Name: capillary electrophoresis separation of monoclonal antibody isoforms using a neutral capillary
Uploaded: 2017-01-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 53 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Capillary Electrophoresis Separation of Monoclonal Antibody Isoforms Using a Neutral Capillary at JoVE.com

The authors thank Wiley for the granted permission to use the concepts of the following publication for this tutorial. Carlos E. Espinosa-de la Garza, Francisco C. Perdomo-Ab&#250;ndez, Jes&#250;s Padilla-Calder&#243;n, Jaime M. Uribe-Wiechers, N&#233;stor O. P&#233;rez, Luis F. Flores-Ortiz, Emilio Medina-Rivero: Analysis of recombinant monoclonal antibodies by capillary zone electrophoresis. Electrophoresis. 2013. 34. 1133-1140. Copyright Wiley-VCH Verlag GmbH &amp; Co. KGaA. This work was supported by CONACyT, Mexico, grant 230551.

Çözümler 1. hazırlanması <ol><li> BGE çözüm hazırlayın. <ol><li> % 0.05 oluşan bir çözelti 100 ml hazırlanması (kütle / hacim) hidroksi propil metil selüloz (HPMC), 200 mM ε-amino, n-kaproik asit (EACA) ve 30 mM lityum asetat. Not: HPMC viskoelastik bir polimer olduğu için, bir cam beher içine toz dökün su 80 ml ilave edilir ve son olarak da karıştırma çubuğu ilave edin. normalde kalan reaktif eklemeye devam edin. o göz tahrişine neden olabilir lityum asetat işlerken güvenlik gözlükleri takın. </li><li> % 50 (hac / hac) asetik asit ile 4.8 ± 0.1 pH değerine ayarlar. Çözelti 5 dakika için stabilize etmek ve gerekli ayarlamak için izin ver. </li><li> volümetrik bir şişede 100 ml&#39;lik nihai hacme kadar telafi etmek için su ilave edilir. </li><li> 0.2 um&#39;lik bir gözenek büyüklüğüne sahip bir hidrofilik zardan geçirerek filtre et. </li><li> 7 güne kadar 2-8 ° C&#39;de saklayın. </li></ol></li><li> Iç standart hazırlayın. <ol><li> 1 mL hazırlayın% 1 (m / v) histamin oluşan bir çözelti. </li><li> 0.2 um&#39;lik bir gözenek büyüklüğüne sahip bir hidrofilik zardan geçirerek filtre et. </li><li> kadar 1 gün 2-8 ° C&#39;de saklayın. </li></ol></li></ol> 2. Numune Hazırlama <ol><li> 1 mg / ml&#39;lik nihai bir konsantrasyona kadar Tris tamponu (50 mM tris (hidroksimetil) aminometan pH 8.0) ile seyreltildi mAb örnek 180 ul hazırlayın. </li><li> % 1 (m / v) histamin 20 ul ekle. </li><li> Mix ve 5 saniye boyunca 1.000 xg&#39;de santrifüj. </li><li> evrensel bir şişe içinde bir mikro şişe yerleştirin. </li><li> Mikro şişenin içine örnek aktarmak ve evrensel şişe kapağı. Herhangi kabarcıkları tanıtan önlemek için yukarı doğru örnek dağıtın. </li><li> kadar 1 gün 2-8 ° C&#39;de saklayın. </li><li> Numune giriş tepsisine (örnek çözeltisi içeren flakon mikro) ile evrensel flakon yerleştirin. </li></ol> CE sistemi 3. hazırlanması. <ol><li> CE sistem temizleme. NOT: Davranış inciToz ve döküntü birikiminin elde edilen elektrik akımı sızıntısını önlemek için en az bir kez bir hafta işlemdir. Bununla birlikte uygulamaya bağlı olarak (örneğin, artan viskozitesi ile ya da yüksek tuz konsantrasyonu, artan viskozitesi ile örnekleri ile BGE kullanılması) elektrot ve açma kolu çapraz kontaminasyonu ve örnek taşınmasını önlemek için daha sık temizlenmesi gerekebilir. <ol><li> CE cihazının güç düğmesini kapatın ve ön kapağı açın. </li><li> suya batırılmış dokunmamış silme ile, örnek tutan sistemi (örnek ve tampon tepsiler), kartuş kapağını, kelepçe bar, arayüz bloğu ve elektrotları numune örtüsünün yüzeyini temizleyin. ile işlemi tekrarlayın bir etanol-nemlendirilmiş silin ve kullanımdan önce kuru. </li><li> su ile iyice açarak kollarını durulayın. bir dokunmamış silme ile yüzeyini temizleyin. ile işlemi tekrarlayın bir etanol-nemlendirilmiş silme ve kurulumdan önce kuru. </li><li> Dikkatli bir fiber optik kablonun iki ucu temizlemesuyla nemlendirilmiş mikrofiber bezle ly. Etanol-nemlendirilmiş bir bezle işlemi tekrarlayın. </li></ol></li><li> Kartuş montaj. <ol><li> paketinden yeni bir nötr kılcal (50 mikron iç çapı) çıkarın. </li><li> Teyp tezgah kılcal koruyucu boru bir ucunda aşağı. , Uncoil düzeltmek ve tüp dışarı kılcal çekin. </li><li> Tezgahında için bant veya bir kağıt parçası sopa ve aşağıda ölçüm işaretleri ekleyin: uzunluk detektörü (30 cm), çıkış ucuna kılcal penceresi (0.2 cm) uzunlukta (10 sm) (yani, 40.2 cm toplam uzunluğu, 30.0 cm efektif uzunluk). </li><li> Referans kağıt 0.2 cm ölçüm işaretine kılcal penceresini hizalayın. bant ile kılcal düzeltmek ve kılcal ölçüm işaretleri dışında 2 mm biter işaretleyin. </li><li> yarma taş floş kenarını kullanarak tek bir düz harekette kılcal giriş ucunda koruyucu kapağı (penceresinden uç uzak) kesin.<ol><li> kılcal iç kaplama kalıcı hasarı önlemek için su ile dolu bir kapaklı evrensel şişenin içine kılcal ucunu bırakın. Bu işlemi kapiler ucu fazla 1 dakika için çevre sıcaklığında maruz her tekrarlayın. </li></ol></li><li> kartuşun çıkış tarafına kılcal giriş ucunu. </li><li> Itin ve kılcal cam kartuş penceresine merkezli dek gerektiği gibi kartuşun içinden kılcal çekin. </li><li> Kartuş penceresine açıklığı tıpasını (100 mm x 200 mm) yerleştirin. NOT: ışık beyaz kaynağına maruz kaldığında beyaz ışık pencereden geçtiğini onaylayın. geçer ışık kahverengimsi bir görünüm varsa, gerektiği gibi ayarlayın. </li><li> (Bu sırayla her iki uçta önceden yüklenmiş boru somun, halkalı ve O-ring ile birlikte), 40.2 cm toplam kapiler uzunluğu önceden oluşturulmuş soğutucu tüp içine kılcal yerleştirin. </li><li> TİKSİNTİ boyunca kılcal itinKılcal boru diğer tarafında görünür kadar gerekli T boru. </li><li> kartuşun çıkış tarafına soğutucu boru ucunu ve boru somunu sıkın. </li><li> kartuşun giriş tarafına kılcal giriş ucunu. </li><li> Itin ve kılcal kartuşun giriş tarafında görünene kadar gerektiği gibi kartuşun içinden kılcal çekin. </li><li> kartuşun giriş tarafına soğutucu boru ucunu ve boru somunu sıkın. </li><li> yarma taş floş kenarını kullanarak tek bir düz harekette kılcal çıkış ucunda (pencerenin en yakın sonu) koruyucu kapağı kesin. </li><li> kılcal uçlarına üzerinde mühür-tutma klipleri yerleştirin ve yerine oturtun için düğmesine basın. Görme kılcal biter kontrol edin. onlar bile değilse, işlemi tekrarlayın. </li><li> tezgah kenarında kılcal uzunluğu şablonu yerleştirin. </li><li> ag aşağı bakacak şekilde yerleştirin kartuşkılcal uzunluğu şablonu ainst ve kılcal şablona referans çizgileri ile biter hizalayın. kılcal ölçüm işaretleri (3.2.4) referans çizgileri aynı hizada değilse, gerektiği gibi ayarlayın. </li><li> kılcal uzunluğu şablonuna karşı kılcal tutun ve şablona referans çizgileri altında yaran taş 2 mm floş kenarını kullanarak kılcal her iki ucunu kesti. </li><li> Görme kılcal büyüteçle biter kontrol edin. kılcal uçları düzgün değilse, yarma taş yumuşak yüzünü kullanarak bunları cilalamak. </li><li> O-ring yerleştirme aracını kullanarak açıklığı tıpası deliğe diyafram O-ring takın. </li><li> şişelere sokulan kılcal uçları hemen kasanın içine kartuş durumda ve yer kartuşu içine su dolu şapkalı evrensel şişeleri takın. Kısa ve uzun süreli depolama için 2-8 ° C&#39;de tutun. </li></ol></li><li> Tampon tepsileri hazırlanması. <ol><li> Dolgu ve şapkalı univers yertampon girişinde el flakon ve çıkış tepsileri (Şekil 1). örneklerin sayısı ile uygun şerit 2, 3, 4 ve 5&#39;te tekrar şişe pozisyonları altı numune enjeksiyon için bir şerit yerleştirme analiz edilecek. NOT: Mevcut sızıntısını önlemek için flakon kapaklar ıslatma kaçının. </li></ol></li></ol><img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/55082/55082fig1.jpg" /> Şekil 1: Pozisyon ve tampon giriş ve çıkış tepsileri evrensel şişeleri düzeyini doldurun. seviyeleri doldurun: 1/1 = 1.400 uL, 3/4 = 1300 uL ve 1/2 = 1000 mcL. Kısaltmalar: B = su, HCI = 0.1 M hidroklorik asit. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55082/55082fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <ol start="4"><li> CE sistem bileşenleri montajı. <ol><li> UV detektör takın. </li><li> açılış kollarını yükleyinarayüz bloğu içine basarak. </li><li> Fiber optik kabloyu takın. her iki ucu tutarken, saat yönünde döndürmek kelepçe çubuğuna karşılık gelen ucunu ve. UV dedektör diğer ucunu. NOT: onun kırılmasına neden olabilir bükme beri bu işlem sırasında dikkatli fiber optik kabloyu tutun. </li><li> Yeri örnek ve örnek tutma sistemi içine tampon tepsiler ve pozisyona oturtun. </li><li> iki ucunda kelepçe çubuğunu basarken kolları sıkın, arayüz bloğu içine kılcal kartuşunu yerleştirin ve. </li></ol></li></ol> 4. Enstrüman Yöntemleri Set-up <ol><li> Gerilim, maksimum: Aşağıdaki parametreler ve Tablo 1&#39;den göre, klima oluşturma çalışan ve kapatma enstrüman yöntemleri 30.0 kV; Güncel, max: 300.0 uA; Kartuş sıcaklığı: 20.0 ° C; Numune depolama sıcaklığı: 10.0 ° C; UV detektörü başlangıç ​​şartları: Dalga boyu: 214 nm; Veri hızı: 4 Hz; Filtre: Normal; Tepe genişliği () Işaret eder: 16-25; Absorbans sinyali: Doğrudan. NOT: Veri toplama oranı dar ayırma bölgelerinin kapsamını iyileştirmek amacıyla 25 Hz kadar artırılabilir. </li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td colspan="8"> Klima yöntemi zaman programı </td></tr><tr><td> Süresi (dak) </td><td> Olay </td><td> değer </td><td> süre </td><td> giriş şişe </td><td> çıkış flakon </td><td> özet </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> - </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2068 mbar </td><td> 1.0 dakika </td><td> BI: C1 </td><td> BO: C1 </td><td> ileri </td><td> HCI, 0.1 M </td></tr><tr><td> - </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2068 mbar </td><td> 2.0 dakika </td><td> BI: B1 </td><td> BO: C1 </td><td> ileri </td> &lt;td&gt; Su </td></tr><tr><td> - </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2068 mbar </td><td> 10.0 dakika </td><td> BI: E1 </td><td> BO: C1 </td><td> ileri </td><td> BGE </td></tr><tr><td> 0.00 </td><td> Ayrı - Gerilim </td><td> 15.0 KV </td><td> 10.0 dakika </td><td> BI: D1 </td><td> BO: D1 </td><td> 0.17 Min rampa, normal polarite </td><td> Ayrı </td></tr><tr><td> 10.00 </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2758 mbar </td><td> 10.0 dakika </td><td> BI: E1 </td><td> BO: C1 </td><td> ileri </td><td> BGE </td></tr><tr><td> 20.01 </td><td> Bekleyin </td><td> - </td><td> 0.0 dakika </td><td> BI: A1 </td><td> BO: A1 </td><td> - </td><td> durulayın ipuçları </td></tr><tr><td colspan="8"> yöntem zaman programı çalıştıran </td></tr><tr><td> Süresi (dak) </td><td> Olay </td><td> değer </td><td> süre </td><td> giriş şişe </td><td&gt; Çıkış flakon </td><td> özet </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> - </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2068 mbar </td><td> 1.0 dakika </td><td> BI: C1 </td><td> BO: C1 </td><td> İleri, In / Out şişe inc 6 </td><td> HCI, 0.1 M </td></tr><tr><td> - </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2068 mbar </td><td> 2.0 dakika </td><td> BI: B1 </td><td> BO: C1 </td><td> İleri, In / Out şişe inc 6 </td><td> Su </td></tr><tr><td> - </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2068 mbar </td><td> 4.0 dakika </td><td> BI: E1 </td><td> BO: C1 </td><td> İleri, In / Out şişe inc 6 </td><td> BGE </td></tr><tr><td> - </td><td> Enjekte - Basınç </td><td> 34 mbar </td><td> 20.0 sn </td><td> SI: A1 </td><td> BO: B1 </td><td> İleri, geçersiz kıl </td><td> örnek Enjeksiyon </td></tr><tr><td> - </td><td> Bekleyin </td><td> - </td><td> 0.4 dakika </td><td> BI: A1 </td><td> BÖA1 </td><td> In / Out flakon inc 6 </td><td> yıkama ipuçları </td></tr><tr><td> 0 </td><td> Ayrı - Gerilim </td><td> 15.0 KV </td><td> 30.0 dakika </td><td> BI: D1 </td><td> BO: D1 </td><td> 0.17 Min rampa, normal polarite, In / Out şişe inc 6 </td><td> örnek Ayırma </td></tr><tr><td> 0.5 </td><td> otomatik sıfır </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td></tr><tr><td> 30.01 </td><td> verileri Dur </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td></tr><tr><td> 30.02 </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2068 mbar </td><td> 2.0 dakika </td><td> BI: B1 </td><td> BO: C1 </td><td> İleri, In / Out şişe inc 6 </td><td> Su </td></tr><tr><td> 32.03 </td><td> Bekleyin </td><td> - </td><td> 0.0 dakika </td><td> BI: A1 </td><td> BO: A1 </td><td> In / Out flakon inc 6 </td><td> durulayın ipuçları </td></tr><tr><td> 32.04 </td><td> Son </td><td> -</td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> Son </td></tr><tr><td colspan="8"> Kapatma yöntemi zaman programı </td></tr><tr><td> Süresi (dak) </td><td> Olay </td><td> değer </td><td> süre </td><td> giriş şişe </td><td> çıkış flakon </td><td> özet </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> - </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2068 mbar </td><td> 1.0 dakika </td><td> BI: E6 </td><td> BO: E6 </td><td> ileri </td><td> HCI, 0.1 M </td></tr><tr><td> - </td><td> Durulama - Basınç </td><td> 2068 mbar </td><td> 6.0 dakika </td><td> BI: F6 </td><td> BO: F6 </td><td> ileri </td><td> Su </td></tr><tr><td> - </td><td> Lamba - Kapalı </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td><td> - </td></tr><tr><td> - </td><td> Bekleyin </td><td> - </td><td> 0.0 dakika </td><td> BI: A1 </td><td> BO: A1 </td><td> - </td><td> durulayın ipuçları </td></tr></tbody></table> Tablo 1: Klima, koşu ve kapatma zamanı programları. 5. Veri Toplama ve İşleme <ol><li> Örnek kümesi programlayın. <ol><li> Klima cihazı yöntemini kullanarak klima için kılcal Program. Kılcal ilk kez kullanıldığında, program, dört tekrarlar; Aksi takdirde şartlandırma yöntemini sadece iki tekrarlar programlayın. </li><li> çalışan alet yöntemi kullanılarak analiz edilecek numune Program. </li><li> kapatma enstrüman yöntemini kullanarak depolama kılcal programlamak ve bölüm 3.2.22 belirtilen işlemi tekrarlayın. </li></ol></li><li> deneme çalıştırın. </li><li> elekroferogramlar ihracat. </li><li> göç zamanı ve temel, ana a yüzdesi içeriğini hesaplamakElektroferogram profilinin dikey düşüş çizgisi entegrasyonu kullanarak nd asidik izoformlar. </li></ol>

<ol>
	<li>Bruno, V., Battaglia, G., Nicoletti, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+advent+of+monoclonal+antibodies+in+the+treatment+of+chronic+autoimmune+diseases.">The advent of monoclonal antibodies in the treatment of chronic autoimmune diseases.</a> Neurol. Sci. 31, 283-288 (2011).</li><li>Liu, H., Gaza-Bulseco, G., Faldu, D., Chumsae, C., Sun, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterogeneity+of+monoclonal+antibodies.">Heterogeneity of monoclonal antibodies.</a> J. Pharm. Sci. 97 (7), 2426-2447 (2008).</li><li>Creamer, J. S., Oborny, N. J., Lunte, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recent+advances+in+the+analysis+of+therapeutic+proteins+by+capillary+and+microchip+electrophoresis.">Recent advances in the analysis of therapeutic proteins by capillary and microchip electrophoresis.</a> Anal. Methods. 6 (15), 5427-5449 (2014).</li><li>Fekete, S., Guillarme, D., Sandra, P., Sandra, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chromatographic,+Electrophoretic,+and+Mass+Spectrometric+Methods+for+the+Analytical+Characterization+of+Protein+Biopharmaceuticals.">Chromatographic, Electrophoretic, and Mass Spectrometric Methods for the Analytical Characterization of Protein Biopharmaceuticals.</a> Anal. Chem. 88 (1), 480-507 (2016).</li><li>He, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+identity,+charge+variants,+and+disulfide+isomers+of+monoclonal+antibodies+with+capillary+zone+electrophoresis+in+an+uncoated+capillary+column.">Analysis of identity, charge variants, and disulfide isomers of monoclonal antibodies with capillary zone electrophoresis in an uncoated capillary column.</a> Anal. Chem. 82 (8), 3222-3230 (2010).</li><li>He, Y., Isele, C., Hu, W., Ruesch, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+analysis+of+charge+variants+of+monoclonal+antibodies+with+capillary+zone+electrophoresis+in+dynamically+coated+fused-silica+capillary.">Rapid analysis of charge variants of monoclonal antibodies with capillary zone electrophoresis in dynamically coated fused-silica capillary.</a> J. Sep. Sci. 34 (5), 548-555 (2011).</li><li>Zhao, S. S., Chen, D. D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Applications+of+capillary+electrophoresis+in+characterizing+recombinant+protein+therapeutics.">Applications of capillary electrophoresis in characterizing recombinant protein therapeutics.</a> Electrophoresis. 35 (1), 96-108 (2014).</li><li>&#352;t&#283;p&#225;nov&#225;, S., Ka&#353;i&#269;ka, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determination+of+impurities+and+counterions+of+pharmaceuticals+by+capillary+electromigration+methods.">Determination of impurities and counterions of pharmaceuticals by capillary electromigration methods.</a> J. Sep. Sci. 37 (15), 2039-2055 (2014).</li><li>&#352;t&#283;p&#225;nov&#225;, S., Ka&#353;i&#269;ka, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recent+applications+of+capillary+electromigration+methods+to+separation+and+analysis+of+proteins.">Recent applications of capillary electromigration methods to separation and analysis of proteins.</a> Anal. Chim. Acta. 933, 23-42 (2016).</li><li>Espinosa-de la Garza, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+recombinant+monoclonal+antibodies+by+capillary+zone+electrophoresis.">Analysis of recombinant monoclonal antibodies by capillary zone electrophoresis.</a> Electrophoresis. 34 (8), 1133-1140 (2013).</li><li>Staub, A., Guillarme, D., Schappler, J., Veuthey, J. L., Rudaz, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intact+protein+analysis+in+the+biopharmaceutical+field.">Intact protein analysis in the biopharmaceutical field.</a> J. Pharm. Biomed. Anal. 55 (4), 810-822 (2011).</li><li>Altria, K. D., Altria, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Troubleshooting.">Troubleshooting.</a> Methods in Molecular Biology, Vol 52. Capillary Electrophoresis Guidebook: Principles, Operation and Applications. , (1996).</li><li>Ma, S., Nashabeh, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+protein+therapeutics+by+capillary+electrophoresis.">Analysis of protein therapeutics by capillary electrophoresis.</a> Chromatographia. 53 (5), 75-89 (2001).</li><li>Jaccoulet, E., Smadja, C., Prognon, P., Taverna, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Capillary+electrophoresis+for+rapid+identification+of+monoclonal+antibodies+for+routine+application+in+hospital.">Capillary electrophoresis for rapid identification of monoclonal antibodies for routine application in hospital.</a> Electrophoresis. 36 (17), 2050-2056 (2015).</li></ol>

The authors Carlos E. Espinosa-de la Garza, Rodolfo D. Salazar-Flores, N&#233;stor O. P&#233;rez, Luis F. Flores-Ortiz and Emilio Medina-Rivero are employees of Probiomed S.A. de C.V., which is developing, manufacturing and marketing biosimilar products. All authors are involved in the development of biosimilar products for Probiomed.

iletken CZE başarılı olasılığını artırmak için mAbs analizleri bu derste, uygun uygulamalarının önemini vurgulamak. CZE rutin olarak kullanılır, ancak, sorunlar kaçınılmaz olarak 12 ortaya çıkar. En iyi sonuç için, onlar aşmak ve zor adımlar gidermek için analisti yardımcı olacak gibi, protokol boyunca dahil edildi notları takip etmek önemlidir. belirli bir koşullar kümesi optimum çözünürlüğü elde etmek üzere büyük bir göz BGE çözeltisi ...

Monoklonal antikorlar (mAbs) nedeniyle pek çok kronik ve dejeneratif hastalıklar 1&#39;e karşı hareket etme kapasitesine artan ilgi ile biyoterapötik proteinlerdir. Diğer biyomoleküllerin gibi, mAb&#39;ler (nihai ürüne biyosentezi dan yani) kendi yaşam döngüsünün tüm aşamalarında çeşitli fizikokimyasal değişiklikler geçmesi yatkındır. Bu modifikasyonlar arasında, ancak bunlarla sınırlı değildir: deamidasyon, glikosilasyon, oksidasyon, siklizasyon, izomerizasyon, agregasyon ve proteolitik bölünme 2. Bu nedenle, içsel izoformları çözmek için yetenekli analitik teknikler kalite spesifikasyonları kurmak için mAb&#39;ler heterojenliği ve istikrarı izlemek için ihtiyaç vardır. Kapiller elektroforez (CE), bir arka plan elektrolit (BGE) ile doldurulmuş dar kaynaşık silika borusu (um aralığında) outinside taşınan yüksek performanslı ayırma teknolojisidir. Bir elektrik alanının uygulanmasıyla, yüklü molekülün (30,000 V kadar)s ters ücret (yani, elektro-odaklı ayırma) ile elektroda doğru göç ederler. CE yüksek gerilim kullanılması klasik jel elektroforezi üstündür hızlı analiz ve verimlilik artışı, izin verir. Kılcal bölge elektroforezi (CZE), rutin olarak, ürün kalitesi değerlendirmesi 3-9 için, ilaç endüstrisinin kullanılan CE bazlı bir tekniktir. CE diğer modları (ör kapiler jel elektroforezi, kapiller izoelektrik odaklama) ya da kromatografisi bazlı yöntemlerden farklı olarak, CZE kendi doğal yapısında 10 yakın mAb&#39;lerin doğasında heterojenite analizini sağlayarak, denatüranlar veya katı faz arayüzleri kullanılmadan yapılabilir . MAb izoformlarının CZE ayrılması bir hidrofilik polimer (nötr kılcal) ile kaplanmış bir kaynaşık silika kılcal içinde oluşur ve yük, kitle, boyut ve şekil (ya da hidrodinamik hacmi) 11 tarafından yönetilir farklı elektroforetik hareketlilik dayanır. mAb parçaları zaman tespit edilirde harekete ve 214 nm&#39;de 4 bir ultraviyole (UV) absorbansı detektörü tarafından algılanan algılama penceresinin geçmesine edilir. Bu analitik tekniğin başarılı bir şekilde uygulanması öncesi ve deney sırasında detaylara uygun dikkat bağlıdır. sonuçta sürekli başarısızlık ve hayal kırıklığı yol açan, analiz yapmak için maliyet ve zaman artacak, aksi takdirde Oyunculuk. Burada, çözümleri ve örnekler, CE sistemi kurmak enstrüman yöntemleri, veri toplama hazırlanması hazırlanması detaylı açıklamaları ile CZE tarafından mAb heterojenite başarılı bir analizini yapmak için bir adım-adım kılavuz sunmak ve işlem. Bu dokümanın amacı, bir yeniden birleştirici tam olarak insan anti-tümör nekroz faktörü alfa (anti-TNFa) mAb proteini modeli olarak kullanılır; Ancak, bu protokol kolayca kısa değişiklikler göz önüne alınarak diğer proteinlerin analizi için özelleştirilebilir. birdditionally, çeşitli öneriler potansiyel sorunlar önerilmiştir hafifletmek için. okuyucu kesinlikle artacaktır başarılı olasılık olarak, önerilen protokol takip etmek teşvik edilmektedir.

<table><tbody><tr><td>Glacial acetic acid</td><td>Tecsiquim</td><td>AT0035-7</td><td></td></tr><tr><td>ACS grade hydrochloric acid</td><td>J.T. Baker</td><td>9535-05</td><td></td></tr><tr><td>Histamine dihydrochloride</td><td>Fluka</td><td>53300</td><td></td></tr><tr><td>(Hydroxypropyl) methyl cellulose&amp;nbsp;</td><td>Fluka</td><td>09963</td><td></td></tr><tr><td>Lithium acetate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>517992</td><td></td></tr><tr><td>6-Aminocaproic acid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2504</td><td></td></tr><tr><td>eCAP Tris Buffer, 50.0 mM,&amp;nbsp; pH 8</td><td>Beckman Coulter</td><td>477427</td><td></td></tr><tr><td>PA 800 Plus Pharmaceutical Analysis System</td><td>Beckman Coulter</td><td>A66528</td><td></td></tr><tr><td>eCAP Neutral capillary&amp;nbsp;</td><td>Beckman Coulter</td><td>477441</td><td></td></tr><tr><td>Vial, Micro, 200 &amp;micro;l</td><td>Beckman Coulter</td><td>144709</td><td></td></tr><tr><td>Universal Vial Caps</td><td>Beckman Coulter</td><td>A62250</td><td></td></tr><tr><td>Universal Vials</td><td>Beckman Coulter</td><td>A62251</td><td></td></tr><tr><td>Cable, Optics, UV/Vis</td><td>Beckman Coulter</td><td>144093</td><td></td></tr><tr><td>UV/Vis Detector Module</td><td>Beckman Coulter</td><td>144733</td><td></td></tr><tr><td>Cartridge Assembly Kit, Blank</td><td>Beckman Coulter</td><td>144738</td><td></td></tr></tbody></table>

capillary electrophoresis separation of monoclonal antibody isoforms using a neutral capillary

Biotherapeutic proteins, such as monoclonal antibodies (mAbs), are feasible alternatives for the treatment of chronic-degenerative diseases. The biological activity of these proteins depends on their physicochemical properties. The use of high-performance techniques like chromatography and capillary electrophoresis has been described for the analysis of physicochemical heterogeneity of mAbs. Nowadays, capillary zone electrophoresis (CZE) technique constitutes one of the most resolutive and sensitive assays for the analysis of biomolecules. Besides, the electro-driven separation in CZE is governed by extensive properties of matter and offers the advantage of analyzing proteins close to their native state. However, the successful implementation of this technique for routine analysis depends on the skills of the analyst at the critical steps during sample and system preparation. The purpose of this tutorial is to detail the steps to succeed in the CZE analysis of mAbs. Further, this protocol can be used for the development and improvement of skills of the personnel involved in protein analytical chemistry laboratories.

Şekil 2, bir 200 mM EACA, 30 mM lityum asetat, tipik bir elektrik akımı profilini gösterir, Tris tamponu (50 mM, pH 8.0) ile seyreltildi, anti-TNFa mAb, örnek ile pH 4.8 BGE. Görüldüğü gibi, mevcut analiz boyunca stabil olduğu ve 30 ila 35 uA değerleri arasında salınım yapabilir. Tespit edilen pik histamin iç standart karşılık geldiği Şekil 3 boş numunenin CZE Elektroferogram gösterir. 3.7 4.1 dakikalık bir göç vakit geçirmek h...

Watch this Scientific Journal Video about Capillary Electrophoresis Separation of Monoclonal Antibody Isoforms Using a Neutral Capillary at JoVE.com

Capillary Electrophoresis Separation of Monoclonal Antibody Isoforms Using a Neutral Capillary

Here, we present a comprehensive capillary zone electrophoresis protocol for the assessment of intrinsic physicochemical heterogeneity of monoclonal antibodies as a quality attribute.

Nötr Kılcal kullanılarak monoklonal antikor izoformlannın Kapiler Elektroforez Ayırma

Biotherapeutic proteins, such as monoclonal antibodies (mAbs), are feasible alternatives for the treatment of chronic-degenerative diseases. The ...

capillary-electrophoresis-separation-monoclonal-antibody-isoforms

Research

JoVE Journal

Biochemistry

12.6K Görüntüleme.  Unidad de Investigación y Desarrollo, Probiomed S.A. de C.V.. Here, we present a comprehensive capillary zone electrophoresis protocol for the assessment of intrinsic physicochemical heterogeneity of monoclonal antibodies as a quality attribute.

Video: Capillary Electrophoresis Separation of Monoclonal Antibody Isoforms Using a Neutral Capillary

Highly Sensitive and Quantitative Detection of Proteins and Their Isoforms by Capillary Isoelectric Focusing Method

Immunoblotting has become a routine technique in many laboratories for protein characterization from biological samples. The following protocol provides an alternative strategy, capillary isoelectric focusing (cIEF), with many advantages compared to conventional immunoblotting. This is an antibody-based, automated, rapid, and quantitative method in which a complete western blotting procedure takes place inside an ultrathin capillary. This technique does not require a gel to transfer to a membrane, stripping of blots, or x-ray films, which are typically required for conventional immunoblotting. Here, proteins are separated according to their charge (isoelectric point; pI), using less than a microliter (400 nL) of total protein lysate. After electrophoresis, proteins are immobilized onto the capillary walls by ultraviolet light treatment, followed by primary and secondary (horseradish peroxidase (HRP) conjugated) antibody incubation, whose binding is detected through enhanced chemiluminescence (ECL), generating a light signal that can be captured and recorded by a charge-coupled device (CCD) camera. The digital image can be analyzed and quantified (peak area) using software. This high throughput procedure can handle 96 samples at a time; is highly sensitive, with protein detection in the picogram range; and produces highly reproducible results because of automation. All of these aspects are extremely valuable when the quantity of samples (e.g., tissue samples and biopsies) is a limiting factor. The technique has wider applications as well, including screening of drugs or antibodies, biomarker discovery, and diagnostic purposes.

Capillary isoelectric focusing is an antibody-based, ultrasensitive, high throughput technique, enabling detailed characterization of proteins and their isoforms from extremely small biological samples. The following describes a protocol for detection and quantification of specific proteins and their isoforms in an automated and robotized manner.

Proteinler ve onların izoformlarının kapiller Isoelectric odaklanarak yöntemi tarafından son derece hassas ve nicel tespiti

Immunoblotting has become a routine technique in many laboratories for protein characterization from biological samples. The following protocol provides ...

Biyokimya

Isolation and Characterization Of Chimeric Human Fc-expressing Proteins Using Protein A Membrane Adsorbers And A Streamlined Workflow

Laboratory scale to industrial scale purification of biomolecules from cell culture supernatants and lysed cell solutions can be accomplished using affinity chromatography.&#160;While affinity chromatography using porous protein A agarose beads packed in columns is arguably the most common method of laboratory scale isolation of antibodies and recombinant proteins expressing Fc fragments of IgG, it can be a time consuming and expensive process.&#160;Time and financial constraints are especially daunting in small basic science labs that must recover hundreds of micrograms to milligram quantities of protein from dilute solutions, yet lack access to high pressure liquid delivery systems and/or personnel with expertise in bioseparations. Moreover, product quantification and characterization may also excessively lengthen processing time over several workdays and inflate expenses (consumables, wages, etc.).&#160;Therefore, a fast, inexpensive, yet effective protocol is needed for laboratory scale isolation and characterization of antibodies and other proteins possessing an Fc fragment.&#160;To this end, we have devised a protocol that can be completed by limited-experience technical staff in less than 9 hr (roughly one workday) and as quickly as 4 hr, as opposed to traditional methods that demand 20+ work hours. Most required equipment is readily available in standard biomedical science, biochemistry, and (bio)chemical engineering labs, and all reagents are commercially available.&#160;To demonstrate this protocol, representative results are presented in which chimeric&#160;murine galectin-1 fused to human Fc (Gal-1hFc) from cell culture supernatant was isolated using a protein A membrane adsorber.&#160;Purified Gal-1hFc was quantified using an expedited Western blotting analysis procedure and characterized using flow cytometry. The streamlined workflow can be modified for other Fc-expressing proteins, such as antibodies, and/or altered to incorporate alternative quantification and characterization methods.

Compared with traditional affinity chromatography using protein A agarose bead-packed columns, protein A membrane adsorbers can significantly speed laboratory-scale isolation of antibodies and other Fc fragment-expressing proteins.&#160;Appropriate analysis and quantification methods can further accelerate protein processing, allowing isolation/characterization to be completed in one workday, instead of 20+ work hours.

Protein A Membran Adsorberleri ve Kolaylaştırılmış bir İş Akışı Kullanarak Kimerik İnsan Fc Ekspresyon Proteinlerinin İzolasyonu ve Karakterizasyonu

Laboratory scale to industrial scale purification of biomolecules from cell culture supernatants and lysed cell solutions can be accomplished using ...

Biyomühendislik

Peptide Scanning-assisted Identification of a Monoclonal Antibody-recognized Linear B-cell Epitope

The identification of an antigenic epitope by the immune system allows for the understanding of the protective mechanism of neutralizing antibodies that may facilitate the development of vaccines and peptide drugs. Peptide scanning is a simple and efficient method that straightforwardly maps the linear epitope recognized by a monoclonal antibody (mAb). Here, the authors present an epitope determination methodology involving serially truncated recombinant proteins, synthetic peptide design, and dot-blot hybridization for the antigenic recognition of nervous necrosis virus coat protein using a neutralizing mAb. This technique relies on the dot-blot hybridization of synthetic peptides and mAbs on a polyvinylidene fluoride (PVDF) membrane. The minimum antigenic region of a viral coat protein recognized by the RG-M56 mAb can be narrowed down by step-by-step trimmed peptide mapping onto a 6-mer peptide epitope. In addition, alanine scanning mutagenesis and residue substitution can be performed to characterize the binding significance of each amino acid residue making up the epitope. The residues flanking the epitope site were found to play critical roles in peptide conformation regulation. The identified epitope peptide may be used to form crystals of epitope peptide-antibody complexes for an x-ray diffraction study and functional competition, or for therapeutics.

Here, the authors present a simple and efficient protocol to define a linear antigenic epitope using a purified monoclonal antibody and peptide scanning through dot-blot hybridization. The identified epitope can then be used in therapeutic and diagnostic applications.

Peptid, bir monoklonal antikor tarafından tanınan lineer B-hücresi epitopunun belirlenmesi: Tarama destekli

The identification of an antigenic epitope by the immune system allows for the understanding of the protective mechanism of neutralizing antibodies that ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Purification and Analytics of a Monoclonal Antibody from Chinese Hamster Ovary Cells Using an Automated Microbioreactor System

Monoclonal antibodies (mAbs) are one of the most popular and well-characterized biological products manufactured today. Most commonly produced using Chinese hamster ovary (CHO) cells, culture and process conditions must be optimized to maximize antibody titers and achieve target quality profiles. Typically, this optimization uses automated microscale bioreactors (15 mL) to screen multiple process conditions in parallel. Optimization criteria include culture performance and the critical quality attributes (CQAs) of the monoclonal antibody (mAb) product, which may impact its efficacy and safety. Culture performance metrics include cell growth and nutrient consumption, while the CQAs include the mAb's N-glycosylation and aggregation profiles, charge variants, and molecular weight. This detailed protocol describes how to purify and subsequently analyze HCCF samples produced by an automated microbioreactor system to gain valuable performance metrics and outputs. First, an automated protein A fast protein liquid chromatography (FPLC) method is used to purify the mAb from harvested cell culture samples. Once concentrated, the glycan profiles are analyzed by mass spectrometry using a specific platform (refer to the Table of Materials). Antibody molecular weights and aggregation profiles are determined using size exclusion chromatography-multiple angle light scattering (SEC-MALS), while charge variants are analyzed using microchip capillary zone electrophoresis (mCZE). In addition to the culture performance metrics captured during the bioreactor process (i.e., culture viability, cell counts, and common metabolites including glutamine, glucose, lactate, and ammonia), spent media is analyzed to identify limiting nutrients to improve the feeding strategies and overall process design. Therefore, a detailed protocol for the absolute quantification of amino acids by liquid chromatography-mass spectrometry (LC-MS) of spent media is also described. The methods used in this protocol take advantage of high-throughput platforms that are compatible for large numbers of small-volume samples.

A detailed protocol for the purification and subsequent analysis of a monoclonal antibody from harvested cell culture fluid (HCCF) of automated microbioreactors has been described. Use of analytics to determine critical quality attributes (CQAs) and maximizing limited sample volume to extract vital information is also presented.

Otomatik bir Mikrobioreactor sistemi kullanılarak Çin hamster yumurtlama hücrelerinden bir monoklonal antikor arıtma ve analitik

Monoclonal antibodies (mAbs) are one of the most popular and well-characterized biological products manufactured today. Most commonly produced using ...

Procedure and Key Optimization Strategies for an Automated Capillary Electrophoretic-based Immunoassay Method

New technologies that utilize capillary-based immunoassays promise faster and more quantitative protein assessment compared to traditional immunoassays. However, similar to other antibody-based protein assays, optimization of capillary-based immunoassay parameters, such as protein concentration, antibody dilution, and exposure time is an important prerequisite to the generation of meaningful and reliable data. Measurements must fall within the linear range of the assay where changes in signal are directly proportional to changes in lysate concentration. The process of choosing appropriate lysate concentrations, antibody dilutions, and exposure times in the human bronchial epithelial cell line, BEAS-2B, is demonstrated here. Assay linearity is shown over a range of whole cell extract protein concentrations with p53 and &#945;-tubulin antibodies. An example of signal burnout is seen at the highest concentrations with long exposure times, and an &#945;-tubulin antibody dilution curve is shown demonstrating saturation. In addition, example experimental results are reported for doxorubicin-treated cells using optimized parameters.

A capillary-based immunoassay using a commercial platform to measure target proteins from total protein preparations is demonstrated. In addition, assay parameters of exposure time, protein concentration, and antibody dilution are optimized for a cell culture model system.

Yordam ve anahtar optimizasyon stratejileri için bir otomatik Kapiler elektroforetik tabanlı Immunoassay yöntemi

New technologies that utilize capillary-based immunoassays promise faster and more quantitative protein assessment compared to traditional immunoassays. ...

Biyoloji

Capillary Electrophoresis (CE)

Source: Laboratory of Dr. B. Jill Venton - University of Virginia
Capillary electrophoresis (CE) is a separation technique that separates molecules in an electric field according to size and charge. CE is performed in a small glass tube called a capillary that is filled with an electrolyte solution. Analytes are separated due to differences in electrophoretic mobility, which varies with charge, solvent viscosity, and size. Traditional electrophoresis in gels is limited in the amount of voltage that can be applied because Joule heating effects will ruin the gel and the separation. Capillaries have a large surface area-to-volume ratio and thus dissipate heat better. Therefore, the voltages applied for a capillary electrophoresis experiment are quite large, often 10,000&#8211;20,000 V.
Capillary electrophoresis is useful for high-performance separations. Compared to liquid chromatography, CE separations are often faster and more efficient. However, capillary electrophoresis works best to separate charged molecules, which is not a limitation of liquid chromatography. CE has a greater peak capacity than high-performance liquid chromatography (HPLC), meaning the separations are more efficient and more peaks can be detected. The instrumentation can be very simple. However, HPLC is more versatile and many stationary and mobile phases have been developed for different types of molecules.

Capillary Electrophoresis: Principle, Procedure and Applications

Source: Laboratory of Dr. B. Jill Venton - University of Virginia
Capillary electrophoresis (CE) is a separation technique that separates molecules in an ...

Education

JoVE Science Education

Kimya

Analitik Kimya

An Affinity Chromatography Technique for the Purification of Monoclonal Antibodies

Source: Elgundi, Z., et al. <a href="https://app.jove.com/v/55153">Laboratory Scale Production and Purification of a Therapeutic Antibody.</a> J. Vis. Exp. (2017).
This video demonstrates a technique for purifying monoclonal antibodies from the culture supernatant obtained from an antibody-producing cell culture. The process involves using a matrix of crosslinked agarose beads with conjugated Protein A, which immobilizes the antibodies in the supernatant on the beads, allowing for effective separation from contaminants. By applying an elution buffer with low pH, the protein A-antibody interaction is loosened, facilitating the collection of antibody-containing fractions.

Monoklonal Antikorların Saflaştırılması için Bir Afinite Kromatografisi Tekniği

1. Antibody Purification by Affinity Chromatography Using an Automated Fast Protein Liquid Chromatography (FPLC) System
NOTE: The following procedure can ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

İmmünoloji

Antikor Tabanlı Teknolojiler

Üretim ve Saflaştırma

DFE-Based Affinity Chromatography: A Technique for Purification of 2F5 Monoclonal Antibodies from a Crude Sample Using High Ionic Strength-Based Elution Conditions

Source: Kn&#246;dler, M. et al., <a href="https://www.jove.com/v/59933">Activated Cross-linked Agarose for the Rapid Development of Affinity Chromatography Resins - Antibody Capture as a Case Study</a>. J. Vis. Exp. (2019).
This video describes an affinity chromatography technique for purifying 2F5 monoclonal antibodies using the DsRed-2F5-Epitope or DFE ligands. The purified 2F5 monoclonal antibodies are essential drugs in immunotherapy.

DFE Tabanlı Afinite Kromatografisi: Yüksek İyonik Kuvvete Dayalı Elüsyon Koşulları Kullanılarak Ham Bir Numuneden 2F5 Monoklonal Antikorların Saflaştırılması İçin Bir Teknik

Source: Kn&#246;dler, M. et al., Activated Cross-linked Agarose for the Rapid Development of Affinity Chromatography Resins - Antibody Capture as a Case ...

Biyolojik Teknikler

Kromatografi Teknikleri

A Capillary Electrophoresis Immunoassay for Protein Biomarker Detection

Source: Sage, J. M., et al. <a href="https://app.jove.com/v/60638">Use of Capillary Electrophoresis Immunoassay to Search for Potential Biomarkers of Amyotrophic Lateral Sclerosis in Human Platelets.</a>&#160;J. Vis. Exp.&#160;(2020)
This video demonstrates a capillary electrophoresis immunoassay protocol for detecting a protein biomarker associated with amyotrophic lateral sclerosis (ALS) from human blood platelets. Confirmation of the presence of the ALS biomarker protein is achieved through size-based separation of the platelet proteins followed by chemiluminescent detection.

Protein Biyobelirteç Tespiti için Bir Kapiller Elektroforez İmmünoassay

All procedures involving sample collection have been performed in accordance with the institute&#39;s IRB guidelines.
1. Preparation of buffers and ...

Karakterizasyon ve Fonksiyonel Analiz

Electrophoresis: Overview

Electrophoresis is a powerful analytical separation technique that relies on the differential migration of charged species when subjected to an electric field. The core strength of electrophoresis lies in its ability to separate high-molecular-weight species in complex mixtures. It has found widespread use in biochemistry, molecular biology, and analytical chemistry, allowing the separation of compounds like amino acids, nucleotides, carbohydrates, and proteins with excellent resolution.
There are two main formats for electrophoretic separations: slab electrophoresis and capillary electrophoresis. Slab Electrophoresis uses a gel matrix, such as agarose or polyacrylamide, which acts as a sieve, allowing molecules to move through the pores. Capillary electrophoresis employs a narrow capillary tube filled with a buffer solution, providing high-resolution separation with rapid analysis time and minimal sample requirements. Although slab electrophoresis is widely used in biochemistry and biology to separate high-molecular-mass species, capillary electrophoresis is a more recent development with several advantages.
Capillary electrophoresis is a separation technique used to analyze complex mixtures of analytes based on their differential migration rates in an applied electric field. In this method, a sample is injected into a narrow capillary tube filled with a buffered solution, and an electric field is applied to facilitate separation. The migration rate of the analyte depends on its charge and size. The smaller, more highly charged ions migrate faster than the larger, less charged ones. In capillary electrophoresis, the migration of sample components is influenced by two types of mobility: electrophoretic mobility and electroosmotic mobility. Electrophoretic mobility is the solute&#39;s response to the applied electric field, with cations moving toward the negatively charged cathode, anions moving toward the positively charged anode, and neutral species remaining stationary. Electroosmotic mobility occurs when the buffer solution moves through the capillary in response to the electric field, typically toward the cathode.
Under normal conditions, capillary electrophoresis separates cations first, followed by neutral species, and finally, the anions. This separation is based on their respective electrophoretic mobilities and electroosmotic flow velocities. Notably, all separated species are eluted from the same end of the capillary, allowing their detection using quantitative detectors. The detector signals produce an electropherogram resembling a chromatogram but feature narrower peaks.
Capillary electrophoresis is a powerful tool for qualitative and quantitative analysis of complex mixtures. It provides information similar to that obtained from other separation techniques, such as gas chromatography (GC) or high-performance liquid chromatography (HPLC).

Elektroforez: Genel Bakış

Electrophoresis is a powerful analytical separation technique that relies on the differential migration of charged species when subjected to an electric ...