Name: monitoring the effect of osmotic stress on secretory vesicles and exocytosis
Uploaded: 2018-02-19T13:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 8 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Monitoring the Effect of Osmotic Stress on Secretory Vesicles and Exocytosis at JoVE.com

Yazarlar İsveçli Araştırma Konseyi (349-2007-finansman için 8680) ve Dalsjöfors Kött AB (Dalsjöfors, İsveç) sığır adrenal bezleri bağış için teşekkür etmek istiyorum.

1. hücre kültürü Enzimatik sindirim böbreküstü bezleri tarafından izole sığır kromafin hücre
<ol><li>Kromafin hücre sığır adrenal bezleri toplanan yalıtmak için hücreleri % 70 etanol çözüm ile sterilize. Dış görev yağ ve bağ dokusu bir neşter kullanarak kırpın. 37 ° C'ye thermostated oldu Locke'nın çözüm (NaCl 154 mM, KCl 5.6 mM, NaHCO3 3.6 mM, hydroxyethyl piperazineethanesulfonic asit (HEPES) pH 7.4 5.6 mM) kullanarak adrenal damarlar kan kaldırmak için durulama</li>
	<li>Doku sindirmek için her bezi yaklaşık 2.5 mL sıcak steril filtre % 0,2 collagenase P çözüm kullanarak adrenal ven yoluyla enjekte edilerek açıldığı ve doku 37 ° C'de 20 dk için kuluçkaya Bezleri medulla sindirim süreci tamamlandıktan emin olmak için incelemek. Doku yumuşak ve değil gergin hissetmeniz gerekir.</li>
	<li>Kapalı bezleri boyuna yönde kırpma tarafından sindirilmiş medulla toplamak. Bir neşter kullanarak medulla doku kıyma. Doku süspansiyon kevgir üzerinde filtre ve Locke'nın çözüm collagenase s. etkinliğini azaltmak için yaklaşık 50 mL birime seyreltik</li>
	<li>Hücreleri bir santrifüj oda sıcaklığında 10 dakika içinde 300 x g de cips ve 50 mL steril test tüpleri toplamak. Elde edilen Pelet 20 mL Locke'un çözümde yeniden askıya alma ve çözüm üzerinde bir steril 100 µm naylon mesh tüpler içine filtre.</li>
	<li>Kromafin hücre süspansiyon ile steril Percoll (1:1) karışımı ve hücre çözümü 18.600 x g için oda sıcaklığında 20 dk, santrifüj kapasitesi. Yoğunluk gradient üst tabakası toplamak ve çözüm üzerinde 100 µm naylon mesh tüpler içine filtre.</li>
	<li>Percoll dışlamak için Pelet Locke'un çözümde yeniden askıya almadan önce Locke'nın çözüm ve oda sıcaklığında 10 dakika için 300 x g, santrifüj ile hücre süspansiyon oranında seyreltin. Yaklaşık 4 milyon hücre/mL izole hücre süspansiyon tahmini hücre yoğunluğudur.</li>
	<li>Amperometric kaydı ekzositozu ve hücre içi sitometresi ölçümlerin, kollajen IV plaka kromafin hücre yoğunluğu yaklaşık 17,5 × 103 hücreleri/cm2 60 mm plastik yemekler kaplı ve % 5 CO2 37 ° C'de hücreler kuluçkaya çevre. Elektrokimyasal deneyler hücre kültürü 1-3 gün içinde gerçekleştirin.</li>
	<li>Deneyler, 75 cm2 hücre kültür şişe şişe başına 7-8 milyon hücre yoğunluğu, plaka kromafin hücre TEM için Imaging ve % 5 CO2 ortamında 37 ° C'de 1 gün için kuluçkaya.</li>
</ol>2. tek hücre ekzositozu Amperometry deneyleri24
<ol><li>Bu deneyler için karbon fiber microelectrodes imal etmek, bir bardak bu deneylerde kullanılan baş aşamasında kapiller elektrot tutucu için uygun bir dış çap ile alın. Borosilikat cam kılcal bir dış çap 1.2 mm ve bir iç çapı 0.69 mm ile kullanın.<ol>
<li>Kılcal uçlarına birini su aspirasyon tüp bağlayın. Bir parça kağıda beyaz görselleştirme geliştirmek için gibi bir şey üzerinde 5 µm çapı karbon elyaf yerleştirin.</li>
		<li>Tek bir karbon fiber tanımlamak ve karbon fiber karbon fiber ücretsiz sonu birbirine kılcal açık uçlu konumlandırma süre tutmak için parmağını bile bir uç fiber basılı tutun. Hafifçe böylece her iki ucunda da kılcal damar karbon fiber sopa karbon fiber kapiller bardağına Aspire edin. Aspirasyon kuvvet geri çekil.</li>
	</ol></li>
	<li>Karbon fiber kılcal bir micropipette çektirmenin yerleştirin ve cam kapiller iki ayrı cam pipet ipuçları çek. İki cam ipuçları arasında bağlı karbon fiber kesmek için karbon fiber kesip iki karbon fiber microelectrodes kazanç makas kullanın.</li>
	<li>Mikroskop altında karbon fiber karbon lif lif bir neşter kullanarak cam kapiller kaplama üzerinden nerede uzanan kenarındaki el ile kesme sağlayan kalın bir mikroskop slayt üzerine yerleştirin.</li>
	<li>Karbon fiber, cam kaplamalı karbon fiber bahşiş bırakarak kesim sonrası bir kaç mm elektrot uç bir epoksi çözüm epoksi çekin ve karbon fiber ve çevresindeki cam arasındaki olası herhangi bir açık alan mühür için 10 dakika için ekleyin. Elektrot elektrot ucunda hantal tutkal damla önleyebilirsiniz için yavaş yavaş epoksi çözüm dışarı kaldırın.</li>
	<li>Elektrotlar, elektrotlar bağlı çift taraflı yapışkan ısıya dayanıklı bant ile sahibi (örneğin, düz bir tahta sopa) yerleştirin. Epoksi tedavi elektrotlar gecede 100 ° C'de bir fırında pişirin İpuçları kolayca zarar bir yüzeye temas gelirlerse elektrot Yani elektrotlar sağlamak her zaman güvenli bir şekilde nerede elektrotlar yerde sabit değildir ve ipuçları Dokunulmaktan riske değil bir tutucu kullanılarak depolanır.</li>
	<li>Bir düz disk elektrot yüzeyi elde etmek için elektrot bir microgrinder sahibi yerleştirin ve karbon fiber elektroda 45 °'in bir melek, eğim. Eğim sonra daha sonra disk elektrot yüzeyi 45 ° açıyla elektrot hücre ekzositozu ölçüm için yakınındaki yerleştirirken bulmak nasıl bilmek kalıcı bir kalem kullanarak, üst kat üzerinde kılcal işaretleyin. Not: Bu deneyler olduğu gibi bu adım önemlidir, oval disk elektrot düz üstünde tepe-in onun yüzey paralel Petri kabına yüzeyine hücrelerle yerleştirilmesi gerekiyor. Ayrıca, beveling elektrotlar bir taze ve temiz elektrot yüzey sağlamak için deneyler ile aynı gün yapılır.</li>
	<li>Kullanmadan önce çevrimsel voltammetry kullanarak geçerli kararlı duruma izlemek için bir test çözüm (örneğin, 0,1 mM dopamin PBS arabelleği (pH 7,4)) her karbon fiber elektrot yerleştirin. Bir döngüsel voltammetry inceden inceye gözden geçirmek için bir üçgen potansiyel dalga biçimi uygulamak için 0,8 V V-0.2 Ag/AgCl referans elektrot 100 mV/s'de iyi tepki Kinetik veri sağlamak için bu elde edilir vs 5 mikron çapında disk için teorik olarak hesaplanan değerleri ile anlaşma gelmektedir karbon fiber elektrot25.</li>
	<li>Ekzositozu amperometry kaydı ile ters bir mikroskop üzerine kültürlü kromafin hücre Petri kabına yerleştirin. Bu kayıt, ölçülen çok küçük akımları nedeniyle amperometry sırasında elektronik gürültü ortadan kaldırmak için bir Faraday kafesi ile kurmak mikroskop korumak önemlidir. Mikroskop sahne Isıtma sıcaklığı 37 ° C hücre deneyler sırasında korumak için kullanın.</li>
	<li>Bir düşük gürültü düzeltme eki kelepçe aleti 700 sürekli potansiyelini uygulamak için kullanın Ayrıca çalışma elektrot uzak Petri kabına yerleştirilir bir Ag/AgCl referans elektrot karşı çalışma elektrot, mV. Kayıt ekzositozu kromafin hücre için 10 kHz sinyal digitalize ve bir iç düşük geçiş kaydedilen sinyali filtrelemek için 2 kHz Bessel filtre uygulayın.</li>
	<li>Tek hücre kayıt amperometric gerçekleştirmek için taze eğimli ve test edilmiş karbon fiber disk elektrot elektrot tutucu potansiyostat ile kullanılan baş Sahne Alanı'nın bağlayın.<ol>
<li>Yavaşça elektrot ile düz oval disk şekli elektrot yüzey hücre apikal yüzeye aşağı bakacak şekilde yerleştirin ve elektrot bir micromanipulator kullanarak hücre membran temas yerleştirin.</li>
		<li>Elektrot yerleştirme hücre membran üstüne üzerine neden olduğu hücre deformasyon izleyerek hücre elektrot mesafe ayarlamak ve dikkatle elektrot hücre bir şekli özgün hücre şeklini yakın nerede kavuşur uzaklığa geri çek . Kinetik ve nicel kayıt için ideal bir synapse kimyasal ürün postsinaptik algılanması için benzer koşullar olan elektrot ve hücre yüzey ayırmak için 100 nanometre ince bir sıvı film oluşturmaktır.</li>
	</ol></li>
	<li>Ekzositozu hücrelere uyarmak için bir cam micropipette 2-3 µm çapı 5 mM BaCl2 çözüm en az 20 µm etkilemek için pipet ucundan sızıntı herhangi bir çözüm önlemek için hücreye, uzak mesafeden dolu, uç boyutu getirin deneme ve 5 s enjeksiyon nabzı 5 mm BaCl2 çözüm ekzositozu hücresine uyarmak için hücre yüzeyinde uygulayın.</li>
	<li>Ekzositozu süreci tersine çevrilebilir ozmotik basınç etkilerini çalışmaya, 310 mOsm/kg ISO ozmotik basınç ve ayarlayarak yapılan bir hipertonik arabellek izotonik arabellek çözümünü (150 mM NaCl, 5 mM KCl, 1,2 mM MgCl2, 5 mM glikoz, 10 mM HEPES, pH 7,4) hazırlamak 730 mOsm/kg için karşılık gelen bir osmolalite izotonik arabellek Çözümle NaCl konsantrasyonu.</li>
	<li>Hücreleri izotonik arabellekte yerleştirin ve yaklaşık 3 dakika için başlatılan ekzositozu aktivite sırasında amperometric geçerli geçişler kaydederken baryum enjeksiyonu nabzı uygulayarak ekzositozu hücresine teşvik.<ol>
<li>Hipertonik koşulları izotonik koşullarında ekzositozu yanıtlarını karşılaştırmak için hipertonik arabellek çözüm 10 min için hücreleri kuluçkaya ve bundan sonra ekzositozu teşvik ve amperometric kayıt 3 dk gerçekleştirmek için baryum enjeksiyonu nabzı uygulayın.</li>
		<li>Tersine çevrilebilir yanıt hücre için hücre izotonik arabellek çözüm 10 min için tekrar kuluçkaya ve bir 5'ler uygulayarak hücreleri uyarmak baryum enjeksiyonu nabız ve hücre ekzositozu yanıtından kayıt 3 dk gerçekleştirin.</li>
	</ol></li>
	<li>Denetim birden çok baryum elektrodlar tarafından ekzositozu etkinliği üzerindeki etkisini belirlemek için deneyler yapmak gibi bir amperometric kaydı üç ardışık ekzositozu sürümü aynı BaCl2 elektrodlar yerleştirilir izotonik arabellek hücre ve farklı osmolarite ile üst üste hücre kuluçka deneyler için aynı zaman iletişim kuralını kullanarak.</li>
</ol>3. hücre içi elektrokimyasal sitometresi24,26
<ol><li>Elektrotlar vezikül quantal boyutu ölçümler için imal etmek, aynı malzeme kullanımı ve 5 mikron çapında karbon fiber elektrot göre bölümler 2,1 ve 2,2 elektrot imalat amperometric ekzositozu için yer alan açıklamalar içinde hazırlanmaya başlayın ölçümleri.</li>
	<li>Mikroskop altında bir neşter 30 100 µm arasında bir uzunlukta karbon fiber cam ucundan yapışkanlık dışarı sol karbon fiber cam ucu dışarı uzanan kesmek için kullanın.</li>
	<li>Karbon fiber elektrot alev kazınmış ucu hazırlamak için bir bütan alev kullanın. Bir eşit olarak kazınmış elde etmek için silindirik şekilli elektrot uç, silindirik şekilli karbon fiber elektrot döner süre tutun ve karbon ucu kırmızı oluşturuncaya dek karbon fiber cam mavi bütan alev kenarına uzanan yer Renk. Bu kez daha az 2 alır s. Eğer başarılı olursa, bir kabartma elektrot uç boyutu 50-100 nm çapında (öyle uç bir SEM görüntüsü şekil 5' teBgösterilir) sonuçlanır. Aşındırma alev sonra elektrot elektrot uç değerlendirmek için mikroskop altında yerleştirin.</li>
	<li>Silindirik nanotip elektrot bir 15 s daldırma elektrot ucunu aseton çözümünü ardından 3 dk için epoksi çözüm ekleyin. Bu epoksi epoksi baskılı karbon fiber elektrot yüzeyi kapalı aseton temizler iken karbon fiber ve yalıtım cam kapiller duvarı arasındaki potansiyel boşluk boşluk imzalamaya sağlar. Epoksi tedavi etmek için elektrotlar bir fırın gecede 100 ° C'de pişirin</li>
	<li>Kullanmadan önce 2.7 bölümünde açıklandığı gibi her karbon fiber elektrot kararlı duruma mevcut test çevrimsel voltammetry kullanarak. Deneyler için yalnızca görüntülemek bir plato çevresinde geçerli elektrotları kullanın 1,5-2,5 nA27.</li>
	<li>Hücreler arası amperometry ölçüleri, hücrelerin mikroskop 2.8 içinde açıklandığı gibi yerleştirin ve potansiyostat 2.9 açıklandığı gibi aynı deneysel ayarlarını kullanın.</li>
	<li>Hücre içi amperometric ölçüm gerçekleştirmek ve hücre için önemli fiziksel zarar önlemek için nanotip silindirik elektrot hücre içine ekleyerek eklemek için nazik bir mekanik kuvvet, elektrot hücre plazma ile itmek için yeterli membran ve bir micromanipulator kullanarak hücre sitoplazma içine.</li>
	<li>Sonra ekleme ve silindirik elektrot kapalı hücre zarı ile canlı hücreden yerinde amperometric kaydını başlat seçimini yapın. Oksidasyon, potansiyel bu elektrot için uygulanır, veziküller elektrot yüzeyine absorbe ve stochastically rüptürü.  Bu nedenle, bu işlem başlatmak için uyarıcı türlü için gerek yoktur.</li>
	<li>Vezikül quantal boyutu ozmotik etkisini belirlemek için bir grup izotonik ve deneysel durumu 2,13 bölümünde açıklandığı gibi kullanarak hipertonik arabellek inkübe hücre hücre içi sitometresi ölçümleri toplamak.</li>
</ol>4. veri analizi Amperometry kayıtları
<ol><li>Ekzositozu ve hücre içi vezikül quantal boyut analizi kaydedilen amperometry verileri çözümlemek için geçerli geçişler analiz zaman izleme karşı kaydedilen geçerli bu Kinetik sağlar bir yazılım programı kullanmak en yüksek parametreleri ve bireysel geçerli tepeler için entegre toplam ücret belirlenebilir. Veri analizi için veri analiz programı için Igor28yazılı Sulzer laboratuvarda geliştirilen yazılımı kullandık.</li>
	<li>Amperometric analiz sivri, üç kez kök ortalama kare (RMS)'in standart sapması her kayıt için gürültü doruklarına için bir eşik sınırı seçin.</li>
	<li>Amperometric sivri el ile Gauss şeklini izlemesini değil, birleştirilmiş ekzositozu olaylar sonucu, ve sadece üç kez bir eşik ile Gauss şekilli çiviler kabul sivri çift yanlış sivri önlemek üzere her hücre kayıt toplamak RMS ses daha yüksek.</li>
	<li>Toplamak için tek amperometric başına toplam ücret verileri zirve ve Faraday'lar hukuk kullanma (N = QnF) tespit ekzositozu ya da hücre içi tek vezikül rüptürü olay, N mol nerede katekoiamin nörotransmitter molar miktarını hesaplamak için Redoks reaksiyonu elektrot yüzeyi, Q geçmekte nörotransmitter her spike altında n tespit toplam ücret = = Redoks reaksiyonu transfer elektron sayısı (n = 2 katekolaminler için) ve Faraday´s sürekli F = 96485 C/mol.</li>
	<li>İlk olay her hücre için başına tespit ortalama ücret hesaplama tarafından toplanan verileri istatistiksel çözümleme gerçekleştirme. Sonra hücreleri arasındaki fark, hücreler arasında ortalama masrafı hesaplamak ve öğrenci'nin t-Testi eşit olmayan varyans varsayarak hücreler arasında kullanın. Bu çalışmada MATLAB programı istatistiksel analiz için kullanılan.</li>
</ol>5. TEM görüntüleme vezikül boyut analizi için
<ol><li>Hücre farklı ozmotik koşullar, TEM görüntüleme gerçekleştirmek için önce izotonik veya hipertonik tampon % 5 CO2 ortamında hücreleri kimyasal fiksasyonu önce 37 ° C'de 10 dakika hücrelerde kuluçkaya.</li>
	<li>29Karnovsky sabitleştirici yöntemi kullanarak hücre fiksasyon gerçekleştirin. Bu yöntemi kullanarak, hücreleri % 0,01 sodyum azid, % 1 formaldehit ve örnek 4 ° C'de saklanabilecek % 1.25 oxazolidin içeren bir çözüm ile kuluçkaya</li>
	<li>Fiksasyon sonra 0.15 M sodyum cacodylate arabellek hücrelerle yıkayın.</li>
	<li>Hücre leke örnekleri fiksasyon sonrası ve TEM görüntüleme için hazırlık olarak, 2 h 1 h kuluçka % 0.5 uranyl asetat çözüm karanlık oda sıcaklığında ardından 4 ° C'de % 1 Osmiyum tetroxide üçün hücrelerle kuluçkaya.</li>
	<li>Son fiksasyon adımda hücreleri ilk % 100 etanol hücrelerde durulama tarafından kurutmak ve hücreleri aseton ile durulayın.</li>
	<li>Epoxyresin içinde hücre örnekleri katıştır ve bundan sonra 30-40 dk için 4.000 x g de aralıklarla gerçekleştirmek ve 15 h 60 ° C'de 48 h kuluçka takip için 40 ° C'de polimerize için hücre örneği izin</li>
	<li>Görüntüleme için hazırlık olarak, bölüm hücre örnek gömülü Agar 100 reçine dilimler halinde 60 kalınlığı ile bir ultramicrotome kullanarak nm.</li>
	<li>4 dk. 20 tarafından takip için bir %4 uranyl acetate/25% etanol çözüm için hücreleri Konu su ile durulama, s. Reynolds kurşun sitrat 3 dk. 20 tarafından takip için hücrelerle yıkama su ile durulama, s.</li>
	<li>Transmisyon elektron mikroskobu görüntüleme hücre örneklerinin gerçekleştirin. Bizim deneylerde biz-si olmak kullanılmış faaliyet gösterdi bir transmisyon elektron mikroskobu 120 kV.</li>
	<li>Veziküller nüfusu hücre sitoplazma görüntüler hücre ultrastructure gösteren bir hücre bölümü kaydedilen her görüntüden önce kaydedilen ölçek çubuğu her TEM Görüntüdeki piksel ilgili tarafından görüntü piksel boyutu kalibre edin. Her görüntü hücre izotonik veya hipertonik koşullara maruz vezikül boyutlarda belirlemek için görüntüleme yazılımı kullanın. Bizim deneyler, yazılım ImageJ görüntü analizi için kullanılır. Bu hücre TEM görüntülerden hücresel ultrastructure görüntü analizi için düşünülmesi ve önceden Almers´s laboratuvar30tarafından açıklanan hücre bölümleri kalınlığına göre bu ölçümlerin boyutu ayarlama ihtiyacı dikkati çekiyor.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Albillos, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+exocytotic+event+in+chromaffin+cells+revealed+by+patch+amperometry.">The exocytotic event in chromaffin cells revealed by patch amperometry.</a> Nature. 389 (6650), 509-512 (1997).</li><li>Dunevall, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterizing+the+Catecholamine+Content+of+Single+Mammalian+Vesicles+by+Collision-Adsorption+Events+at+an+Electrode.">Characterizing the Catecholamine Content of Single Mammalian Vesicles by Collision-Adsorption Events at an Electrode.</a> J Am Chem Soc. 137 (13), 4344-4346 (2015).</li><li>Crivellato, E., Nico, B., Ribatti, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+chromaffin+vesicle:+advances+in+understanding+the+composition+of+a+versatile,+multifunctional+secretory+organelle.">The chromaffin vesicle: advances in understanding the composition of a versatile, multifunctional secretory organelle.</a> Anat Rec. 291 (12), 1587-1602 (2008).</li><li>Morris, S., Schultens, H., Schober, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+osmometer+model+for+changes+in+the+buoyant+density+of+chromaffin+granules.">An osmometer model for changes in the buoyant density of chromaffin granules.</a> Biophys J. 20 (1), 33 (1977).</li><li>Winkler, H., Smith, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+chromaffin+granule+and+the+storage+of+catecholamines.">The chromaffin granule and the storage of catecholamines.</a> Handbook of Physiology. 6 (7), 321-399 (1975).</li><li>Phillips, J., Allison, Y., Morris, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+distribution+of+calcium,+magnesium,+copper+and+iron+in+the+bovine+adrenal+medulla.">The distribution of calcium, magnesium, copper and iron in the bovine adrenal medulla.</a> Neurosci. 2 (1), 147-152 (1977).</li><li>Est&#233;vez-Herrera, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ATP:+The+crucial+component+of+secretory+vesicles.">ATP: The crucial component of secretory vesicles.</a> Proc Natl Acad Sci. 113 (28), 4098-4106 (2016).</li><li>Machado, J. D., Camacho, M., Alvarez, J., Borges, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+role+of+intravesicular+calcium+in+the+motion+and+exocytosis+of+secretory+organelles.">On the role of intravesicular calcium in the motion and exocytosis of secretory organelles.</a> Commun integr biol. 2 (2), 71-73 (2009).</li><li>Toll, L., Howard, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+Mg2++ion-activated+ATPase+and+a+pH+gradient+in+the+storage+of+catecholamines+in+synaptic+vesicles.">Role of Mg2+ ion-activated ATPase and a pH gradient in the storage of catecholamines in synaptic vesicles.</a> Biochemistry. 17 (13), 2517-2523 (1978).</li><li>Terland, O., Flatmark, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ascorbate+as+a+natural+constituent+of+chromaffin+granules+from+the+bovine+adrenal+medulla.">Ascorbate as a natural constituent of chromaffin granules from the bovine adrenal medulla.</a> FEBS letters. 59 (1), 52-56 (1975).</li><li>Camacho, M., Machado, J. D., Montesinos, M. S., Criado, M., Borges, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intragranular+pH+rapidly+modulates+exocytosis+in+adrenal+chromaffin+cells.">Intragranular pH rapidly modulates exocytosis in adrenal chromaffin cells.</a> J Neurochem. 96 (2), 324-334 (2006).</li><li>Jankowski, J. A., Schroeder, T. J., Ciolkowski, E. L., Wightman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temporal+characteristics+of+quantal+secretion+of+catecholamines+from+adrenal+medullary+cells.">Temporal characteristics of quantal secretion of catecholamines from adrenal medullary cells.</a> J Biol Chem. 268 (20), 14694-14700 (1993).</li><li>Daniels, A., Williams, R., Wright, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+character+of+the+stored+molecules+in+chromaffin+granules+of+the+adrenal+medulla:+a+nuclear+magnetic+resonance+study.">The character of the stored molecules in chromaffin granules of the adrenal medulla: a nuclear magnetic resonance study.</a> Neurosci. 3 (6), 573-585 (1978).</li><li>Borges, R., Travis, E. R., Hochstetler, S. E., Wightman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+external+osmotic+pressure+on+vesicular+secretion+from+bovine+adrenal+medullary+cells.">Effects of external osmotic pressure on vesicular secretion from bovine adrenal medullary cells.</a> J Biol Chem. 272 (13), 8325-8331 (1997).</li><li>Troyer, K. P., Mundorf, M. L., Fries, H. E., Wightman, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Separating+vesicle+fusion+and+exocytosis+in+hypertonic+conditions.">Separating vesicle fusion and exocytosis in hypertonic conditions.</a> Ann NY Acad Sci. 971 (1), 251-253 (2002).</li><li>Brodwick, M. S., Curran, M., Edwards, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+osmotic+stress+on+mast+cell+vesicles+of+the+beige+mouse.">Effects of osmotic stress on mast cell vesicles of the beige mouse.</a> J Membrane Biol. 126 (2), 159-169 (1992).</li><li>Amatore, C., Arbault, S., Bonifas, I., Lemaitre, F., Verchier, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vesicular+exocytosis+under+hypotonic+conditions+shows+two+distinct+populations+of+dense+core+vesicles+in+bovine+chromaffin+cells.">Vesicular exocytosis under hypotonic conditions shows two distinct populations of dense core vesicles in bovine chromaffin cells.</a> Chem Phys Chem. 8 (4), 578-585 (2007).</li><li>Hampton, R. Y., Holz, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+changes+in+osmolality+on+the+stability+and+function+of+cultured+chromaffin+cells+and+the+possible+role+of+osmotic+forces+in+exocytosis.">Effects of changes in osmolality on the stability and function of cultured chromaffin cells and the possible role of osmotic forces in exocytosis.</a> J Cell Biol. 96 (4), 1082-1088 (1983).</li><li>Troyer, K. P., Wightman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temporal+separation+of+vesicle+release+from+vesicle+fusion+during+exocytosis.">Temporal separation of vesicle release from vesicle fusion during exocytosis.</a> J Biol Chem. 277 (32), 29101-29107 (2002).</li><li>Pihel, K., Travis, E. R., Borges, R., Wightman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exocytotic+release+from+individual+granules+exhibits+similar+properties+at+mast+and+chromaffin+cells.">Exocytotic release from individual granules exhibits similar properties at mast and chromaffin cells.</a> Biophys J. 71 (3), 1633 (1996).</li><li>Jankowski, J. A., Finnegan, J. M., Wightman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+ionic+composition+alters+kinetics+of+vesicular+release+of+catecholamines+and+quantal+size+during+exocytosis+at+adrenal+medullary+cells.">Extracellular ionic composition alters kinetics of vesicular release of catecholamines and quantal size during exocytosis at adrenal medullary cells.</a> J Neurochem. 63 (5), 1739-1747 (1994).</li><li>Leszczyszyn, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nicotinic+receptor-mediated+catecholamine+secretion+from+individual+chromaffin+cells.+Chemical+evidence+for+exocytosis.">Nicotinic receptor-mediated catecholamine secretion from individual chromaffin cells. Chemical evidence for exocytosis.</a> J Biol Chem. 265 (25), 14736-14737 (1990).</li><li>Wightman, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temporally+resolved+catecholamine+spikes+correspond+to+single+vesicle+release+from+individual+chromaffin+cells.">Temporally resolved catecholamine spikes correspond to single vesicle release from individual chromaffin cells.</a> P Natl Acad Sci. 88 (23), 10754-10758 (1991).</li><li>Fathali, H., Dunevall, J., Majdi, S., Cans, A. -. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+osmotic+stress+reduces+the+vesicle+size+while+keeping+a+constant+neurotransmitter+concentration.">Extracellular osmotic stress reduces the vesicle size while keeping a constant neurotransmitter concentration.</a> ACS Chemical Neuroscience. , (2017).</li><li>Bath, B. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subsecond+adsorption+and+desorption+of+dopamine+at+carbon-fiber+microelectrodes.">Subsecond adsorption and desorption of dopamine at carbon-fiber microelectrodes.</a> Anal Chem. 72 (24), 5994-6002 (2000).</li><li>Li, X., Majdi, S., Dunevall, J., Fathali, H., Ewing, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+Measurement+of+Transmitters+in+Individual+Vesicles+in+the+Cytoplasm+of+Single+Cells+with+Nanotip+Electrodes.">Quantitative Measurement of Transmitters in Individual Vesicles in the Cytoplasm of Single Cells with Nanotip Electrodes.</a> Angew Chem Int Edit. 54 (41), 11978-11982 (2015).</li><li>Zoski, C. G., Mirkin, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Steady-state+limiting+currents+at+finite+conical+microelectrodes.">Steady-state limiting currents at finite conical microelectrodes.</a> Anal Chem. 74 (9), 1986-1992 (2002).</li><li>Mosharov, E. V., Sulzer, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+exocytotic+events+recorded+by+amperometry.">Analysis of exocytotic events recorded by amperometry.</a> Nat Methods. 2 (9), 651-658 (2005).</li><li>Morris, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+formaldehyde+glutaraldehyde+fixative+of+high+osmolality+for+use+in+electron+microscopy.">A formaldehyde glutaraldehyde fixative of high osmolality for use in electron microscopy.</a> J Cell Biol. 27, 137-139 (1965).</li><li>Parsons, T. D., Coorssen, J., Horstmann, H., Almers, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Docked+granules,+the+exocytic+burst,+and+the+need+for+ATP+hydrolysis+in+endocrine+cells.">Docked granules, the exocytic burst, and the need for ATP hydrolysis in endocrine cells.</a> Neuron. 15 (5), 1085-1096 (1995).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Burada bir iletişim kuralı ve salgı veziküller ve daha iyi nasıl bir fiziksel güç gibi ozmotik basınç salgı veziküller etkileyebilir anlayış kazanmak için ekzositozu işlemi çözümlemek için üç tamamlayıcı analitik yöntemleri birleştiren avantajları mevcut ve salgı hücreleri ekzositozu sürecinde. Bu yöntemler ekzositozu etkinlik, veziküller kendi doğal ortamlarında quantal boyutunu belirlemek için kullanılır, hücre içi elektrokimyasal sitometresi kayıt için kurulan bir yöntemdir karbon fiber elektrot amperometry içerir ve transmisyon elektron mikroskobu görüntü analizi salgı. sivilce cilt izlemek için. Bu çalışmada, amperometry kayıtlarından bir izotonik ve hipertonik hücre dışı ortama maruz kromafin hücre, tek vezikül ekzositozu olayların Nicel veri toplayarak biz o ozmotik şok önemli ölçüde azaltır doğruladı tutar nörotransmitter ekzositozu sırasında serbest ve bu hücreler geri dönülebilir olarak yeniden elde etmek ve başlangıçtaki miktar serbest geri bir izotonik ortam (şekil 3) yerleştirilir.
Amperometric kayıtları bilgiler zaman karşı ekzositozu olayların sıklığı ve bu nedenle de ekzositozu faaliyet hücreler farklı ozmotik ortamlarda, değişiklikleri izlemek için kullanılabilir. Bu veri yorumlanır ve faaliyet değişiklikler anında veya zaman bir fonksiyonu olarak oluşup oluşmadığına ayırt için kullanılır. Ozmotik stres exocytotic etkinlik engel olmasına rağmen önceki çalışmalarında gösterdiği gibi kolayca derledi havuzun veziküller24füzyonu engel değildi. Kayıt süresi bir dönem boyunca toplam exocytotic etkinliğini çözümlemeye ekzositozu etkinliği verilerini de kullanılabilir. Burada ekzositozu kromafin hücre için iki farklı ozmotik koşullar maruz adlı bir 3 dakikalık kayıt olaylardan ekzositozu birikmiş sayısı mevcut. Bu veriler bir inhibisyon hücrelerinin ozmotik stres ve hücreleri ekstrasellüler izotonik ortamına döndükten sonra bu faaliyet kısmi bir iyileşme elde edilebilir yaşıyor ekzositozu faaliyet göstermektedir. Ancak, en önemlisi, kontrol deneyleri birden çok Ba2 + elektrodlar bu deneylerde kullanılan zaman dilimi içinde her zaman bir hücre salgılanması için uyarılmış ekzositozu etkinliğinde belirgin bir şekilde azaltılmasına neden gösterdi. Üçüncü ardışık Ba2 + stimülasyon, sadece bir üçüncü ekzositozu aktivitesinin devam edildi ve açıkça baryum ve belki de bu deneylerde elektrodlar zamanlama etkileyen vezikül döngüsü. Bu neden exocytotic aktivite izotonik çözümde osmotik şoktan sonra yerleştirilen hücrelerdeki kurtarıldı ve neden bu hücreler hücreleri izotonik koşullarda 3'ten sonra karşılaştırıldığında etkinlik benzer bir göreli azaltma görüntülenen açıklamak için ilgili olabilir Sıralı Ba2 + elektrodlar. Bu nedenle, amperometry kayıt ekzositozu veziküller nörotransmitter füzyon gözenek aracılığıyla serbest plazma zarı ile sigorta için tetiklenir andan itibaren salgı veziküller hakkında bilgiler sağlar. Böylece nicel tek vezikül nörotransmitter üzerinde yayın tarihi ve ekzositozu etkinliği hakkında bilgi toplanır.
Yayımlanan nörotransmitter miktarı tetiklenir, nerede tam vezikül içerik veya içerik parçası serbest ekzositozu modu tarafından düzenlenmiş olması. Sadece sadece ne bir vezikül ihraç algılar karbon fiber amperometry kullanarak ekzositozu yayın inceleyerek, serbest nörotransmitter tespit edilen miktarda bir değişiklik tetiklenmiş modu bir değişiklik için ilgili olup olmadığını ayırt etmek zor ekzositozu, vezikül içerik yayın etkileyen hücresel biyofiziksel özellikleri oluşturmak veya değişiklikleri vezikül quantal boyutunda bir değişiklik. Bu nedenle, ekzositozu amperometric kayıt hücre içi elektrokimyasal sitometresi kullanarak ölçüleri ile tamamlayan tarafından vezikül canlı hücreleri quantal boyutunda in situ ölçümleri ile karakterize ve olması dolayısıyla karşılaştırmak için kullanılan vezikül içerik serbest bırakmak--dan veziküller ekzositozu26sırasında kısmını.
Bu çalışmada, vezikül quantal boyutu ozmotik stres tarafından etkileniyorsa araştırmak için biz miktar ve izotonik ve hipertonik koşullara maruz hücreleri vezikül quantal boyutunda değerlendirilmesi için bu tekniği uygulanır. Canlı bir hücre sitoplazma içine nanotip elektrot ekleme oldukça invaziv olarak kabul edilir gibi bu deneyler hücre başına sadece bir kez gerçekleştirilen ve aynı hücre, tekrar değil. Bu nedenle, bu deneyler tercihen bir izotonik ve hipertonik hücre dışı ortama maruz rasgele seçilen hücre grupları üzerinden bireysel ölçümleri olarak gerçekleştirilir. Ekzositozu serbest tutar nörotransmitter değişiklikler için hücre içi elektrokimyasal sitometresi göre ölçülen vezikül quantal boyutunda değişiklikleri karşılaştırmak için bir hücre içi kayıt deneysel koşullarıyla eşleşen düşünmelisiniz ve Ayrıca ekzositozu ayrı rasgele hücreleri, amperometry kayıt gerçekleştirin. Çalışmalar aynı tek hücre üzerinde gerçekleştirilmesi durumunda bu deneysel protokoller de üst üste BaCl2 elektrodlar etkisini göz önünde bulundurun ve hücre içi sitometresi için kullanılan deneysel koşullarla eşleşen emin olmak için önemli ölçümleri. Bu da tam yerleştirme ve bir hücre yerleştirildiğinde elektrot derinliği kontrol etmek zordur dikkati çekiyor. Böylece, her hücre vezikül quantal boyutu analiz için rasgele bir örnek sağlar. Buna ek olarak, vezikül quantal boyutu bu yöntemi kullanarak sondalama farklılıkları, örneğin, vezikül olgunluk ayrım yapmamak ve bu nedenle aynı zamanda varyasyon ölçümleri için eklemek olabilir. Hücre içi deneyler vezikül quantal boyutu hücreleri ekstrasellüler ozmotik basınca maruz, azalma göstermiştir. Bu yöntem tarafından tespit quantal boyutunda göreli düşüş sırasında ekzositozu nörotransmitter sürümde göreli değişiklikler gözlemleri için karşılaştırıldı. Bu çalışmada quantal boyutu göreli düşüş ozmotik stres algılama hücreleri'nörotransmitter piyasaya düşüş aynı sırada olduğunu ortaya koymuştur.
Ozmotik stres sivilce nörotransmitter konsantrasyon değiştirme Eğer doğrulamak için vezikül birim TEM analiz izotonik ve hipertonik koşullarına maruz kalan kimyasal olarak sabit kromafin hücre için Imaging kullanılarak değerlendirilmiştir. Analiz görüntüleme TEM hücreleri bir ozmotik şoka maruz kaldığında veziküller küçültmek ve boyutunda göreli düşüş vezikül quantal boyutu ile birlikte sürekli nörotransmitter konsantrasyon24korumak için ayarlanır gösterdi. İki ayırt nanometre görüntü çözünürlüğü sağlar TEM görüntü analizi aşama, yoğun çekirdek protein matris ve çevresindeki halo çözüm içinde LDCVs ve bu nedenle yoğun çekirdek protein matris hacmi belirlemek mümkün ve halo çözüm hacmi hesaplamak. Bu analiz, vezikül birim düşüş ağırlıklı olarak azalan bir birime yoğun çekirdek protein matris24çevreleyen halo çözümden ilgili olarak belirlendi.
Hücreler için tetiklenir Özet olarak, bu çalışmada hediyeleri nasıl üç analitik yöntem gösteren bir protokol birleştirilir ve salgı veziküller nörotransmitter önce karakterizasyonu sağlar yayın ve ne bu veziküller serbest bırakılır ekzositozu ekzositozu tarafından ekstraselüler stres etkilenir gibi işlevleri hücre ve nasıl salgı veziküller daha iyi bir anlayış kazanmak için. Bu protokolü nasıl nörotransmitter ekzositozu yayın üzerinde sorulara cevap yardımcı olmak için de kullanılabilir ve vezikül quantal boyutu fiziksel ortamda diğer değişiklikler veya salgı hücreleri etkileyebilecek potansiyel uyuşturucu etkilenir.

Böbrek üstü bezlerinde kromafin hücre nörotransmitter molekülleri kan akışı içine yayın nöroendokrin hücrelerdir. Bu bir bağlantı içerir hücresel süreç ve içerik veziküller ekzositozu denen bir süreç ekstrasellüler alana yayın sonuçlanan veziküller, nörotransmitter dolu bir füzyon yoluyla ortaya çıkar. Nörotransmiterler (adrenalin ve noradrenalin) kromafin hücre içinde aktif olarak büyük yoğun çekirdek veziküller (LDCVs) zar proteinleri tarafından taşınan ve yüksek konsantrasyonda (~0.5-1 M)1,2' de depolanan. LDCVs içinde nörotransmitter birikimi katekoiamin molekülleri benzeşme chromogranin proteinler (~ 169 mg/mL)3,4,5 oluşan intravesicular yoğun çekirdek protein Matrix sağlanır ,6ve ATP (125-300 mM)7, Ca2 + gibi vezikül içine katekoiamin yükleme ve depolama için anahtar bileşenleri içeren intravesicular bir kokteyl çözüm (50-100 µM çözüm ve ~ 40 mM bağlı protein matriksi)8, Mg2 + (5 mM)9, askorbat (10-30 mM)10ve pH ~5.511,12. Teorik çözünen konsantrasyon veziküller içinde toplamı 750 mm'den kadar rağmen ISO ozmotik bir koşulu ile hücre sitoplazma (310 mOsm/kg)13, LDCVs korumak. İntravesicular bileşenleri bileşimi sadece yoğun çekirdek protein matris için yükleme ve depolama katekolaminler, aynı zamanda solutes toplama işlemi için gerekli değildir. Bu önemli ölçüde azaltır veziküller Osmolarite önemli ölçüde azalır ve ekzositozu5,6sırasında çıkış tutarı katekoiamin etkileyebilir.
Ekstrasellüler ozmotik basınç etkisi ekzositozu işlem amperometric kayıt tarafından çalışmalar o yüksek hücre dışı ozmotik basınç ekzositozu etkinliği engeller ve single'salgılanan nörotransmitter sayısını azaltır bildirdin vezikül bölmeler4,14,15,16,17,18,19. Bu gözlemler açıklamalarını hücre sitoplazma inhibe vezikül füzyon olaylar ve membran biyofiziksel özellikleri sayısını etkileyen bir değişiklik makromoleküllerin kalabalık mümkün geliştirme üzerinde spekülasyonlar var. nörotransmitter ekzositozu sırasında serbest bırakmak. Yüksek hücre dışı ozmotik stres tetiklenmiş ekzositozu14, önceki aşamada bir vezikül bölümünde depolanan nörotransmitter moleküllerin tanımlayan vezikül quantal boyutu etkilemez bu düşünceler kabul 15 , 17 , 19 , 20 , 21. Tek Kişilik hücrelerde ekzositozu açıklaması amperometric ölçümler ile sinaps yapılandırma taklit eden bir deneysel ayarlarý oluşturma hücre yüzeyine yakın temas içinde bir karbon fiber disk elektrot yerleştirilir nereye amperometric elektrot bir postsinaptik dedektörü (şekil 1)22,23hizmet vermektedir. Ekzositozu hücresine uyararak, bir nörotransmitter dolu veziküller hücre plazma zarı ile sigorta ve bölüm veya tam vezikül içerik ekstraselüler uzaya serbest bırakmak için teşvik edebilirsiniz. Nörotransmitter electroactive (örneğin, katekolaminler) Ag/AgCl referans elektrot bir Redoks potansiyeli 700 mV vs uygulayarak Eğer elektrot yüzeyi yayımlanan bu nörotransmitter moleküller mamüllerinin tespit edilebilir . Sonuç olarak, geçerli sivri bir dizi bireysel ekzositozu olayları algılama işaretleyin. Geçerli zaman izleme amperometric kaydında karşı her tek amperometric spike altına alan başına ekzositozu olay tespit ücret temsil eder ve serbest, Faraday denklemi kullanarak nörotransmitter köstebek için dönüştürülebilir. Bu nedenle, amperometric kayıtları tek ekzositozu olaylardan ihraç tutarı nörotransmitter hakkında kantitatif bilgi vermek ve ekzositozu olaylar frekanstan rapor ancak salgı veziküller nicel bilgi mevcut değil içerik vezikül füzyon ve nörotransmitter yayın önce başlatıldı.
Bu nedenle, nasıl salgı veziküller hücrede daha iyi anlaşılmasını almak için sitoplazma yanıt ekstraselüler ozmotik stres için hücre ekzositozu, geçmesi tetiklenir önce bu bilgileri zenginleştirmek için diğer tamamlayıcı analitik yöntemleri kullanılabilir. Örneğin, ozmotik stres sivilce cilt değiştirirse araştırmaya, transmisyon elektron mikroskobu (TEM) analiz görüntüleme sonra kimyasal fiksasyonu hücrelerin vezikül boyutunu ölçmek için kullanılabilir. Ozmotik stres sivilce quantal boyutu etkiliyorsa incelemek için hücre içi elektrokimyasal sitometresi adında bir son zamanlarda geliştirilen amperometric teknik uygulanabilir vezikül nörotransmitter içerik salgı veziküller, miktar için onların hala canlı hücreleri26sitoplazma içinde ikamet ettiği yerel durum. Hücre içi elektrokimyasal sitometresi teknikte nanotip silindirik karbon fiber elektrot yavaşça canlı hücre ve bu elektrot için 700 mV potansiyel uygulayarak sitoplazma içine eklenir (vs bir Ag/AgCl referans elektrot), lanetlendiklerine memnun veziküller içinde çarpışma, adsorbing ve daha sonra stochastically elektrot yüzeyi rüptür ve böylece serbest içeriklerini karşı tek veziküller gelen ani geçerli bir Redoks tespiti tarafından sayılabilir elektrot yüzey26. Bu nedenle, zaman izleme karşı geçerli amperometric, her tek vezikül rupturing olay içinde geçerli bir geçici yol açabilir ve, her geçerli spike alan entegre ederek, vezikül quantal boyutu Faraday´s hukuk kullanılarak hesaplanabilir.
Bu nedenle, hücre içi elektrokimyasal sitometresi tarafından kaydedildiği şekilde TEM görüntüleme vezikül quantal boyut analizi, birlikte kullanarak vezikül boyut ölçüleri elde niceliksel bilgileri bağlayarak, vezikül nörotransmitter konsantrasyonu da olabilir kararlı olmak. Bu hücreler için farklı ozmotik koşullar maruz kaldığında vezikül karakterizasyonu ve nasıl veziküller ekzositozu önce aşamada hücre dışı ozmotik strese yanıt verebilir üzerinde daha iyi bir görünüm sağlar. Bu yöntemler bir araya gelen sonuçları ekstraselüler yüksek ozmotik basınç, huzurunda veziküller küçültmek ve onların quantal boyutu ayarlamak ve bu ölçümler göreli değişikliklerden nicel bilgi karşılaştırarak gösteren göstermiştir çekmek ise, veziküller onların içeriği ve sürekli nörotransmitter konsantrasyon24korumak için boyutunu ayarlamak. Böylece, bu anlayış ozmotik stres maruz hücrelerdeki nörotransmitter sürümü üzerinde yapılan gözlemler bağlanma değerlidir. Bu protokoller ekstraselüler osmolalite kendi yerel ortamını yanıt nasıl salgı veziküller karakterizasyonu ve bu yanıt etkisi ekzositozu izin bu üç tamamlayıcı metodolojileri nasıl kullanılacağını açıklar işlem. Bizim önceki gözlemleri yüksek ozmotik basınç ekzositozu24ek olarak etkisi ile ilgili olarak, biz hücre kurtarma sonra ozmotik şok ve birden çok baryum elektrodlar kromafin içinde etkisini açıklayan ek deneyler mevcut hücreleri.

<table><tbody><tr><td>NaCl</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P9333</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M-2670</td><td></td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>Collagenase P</td><td>Roche, Sweden</td><td>11 213 857 001</td><td></td></tr><tr><td>100-&amp;micro;M Nylon mesh</td><td>Fisher Sientific</td><td>08-771-19</td><td></td></tr><tr><td>Percoll</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P1677</td><td></td></tr><tr><td>Collagen IV coated 60 mm plastic dish</td><td>VWR</td><td>354416</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>Avanti J-20XP</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Borosilicate glass capillary</td><td>Sutter instrument Co., Novato, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micropipette puller</td><td>Narishing Inc., Japan</td><td>PE-21</td><td></td></tr><tr><td>Epoxy solutions (A and B)</td><td>Epoxy technology, Billerica, MA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Beveller</td><td>Narishing Inc.</td><td>EG-400</td><td></td></tr><tr><td>Inverted Microscope</td><td>Olympus</td><td>IX81</td><td></td></tr><tr><td>Patch clamp Instrument</td><td>Molecular Devices, Sunnyvale, CA</td><td>Axopatch 200B</td><td></td></tr><tr><td>Micromanipulator</td><td>Burleigh Instrument Inc., USA</td><td>PCS-5000</td><td></td></tr><tr><td>Butane Flame</td><td>Multiflame AB, H&amp;auml;sselholm, Sweden</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Transmission electron microscopy</td><td>Omega</td><td>Leo 912 AB</td><td></td></tr></tbody></table>

monitoring the effect of osmotic stress on secretory vesicles and exocytosis

Amperometry kayıt hücre salgı hücreleri ekzositozu etkinlik ve veziküller içinde tek ekzositozu olaylar serbest nörotransmitter miktarını azaltarak bu fiziksel stres yanıt ozmotik şok göstermek için tabi. Okuldan nörotransmitter azalma membran biyofiziksel özelliklerinde değişiklikler nedeniyle yanıt ozmotik stres olarak hücreleri küçültmek ve bu varsayımlar ile hücre sitoplazma içinde salgı veziküller etkilenmez olduğunu sürülmüştür hücre dışı ozmotik stres. Amperometry kayıt ekzositozu ne bir vezikül ile plazma zarı Sigortalar ancak vezikül füzyon tetiklenir önce bilgi vezikül içeriğine sağlamaz an hücrelerden serbest izler. Bu nedenle, amperometry birleştirerek ekzositozu hücreler tetiklenir önce salgı veziküller karakterize bir özelliği olan diğer tamamlayıcı analitik yöntemleri ile kayıt nasıl salgı veziküller incelenmesi için daha geniş bir genel bakış sunar ve ekzositozu işlem ozmotik şok tarafından etkilenir. Biz burada nasıl hücre içi elektrokimyasal sitometresi ve transmisyon elektron mikroskobu (TEM) görüntüleme ile kayıt amperometry tamamlayan salgı veziküller boyutu ve nörotransmitter içeriğindeki değişiklikler karakterize etmek için kullanılabileceğini tarif kromafin hücre ekzositozu etkinlik öncesi ve sonrası ozmotik strese maruz kalma ile ilgili olarak. Tüm üç analitik yöntemlerle deneylerden elde edilen nicel bilgilerden bağlayarak, sonuçlar daha önce salgı veziküller içinde boyutunu küçültme ve vezikül quantal boyutunu azaltarak ekstraselüler ozmotik stres yanıt yapılmıştır bir sabit vezikül nörotransmitter konsantrasyon korumak. Bu nedenle, bu neden veziküller, ozmotik stres, cevaben ekzositozu yayın sırasında serbest tutar nörotransmitter azaltmak ile ilgili bir açıklama sağlar. Buraya amperometric recordings tersinir bir süreç ve o vezikül yerleştirilmiş hücreler izotonik bir ortama döndürülür zaman nörotransmiterler ile ozmotik şok doldurulmuş sonra bu gösterir.

Biz burada tarif protokol nasıl TEM görüntüleme iki elektrokimyasal metodolojileri, karbon fiber amperometry ve hücre içi elektrokimyasal sitometresi ile birlikte birleştirerek daha geniş bir görünüm için etkisi atıfta kazanımlar bilgiler sağlayabilir için hücre dışı ozmotik basınç salgı veziküller ve ekzositozu süreci. Hücreler için ozmotik maruz kaldığında deneysel ( şekil 1' de gösterilen) kurmak kullanarak tek kromafin hücre'ekzositozu piyasaya temsilcisi amperometric kayıtları karşılaştırarak, exocytotic etkinlik önemli bir azalma görüntülenmiştir hücreleri izotonik koşullarda karşılaştırıldığında (şekil 2A)24stres. Bu kayıtlar ve Faraday´s hukuk kullanarak, toplam ücret spike için farklı maruz hücreleri tek vezikül ekzositozu etkinliklerde ihraç molekülleri sayısını hesaplamak için kullanılan geçerli her bireysel amperometric tarafından tespit ozmotik koşullar. Buna karşılık, şekil 2B geçerli ortalama amperometric daha küçük bölgelere göre gösterildiği şekliyle spike tespit hipertonik çözelti içinde hücreleri tarafından daha az nörotransmitter molekülleri üzerinden her vezikül ozmotik stres24 algılama hücreleri tarafından yayımlanan .
Nörotransmitter moleküller yayımladı sayısındaki bu düşüş reversibility belirlemek için biz ekzositozu hipertonik ortamına maruz hücreleri ve daha sonra geri bir izotonik yerleştirilen sonra hücreleri, amperometric kayıtları gerçekleştirilen çevre. Bu deneylerde kromafin hücre BaCl2 çözüm ile art arda üç kez uyarılmış: ilk izotonik bir arabellekte takip tarafından ikinci bir stimülasyon sonra hücreleri hipertonik çözüm ve, son olarak, üçüncü bir 10 dakika inkübe stimülasyon sonra 10 dk hücre kuluçka izotonik koşullarında. Sonuçları şekil 3A görüntülendiği gibi hücreleri ilk Ba2 + stimülasyon izotonik durumda göre hipertonik koşulu maruz yayımlanan nörotransmitter miktarı ~ 50 oranında azaldı sunmak. Hücreleri bir izotonik ortamına geri getirdi ve bir üçüncü Ba2 + uyarım tabi zaman, daha sonra başına ekzositozu olay çıkış tutarı nörotransmitter geri ilk uyarımı de kaydedilen orijinal tutar için tersine hangi önceki gözlemler14doğruladı. Denetim deneyler üç ardışık Ba2 + elektrodlar hücre izotonik koşulu ile (bkz. 3B rakam) birden çok ardışık Ba2 + elektrodlar izotonik koşullarında tutar nörotransmitter değişiklik göster ekzositozu sırasında serbest. Bu vezikül quantal boyutu hücre dışı osmolarite ile hızlı ve geri dönülebilir olarak ayarlanır göstermektedir.
Ancak, amperometric izleri üzerinden bu deneyler ekzositozu etkinlik açısından analiz ederken, belli, oldu ne zaman hücre için hipertonik stres maruz kaldılar şekil 4Agörüntülendiği gibi bu ekzositozu etkinliği önemli ölçüde engel oldu. Ozmotik stres sırasında ekzositozu olaylar adlı izotonik koşulu hücrelerde aktivitesinin % 12'ye düşürüldü. Daha sonra ozmotik şok ve hücreleri geri isosmotic bir ortama yerleştirildi sonra hücreleri özgün ekzositozu faaliyetlerini % 41'i ele geçirdi. İlginçtir, izotonik koşullarda gösterdi, 4B rakam, görüntülendiği gibi üç ardışık BaCl2 elektrodlar gerçekleştirdikten sonra ekzositozu olayları sıklığını % 53 sonra ikinci bir stimülasyon azaltılmış kontrol deneyleri gerçekleştirilen ve daha da aşağı %26 üçüncü stimülasyon tarafından ilk uyarmaya karşılaştırılır. Bu nedenle, bu ardışık Ba2 + elektrodlar etkilemeye ekzositozu tetiklenir ama vezikül yayın sürecinin etkinliğini önemli ölçüde etkileyen her vezikül serbest nörotransmitter sayısını görünmüyor açıktır.
Nasıl salgı veziküller içinde araştırmak için yerel çevreleri etkilenir ekstraselüler ozmotik stres sivilce cilt açısından veya quantal boyutu, vezikül boyutu analiz TEM Imaging'i kullanma hücreleri, hücre içi elektrokimyasal sitometresi ile kombine edildi izotonik ve hipertonik koşullara maruz. Hücre içi elektrokimyasal sitometresi deneylerde bir karbon fiber nanotip elektrot izotonik ve hipertonik çözümde ( şekil 5' te gösterildiği gibi.) yerleştirildiğinde canlı kromafin hücre sitoplazma içine eklenmiş Elde edilen amperometric geçerli spike her vezikül çarpışması, adsorbing ve stochastically rüptür ve26patlama üzerine amperometric elektrot yüzeyi vezikül içeriği serbest hücre sitoplazma içinde takip. Her tepe akım saat izleme karşı algıladı entegre toplam ücret Faraday´s yasa ile kayıt her hücrede ortalama vezikül quantal boyutunu hesaplamak için kullanıldı. Bu hücre içi elektrokimyasal sitometresi ölçümleri, şekil 6 ' da gösterilen ve şekil 7Bvezikül ozmotik stres maruz hücreleri quantal boyutunda azaltılacağını olduğunu gösterdi, adlı izotonik koşulları hücrelere kıyasla. Sinir hücreleri ekstrasellüler ozmotik stres yaşıyor, ekzositozu sırasında serbest miktarı kesirli düşüş için hücre içi elektrokimyasal sitometresi göre ölçülen vezikül quantal boyutunda değişiklik büyüklüğü karşılaştırma , quantal boyutu ve çıkış tutarı nörotransmitter adlı izotonik koşulları (Şekil 7)24hücrelere kıyasla % 60, göreli bir düşüş gösterdi. Vezikül quantal boyutu ayarlamasında vezikül nörotransmitter konsantrasyon hücrelerinin ozmotik basınç yaşandığı potansiyel bir varyasyon ile arasında bir ilişki için TEM görüntü analizi izotonik ve hipertonik maruz hücrelerin vezikül boyutunu belirlemek için gerçekleştirildi koşullar. Ayrıca, koyu bir karanlık küre zarda veziküller bağlı olarak TEM Albümdeki görselleştirildiği yoğun çekirdek protein matris LDCVs içinde boyama yoğun çekirdek matris bu veziküller içinde hacmi ölçmek için kullanıldı. Şekil 8' de sunulan vezikül boyutu adlı izotonik koşulları hücrelerde göre ekstraselüler ozmotik strese maruz hücreleri, % 60'a düşürüldü. TEM görüntülerde LDCVs içinde net bir çözüm de hesaplanan şekilde LDCV ve yoğun çekirdek ölçülen çap hesaplanan birimden çevreleyen halo çözüm hacmi görüntülenir. TEM görüntü analizi özetlenen sonuçları gösterdi, şekil 8' de gösterildiği şekliyle ekstraselüler ozmotik esas olarak 's şok sırasında24olduğunu LDCVs halo çözümde hacmi azalır.

<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56537/56537fig1.jpg"> Resim 1 : Tek hücre ekzositozu amperometry. Amperometric ölçme ekzositozu tek kromafin deneysel kurmak bir şematik24hücreleri. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56537/56537fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56537/56537fig2.jpg"> Resim 2: Amperometric izleri ekzositozu ölçümleri.  (A) A temsilcisi amperometric kayıt ekzositozu adlı izotonik (siyah renk) ve hipertonik (kırmızı renk) hücre dışı ortamlarda kromafin hücre. Bir ortalama amperometric spike ekzositozu ölçüm kromafin hücre izotonik (siyah) üzerinden (B) genişleme ve hipertonik (kırmızı) hücre dışı ortamlarda24. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56537/56537fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56537/56537fig3.jpg"> Şekil 3 : Ekzositozu osmotik şoktan sonra yayımlanan katekolaminler sayısı reversibility. (A) ekzositozu kromafin hücrelerden sırasında serbest moleküllerin sayısı (n = 4) üç ardışık Ba2 + elektrodlar, izotonik içinde ilk uyarım, hipertonik ikinci tarafından ve izotonik arabellek üçüncüsü. Unpaired t-test istatistiksel sonuçları gösterilir. P -değeri ilk Ba2 + stimülasyon (Ba2 + STIM 1) izotonik arabelleği ikinci Ba2 + stimülasyon (Ba2 + STIM 2) hipertonik arabelleği ile karşılaştırılması için pbu 0.1088 ve p=-value için İkinci Ba2 + stimülasyon hipertonik çözelti içinde üçüncü Ba2 + stimülasyon (Ba2 + STIM 3) izotonik arabelleği ile karşılaştırılması p olduğunu 0.059 =. (B) denetim nörotransmitter moleküllerin üç ardışık Ba2 + elektrodlar kromafin hücre serbest miktarını gösteren deney (n = 4) izotonik arabelleği. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56537/56537fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56537/56537fig4.jpg"> Şekil 4 : Osmotik basınç etkisi ekzositozu etkinlik. (A) ekstrasellüler Osmolarite etkisi ekzositozu etkinlik ekzositozu olaylar ne zaman kromafin frekans sunulan hücreleri (n = 4) izotonik, o zaman hipertonik, baryum solüsyonu ile uyarılmış olan ve nihayet izotonik koşullarında. Değerleri her hücreden sivri ortalama sayısı olarak sunulur ve tüm hücreleri ortalama (ortalama (SEM) standart hatası) örnek. Bir t-test için unpaired verileri kullanarak değişiklikleri istatistiksel anlamlılık sundu ( p -izotonik Ba2 + stimülasyon 1 ve hipertonik Ba2 + stimülasyon 2 pdeğerdir 0.0126 ve p=-karşılaştırılması için değer hipertonik Ba2 + stimülasyon 2 ve izotonik Ba2 + dürtme 3 polduğunu 0.037 =). (B) denetim deney üç ardışık baryum elektrodlar kromafin hücre, sonra ekzositozu olayları sıklığını sunulması (n = 4) izotonik koşullarında. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56537/56537fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56537/56537fig5.jpg"> Şekil 5 : Hücre içi vezikül elektrokimyasal sitometresi vezikül quantal boyut değişiklikleri izlemek için. (A) için hücre içi elektrokimyasal sitometresi kullanılan kurmak deneysel bir şeması. (B) bir tarama elektron mikroskobu görüntüsü tipik nanotip konik karbon fiber elektrot24. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56537/56537fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56537/56537fig6.jpg"> Şekil 6 : Gösterilen hücre içi elektrokimyasal sitometresi ölçümleri Hücre içi amperometric sitometresi kayıtları kromafin hücre izotonik (siyah), (A) temsilcisi izleri ve hipertonik (kırmızı) hücre dışı ortamlarda. Bir ortalama amperometric spike adlı izotonik (siyah) kromafin hücre hücre içi sitometresi ölçüm üzerinden (B) genişleme ve hipertonik (kırmızı) hücre dışı ortamlarda24. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56537/56537fig6large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56537/56537fig7.jpg"> Şekil 7 : Miktar ekzositozu ve belirlenmesi vezikül quantal boyutu yayımlanan katekolaminler miktarının. (A) adlı izotonik kromafin hücre ekzositozu kayıtları sırasında serbest moleküllerin ortalama sayısı (n = 22) ve hipertonik (n = 20) ortamlar. Değerleri her hücreden ekzositozu olay başına serbest ve örneklenmiş hücrelerden (± SEM) ortalama moleküllerinin ortalama bir sayı olarak sunulmaktadır. Değişiklikleri istatistiksel anlamlılık t-test için unpaired verileri kullanarak sunulmaktadır (p -değeri = 0,0003) (B) molekülleri izotonik (n kromafin hücre, hücre içi elektrokimyasal sitometresi tarafından algılanan olarak vezikül başına ortalama sayısı 19 =) ve hipertonik (n = 16) koşulları. Değerleri, moleküller spike başına ortalama sayısı olarak her hücreden tespit olarak sunulan ve örnek tüm hücrelerden (± SEM) ortalama. Değişiklikleri istatistiksel anlamlılık unpaired veri için t-testi kullanılarak sunulur (p - değeri 0.0108 =)24. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56537/56537fig7large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56537/56537fig8.jpg"> Şekil 8 : Büyük yoğun çekirdek vezikül boyutu ozmotik basınç etkisi. LDCVs, yoğun çekirdek protein ve yoğun çekirdek protein matris çevreleyen halo çözüm hesaplanan hacmi attolitres (aL) görüntü analizi izotonik kromafin hücre TEM görüntülerin üzerinden hesaplanır (n = 12) ve hipertonik (n = 9) arabellekleri. Sonuçları 311 veziküller hücre başına ortalama ve ortalama tek hücreleri (± SEM) toplanmıştır. P-değerleri unpaired t-izotonik ve hipertonik arabellekleri karşılaştırma testleri rapor edilmektedir. P-0.0385 (*) vezikül birim, 0.3967 yoğun temel birim, 0.0047 (*) halo cilt24için için için değerdir. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56537/56537fig8large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Monitoring the Effect of Osmotic Stress on Secretory Vesicles and Exocytosis at JoVE.com

Monitoring the Effect of Osmotic Stress on Secretory Vesicles and Exocytosis

Ozmotik stres ekzositozu ve bu işlem sırasında serbest nörotransmitter miktarını etkiler. Biz nasıl transmisyon elektron mikroskobu ile birlikte elektrokimyasal yöntemleri birleştirerek ekstraselüler ozmotik basınç etkisi ekzositozu etkinlik, vezikül quantal boyut ve serbest nörotransmitter miktarı incelemek için kullanılabileceğini göstermek ekzositozu sırasında.

Ozmotik stres etkisi salgı veziküller ve ekzositozu izleme

Amperometry recording of cells subjected to osmotic shock show that secretory cells respond to this physical stress by reducing the exocytosis activity ...

monitoring-effect-osmotic-stress-on-secretory-vesicles

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Neuroscience

8.5K Görüntüleme.  Chalmers University of Technology. Ozmotik stres ekzositozu ve bu işlem sırasında serbest nörotransmitter miktarını etkiler. Biz nasıl transmisyon elektron mikroskobu ile birlikte elektrokimyasal yöntemleri birleştirerek ekstraselüler ozmotik basınç etkisi ekzositozu etkinlik, vezikül quantal boyut ve serbest nörotransmitter miktarı incelemek için kullanılabileceğini göstermek ekzositozu sırasında.

Video: Monitoring the Effect of Osmotic Stress on Secretory Vesicles and Exocytosis

Membrane Remodeling of Giant Vesicles in Response to Localized Calcium Ion Gradients

In a wide variety of fundamental cell processes, such as membrane trafficking and apoptosis, cell membrane shape transitions occur concurrently with local variations in calcium ion concentration. The main molecular components involved in these processes have been identified; however, the specific interplay between calcium ion gradients and the lipids within the cell membrane is far less known, mainly due to the complex nature of biological cells and the difficultly of observation schemes. To bridge this gap, a synthetic approach is successfully implemented to reveal the localized effect of calcium ions on cell membrane mimics. Establishing a mimic to resemble the conditions within a cell is a severalfold problem. First, an adequate biomimetic model with appropriate dimensions and membrane composition is required to capture the physical properties of cells. Second, a micromanipulation setup is needed to deliver a small amount of calcium ions to a particular membrane location. Finally, an observation scheme is required to detect and record the response of the lipid membrane to the external stimulation. This article offers a detailed biomimetic approach for studying the calcium ion-membrane interaction, where a lipid vesicle system, consisting of a giant unilamellar vesicle (GUV) connected to a multilamellar vesicle (MLV), is exposed to a localized calcium gradient formed using a microinjection system. The dynamics of the ionic influence on the membrane were observed using fluorescence microscopy and recorded at video frame rates. As a result of the membrane stimulation, highly curved membrane tubular protrusions (MTPs) formed inside the GUV, oriented away from the membrane. The described approach induces the remodeling of the lipid membrane and MTP production in an entirely contactless and controlled manner. This approach introduces a means to address the details of calcium ion-membrane interactions, providing new avenues to study the mechanisms of cell membrane reshaping.

We present a technique for contactless micromanipulation of vesicles, using localized calcium ion gradients. Microinjection of a calcium ion solution, in the vicinity of a giant lipid vesicle, is utilized to remodel the lipid membrane, resulting in the production of membrane tubular protrusions.

Yanıt olarak lokalize kalsiyum iyon degradeler dev veziküller membran Remodeling

In a wide variety of fundamental cell processes, such as membrane trafficking and apoptosis, cell membrane shape transitions occur concurrently with local ...

Kimya

Investigating Mast Cell Secretory Granules; from Biosynthesis to Exocytosis

Mast Cells (MC) are secretory cells of the immune system that accomplish their physiological and pathological functions by releasing pre-formed and newly synthesized allergic, inflammatory and immunoregulatory mediators. MCs&#8217; mediators affect multiple tissues and organs culminating in allergic and immune responses. The synthesis, storage and release of the MC mediators are highly regulated. The pre-formed mediators are packed in cytoplasmic secretory granules&#160;(SG) that fuse with the plasma membrane and release their content by regulated exocytosis. We present a protocol, based on the co-expression of a gene of interest with a reporter gene that is targeted to the SGs and is released in a regulated fashion alongside the endogenous SG mediators. The protocol enables high resolution four dimensional confocal analyses of the MC SGs and monitoring their timeline from biogenesis to triggered exocytosis. Thus, using this protocol for screening genes of interest for their phenotypic and functional impact allows deciphering the molecular mechanisms that govern the biogenesis and exocytosis of the MC SGs and identifying the regulators involved. Thereby, further insights into the cellular mechanisms that account for MCs function in health and disease should be provided.

The goal of the present&#160;protocol was to develop a method that will allow functional genomic analyses of mast cell secretion. The protocol is based on quantitative assessment of the release of a fluorescent reporter gene cotrasfected with the gene of interest and real time&#160;analyses of the secretory granule&#39;s morphology.

Mast Hücre Salgı granüller incelenmesi; biyosentezi adlı ekzositozu için

Mast Cells (MC) are secretory cells of the immune system that accomplish their physiological and pathological functions by releasing pre-formed and newly ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Modulating Shape of Polyester Based Polymersomes using Osmotic Pressure

Polymersomes are membrane-bound, bilayer vesicles created from amphiphilic block copolymers that can encapsulate both hydrophobic and hydrophilic payloads for drug delivery applications. Despite their promise, polymersomes are limited in application due to their spherical shape, which is not readily taken up by cells, as demonstrated by solid nanoparticle scientists. This article describes a salt-based method for increasing the aspect ratios of spherical poly(ethylene glycol) (PEG)- based polymersomes. This method can elongate polymersomes and ultimately control their final shape by adding sodium chloride in post-formation dialysis. Salt concentration can be varied, as described in this method, based on the hydrophobicity of the block copolymer being used as the base for the polymersome and the target shape. Elongated nanoparticles have the potential to better target the endothelium in larger diameter blood vessels, like veins, where margination is observed. This protocol can expand therapeutic nanoparticle applications by utilizing elongation techniques in tandem with the dual-loading, long-circulating benefits of polymersomes.

Polymersomes are self-assembled polymeric vesicles that are formed in spherical shapes to minimize Gibb's Free Energy. In the case of drug delivery, more elongated structures are beneficial. This protocol establishes methods to create more rod-like polymersomes, with elongated aspect ratios, using salt to induce osmotic pressure and reduce internal vesicle volumes.

Osmotik Basınç Kullanarak Polyester Bazlı Polimeromların Modülasyon Şekli

Polymersomes are membrane-bound, bilayer vesicles created from amphiphilic block copolymers that can encapsulate both hydrophobic and hydrophilic payloads ...

Biyomühendislik

Temporal Quantification of MAPK Induced Expression in Single Yeast Cells

The quantification of gene expression at the single cell level uncovers novel regulatory mechanisms obscured in measurements performed at the population level. Two methods based on microscopy and flow cytometry are presented to demonstrate how such data can be acquired. The expression of a fluorescent reporter induced upon activation of the high osmolarity glycerol MAPK pathway in yeast is used as an example. The specific advantages of each method are highlighted. Flow cytometry measures a large number of cells (10,000) and provides a direct measure of the dynamics of protein expression independent of the slow maturation kinetics of the fluorescent protein. Imaging of living cells by microscopy is by contrast limited to the measurement of the matured form of the reporter in fewer cells. However, the data sets generated by this technique can be extremely rich thanks to the combinations of multiple reporters and to the spatial and temporal information obtained from individual cells. The combination of these two measurement methods can deliver new insights on the regulation of protein expression by signaling pathways.

Two complementary methods based on flow cytometry and microscopy are presented which enable the quantification, at the single cell level, of the dynamics of gene expression induced by the activation of a MAPK pathway in yeast.

Tek Maya Hücreleri MAPK İsteyerek İfade zamansal Kantitasyonu

The quantification of gene expression at the  single cell level uncovers novel regulatory mechanisms obscured in measurements  performed at the population ...

Biyoloji

Imaging FITC-dextran as a Reporter for Regulated Exocytosis

Regulated exocytosis is a process by which cargo, which is stored in secretory granules (SGs), is released in response to a secretory trigger. Regulated exocytosis is fundamental for intercellular communication and is a key mechanism for the secretion of neurotransmitters, hormones, inflammatory mediators, and other compounds, by a variety of cells. At least three distinct mechanisms are known for regulated exocytosis: full exocytosis, where a single SG fully fuses with the plasma membrane, kiss-and-run exocytosis, where a single SG transiently fuses with the plasma membrane, and compound exocytosis, where several SGs fuse with each other, prior to or after SG fusion with the plasma membrane. The type of regulated exocytosis undertaken by a cell is often dictated by the type of secretory trigger. However, in many cells, a single secretory trigger can activate multiple modes of regulated exocytosis simultaneously. Despite their abundance and importance across cell types and species, the mechanisms that determine the different modes of secretion are largely unresolved. One of the main challenges in investigating the different modes of regulated exocytosis, is the difficulty in distinguishing between them as well as exploring them separately. Here we describe the use of fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran as an exocytosis reporter, and live cell imaging, to differentiate between the different pathways of regulated exocytosis, focusing on compound exocytosis, based on the robustness and duration of the exocytic events.

Here we detail a method for live cell imaging of regulated exocytosis. This method utilizes FITC-dextran, which accumulates in lysosome-related organelles, as a reporter. This simple method also allows distinguishing between different modes of regulated exocytosis in cells that are difficult to manipulate genetically.

Düzenlenmiş ekzositozu için muhabir olarak FITC dextran görüntüleme

Regulated exocytosis is a process by which cargo, which is stored in secretory granules (SGs), is released in response to a secretory trigger. Regulated ...

Quantifying Spatiotemporal Parameters of Cellular Exocytosis in Micropatterned Cells

Live imaging of the pHluorin tagged Soluble N-ethylmaleimide-sensitive-factor Attachment protein REceptor (v-SNARE) Vesicle-associated membrane protein 7 (VAMP7) by total internal reflection fluorescence microscopy (TIRFM) is a straightforward way to explore secretion from the lysosomal compartment. Taking advantage of cell culture on micropatterned surfaces to normalize cell shape, a variety of statistical tools were employed to perform a spatial analysis of secretory patterns. Using Ripley&#8217;s K function and a statistical test based on the nearest neighbor distance (NND), we confirmed that secretion from lysosomes is not a random process but shows significant clustering. Of note, our analysis revealed that exocytosis events are also clustered in nonadhesion areas, indicating that adhesion molecules are not the only structures that can induce secretory hot spots at the plasma membrane. Still, we found that cell adhesion enhances clustering. In addition to precisely defined adhesive and nonadhesive areas, the circular geometry of these micropatterns allows the use of polar coordinates, simplifying analyses. We used Kernel Density Estimation (KDE) and the cumulative distribution function on polar coordinates of exocytosis events to identify enriched areas of exocytosis. In ring-shaped micropattern cells, clustering occurred at the border between the adhesive and nonadhesive areas. Our analysis illustrates how statistical tools can be employed to investigate spatial distributions of diverse biological processes.

Live imaging of lysosomal exocytosis on micropatterned cells allows a spatial quantification of this process. Morphology normalization using micropatterns is an outstanding tool to uncover general rules about the spatial distribution of cellular processes.

Mikro Desenli Hücrelerde Hücresel Eksositozun Spatiotemporal Parametrelerinin Ölçülmesi

Live imaging of the pHluorin tagged Soluble N-ethylmaleimide-sensitive-factor Attachment protein REceptor (v-SNARE) Vesicle-associated membrane protein 7 ...

Automated Detection and Analysis of Exocytosis

Timelapse TIRF microscopy of pH-sensitive GFP (pHluorin) attached to vesicle SNARE proteins is an effective method to visualize single vesicle exocytic events in cell culture. To perform an unbiased, efficient identification and analysis of such events, a computer-vision based approach was developed and implemented in MATLAB. The analysis pipeline consists of a cell segmentation and exocytic-event identification algorithm. The computer-vision approach includes tools for investigating multiple parameters of single events, including the half-life of fluorescence decay and peak &#916;F/F, as well as whole-cell analysis of the frequency of exocytosis. These and other parameters of fusion are used in a classification approach to distinguish distinct fusion modes. Here a newly built GUI performs the analysis pipeline from start to finish. Further adaptation of Ripley&#39;s K function in R Studio is used to distinguish between clustered, dispersed, or random occurrence of fusion events in both space and time.

We developed automated computer vision software to detect exocytic events marked by pH-sensitive fluorescent probes. Here, we demonstrate the use of a graphical user interface and RStudio to detect fusion events, analyze and display spatiotemporal parameters of fusion, and classify events into distinct fusion modes.

Eksositozun Otomatik Tespiti ve Analizi

Timelapse TIRF microscopy of pH-sensitive GFP (pHluorin) attached to vesicle SNARE proteins is an effective method to visualize single vesicle exocytic ...

Role of ER in the Secretory Pathway

Eukaryotic cells have a special pathway that enables communication between various intracellular membrane-bound compartments and also with the extracellular environment. This pathway is termed as the secretory pathway.
Components of the secretory pathway
About a third of proteins synthesized in the cell are sorted via the secretory route. They shuffle between different compartments in membrane-bound vesicles until they reach their final destination. The main intracellular compartments involved in the secretory pathway are the endoplasmic reticulum, the ER-Golgi intermediate compartment, and the Golgi apparatus. Eventually, the functional protein cargo is delivered within the endomembrane system, exported out of the cell, or inserted into the plasma membrane.
Endoplasmic reticulum: the gateway to the secretory pathway
The endoplasmic reticulum is the primary gateway to the secretory pathway. It is the site where the proteins are folded, modified, and checked for quality before entering the secretory pathway. Various physiological stresses can increase the demand for secretory proteins or cause the accumulation of misfolded proteins in the ER. The disruption in the balance between protein demand and capacity to deliver correctly folded proteins in the ER causes stress.
Unchecked ER stress disturbs ER homeostasis, resulting in cellular dysfunction and disease. The primary characteristics of ER-related diseases are decreased protein folding capacity, failure to recognize and respond to misfolded proteins, and improper activation of responses to misfolded proteins. ER stress is implicated in the pathogenesis of diseases like diabetes mellitus, viral infections, and cancer.&#160; For example, in type II diabetes mellitus, insulin resistance in the peripheral tissues of the liver results in hypersecretion of insulin by the &#946; cells. The secretory overload experienced by the &#946; cells skews the ER balance. It can also result in cell death in later stages of type II diabetes mellitus.

Sekretuar Yolakta Acil Servisin Rolü

Eukaryotic cells have a special pathway that enables communication between various intracellular membrane-bound compartments and also with the ...

Education

JoVE Core

Hücre Biyolojisi

Unit 1

Endoplazmik Retikulum ve Peroksizomlarda Transmembran Taşıma

KEY TERMS AND CONCEPTS

Exocytosis

Exocytosis is a process that releases molecules outside the cell. Like other bulk transport mechanisms, exocytosis requires energy.
Exocytosis is the opposite of endocytosis, which brings molecules inside the cell. Sometimes, the released materials are signaling molecules. For example, neurons typically use exocytosis to release neurotransmitters. Cells also use exocytosis to insert proteins such as ion channels into their cell membranes, secrete proteins for use in the extracellular matrix, or remove waste.
There are two main types of exocytosis in eukaryotes&#8212;regulated and non-regulated (or constitutive). Regulated exocytosis requires an external signal and is used to release neurotransmitters and secrete hormones. Unlike regulated exocytosis, constitutive exocytosis is carried out by all cells. Cells use constitutive exocytosis to release components of the extracellular matrix or incorporate proteins into the plasma membrane.
Both regulated and constitutive exocytosis occur in a stepwise manner.
The first step is vesicle trafficking, in which vesicles transport material to the plasma membrane. Motor proteins actively move vesicles along the cytoskeletal tracks of microtubules and filaments. The second step is vesicle tethering, in which vesicles are partially linked to the plasma membrane. In the third step, vesicle docking, the vesicle membrane attaches to the plasma membrane, and the two membranes begin to pair with each other.
The fourth step, vesicle priming, occurs only in regulated exocytosis. Vesicle priming includes modifications occurring after the vesicle docks but before releasing its contents. Priming prepares vesicles for fusion with the plasma membrane.
The fifth step is vesicle fusion. Vesicle fusion can be complete or kiss-and-run. In complete fusion, vesicles entirely collapse and become part of the plasma membrane, expelling the contents from the cell in the process. In kiss-and-run fusion, the vesicle is recycled: It only temporarily fuses with the plasma membrane, releases its contents, and returns to the cell&#39;s interior.

Ekzositoz

Exocytosis is a process that releases molecules outside the cell. Like other bulk transport mechanisms, exocytosis requires energy.
Exocytosis is the ...

Endositoz ve Ekzositoz

Overview of Secretory Vesicles

Secretory vesicles, also known as dense core vesicles (DCVs), are membrane-bound vesicles that transport secretory proteins, such as hormones or neurotransmitters. Regulated secretory vesicles transport proteins from the trans-Golgi network to the exterior of the cell. Proteins present in regulated secretory vesicles are required to be rapidly exocytosed in large amounts upon a specific stimulus.
Various proteins regulate the aggregation of molecules inside the secretory vesicles. Chromogranins (Cgs) A and B are proteins that bind to soluble molecules present in secretory vesicles. This binding aggregates the soluble molecules, forming DCVs. Cgs function optimally at low pH and high intracellular calcium concentration. The low pH is maintained by the continuous pumping of protons by the V-type ATPases. A high concentration of calcium is present in the endoplasmic reticulum and Golgi complex of most mammalian cells. Hence, the secretory vesicles that bud off from the trans-Golgi network are rich in calcium. Calcium induces pH-dependent conformational changes in Cgs A and B. These conformational changes lead to the binding and aggregation of CgsA and B among other vesicular matrix proteins with the vesicular membrane. Aggregation is important for specific proteins to be sorted into regulated secretory vesicles.
The yeast Saccharomyces cerevisiae is a model system for studying the regulation of secretory vesicle-mediated transport. In 1979, Randy Schekman and Peter Novik generated temperature-sensitive mutants of S. cerevisiae. These mutants expressed proteins that were functional only at low temperatures but not at 37&#176;C. Schekman and Novik observed that these mutants accumulated vesicles and internal membranes. These mutants were also defective in different stages of protein secretion and therefore called them sec mutants. Some sec mutants contained vesicles that were unable to fuse with the plasma membrane, while other mutants could not transport proteins to other organelles. Further, molecular analysis of these mutants revealed 23 sec genes that produced proteins with regulatory roles in different transport stages of secretory vesicles.