known for their regenerative effects. Basic research findings showed that shock waves do cause a biological stimulus to target cells or tissue without any subsequent damage. Therefore, in vitro experiments are of increasing interest. Various methods of applying shock waves onto cell cultures have been described. In general, all existing models focus on how to best apply shock waves onto cells.
However, this question remains: What happens to the waves after passing the cell culture? The difference of the acoustic impedance of the cell culture medium and the ambient air is that high, that more than 99% of shock waves get reflected! We therefore developed a model that mainly consists of a Plexiglas built container that allows the waves to propagate in water after passing the cell culture. This avoids cavitation effects as well as reflection of the waves that would otherwise disturb upcoming ones. With this model we are able to mimic in vivo conditions and thereby gain more and more knowledge about how the physical stimulus of shock waves gets translated into a biological cell signal (&#8220;mechanotransduction&#34;).

Shock waves nowadays are well known for their regenerative effects. Therefore in vitro experiments are of increasing interest. We therefore developed a model for in vitro shock wave trials (IVSWT) that enables us to mimic in vivo conditions thereby avoiding distracting physical effects.

Kültürler Hücre Şok Dalga Uygulama

Shock waves nowadays are well known for their regenerative effects. Basic research findings showed that shock waves do cause a biological stimulus to ...

Tissue Engineering of Tumor Stromal Microenvironment with Application to Cancer Cell Invasion

3D organotypic cultures of epithelial cells on a matrix embedded with mesenchymal cells are widely used to study epithelial cell differentiation and invasion. Rat tail type I collagen and/or matrix derived from Engelbreth-Holm-Swarm mouse sarcoma cells have been traditionally employed as the substrates to model the matrix or stromal microenvironment into which mesenchymal cells (usually fibroblasts) are populated. Although experiments using such matrices are very informative, it can be argued that due to an overriding presence of a single protein (such as in type I Collagen) or a high content of basement membrane components and growth factors (such as in matrix derived from mouse sarcoma cells), these substrates do not best reflect the contribution to matrix composition made by the stromal cells themselves. To study native matrices produced by primary dermal fibroblasts isolated from patients with a tumor prone, genetic blistering disorder (recessive dystrophic epidermolysis bullosa), we have adapted an existing native matrix protocol to study tumor cell invasion. Fibroblasts are induced to produce their own matrix over a prolonged period in culture. This native matrix is then detached from the culture dish and epithelial cells are seeded onto it before the entire coculture is raised to the air-liquid interface. Cellular differentiation and/or invasion can then be assessed over time. This technique provides the ability to assess epithelial-mesenchymal cell interactions in a 3D setting without the need for a synthetic or foreign matrix with the only disadvantage being the prolonged period of time required to produce the native matrix. Here we describe the application of this technique to assess the ability of a single molecule expressed by fibroblasts, type VII collagen, to inhibit tumor cell invasion.

Tissue engineered fibroblast-derived native matrix is an emerging tool to generate a stromal substrate which supports epithelial cell proliferation and differentiation. Here a protocol applying this methodology to assess the impact of different stromal cell types on tumor cell biology is presented.

Kanser Hücre Invasion Uygulama ile Tümör Stromal mikroçevresinin Doku Mühendisliği

3D organotypic cultures of epithelial cells on a matrix embedded with mesenchymal cells are widely used to study epithelial cell differentiation and ...

In vitro Cell Culture Model for Toxic Inhaled Chemical Testing

Cell cultures are indispensable to develop and study efficacy of therapeutic agents, prior to their use in animal models. We have the unique ability to model well differentiated human airway epithelium and heart muscle cells. This could be an invaluable tool to study the deleterious effects of toxic inhaled chemicals, such as chlorine, that can normally interact with the cell surfaces, and form various byproducts upon reacting with water, and limiting their effects in submerged cultures. Our model using well differentiated human airway epithelial cell cultures at air-liqiuid interface circumvents this limitation as well as provides an opportunity to evaluate critical mechanisms of toxicity of potential poisonous inhaled chemicals. We describe enhanced loss of membrane integrity, caspase release and death upon toxic inhaled chemical such as chlorine exposure. In this article, we propose methods to model chlorine exposure in mammalian heart and airway epithelial cells in culture and simple tests to evaluate its effect on these cell types.

In vitro Cell Culture Model for Toxic Inhaled Chemical Testing

This protocol is designed to demonstrate exposure method of cell cultures to inhaled toxic chemicals. Exposure of differentiated air-liquid&#160;interface (ALI) cultures of airway epithelial cells provides a unique model of airway exposure to toxic gases such as chlorine. In this manuscript we describe effect of chlorine exposure on air-liquid&#160;interface cultures of epithelial cells and submerged culture of cardiomyocytes. In vitro exposure systems allow important mechanistic studies to evaluate pathways that could then be utilized to develop novel therapeutic agents.

Zehirli İnhale Kimyasal Test in vitro Hücre Kültürü Modeli

Cell cultures are indispensable to develop and study efficacy of therapeutic agents, prior to their use in animal models. We have the unique ability to ...

Using Cell-substrate Impedance and Live Cell Imaging to Measure Real-time Changes in Cellular Adhesion and De-adhesion Induced by Matrix Modification

Cell-matrix adhesion plays a key role in controlling cell morphology and signaling. Stimuli that disrupt cell-matrix adhesion (e.g., myeloperoxidase and other matrix-modifying oxidants/enzymes released during inflammation) are implicated in triggering pathological changes in cellular function, phenotype and viability in a number of diseases. Here, we describe how cell-substrate impedance and live cell imaging approaches can be readily employed to accurately quantify real-time changes in cell adhesion and de-adhesion induced by matrix modification (using endothelial cells and myeloperoxidase as a pathophysiological matrix-modifying stimulus) with high temporal resolution and in a non-invasive manner. The xCELLigence cell-substrate impedance system continuously quantifies the area of cell-matrix adhesion by measuring the electrical impedance at the cell-substrate interface in cells grown on gold microelectrode arrays. Image analysis of time-lapse differential interference contrast movies quantifies changes in the projected area of individual cells over time, representing changes in the area of cell-matrix contact. Both techniques accurately quantify rapid changes to cellular adhesion and de-adhesion processes. Cell-substrate impedance on microelectrode biosensor arrays provides a platform for robust, high-throughput measurements. Live cell imaging analyses provide additional detail regarding the nature and dynamics of the morphological changes quantified by cell-substrate impedance measurements. These complementary approaches provide valuable new insights into how myeloperoxidase-catalyzed oxidative modification of subcellular extracellular matrix components triggers rapid changes in cell adhesion, morphology and signaling in endothelial cells. These approaches are also applicable for studying cellular adhesion dynamics in response to other matrix-modifying stimuli and in related adherent cells (e.g., epithelial cells).

Here, we present a protocol to continuously quantify cell adhesion and de-adhesion processes with high temporal resolution in a non-invasive manner by cell-substrate impedance and live cell imaging analyses. These approaches reveal the dynamics of cell adhesion/de-adhesion processes triggered by matrix modification and their temporal relationship to adhesion-dependent signaling events.

Matrix Modifikasyon Bağlı Hücresel Yapışma ve De-yapışma Real-time Değişiklikleri Tedbir Hücre-substrat Empedans ve Canlı Hücre Görüntüleme kullanma

Cell-matrix adhesion plays a key role in controlling cell morphology and signaling. Stimuli that disrupt cell-matrix adhesion (e.g., myeloperoxidase and ...

Eye Irritation Test (EIT) for Hazard Identification of Eye Irritating Chemicals using Reconstructed Human Cornea-like Epithelial (RhCE) Tissue Model

To comply with the Seventh Amendment to the EU Cosmetics Directive and EU REACH legislation, validated non-animal alternative methods for reliable and accurate assessment of ocular toxicity in man are needed. To address this need, we have developed an eye irritation test (EIT) which utilizes a three dimensional reconstructed human cornea-like epithelial (RhCE) tissue model that is based on normal human cells. The EIT is able to separate ocular&#160;irritants and corrosives (GHS Categories 1 and 2 combined) and those that do not require labeling (GHS No Category). The test utilizes two separate protocols, one designed for liquid chemicals and a second, similar protocol for solid test articles. The EIT prediction model uses a single exposure period (30 min for liquids, 6 hr for solids) and a single tissue viability cut-off (60.0% as determined by the MTT assay). Based on the results for 83 chemicals (44 liquids and 39 solids) EIT achieved 95.5/68.2/ and 81.8% sensitivity/specificity and accuracy (SS&#38;A) for liquids, 100.0/68.4/ and 84.6% SS&#38;A for solids, and 97.6/68.3/ and 83.1% for overall SS&#38;A. The EIT will contribute significantly to classifying the ocular irritation potential of a wide range of liquid and solid chemicals without the use of animals to meet regulatory testing requirements. The EpiOcular EIT method was implemented in 2015 into the OECD Test Guidelines as TG 492.

Eye Irritation Test EIT for Hazard Identification of Eye Irritating Chemicals using Reconstructed Human Cornea-like Epithelial RhCE Tissue Model

We have developed an eye irritation test which utilizes a three dimensional reconstructed human cornea-like epithelial (RhCE) tissue model. The test is able to discriminate between ocular irritant and corrosive materials (GHS Categories 1 and 2 combined) and those that do not require labeling (GHS No Category).

Yeniden İnşa İnsan Kornea gibi Epitelyal (RHCE) Doku Modeli kullanılarak Göz tahriş Kimyasalların Tehlike Tanımlaması Göz tahrişi Testi (EIT)

To comply with the Seventh Amendment to the EU Cosmetics Directive and EU REACH legislation, validated non-animal alternative methods for reliable and ...

Microfluidic Flow Chambers Using Reconstituted Blood to Model Hemostasis and Platelet Transfusion In Vitro

Blood platelets prepared for transfusion gradually lose hemostatic function during storage. Platelet function can be investigated using a variety of (indirect) in vitro experiments, but none of these is as comprehensive as microfluidic flow chambers. In this protocol, the reconstitution of thrombocytopenic fresh blood with stored blood bank platelets is used to simulate platelet transfusion. Next, the reconstituted sample is perfused in microfluidic flow chambers which mimic hemostasis on exposed subendothelial matrix proteins. Effects of blood donation, transport, component separation, storage and pathogen inactivation can be measured in paired experimental designs. This allows reliable comparison of the impact every manipulation in blood component preparation has on hemostasis. Our results demonstrate the impact of temperature cycling, shear rates, platelet concentration and storage duration on platelet function. In conclusion, this protocol analyzes the function of blood bank platelets and this ultimately aids in optimization of the processing chain including phlebotomy, transport, component preparation, storage and transfusion.

Microfluidic Flow Chambers Using Reconstituted Blood to Model Hemostasis and Platelet Transfusion In Vitro

Platelet transfusion and hemostasis was modeled using blood reconstitution and microfluidic flow chambers to investigate the function of blood banking platelets. The data demonstrate the consequences of platelet storage lesion on hemostasis, in vitro.

Mikroakışkan Akış Chambers Hemostaz ve Trombosit Transfüzyon Model Sulandırılarak Kan kullanma<em&gt; İn Vitro</em

Blood platelets prepared for transfusion gradually lose hemostatic function during storage. Platelet function can be investigated using a variety of ...

A Microfluidic Flow Chamber Model for Platelet Transfusion and Hemostasis Measures Platelet Deposition and Fibrin Formation in Real-time

Microfluidic models of hemostasis assess platelet function under conditions of hydrodynamic shear, but in the presence of anticoagulants, this analysis is restricted to platelet deposition only. The intricate relationship between Ca2+-dependent coagulation and platelet function requires careful and controlled recalcification of blood prior to analysis. Our setup uses a Y-shaped mixing channel, which supplies concentrated Ca2+/Mg2+ buffer to flowing blood just prior to perfusion, enabling rapid recalcification without sample stasis. A ten-fold difference in flow velocity between both reservoirs minimizes dilution. The recalcified blood is then perfused in a collagen-coated analysis chamber, and differential labeling permits real-time imaging of both platelet and fibrin deposition using fluorescence video microscopy. The system uses only commercially available tools, increasing the chances of standardization. Reconstitution of thrombocytopenic blood with platelets from banked concentrates furthermore models platelet transfusion, proving its use in this research domain. Exemplary data demonstrated that coagulation onset and fibrin deposition were linearly dependent on the platelet concentration, confirming the relationship between primary and secondary hemostasis in our model. In a timeframe of 16 perfusion min, contact activation did not take place, despite recalcification to normal Ca2+ and Mg2+ levels. When coagulation factor XIIa was inhibited by corn trypsin inhibitor, this time frame was even longer, indicating a considerable dynamic range in which the changes in the procoagulant nature of the platelets can be assessed. Co-immobilization of tissue factor with collagen significantly reduced the time to onset of coagulation, but not its rate. The option to study the tissue factor and/or the contact pathway increases the versatility and utility of the assay.

This paper describes an experimental model of hemostasis that simultaneously measures platelet function and coagulation. Platelet and fibrin fluorescence is measured in real-time, and platelet adhesion rate, coagulation rate, and onset of coagulation are determined. The model is used to determine platelet procoagulant properties under flow in concentrates for transfusion.

Trombosit Transfüzyon ve Hemostaz için bir mikroakışkan Akış Odası Modeli Gerçek zamanlı Trombosit Birikimi ve Fibrin oluşumu Tedbirleri

Microfluidic models of hemostasis assess platelet function under conditions of hydrodynamic shear, but in the presence of anticoagulants, this analysis is ...

An In Vitro Organ Culture Model of the Murine Intervertebral Disc

Intervertebral disc (IVD) degeneration is a significant contributor to low back pain. The IVD is a fibrocartilaginous joint that serves to transmit and dampen loads in the spine. The IVD consists of a proteoglycan-rich nucleus pulposus (NP) and a collagen-rich annulus fibrosis (AF) sandwiched by cartilaginous end-plates. Together with the adjacent vertebrae, the vertebrae-IVD structure forms a functional spine unit (FSU). These microstructures contain unique cell types as well as unique extracellular matrices. Whole organ culture of the FSU preserves the native extracellular matrix, cell differentiation phenotypes, and cellular-matrix interactions. Thus, organ culture techniques are particularly useful for investigating the complex biological mechanisms of the IVD. Here, we describe a high-throughput approach for culturing whole lumbar mouse FSUs that provides an ideal platform for studying disease mechanisms and therapies for the IVD. Furthermore, we describe several applications that utilize this organ culture method to conduct further studies including contrast-enhanced microCT imaging and three-dimensional high-resolution finite element modeling of the IVD.

An In Vitro Organ Culture Model of the Murine Intervertebral Disc

Whole organ culture of the intervertebral disc (IVD) preserves the native extracellular matrix, cell phenotypes, and cellular-matrix interactions. Here we describe an IVD culture system using mouse lumbar and caudal IVDs in their functional spinal units and several applications utilizing this system.

bir<em&gt; İn Vitro</emKemirgen İntervertebral Disk&gt; Organ Kültürü Modeli

Intervertebral disc (IVD) degeneration is a significant contributor to low back pain. The IVD is a fibrocartilaginous joint that serves to transmit and ...