Yazarlar bağış ve aileleri onların cömert bir hediye için teşekkür etmek istiyorum. Bay Xiao Xuan Li video kayıt ve video düzenleme ile yardım için teşekkür ederiz; Bayan Hannah Lewis ve Bay Louis Szabo sağlamak için teknik destek; ve Profesör Jan Provis videonun incelenmesi ve video içeriği için giriş sağlamak için.

Tüm yöntem tanımlamak burada insan araştırma Etik Kurulu tarafından Avustralya Ulusal Üniversitesi onaylanmıştır. Ventrikül model oluşturmak için Klingler lif disseksiyon tekniği 12 , 14 kullandık. Klingler tekniği korteksin gri maddenin küçük porsiyonlar kaldırma ve sinir lifleri demetleri soyulması, böylece doku katmanları derin yapıları için adım adım bir kılavuz yüzeyden sağlayan içerir bir dokunsal diseksiyon yöntemdir beynin.
 Not: Bu protokol beraberindeki video ve görüntüleri göstermek için kullanılan beyin numune dikkatle bir formalin tahnit edilmiş insan Kadavra Tıp Fakültesi, Avustralya vücut donör programından elde edilen kaldırıldı Ulusal Üniversitesi. Donör neuropathological hastalık bilinen öyküsü vardı. Dura mater kaldırıldıktan sonra beyin % 10 etanol çözüm oda sıcaklığında üç yıldır tutulduğu.
 1. hazırlık <ol><li>Tüm beyin MumyaIadım bir insan Kadavra elde etmek ve dura mater kaldırmak ve beyin % 10 etanol diseksiyon önce oda sıcaklığında saklayın. 
	: Bireysel koruma araçları iyi havalandırılmış bir odada yerel kurallara uygun olarak ele alırken dikkatli olun. Tüm katılımcılar güvenli kullanım ve diseksiyon Protokolü başlatılıyor önce bir neşter ve keskin nesneleri bertarafı için kurumsal yordamları hakkında bilgi sahibi olun.</li>
	<li>Hazırlamak cihazlar: makas, forseps, neşter Bıçaklar (No. 15 ve No 22), metal sonda ve künt sonuna bir metal neşter tanıtıcı ( şekil 1). Bistüri sapı künt sonu hassas sinir lifleri zarar en aza indirmek ve büyük beyaz madde fiber yolları ( Şekil 2) 13 korumak için kullanın.</li>
	<li>Beyin ventral yüzeyi yukarı bakacak şekilde konumlandırın.</li>
</ol> 2. Diseksiyon yordam Not: diseksiyon tamamlamak için yaklaşık 2-3 h alır <ol><li>her iki serebral hemisferlerin Atravmatik (blunt) forseps bir çift kullanarak kaldırmak araknoid mater ve ilişkili damarlara.</li>
	<li>Yavaşça beyincik kaldırın ve alt colliculi bulun. Uzun neşter kolu aşağı colliculi sadece Kaudal bağlı ve beyin sapı ile eksenel kesme neşter bıçak (No. 15) yerleştirin. Bıçak yakın olarak beyincik zarar görmesini önlemek mümkün olduğunca yatay tutun. Orta tectum korumak için özen gösterin.</li>
	<li>Sol veya sağ yanal fissür görüntülemek için beyin getirin. Supramarginal gyrus başlayarak, künt sonuna neşter kolu yavaşça yüzeysel kortikal katmanları kaldırmak için kullanın. Yavaşça ilk yukarıda, o zaman aşağıda yanal sulkus Paryetal, alın ve temporal loblar, sırasıyla çalıştıran yatay Derneği lif demetleri ortaya çıkarmak için ilerlemek.</li>
	<li>Arcuate bulunduğu ortaya çıkarmak için üst ve AST boyuna fasciculi bağlanma Insula posterior kenarlık arching liflerin yönünü izleyin.</li>
	<li>Anteriorly, yavaşça çıkarın orta zamansal ve şakak bağlanma uncinate fascicular lifleri ortaya çıkarmak için inferior frontal gyri ve frontal loblar kalan yüzeysel kortikal katmanları</li>
	<li>Kısa gyri ada korteksin tanımlamak ve Insula kaldırın. Sonraki aşırı kapsül ve claustrum temel dış kapsül ortaya çıkarmak için kaldırın. Kapsül için derin lentiform çekirdeğini oluşturduğu çıkıntı unutmayın. Korteks, dorsal yüzeye hareket ortaya corona radiata ( şekil 4) liflerinin.</li>
	<li>Kalan korteks ve alttaki beyaz madde Singulat gyrus ulaşmak için beynin dorsal yüzeye çıkarın. Cingulum, ön delikli madde parahipokampal gyrus ile bağlanma beyaz madde yolları ortaya çıkarmak için singulat korteks kaldırmak için neşter kolu Blunt'ın sonu kullanmaya devam.</li>
	<li>Cingulum posterior anterior reveal iki serebral hemisfer bağlanan commissural liflerinin oluşan corpus callosum kaldırmak için aynı yöntemleri kullanabilirsiniz. Corpus callosum body (gövde) patolojisi şimdi görünür ( şekil 6) olacak.</li>
	<li>Tekrar kontralateral serebral hemisfer 2,3 2,8 merdivenlerinde.</li>
	<li>Palpate ve lateral ventrikül birinde hemisferlerin kapsamını tanımlar. Bir sonda kullanarak, ikincil trigone sitesinde ventrikül lateral duvarına delik. (No 4 neşter işleyiciye bağlı) bir boyutu 24 bıçak kullanarak girin kasılır lateral ventrikül alt boynuzu tüm uzunluğu kadar açmak için kesme ve ponksiyon-site aracılığıyla.</li>
	<li>Kesme ( şekil 5 noktalı çizgi) corpus callosum splenium konumlanmıştır doğru genişletmek için ventrikül teminat trigone şimdi dönmek.</li>
	<li>Tekrar merdivenlerinde 2.10 ve 2.11 diğer Yarımküre.</li>
	<li>Lateral ventrikül gövdesi belgili tanımlık kesme rostrally bir kesim yaklaşık 3 cm corpus callosum paralel iki hemisferlerin ( şekil 6 noktalı çizgiler) kullanarak trigone üzerinden devam ederek açın.</li>
	<li>Her hemisphere genu düzeyinde rostrally ve caudally corpus callosum splenium düzeyde iki paralel insizyonlar katılın. Forseps, kullanarak düzenlenen baskın elinde, corpus callosum splenium yavaşça kaldırın. Makas, düzenlenen baskın elinde küçük bir keskin çifti ile temel septum pellucidum splenium ayırın. Vücudun rostral alabilirseniz, corpus callosum kes ve onu kaldırmak</li>
	<li>Beyin ventral yüzeyinde oksipital ve temporal alanları (arka bölümü) dengelemek için sigara dominant el avuç boyuna nestle. Aynı zamanda, nazikçe ama sıkıca karşı parmaklarını yerleştirerek beynin ön ucunu tut ve beynin her iki lentiform çekirdekleri başparmak için dominant el kullanın.</li>
	<li>Kullanma hafif çekerek ve hareketleri, büküm choroid plexus sağlam tutmak için özel bakım alarak beynin anterior ve posteiror parçalar fiziksel olarak ayırın. Bu bir meslektaşım ayırma yol ve yavaşça herhangi bir doku bir neşter kullanarak işlemi sırasında bağlanma kalan bölüm bulunması önerilir.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Smith, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+virtual+reality+atlas+of+craniofacial+anatomy.">A virtual reality atlas of craniofacial anatomy.</a> Plast Reconstr Surg. 120 (6), 1641-1646 (2007).</li><li>Estevez, M. E., Lindgren, K. A., Bergethon, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+three-dimensional+tool+for+teaching+human+neuroanatomy.">A novel three-dimensional tool for teaching human neuroanatomy.</a> Anat Sci Educ. 3 (6), 309-317 (2010).</li><li>Mortazavi, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ventricular+system+of+the+brain:+a+comprehensive+review+of+its+history,+anatomy,+histology,+embryology,+and+surgical+considerations.">The ventricular system of the brain: a comprehensive review of its history, anatomy, histology, embryology, and surgical considerations.</a> Childs Nerv Syst. 30 (1), 19-35 (2014).</li><li>Drapkin, Z. A., Lindgren, K. A., Lopez, M. J., Stabio, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+and+assessment+of+a+new+3D+neuroanatomy+teaching+tool+for+MRI+training.">Development and assessment of a new 3D neuroanatomy teaching tool for MRI training.</a> Anat Sci Educ. 8 (6), 502-509 (2015).</li><li>Ruisoto Palomera, P., JuanesM&#233;ndez, J. A., Prats Galino, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhancing+neuroanatomy+education+using+computer-based+instructional+material.">Enhancing neuroanatomy education using computer-based instructional material.</a> Computers in Human Behavior. 31, 446-452 (2014).</li><li>Chariker, J. H., Naaz, F., Pani, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Item+difficulty+in+the+evaluation+of+computer-based+instruction:+an+example+from+neuroanatomy.">Item difficulty in the evaluation of computer-based instruction: an example from neuroanatomy.</a> Anat Sci Educ. 5 (2), 63-75 (2012).</li><li>Bouwer, H. E., Valter, K., Webb, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+integration+of+dissection+in+medical+education+in+Australia+and+New+Zealand:+Challenges+and+successes.">Current integration of dissection in medical education in Australia and New Zealand: Challenges and successes.</a> Anatomical sciences education. 9 (2), 161-170 (2016).</li><li>Nwachukwu, C., Lachman, N., Pawlina, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluating+dissection+in+the+gross+anatomy+course:+Correlation+between+quality+of+laboratory+dissection+and+students+outcomes.">Evaluating dissection in the gross anatomy course: Correlation between quality of laboratory dissection and students outcomes.</a> Anatomical Sciences Education. 8 (1), 45-52 (2015).</li><li>Rae, G., Cork, R. J., Karpinski, A. C., Swartz, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+integration+of+brain+dissection+within+the+medical+neuroscience+laboratory+enhances+learning.">The integration of brain dissection within the medical neuroscience laboratory enhances learning.</a> Anatomical Sciences Education. , (2016).</li><li>Choi, C. Y., Han, S. R., Yee, G. T., Lee, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+core+of+the+cerebrum.">Central core of the cerebrum.</a> J Neurosurg. 114 (2), 463-469 (2011).</li><li>Standring, S., Ellis, H., Healy, J., Williams, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+Basis+Of+Clinical+Practice.">Anatomical Basis Of Clinical Practice.</a> Grays Anatomy. 40, 415 (2008).</li><li>Ojeda, J. L., Icardo, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Teaching+images+in+Neuroanatomy:+Value+of+the+Klinger+method.">Teaching images in Neuroanatomy: Value of the Klinger method.</a> Eur. J. Anat. 15, 136-139 (2011).</li><li>Skadorwa, T., Kunicki, J., Nauman, P., Ciszek, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Image-guided+dissection+of+human+white+matter+tracts+as+a+new+method+of+modern+neuroanatomical+training.">Image-guided dissection of human white matter tracts as a new method of modern neuroanatomical training.</a> Folia Morphol (Warsz). 68 (3), 135-139 (2009).</li><li>Arnts, H., Kleinnijenhuis, M., Kooloos, J. G., Schepens-Franke, A. N., van Cappellen van Walsum, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combining+fiber+dissection,+plastination,+and+tractography+for+neuroanatomical+education:+Revealing+the+cerebellar+nuclei+and+their+white+matter+connections.">Combining fiber dissection, plastination, and tractography for neuroanatomical education: Revealing the cerebellar nuclei and their white matter connections.</a> Anat Sci Educ. 7 (1), 47-55 (2014).</li><li>Turney, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomy+in+a+modern+medical+curriculum.">Anatomy in a modern medical curriculum.</a> Ann R Coll Surg Engl. 89 (2), 104-107 (2007).</li><li>Chowdhury, F., Haque, M., Sarkar, M., Ara, S., Islam, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=White+fiber+dissection+of+brain;+the+internal+capsule:+a+cadaveric+study.">White fiber dissection of brain; the internal capsule: a cadaveric study.</a> Turk Neurosurg. 20 (3), 314-322 (2010).</li><li>Riederer, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plastination+and+its+importance+in+teaching+anatomy.+Critical+points+for+long-term+preservation+of+human+tissue.">Plastination and its importance in teaching anatomy. Critical points for long-term preservation of human tissue.</a> J Anat. 224 (3), 309-315 (2014).</li><li>McMenamin, P. G., Quayle, M. R., McHenry, C. R., Adams, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+production+of+anatomical+teaching+resources+using+three-dimensional+(3D)+printing+technology.">The production of anatomical teaching resources using three-dimensional (3D) printing technology.</a> Anat Sci Educ. , (2014).</li><li>Ture, U., Yasargil, M. G., Friedman, A. H., Al-Mefty, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fiber+dissection+technique:+lateral+aspect+of+the+brain.">Fiber dissection technique: lateral aspect of the brain.</a> Neurosurgery. 47 (2), 417-426 (2000).</li><li>Klingler, J., Gloor, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+connections+of+the+amygdala+and+of+the+anterior+temporal+cortex+in+the+human+brain.">The connections of the amygdala and of the anterior temporal cortex in the human brain.</a> Journal of Comparative Neurology. 115 (3), 333-369 (1960).</li></ol>

Yazarlar onlar hiçbir çıkar çatışması var bildirin.

Bu yazının amacı dağıtımı için bir diseksiyon rehber öğretmenler ve derin ventrikül ve insan beyni yapılarının periventriküler öğrenme ve öğretme arttırmak için kullanılan olabilir öğrenciler için hazırlamak oldu. Bir adım adım kılavuz ile görüntüleri, ventrikül ve ilişkili yapılarını morfolojisi anlayış yardımcı olmak için kullanılan video kaynak, birlikte birlikte tasarladılar. Disseksiyon tekniği yeni bir şey değil. Lif disseksiyon serebellar anatomi14</...

Birçok öğrenci derin insan beyni1,2içinde bulunan Ventriküler sistemi negatif alanlarda anlamak için mücadele ediyoruz. Sık kullanılan kaynaklar ventrikül eğitim için öğrenciler için kullanılabilir karmaşık 3D ilişkiler derin beyin bu yapıların nispeten ham temsilleri sağlamaktadır. Ventriküler sistemine erişim bir kafa içi basıncı ölçmek, ventrikül basıncı azaltmak için en faydalanılan teknikleri Ventriküler sistemi ve ilgili yapıların 3D Anatomi anlama Nöroşirürji içinde özellikle önemlidir çünkü Sistem ve ilaçlar3yönetmek. Ayrıca, tıbbi görüntüleme hızlı gelişmeler 3D Anatomi yorumlanması becerilerinin geliştirilmesi gerektirdiği.
İki boyutlu (2D) bölümlerini farklı beyin genellikle negatif ventrikül alanlarda4sınırlarını oluşturan derin beyin yapıları görselleştirmek için kullanılır. Ancak, yalnız beynin 2D dilimler öğrencilerin ventrikül 3D Mimarlık ve ince detaylar gibi lif demetleri korteks ve subcortical yapıları5bağlanma bölgesinin büyüklüğünü anlamak sağlamak için yeterli olur. Sonuç olarak, eğitimciler ventrikül4anlaşılır bir 3D kavramını hesaplamak için öğrencilerin kendi yetenek dayanmak zorunda. Kayma bilinci ile mücadele eden öğrenciler bu 3D görüntü oluşturmak son derece zor. Plastik modeller ve ventrikül atmalarını Ventriküler sistemi 3D bir gösterimini sağlar iken, onlar ventrikül sınırlarını oluşturan kapsamlı ilişkileri göstermek için başarısız. Öğrenciler genellikle sersemce Ventriküler sistemine erişmek ve onun bağlantıları anlamak için plastik model bölümleri kaldırın. Bu süreçte, onlar sık sık her yapısı ayrıntılı göreli konumları gözden kaçırmak ve ilişkilerini (örneğin lateral ventrikül corpus callosum tarafından çatı oluşumu) anlayış kaybetmek.
Yeni bilgisayarlı öğretim araçları gelişimi bazı bu sınırlamaların ele almıştır. Ancak, çoğu bu modellerin statik metin ve resimlere sınırlıdır ve bu yeni teknolojiler7,8tarafından sunulan etkileşim yararlanmak. Birden fazla bakış açıları çalışmaya 3D bilgisayar modelleri döndürmek kullanıcı etkileşimli teknolojileri etkinleştirmek iken, bu bazı kullanıcılar özellikle yapıları6yönlendirmek için zor bulmak acemiler karıştırabilir. Ayrıca, etkileşimli bilgisayar kaynaklarını daha karmaşık anatomik yapıları6öğretim daha az etkili olduğu gösterilmiştir. Böylece, Nöroanatomi eğitimde zorluklardan biri öğrencilerin yeterli ventrikül görselleştirmek ve onların 3D yapısı ve anatomik ilişkileri narin de dahil olmak üzere için teşekkür ederiz onları etkinleştirmek kaynaklarla sağlamaktır ilişkisel, projeksiyon, ve o periventriküler yapıları2karmaşık ilişkiler commissural lif demetleri.
Diseksiyon anatomi7,8öğrenmek için mükemmel bir eğitim yöntemi olarak gösterilmiştir. Yeni yapılan bir çalışmada kanıt Nöroanatomi öğrenmede öğrenci diseksiyon faydalar sağlar. 2016 yılında Rae ve ark. diseksiyonlarının9' katılan öğrenciler geliştirilmiş kısa ve uzun vadeli saklama Nöroanatomi bilgi bulundu. Teknolojik gelişmeler doğruluk ve etkileşim 3D bilgisayar modelleri geliştirmek devam ederken, uygulamalı diseksiyon edinilen bilgi mevcut saat10dijital olarak çoğaltılamaz.
Bu çalışmada, insan beyninin bir tekrarlanabilir diseksiyon üretmek amaçlanmıştır. Hassas lif demetleri koruma sağlayan ve ventrikül negatif boşluk periventriküler gri madde yapıları daha iyi tanımlamak için bir lif disseksiyon yöntemi seçtik.
Burada ventrikül prosection bir model oluşturmak için kapsamlı adım adım kılavuz mevcut ve öğretme ve öğrenme Nöroanatomi periventriküler yapıları ile birlikte eşlik eden bir eğitim videosu için kullanın. Bu kaynaklar Nöroanatomi beynin öğrenme ve öğretme için eğitimciler ve öğrenciler tarafından kullanılabilir.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="615">
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Scalpel Blade No 15</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0205</td>
			<td style="width:167px;">Scalpel blade</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Scalpel Blade No 11</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0203</td>
			<td>Scalpel blade</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Scalpel Blade No 24</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0211</td>
			<td>Scalpel blade</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Long Scalpel handle No3L</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0913</td>
			<td>Scalpel handle</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Short Scalpel handle No4G</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0934</td>
			<td>Scalpel handle</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Scissors</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Scissors</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Atraumatic Forceps</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Atraumatic forceps</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Toothed Forceps</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Toothed forceps</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Genelyn Arterial Enhanced</td>
			<td style="width:113px;">GMS Inovations</td>
			<td style="width:119px;">AE-475</td>
			<td>Arterial embalming media</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

exploring deep space - uncovering the anatomy of periventricular structures to reveal the lateral ventricles of the human brain

Anatomi öğrenciler genellikle iki boyutlu (2D) bölümleri ile sağlanır ve serebral ventrikül anatomi ve öğrenciler okurken görüntüleri bu zor bulmak. Ventrikül negatif alanlarda derin beyin içinde yer alan olduğu için kendi sınırları ilgili yapılar tarafından kurulan takdir onların anatomisini anlamak için tek yolu bu. Bu alanlarda 2D gösterimi seyir, Kardinal uçaklar hiçbirinde görüntüleme ventrikül sınırlarını oluşturan yapıların her şeyden izin vermez. Böylece, 2D bölümler tek başına kullanma 3D ventrikül alanlarda kendi zihinsel görüntü hesaplamak öğrenciler gerektirir. Bu çalışmada öğrenci geliştirmek için bir eğitim kaynağı oluşturmak için insan beyni Anatomi için tekrarlanabilir bir yöntem geliştirmekti ventrikül ve periventriküler yapıları arasındaki karmaşık ilişkileri anlama. Bunu başarmak için biz bir adım adım kılavuz yanal ve üçüncü ventrikül yakından ilgili limbik sistem ve Bazal gangliyon yapıları ile birlikte ortaya çıkarmak için bir lif disseksiyon yöntemi kullanarak özellikleri bir video kaynak oluşturdu. Bu yöntemin avantajları, tarif diğer diseksiyon teknikleri kullanarak ayırt etmek zor beyaz madde yolları sağlar biridir. Bu video sistematik beyin diseksiyon çoğaltılması yardım için işlemin açıklamasını sağlayan yazılı protokol eşlik ediyor. Bu kaynak eğitim eğitimciler ve öğrenciler hem için değerli bir anatomi sunmaktadır. Aşağıdaki talimatları izleyerek eğitimciler öğretim kaynakları oluşturabilir ve öğrencilerin kendi beyin diseksiyon uygulamalı pratik aktivite olarak üretmek için güdümlü. Biz bu video rehber öğrenci geliştirmek için öğretim Nöroanatomi dahil olmak tavsiye anlayışı morfoloji ve ventrikül klinik önemi.

Beyin bir anterior ve posterior bir bölüm ayırarak Ventriküler sistemi bu yöntemi kandan gösterir (Şekil 7 ve şekil 8). Arka bölümü bir iç görünüm içinden arka ve alt boynuzu görülebilir oksipital ve temporal loblar, sırasıyla genişletme teminat trigone'sunar (şekil 8). Olarak aktarılmasını ve fornix crura inferior temporal boynuz onun medial duvarı oluştu...

Watch this Scientific Journal Video about Exploring Deep Space - Uncovering the Anatomy of Periventricular Structures to Reveal the Lateral Ventricles of the Human Brain at JoVE.com

Exploring Deep Space - Uncovering the Anatomy of Periventricular Structures to Reveal the Lateral Ventricles of the Human Brain

Derin uzay - anatomi Lateral ventrikül insan beyninin ortaya çıkarmak için periventriküler yapıların ortaya çıkararak keşfetmek

Bu kağıt yüzeysel beyaz madde yolları ortaya çıkarmak için bir lif disseksiyon yöntem etkin kullanımı ve ventrikül Morfoloji, öğrenci anlama yardım etmek için üç boyutlu uzaydaki insan beyni yapılarının periventriküler gösteriyor.

Anatomy students are typically provided with two-dimensional (2D) sections and images when studying cerebral ventricular anatomy and students find this ...

exploring-deep-space-uncovering-anatomy-periventricular-structures-to

Research

JoVE Journal

Neuroscience

16.5K Görüntüleme.  Australian National University. Bu kağıt yüzeysel beyaz madde yolları ortaya çıkarmak için bir lif disseksiyon yöntem etkin kullanımı ve ventrikül Morfoloji, öğrenci anlama yardım etmek için üç boyutlu uzaydaki insan beyni yapılarının periventriküler gösteriyor.

Video: Exploring Deep Space - Uncovering the Anatomy of Periventricular Structures to Reveal the Lateral Ventricles of the Human Brain

Mouse Models of Periventricular Leukomalacia

We describe a protocol for establishing mouse models of periventricular leukomalacia (PVL). PVL is the predominant form of brain injury in premature infants and the most common antecedent of cerebral palsy. PVL is characterized by periventricular white matter damage with prominent oligodendroglial injury. Hypoxia/ischemia with or without systemic infection/inflammation are the primary causes of PVL. We use P6 mice to create models of neonatal brain injury by the induction of hypoxia/ischemia with or without systemic infection/inflammation with unilateral carotid ligation followed by exposure to hypoxia with or without injection of the endotoxin lipopolysaccharide (LPS). Immunohistochemistry of myelin basic protein (MBP) or O1 and electron microscopic examination show prominent myelin loss in cerebral white matter with additional damage to the hippocampus and thalamus. Establishment of mouse models of PVL will greatly facilitate the study of disease pathogenesis using available transgenic mouse strains, conduction of drug trials in a relatively high throughput manner to identify candidate therapeutic agents, and testing of stem cell transplantation using immunodeficiency mouse strains.

We established mouse models of periventricular leukomalacia (PVL), the predominant brain injury in premature infants characterized by periventricular white matter lesions. Hypoxia/ischemia with/without systemic infection are the primary causes of PVL. Unilateral carotid ligation and hypoxia exposure with/without lipopolysaccharide injection creates PVL-like lesions in P6 mice.

Periventriküler lökomalazi Fare Modelleri

We describe a protocol for establishing mouse models of periventricular leukomalacia (PVL). PVL is the predominant form of brain injury in premature ...

Nörobilim

Morphometric Analyses of Retinal Sections

Morphometric analyses of retinal sections have been used in examining retinal diseases. For examples, neuronal cells were significantly lost in the retinal ganglion cell layer (RGCL) in rat models with N-methyl-D-aspartate (NMDA)&#x2013;induced excitotoxicity1, retinal ischemia-reperfusion injury2 and glaucoma3. Reduction of INL and inner plexiform layer (IPL) thicknesses were reversed with citicoline treatment in rats' eyes subjected to kainic acid-mediated glutamate excitotoxicity4. Alteration of RGC density and soma sizes were observed with different drug treatments in eyes with elevated intraocular pressure3,5,6. Therefore, having objective methods of analyzing the retinal morphometries may be of great significance in evaluating retinal pathologies and the effectiveness of therapeutic strategies.
The retinal structure is multi-layers and several different kinds of neurons exist in the retina. The morphometric parameters of retina such as cell number, cell size and thickness of different layers are more complex than the cell culture system. Early on, these parameters can be detected using other commercial imaging software. The values are normally of relative value, and changing to the precise value may need further accurate calculation. Also, the tracing of the cell size and morphology may not be accurate and sensitive enough for statistic analysis, especially in the chronic glaucoma model. The measurements used in this protocol provided a more precise and easy way. And the absolute length of the line and size of the cell can be reported directly and easy to be copied to other files. For example, we traced the margin of the inner and outer most nuclei in the INL and formed a line then using the software to draw a 90 degree angle to measure the thickness. While without the help of the software, the line maybe oblique and the changing of retinal thickness may not be repeatable among individual observers. In addition, the number and density of RGCs can also be quantified. This protocol successfully decreases the variability in quantitating features of the retina, increases the sensitivity in detecting minimal changes.
 	This video will demonstrate three types of morphometric analyses of the retinal sections. They include measuring the INL thickness, quantifying the number of RGCs and measuring the sizes of RGCs in absolute value. These three analyses are carried out with Stereo Investigator (MBF Bioscience &mdash; MicroBrightField, Inc.). The technique can offer a simple but scientific platform for morphometric analyses.

This video demonstrates three types of morphometric analyses of the retina, which include measuring the inner nuclear layer thickness, quantifying the number of retinal ganglion cells (RGCs) and measuring the sizes of RGCs. The technique can offer a simple but scientific platform for morphometric analyses.

Retina Bölüm morfometrik Analizleri

Morphometric analyses of retinal sections have been used in examining retinal diseases. For examples, neuronal cells were significantly lost in the ...

Manual Drainage of the Zebrafish Embryonic Brain Ventricles

Cerebrospinal fluid (CSF) is a protein rich fluid contained within the brain ventricles. It is present during early vertebrate embryonic development and persists throughout life. Adult CSF is thought to cushion the brain, remove waste, and carry secreted molecules1,2. In the adult and older embryo, the majority of CSF is made by the choroid plexus, a series of highly vascularized secretory regions located adjacent to the brain ventricles3-5. In zebrafish, the choroid plexus is fully formed at 144 hours post fertilization (hpf)6. Prior to this, in both zebrafish and other vertebrate embryos including mouse, a significant amount of embryonic CSF (eCSF) is present . These data and studies in chick suggest that the neuroepithelium is secretory early in development and may be the major source of eCSF prior to choroid plexus development7.
eCSF contains about three times more protein than adult CSF, suggesting that it may have an important role during development8,9. Studies in chick and mouse demonstrate that secreted factors in the eCSF, fluid pressure, or a combination of these, are important for neurogenesis, gene expression, cell proliferation, and cell survival in the neuroepithelium10-20. Proteomic analyses of human, rat, mouse, and chick eCSF have identified many proteins that may be necessary for CSF function. These include extracellular matrix components, apolipoproteins, osmotic pressure regulating proteins, and proteins involved in cell death and proliferation21-24. However, the complex functions of the eCSF are largely unknown.
We have developed a method for removing eCSF from zebrafish brain ventricles, thus allowing for identification of eCSF components and for analysis of the eCSF requirement during development. Although more eCSF can be collected from other vertebrate systems with larger embryos, eCSF can be collected from the earliest stages of zebrafish development, and under genetic or environmental conditions that lead to abnormal brain ventricle volume or morphology. Removal and collection of eCSF allows for mass spectrometric analysis, investigation of eCSF function, and reintroduction of select factors into the ventricles to assay their function. Thus the accessibility of the early zebrafish embryo allows for detailed analysis of eCSF function during development.

We present a method to collect cerebrospinal fluid (CSF) and to create a system which lacks CSF within the embryonic zebrafish brain ventricular system. This allows for further examination of CSF composition and its requirement during embryonic brain development.

Zebra balığı Embriyonik Beyin Ventrikül Manuel Drenaj

Cerebrospinal fluid  (CSF) is a protein rich fluid contained within the brain ventricles. It is  present during early vertebrate embryonic development and ...

3D Modeling of the Lateral Ventricles and Histological Characterization of Periventricular Tissue in Humans and Mouse

The ventricular system carries and circulates cerebral spinal fluid (CSF) and facilitates clearance of solutes and toxins from the brain. The functional units of the ventricles are ciliated epithelial cells termed ependymal cells, which line the ventricles and through ciliary action are capable of generating laminar flow of CSF at the ventricle surface. This monolayer of ependymal cells also provides barrier and filtration functions that promote exchange between brain interstitial fluids (ISF) and circulating CSF. Biochemical changes in the brain are thereby reflected in the composition of the CSF and destruction of the ependyma can disrupt the delicate balance of CSF and ISF exchange. In humans there is a strong correlation between lateral ventricle expansion and aging. Age-associated ventriculomegaly can occur even in the absence of dementia or obstruction of CSF flow. The exact cause and progression of ventriculomegaly is often unknown; however, enlarged ventricles can show regional and, often, extensive loss of ependymal cell coverage with ventricle surface astrogliosis and associated periventricular edema replacing the functional ependymal cell monolayer. Using MRI scans together with postmortem human brain tissue, we describe how to prepare, image and compile 3D renderings of lateral ventricle volumes, calculate lateral ventricle volumes, and characterize periventricular tissue through immunohistochemical analysis of en face lateral ventricle wall tissue preparations. Corresponding analyses of mouse brain tissue are also presented supporting the use of mouse models as a means to evaluate changes to the lateral ventricles and periventricular tissue found in human aging and disease. Together, these protocols allow investigations into the cause and effect of ventriculomegaly and highlight techniques to study ventricular system health and its important barrier and filtration functions within the brain.

Using MRI scans (human), 3D imaging software, and immunohistological analysis, we document changes to the brain&#8217;s lateral ventricles. Longitudinal 3D mapping of lateral ventricle volume changes and characterization of periventricular cellular changes that occur in the human brain due to aging or disease are then modeled in mice.

İnsanlar ve Mouse Periventriküler Doku Yanal ventrikülleri ve histolojik Karakterizasyonu 3D Modelleme

The ventricular system carries and circulates cerebral spinal fluid (CSF) and facilitates clearance of solutes and toxins from the brain. The functional ...

Analysis of Gene Expression Changes in the Rat Hippocampus After Deep Brain Stimulation of the Anterior Thalamic Nucleus

Deep brain stimulation (DBS) surgery, targeting various regions of the brain such as the basal ganglia, thalamus, and subthalamic regions, is an effective treatment for several movement disorders that have failed to respond to medication. Recent progress in the field of DBS surgery has begun to extend the application of this surgical technique to other conditions as diverse as morbid obesity, depression and obsessive compulsive disorder. Despite these expanding indications, little is known about the underlying physiological mechanisms that facilitate the beneficial effects of DBS surgery. One approach to this question is to perform gene expression analysis in neurons that receive the electrical stimulation. Previous studies have shown that neurogenesis in the rat dentate gyrus is elicited in DBS targeting of the anterior nucleus of the thalamus1. DBS surgery targeting the ATN is used widely for treatment refractory epilepsy. It is thus of much interest for us to explore the transcriptional changes induced by electrically stimulating the ATN. In this manuscript, we describe our methodologies for stereotactically-guided DBS surgery targeting the ATN in adult male Wistar rats. We also discuss the subsequent steps for tissue dissection, RNA isolation, cDNA preparation and quantitative RT-PCR for measuring gene expression changes. This method could be applied and modified for stimulating the basal ganglia and other regions of the brain commonly clinically targeted. The gene expression study described here assumes a candidate target gene approach for discovering molecular players that could be directing the mechanism for DBS.

The mechanism underlying the therapeutic effects of Deep Brain Stimulation (DBS) surgery needs investigation. The methods presented in this manuscript describe an experimental approach to examine the cellular events triggered by DBS by analyzing the gene expression profile of candidate genes that can facilitate neurogenesis post DBS surgery.

Ön Talamusun Çekirdek Derin Beyin Stimülasyon sonra Sıçan Hippocampus Gen İfade Değişim Analizi

Deep brain stimulation (DBS) surgery, targeting various regions of the brain such as the basal ganglia, thalamus, and subthalamic regions, is an effective ...

Investigating the Function of Deep Cortical and Subcortical Structures Using Stereotactic Electroencephalography: Lessons from the Anterior Cingulate Cortex

Stereotactic Electroencephalography (SEEG) is a technique used to localize seizure foci in patients with medically intractable epilepsy. This procedure involves the chronic placement of multiple depth electrodes into regions of the brain typically inaccessible via subdural grid electrode placement. SEEG thus provides a unique opportunity to investigate brain function. In this paper we demonstrate how SEEG can be used to investigate the role of the dorsal anterior cingulate cortex (dACC) in cognitive control. We include a description of the SEEG procedure, demonstrating the surgical placement of the electrodes. We describe the components and process required to record local field potential (LFP) data from consenting subjects while they are engaged in a behavioral task. In the example provided, subjects play a cognitive interference task, and we demonstrate how signals are recorded and analyzed from electrodes in the dorsal anterior cingulate cortex, an area intimately involved in decision-making. We conclude with further suggestions of ways in which this method can be used for investigating human cognitive processes.

Stereotactic Electroencephalography (SEEG) is an operative technique used in epilepsy surgery to help localize seizure foci. It also affords a unique opportunity to investigate brain function. Here we describe how SEEG can be used to investigate cognitive processes in human subjects.

Stereotaktik Elektroensefalografi kullanarak Derin KORTİKAL Fonksiyonu ve subkortikal yapıları incelenmesi: Ön Singulat Korteks Dersler

Stereotactic Electroencephalography (SEEG) is a technique used to localize seizure foci in patients with medically intractable epilepsy. This procedure ...

Live Imaging of the Ependymal Cilia in the Lateral Ventricles of the Mouse Brain

Multiciliated ependymal cells line the ventricles in the adult brain. Abnormal function or structure of ependymal cilia is associated with various neurological deficits. The current ex vivo live imaging of motile ependymal cilia technique allows for a detailed study of ciliary dynamics following several steps. These steps include: mice euthanasia with carbon dioxide according to protocols of The University of Toledo&#8217;s Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC); craniectomy followed by brain removal and sagittal brain dissection with a vibratome or sharp blade to obtain very thin sections through the brain lateral ventricles, where the ependymal cilia can be visualized. Incubation of the brain&#8217;s slices in a customized glass-bottom plate containing Dulbecco&#8217;s Modified Eagle&#8217;s Medium (DMEM)/High-Glucose at 37 &#176;C in the presence of 95%/5% O2/CO2 mixture is essential to keep the tissue alive during the experiment. A video of the cilia beating is then recorded using a high-resolution differential interference contrast microscope. The video is then analyzed frame by frame to calculate the ciliary beating frequency. This allows distinct classification of the ependymal cells into three categories or types based on their ciliary beating frequency and angle. Furthermore, this technique allows the use of high-speed fluorescence imaging analysis to characterize the unique intracellular calcium oscillation properties of ependymal cells as well as the effect of pharmacological agents on the calcium oscillations and the ciliary beating frequency. In addition, this technique is suitable for immunofluorescence imaging for ciliary structure and ciliary protein localization studies. This is particularly important in disease diagnosis and phenotype studies. The main limitation of the technique is attributed to the decrease in live motile cilia movement as the brain tissue starts to die.

Using high-resolution differential interference contrast (DIC) microscopy, an ex vivo observation of the beating of motile ependymal cilia located within the mouse brain ventricles is demonstrated by live-imaging. The technique allows a recording of the unique ciliary beating frequency and beating angle as well as their intracellular calcium oscillation pacing properties.

Fare Beyin lateral ventrikül Ependimal Cilia Canlı Görüntüleme

Multiciliated ependymal cells line the ventricles in the adult brain. Abnormal function or structure of ependymal cilia is associated with various ...

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the molecular and cellular basis of higher brain functions. A whole-mount preparation of adult brains with well-preserved morphology is critical for such whole brain-based studies, but can be technically challenging and time-consuming. This protocol describes an easy-to-learn, one-step dissection approach of an adult fly head in less than 10 s, while keeping the intact brain attached to the rest of the body to facilitate subsequent processing steps. The procedure helps remove most of the eye and tracheal tissues normally associated with the brain that can interfere with the later imaging step, and also places less demand on the quality of the dissecting forceps. Additionally, we describe a simple method that allows convenient flipping of the mounted brain samples on a coverslip, which is important for imaging both sides of the brains with similar signal intensity and quality. As an example of the protocol, we present an analysis of dopaminergic (DA) neurons in adult brains of WT (w1118) flies. The high efficacy of the dissection method makes it particularly useful for large-scale adult brain-based studies in Drosophila.

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

The adult Drosophila brain is a valuable system for studying neuronal circuitry, higher brain functions, and complex disorders. An efficient method to dissect whole brain tissue from the small fly head will facilitate brain-based studies. Here we describe a simple, one-step dissection protocol of adult brains with well-preserved morphology.

Basit Bir adım Yetişkin Tüm montaj Hazırlama Diseksiyon Protokolü<em&gt; Drosophila</em&gt; Brain

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the ...

Sublimation of DAN Matrix for the Detection and Visualization of Gangliosides in Rat Brain Tissue for MALDI Imaging Mass Spectrometry

Sample preparation is key for optimal detection and visualization of analytes in Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization (MALDI) Imaging Mass Spectrometry (IMS) experiments. Determining the appropriate protocol to follow throughout the sample preparation process can be difficult as each step must be optimized to comply with the unique characteristics of the analytes of interest. This process involves not only finding a compatible matrix that can desorb and ionize the molecules of interest efficiently, but also selecting the appropriate matrix deposition technique. For example, a wet matrix deposition technique, which entails dissolving a matrix in solvent, is superior for desorption of most proteins and peptides, whereas dry matrix deposition techniques are particularly effective for ionization of lipids. Sublimation has been reported as a highly efficient method of dry matrix deposition for the detection of lipids in tissue by MALDI IMS due to the homogeneity of matrix crystal deposition and minimal analyte delocalization as compared to many wet deposition methods 1,2. Broadly, it involves placing a sample and powdered matrix in a vacuum-sealed chamber with the samples pressed against a cold surface. The apparatus is then lowered into a heated bath (sand or oil), resulting in sublimation of the powdered matrix onto the cooled tissue sample surface. Here we describe a sublimation protocol using 1,5-diaminonaphthalene (DAN) matrix for the detection and visualization of gangliosides in the rat brain using MALDI IMS.

A protocol for the sublimation of DAN matrix onto rat brain tissue for the detection of gangliosides using MALDI Imaging Mass Spectrometry is presented.

MALDI Görüntüleme Kütle Spektrometre Rat Beyin Dokusu içinde gangliositler Saptanmasında ve Görselleştirme DAN Matrix Sublime

Sample preparation is key for optimal detection and visualization of analytes in Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization (MALDI) Imaging Mass ...

Recording Synaptic Plasticity in Acute Hippocampal Slices Maintained in a Small-volume Recycling-, Perfusion-, and Submersion-type Chamber System

Even though experiments on brain slices have been in use since 1951, problems remain that reduce the probability of achieving a stable and successful analysis of synaptic transmission modulation when performing field potential or intracellular recordings. This manuscript describes methodological aspects that might be helpful in improving experimental conditions for the maintenance of acute brain slices and for recording field excitatory postsynaptic potentials in a commercially available submersion chamber with an outflow-carbogenation unit. The outflow-carbogenation helps to stabilize the oxygen level in experiments that rely on the recycling of a small buffer reservoir to enhance the cost-efficiency of drug experiments. In addition, the manuscript presents representative experiments that examine the effects of different carbogenation modes and stimulation paradigms on the activity-dependent synaptic plasticity of synaptic transmission.

This protocol describes the stabilization of the oxygen level in a small volume of recycled buffer and methodological aspects of recording activity-dependent synaptic plasticity in submerged acute hippocampal slices.

Sinaptik plastisite akut Hipokampal dilimleri bir küçük hacimli geri dönüşüm-, perfüzyon- ve batma-tipi oda sistemi içinde tutulan kayıt

Even though experiments on brain slices have been in use since 1951, problems remain that reduce the probability of achieving a stable and successful ...